HU193406B - Method for producing affinity sorbents - Google Patents

Method for producing affinity sorbents Download PDF

Info

Publication number
HU193406B
HU193406B HU862619A HU261986A HU193406B HU 193406 B HU193406 B HU 193406B HU 862619 A HU862619 A HU 862619A HU 261986 A HU261986 A HU 261986A HU 193406 B HU193406 B HU 193406B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
acid
amino
acetone
formula
dichloromethane
Prior art date
Application number
HU862619A
Other languages
Hungarian (hu)
Inventor
Istvanne Antal
Ivan Daroczi
Imre Suetoe
Bela Szajani
Kalman Kovacs
Botond Penke
Gabor Toth
Janos Varga
Marta Zarandi
Original Assignee
Reanal Finomvegyszergyar
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Reanal Finomvegyszergyar filed Critical Reanal Finomvegyszergyar
Priority to HU862619A priority Critical patent/HU193406B/en
Publication of HU193406B publication Critical patent/HU193406B/en

Links

Landscapes

  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)

Abstract

A találmány tárgya eljárás az (I) általános képletű affinitás-szorbensek előállítására P - A - CO - NH - Β (I) — a képletben P 10 000 és 100 000 közötti polimerizációfokú, affinításkromatográfiai célokra alkalmas poliszacharid-típusú hordozót, célszerűen agarózt vagy cellulózt, vagy akril-amid telítetlen karbonsavval képezett, divinil-vegyülettel térhálósított, 10 000 és 100 000 közötti polimerizációfokú kopolimerjét jelenti az -A-COOH oldallánc nélkül, A - (CH2) „-csoportot jelent, ahol n értéke 1 és 10 közötti egész szám, és B egy aminosav, polipeptid vagy neurotranszmitter-karbonsav maradékát jelenti az -NH2 végcsoport nélkül—, oly módon, hogy (II) általános képletű polimer hordozóhoz P - A - COOH (II) — a képletben P és A jelentése a fenti — aktív észter-módszerrel egy (III) általános képletű aminosav, polipeptid vagy neurotranszmitter-karbonsav Β - NH2 (III) — a képletben B jelentése a fenti — olyan védett származékát kapcsolják, amely az összes jelenlévő aminocsopor tot (a terminális aminocsoport kivételével) és adott esetben a jelenlévő heterociklusos amino-, hidroxil- és/vagy karboxilcsoporto(ka)t is savval lehasítható védőcsoporttal védett állapotban tartalmazza, és a) ha P poliszacharid-típusú hordozót jelent, a gélt acetonos és diklór-metános kezeléssel vízmentesítik, a védőcsoportokat diklór-metános közegben trifluor-ecetsavval lehasítják, és a kapott terméket csökkenő acetontartalmú aceton — víz elegyekkel, végül vízzel kezelve rehidratálják, vagy b) ha P akril-kopolimert jelent, a védőcsoportokat savas kezeléssel lehasítják, és a gélt mossák és szárítják. -1-The present invention relates to a process for the preparation of affinity sorbents of the formula (I): P - A - CO - NH - Β (I) - wherein P is a polysaccharide type carrier suitable for affinity chromatography for polymerisation between 10,000 and 100,000, preferably agarose or cellulose. or a copolymer of an acrylic amide with an unsaturated carboxylic acid crosslinked crosslinked with a 10,000 to 100,000 polymerization fraction without the A-COOH side chain, A - (CH2) -, wherein n is an integer from 1 to 10 , and B represents a residue of an amino acid, polypeptide or neurotransmitter carboxylic acid without the -NH2 end group, such that P-A-COOH (II) - wherein P and A are as defined above - is active for the polymeric support of Formula II. by an ester method an amino acid, polypeptide or neurotransmitter carboxylic acid (III) of formula (III) - wherein B is a - protecting a protected derivative comprising all of the amino groups present (except for the terminal amino group) and optionally the heterocyclic amino, hydroxyl and / or carboxyl group (s) present in the protected form with an acid-cleavable protecting group; ) when P is a polysaccharide type carrier, the gel is dehydrated by treatment with acetone and dichloromethane, the protecting groups are cleaved in dichloromethane with trifluoroacetic acid, and the resulting product is rehydrated by treating with acetone-water mixtures with decreasing acetone, and finally with water; P represents an acrylic copolymer, the protecting groups are cleaved by acid treatment and the gel is washed and dried. -1-

Description

A találmány tárgya eljárás az (I) általános képletű új affinítás-szorbensek előállításáraThe present invention relates to novel affinity sorbents of formula (I)

P - A - CO - NH - Β (I) — a képletbenP - A - CO - NH - Β (I) - in the formula

P 10 000 és 100 000 közötti polimerízációfokú, affinításkrornatográíiai célokra alkalmas poliszacharid-típusú hordozót, célszerűen agarózt vagy cellulózt, vagy akril-amid telítetlen karbonsavval képezett, divinil-vegyülettel térhálósított, 10 000 és 100 000 közötti polimerizációfokú kopolimerjét jelenti az -A-COOH oldallánc nélkül,P is a polysaccharide copolymer of 10,000 to 100,000 polymers having a degree of polymerisation of 10,000 to 100,000 and a polysaccharide-type support for affinity chromatography, preferably agarose or cellulose or acrylamide with a divinyl compound crosslinked with a divinyl compound. without,

A - (CH2) „-csoportot jelent, ahol n értéke 1 és 10 közötti egész szám, ésA - (CH 2 ) - is - where n is an integer from 1 to 10, and

B egy aminosav, polipeptid vagy neurotranszmitter-karbonsav maradékát jelenti az -NH2 végcsoport nélkül.B represents a residue of an amino acid, polypeptide, or neurotransmitter carboxylic acid without the -NH 2 end group.

Az aminosavak, polipeptidek (beleértve a di- és oligopeptideket is; ezek jellemző képviselői a hormonok) és a neurotranszmitter-karbonsavak immobilizálása polimer hordozón több szempontból is nagy jelentőségű, mert a tudományos kutatásban sokoldalúan felhasználható szorbenseket eredményez. Ezek a szorbensek felhasználhatók affinitáskromatógráfia céljára, a hormonok szolubilizált receptorainak tisztítására, hormonokkal mint antigénekkel szemben nyert antiszérumok tisztítására, antitestek izolálására, enzimek izolálására és tisztítására. Ezen kívül a megfelelő affínitás-szorbensek segítségével az immóbilizált hormon és receptora közötti kölcsönhatás alapján élő sejtek is tisztán izolálhatok. Ha az affinitás-szorbenseket mikroszkóp tárgylemezén élő sejtek szuszpenziójával inkubálják, majd mikroszkóppal vizsgálják a sejtek kötődését az affinitás-szorbensen, megállapítható, hogy az adott sejttípus tartalmazza-e a vizsgált receptorokat a sejtmembránon (affinltás-mikroszkópia). Az affinítás-szorbensek adott hormonnal, illetve neurotranszmitterrel szemben termelt antiszérum fajlagosságának ellenőrzésére, antitestek specifitásának kvalitatív és kvantitatív érzékelésére, továbbá egyes esetekben (így autoimmun betegségeknél) gyógyászati célokra is alkalmazhatók.The immobilization of amino acids, polypeptides (including di- and oligopeptides, which are typically represented by hormones), and neurotransmitter carboxylic acids on a polymeric carrier is of great importance in many respects because it results in a variety of sorbents useful in scientific research. These sorbents can be used for affinity chromatography, purification of solubilized receptors for hormones, purification of antisera to hormones as antigens, isolation of antibodies, isolation and purification of enzymes. In addition, living cells can be clearly isolated by appropriate affinity sorbents based on the interaction between the immobilized hormone and its receptor. If the affinity sorbents are incubated with a suspension of living cells on a microscope slide and examined for binding of the cells to the affinity sorbent under a microscope, it can be determined whether the particular cell type contains the receptors examined on the cell membrane (affinity microscopy). Affinity sorbents can be used to control the specificity of antisera produced against a particular hormone or neurotransmitter, to qualitatively and quantitatively detect antibody specificity, and in some cases (such as autoimmune diseases) for therapeutic purposes.

Mindezen felhasználási területek szempontjából alapvető fontossága van annak, hogy az affinítás-szorbens a rajta immobilizált aminosav-, peptid- vagy neurotranszmitter-karbonsav-molekulákat kémiailag egységes és biológiailag aktív állapotban tartalmazza.It is essential for all these applications that the affinity sorbent contains the immobilized amino acid, peptide or neurotransmitter carboxylic acid molecules in a chemically uniform and biologically active state.

Az affinítás-szorbensek előállításához hordozóként csak hidrofil polimerek használhatók fel. Erre a célra a legszélesebb körben különféle poliszacharidokat (agaróz, cellulóz stb.) alkalmaznak. Az eddig ismert megoldások szerint a biológiailag aktív molekulát aminocsoportján keresztül kapcsolták a hordozóhoz, például úgy, hogy agarózra előzetesen brómciánnal ε-amino-kapronsavat vittek fel, az így kialakított, karboxil funkciós csoportokat tartalmazó hordozó funkciós csoportjait N-hidroxi-szukcinimidészterré alakították, és az aktív észterhez kapcsolták aminocso2 portjukkal a rögzítendő aminosavat, peptidet vagy neurotranszmittert.Only hydrophilic polymers may be used as carriers for the preparation of affinity sorbents. Various polysaccharides (agarose, cellulose, etc.) are widely used for this purpose. In the prior art, the biologically active molecule is coupled to its carrier via its amino group, for example by pre-loading ε-aminocaproic acid with bromocyano, the resulting functional groups of the carboxyl-functionalized carrier being converted to the N-hydroxysuccinimide ester, and an amino acid, peptide or neurotransmitter to be attached to their active ester by their amino group.

Ennek a megoldásnak a hátránya, hogy több aminocsoportot tartalmazó, biológiailag aktív molekulák többféle módon is kapcsolódhatnak a hordozóhoz, azaz a végtermék nem tartalmazza a felvitt biológiailag aktív molekulákat kémiailag egységes állapotban.The disadvantage of this solution is that the biologically active molecules containing multiple amino groups can be attached to the carrier in several ways, i.e. the final biologically active molecule is not contained in the chemically uniform state.

Szükség van tehát olyan eljárásra, amelylyel a kémiailag egységes szerkezetű (tehát az összes felvitt molekulát azonos módon megkötve tartalmazó) affinítás-szorbensek a felvitt molekula biológiai aktivitásának csökkenése nélkül állíthatók elő. Kézenfekvő olyan védett aminosavnak vagy peptideknek a felhasználása, amelyek csak egyetlen szabad aminocsoportot tartalmaznak, míg az összes többi reakcióképes csoport (amino-, hidroxilvagy merkaptocsoport) védett formában van jelen. Nehézségek származnak azonban abból, hogy az affinításkromatográfiai célokra felhasználható polimer hordozóknak hidrofil anyagoknak kell lenniük; ezek azonban savakra rendkívül érzékenyek. Sav hatására a poli szacharid váz sérül, hidrolízist és bomlást szenved, így ha a védett csoportokat tartalmazó, biológiailag aktív molekulát a poliszacharid vázhoz kapcsoljuk, majd az aminocsoportok és az egyéb funkciós csoportok védőcsoportjait ismert módon erős savas kezeléssel lehasítjuk, a végtermék olyan szerkezeti változásokon megy keresztül, amelyek hatására affinitáskromatográfiai célokra alkalmatlanná válik. A szilárd fázisú peptid-szintézisben felhasznált polisztirol-alapú, savra rezisztens hordozóanyagok affinitáskromatográfiai célokra nem jöhetnek szóba, mert ezek hidrofób jellegűek.Thus, there is a need for a process by which affinity sorbents having a chemically uniform structure (i.e., containing all of the applied molecules bound) can be prepared without reducing the biological activity of the applied molecule. It is obvious to use protected amino acids or peptides which contain only one free amino group, while all other reactive groups (amino, hydroxyl or mercapto) are present in protected form. However, the difficulty arises from the fact that the polymeric carriers which can be used for affinity chromatography purposes must be hydrophilic materials; however, they are extremely sensitive to acids. The acid causes the polysaccharide backbone to undergo hydrolysis and degradation, so when a biologically active molecule containing protected groups is coupled to a polysaccharide backbone and then the amino and other functional groups are cleaved in a known acidic manner, the final product undergoes structural changes. which render it unsuitable for affinity chromatography purposes. The polystyrene-based acid-resistant carriers used in solid phase peptide synthesis are not suitable for affinity chromatography because they are hydrophobic.

Kísérleteink során azt tapasztaltuk, hogy haIn our experiments we found that if

a) a poliszacharid-hordozón egy szabad aminocsoportjuk igénybevételével immóbilizált aminosavak, neurotranszmitter-karbonsavak vagy polipeptidek egyéb aminocsoportjain és adott esetben egyéb funkciós csoportjain lévő, savval lehasítható védőcsoportokat speciális körülmények között távolítjuk el, vagy(a) removal of the acid-cleavable protecting groups on other amino groups and optionally other functional groups of amino acids, neurotransmitter carboxylic acids or polypeptides immobilized on the polysaccharide support using their free amino group, or

b) az aminosavak, neurotranszmitter-karbonsavak vagy polipeptidek immobilizálásához az affinitáskromatográfiában eddig még fel nem használt, hidrofil, ugyanakkor azonban savakkal szemben megfelelően ellenálló akril-kopolimert használunk, a felsorolt problémák teljes egészükben kiküszöbölhetők.b) using a hydrophilic but still acid-resistant acrylic copolymer not yet used in affinity chromatography for immobilization of amino acids, neurotransmitter carboxylic acids or polypeptides, all of the above problems can be eliminated.

A találmány tárgya tehát eljárás az (I) általános képletű új affinitás-szorbensek előállítására. A találmány értelmében úgy járunk el, hogy (II) általános képletű polimer hordozóhozThe present invention therefore relates to a process for the preparation of novel affinity sorbents of formula (I). According to the invention, the process is carried out on a polymeric support of formula II

P - A - COOH (II) — a képletben P és A jelentése a fenti — aktív észter-módszerrel egy (III) általános képletű aminosav, polipeptid vagy neurotranszmitter-karbonsavP - A - COOH (II) - wherein P and A are as defined above - by an active ester method an amino acid, polypeptide or neurotransmitter carboxylic acid of formula (III)

-2193406-2193406

Β - ΝΗ2 (III) — a képletben Β jelentése a fenti — olyan védett származékát kapcsoljuk, amely az összes jelenlévő aminocsoportot (a terminális aminocsoport kivételével) és adott esetben a jelenlévő heterociklusos amino-, hidroxil- és/vagy karboxilcsoporto(ka)t is savval lehasítható védőcsoporttal védett állapotban tartalmazza, ésΒ - ΝΗ 2 (III) - in which Β is as defined above - is a protected derivative which has all the amino groups present (except for the terminal amino group) and optionally the heterocyclic amino, hydroxy and / or carboxyl group (s) present also in an acid protected protecting group; and

a) ha P poliszacharid-típusú hordozót jelent, a gélt acetonos és diklór-metános kezeléssel vízmentesítjük, a védőcsoportokat diklór-metános közegben trifluor-ecetsavval lehasítjuk, és a kapott terméket csökkenő acetontartalmú aceton — víz eleggyekkel, végül vízzel kezelve rehidratáljuk, vagy(a) where P is a polysaccharide-type support, the gel is dehydrated by treatment with acetone and dichloromethane, the protecting groups are removed with trifluoroacetic acid in dichloromethane and the resulting product is rehydrated with acetone-water with decreasing acetone content, or

b) ha P akril-kopolimert jelent, a védőcsoportokat savas kezeléssel lehasítjuk, és a gélt mossuk és szárítjuk.b) when P is an acrylic copolymer, the protecting groups are cleaved by acid treatment and the gel is washed and dried.

A leírásban és az „aminosav megjelölésen amino-karbonsavakat, azaz -NH2 és -COOH csoportokat egyaránt tartalmazó vegyületeket értünk, amelyek a -COOH és -NH2 csoportokat hordozó szénhidrogén-vázon adott esetben további funkciós csoportokat, így például hidroxil-, amino-, karboxil-, alkil-tio-, hidroxi-alkil- vagy szulfonsav-csoportokat is hordozhatnak. Az aminosavak közül példaként a következőket soroljuk fel: lizín, arginín, aszparagin, glutamin, aszparaginsav, glutaminsav, cisztin, cisztein, metionin, glicín, fenil-alanin, az aromás gyűrűn alkil-, hidroxil-, szulfonsav-, amino- vagy nitrocsoporttal szubsztituált fenil-alanin-származékok, alanin, valin, leucin, izoleucin, hisztidin, triptofán, prolin, tirozin, ornitin, ε-amino-kapronsav, szarkozin, γ-amino-vajsav, a-amino-vajsav, p-amino-benzoésav és az aromás gyűrűn alkil-, hidroxil-, szulfonsav-, amino- vagy nitrocsoporttal szubsztituált származékai, 0-metil- vagy O-etil-tirozin stb.As used herein, the term "amino acid" refers to compounds containing both aminocarboxylic acids, i.e., -NH 2 and -COOH, which may optionally have additional functional groups on the hydrocarbon backbone bearing -COOH and -NH 2 , such as hydroxyl, amino, , carboxy, alkylthio, hydroxyalkyl or sulfonic acid groups. Examples of amino acids include: lysine, arginine, aspartic acid, glutamine, aspartic acid, glutamic acid, cystine, cysteine, methionine, glycine, phenylalanine, alkyl, hydroxyl, sulfonic acid, amino or nitro on the aromatic ring. phenylalanine derivatives, alanine, valine, leucine, isoleucine, histidine, tryptophan, proline, tyrosine, ornithine, ε-aminocaproic acid, sarcosine, γ-aminobutyric acid, α-aminobutyric acid, p-aminobenzoic acid and alkyl, hydroxy, sulfonic acid, amino or nitro substituted derivatives of the aromatic ring, 0-methyl or O-ethyl tyrosine and the like.

A leírásban és az igénypontsorozatban a „neurotranszmitter-karbonsavak megjelölésének az aminocsoportot hordozó szénatomon 1 karboxilezett (azaz NH2-(p-COOH terminális molekularészt tartalmazó) neurotranszmittereket értjük. A neurotranszmitterek az ingerületveszteségben jelentős szerepet játszó vegyületek, amelyek az élő szervezetben fehérjealkotó aminosavak enzimes átalakulása révén képződnek úgy, hogy az enzimes átalakulás első lépésében a kiindulási aminosav-molekulába új szubsztituensek (rendszerint hidroxílcsoportok) épülnek be, majd a második lépésben a szubsztituált aminosav-molekula enzimes úton dekarboxileződik. A neurotranszmitterek közül példaként az adrenalint, noradrenalint, dopamint és szerotonint említjük meg.Throughout the specification and appended claims, the "neurotransmitter acids designations for carrying the amino group on carbon by one carboxylated (i.e. NH 2 - mean (containing p-COOH-terminal moiety) neurotransmitters The neurotransmitters that play an important role in the synaptic loss compounds that enzymatic conversion of the protein component in the living body of amino acids. They are formed by first introducing new substituents (usually hydroxyl groups) into the parent amino acid molecule in the first step of the enzymatic transformation, and in the second step by enzymatic decarboxylation of the substituted amino acid molecule. a.

A (II) általános képletű polimer hordozók közül az akril-kopolimerek kereskedelemben kapható, ismert termékek. Ezek közül példaként az Akrilex C-t (akril-amid, N,N’-metilén-bisz-(akril-amid) és akrilsav kopolimerje) említjük meg. Azokat a (II) általános képletű vegyületeket, amelyekben P az affinitáskromatográfiában szokásosan felhasznált, ismert poliszacharid típusú hordozót (például agarózt, cellulózt, dextránt, karboxi-metil-cellulózt vagy karboxi-etil-cellulózt — célszerűen agarózt vagy cellulózt —) jelent, ismert módon állítjuk elő úgy, hogy a poliszacharidot brómciánnal, majd aminosavval reagáltatjuk. Az utóbbi vegyületek előnyös képviselői a karboxi-hexil oldalláncot tartalmazó poliszacharidok, így a karboxi-hexil-agaróz.Acrylic copolymers of the polymeric support of formula II are commercially available known products. An example is Akrilex C (copolymer of acrylamide, N, N'-methylene-bis (acrylamide) and acrylic acid). Compounds of formula (II) in which P represents a known polysaccharide-type carrier (e.g., agarose, cellulose, dextran, carboxymethylcellulose or carboxyethylcellulose, preferably agarose or cellulose), which are commonly used in affinity chromatography, are known in the art. is prepared by reacting the polysaccharide with bromocyanide followed by an amino acid. Preferred examples of the latter compounds are carboxyhexyl side chain polysaccharides, such as carboxyhexyl agarose.

A (III) általános képletű aminosavak, illetve peptidek védett származékait az aminosav- és peptidkémiában önmagukban ismert módszerek valamelyikével állítjuk elő. Az aminocsoportokra savval lehasítható védőcsoportokként például terc-butil-karbonil- vagy a,a’-dimetil-3,5-dimetoxi-benzil-oxi-karbonil-csoportot vihetjük fel. Adott esetben a molekula egyéb jelenlévő reaktív csoportjait — így például a hidroxil-, karboxil- vagy heterociklusos aminocsoportokat — is védhetjük savval lehasítható védőcsoportokkal. A hidroxilcsoportok védelmére például terc-butil-csoportot, a karboxilcsoportok védelmére ugyancsak terc-butil-csoportot vagy más alkalmas savérzékeny karboxil-védőcsoportot, míg a heterociklusos aminocsoportok védelmére például terc-butoxi-karbonil-csoportot vagy más alkalmas savérzékeny amino-védőcsoportot használhatunk. Ezeket a további reaktív csoportokat csak akkor kell védenünk, ha a kapcsolási reakció során szabad állapotban mellékreakciókat idéznének elő.The protected derivatives of the amino acids or peptides of formula III are prepared by methods known per se in the field of amino acid and peptide chemistry. Acid-cleavable protecting groups for amino groups include, for example, tert-butylcarbonyl or α, α'-dimethyl-3,5-dimethoxybenzyloxycarbonyl. Optionally, other reactive groups present on the molecule, such as hydroxyl, carboxyl or heterocyclic amino groups, may be protected with acid-cleavable protecting groups. For example, tert-butyl or other suitable acid-sensitive carboxyl protecting groups may be used to protect the hydroxyl groups, while tert-butoxycarbonyl or other suitable acid-sensitive amino protecting groups may be used to protect the heterocyclic amino groups. These additional reactive groups need only be protected if they would cause side reactions in the free state during the coupling reaction.

A (III) általános képletű neurotranszmitter-karbonsavak (azaz az aminocsoportot hordozó szénatomon karboxilezett neurotranszmitterek) védett származékait ismert módon állítjuk elő.Protected derivatives of the neurotransmitter carboxylic acids of formula III (i.e., the carboxylated neurotransmitters on the amino-bearing carbon atom) are prepared in a known manner.

Ha a poliszacharid-típusú hordozóanyagból indultunk ki, a gélt a védőcsoportok lehasítása előtt vízmentesítenünk kell. A vízmentesítéshez acetont, aceton - diklór-metán elegyeket, illetve diklór-metánt használunk.If starting from a polysaccharide-type carrier, the gel must be dehydrated before cleavage of the protecting groups. Dehydration is carried out using acetone, acetone / dichloromethane and dichloromethane.

A kapott vízmentes gélt ezután diklór-metános közegben trifluor-ecetsavval kezeljük. Ebben a lépésben a védőcsoportok a gélszerkezet károsodása nélkül távolíthatók el. A savas kezelés után a gélt kimossuk, majd növekvő mennyiségű vizet tartalmazó vizes acetonnal, végül vízzel kezelve rehidratáljuk. A rehidratált gélt szokásos körülmények között, antioxidánst és gombaölőszert tartalmazó vizes pufferoldatban, fénytől védve, hűvös helyen tároljuk.The resulting anhydrous gel was then treated with trifluoroacetic acid in dichloromethane. In this step, the protecting groups can be removed without damaging the gel structure. After acid treatment, the gel is washed and then rehydrated by addition of aqueous acetone containing increasing amounts of water and finally water. Under normal conditions, the rehydrated gel is stored in a cool place, protected from light, in an aqueous buffer containing antioxidant and fungicide.

Ha akril-kopolimer hordozóból indulunk ki, a gél vízmentesítésére nincs szükség. Minthogy ez a kopolimer savakra lényegesen kevésbé érzékeny a poliszacharidoknál, a védőcsoport lehasítására savként más erős savat, például 1,5 N vizes sósavoldat és ecetsav elegyét is használhatjuk. A savas kezelés után a gélt mossuk és szárítjuk.When starting from an acrylic copolymer carrier, the gel need not be dehydrated. Because this copolymer is significantly less sensitive to acids than polysaccharides, other strong acids, such as 1.5N aqueous hydrochloric acid and acetic acid, may be used as the acid deprotection. After acid treatment, the gel is washed and dried.

-3193406-3193406

A találmány szerinti eljárást az oltalmi kör korlátozása nélkül az alábbi példákban részletesen ismertetjük. Amennyiben az aminosavak konfigurációját külön nem közöljük, azok természetes (L) konfigurációjúak. A végtermékeket a felhasznált polimerre vonatkoztatva 100%-os kitermeléssel kapjuk. Minthogy az immobilizálandó. vegyületet mindig igen nagy (8-10 szeres) feleslegben használjuk fel, a végtermék hozama a bevitt immobilizálandó vegyületre vonatkoztatva körülbelül 10-12%. Az immobilizált biológiailag aktív vegyület koncentrációját a hordozón — ami az affinitás-szorbens jellemző minőségi adata — a példákban közöljük.The invention is illustrated in detail by the following non-limiting Examples. Unless otherwise specified, the amino acid configuration has a natural (L) configuration. The final products were obtained in 100% yield with respect to the polymer used. Because it has to be immobilized. The compound is always used in a very large excess (8-10 fold), yielding about 10-12% of the final product in relation to the compound to be immobilized. The concentration of the immobilized biologically active compound on the support, which is a characteristic quality of the affinity sorbent, is given in the Examples.

1. példa ml OH-agaróz-OSu-t 50 ml olyan 0,1 mólos foszfátpufferben (pH=6,8) szuszpendálunk, amely milliliterenként 1 mg ε-amino-BOC-lizint (H-Lys (BOC)-OH) tartalmaz. A szuszpenziót 3 órán át rázzuk, majd tízszeres térfogatú 2:2:1 térfogatarányú aceton — dimetil-formamid — víz eleggyel mossuk. A gélt elkülönítjük, térfogatával azonos mennyiségű 2:1:2 térfogatarányú dimetil-formamid— víz — aceton eleggyel ötször, majd desztillált vízzel ötször mossuk, ezután a következőképpen vízmentesítjük: 1 térfogatrész gélt 2-2 térfogatrész, növekvő mennyiségű (5, 10, 20, 40, 60, 80 térfogat%) acetont tartalmazó vizes acetonnal, vízmentes acetonnal, növekvő mennyiségű (5, 10, 20,40, 60, 80 térfogat%) diklór-metánt tartalmazó diklór-metán — aceton eleggyel, végül vízmentes diklór-metánnal mossuk. Az oldószert vízsugár-vákuumban leszívatjuk, a gélt vele azonos térfogatú, 0°C-ra hűtött, 1:1 térfogatarányú trifluor-ecetsav-diklór-metán elegy,hen szuszpendáljuk, és a szuszpenziót 2 órán át gyengén rázzuk. 2 óra elteltével a gélt leszűrjük, és vízmentes diklór-metánnal kétszer, csökkenő mennyiségű (95, 80, 60, 40, 20, 10, 5 térfogat%) diklór-metánt tartalmazó diklór-metán — aceton elegyekkel egyszer-egyszer, végül vízmentes acetonnal kétszer mossuk. A mosáshoz minden esetben a géllel azonos térfogatú mosófolyadékot használunk. Ezután a gélt oly módon rehidratáljuk, hogy csökkenő mennyiségű (95, 80, 60, 40, 20, 10, 5 térfogat%) acetont tartalmazó vizes acetonnal egyszer-egyszer, végül desztillált vízzel kétszer mossuk. A mosáshoz ekkor is a géllel azonos térfogatú mosófolyadékot használunk. Ezután a gélt térfogatának ötszörösét kitevő menynyiségü0,l mólos acetát-pufferrel (pH=4,75) mossuk, amely 0,02% nátrium-nitritet és antioxidánsként 0,1% L-aszkorbinsavat is tartalmaz. A gélt ugyanebben az összetételű pufferoldatban -(-4oC-on, fénytől védve tároljuk.Example 1 ml of OH-agarose-OSu is suspended in 50 ml of 0.1 M phosphate buffer, pH 6.8 containing 1 mg of ε-amino-BOC-lysine (H-Lys (BOC) -OH) per ml. . The slurry was shaken for 3 hours and then washed with 10 volumes of 2: 2: 1 acetone-dimethylformamide-water. The gel is separated, washed five times with 2: 1: 2 dimethylformamide / water / acetone (2: 1: 2) and then with distilled water, and then dried as follows: 1 volume of gel in 2 to 2 volumes of increasing volume (40, 60, 80% v / v) aqueous acetone, acetone anhydrous, dichloromethane / acetone containing increasing amounts of dichloromethane (5, 10, 20.40, 60, 80% v / v), and finally anhydrous dichloromethane washed. The solvent is filtered off with suction and the gel is suspended in an equal volume of a 1: 1 mixture of trifluoroacetic acid in dichloromethane cooled to 0 ° C, and the suspension is gently shaken for 2 hours. After 2 hours, the gel was filtered and once with dichloromethane / dichloromethane / dichloromethane / twice with anhydrous dichloromethane and finally with anhydrous acetone. wash twice. An equal volume of washing liquid with gel is used for each wash. The gel is then rehydrated by washing once and twice with distilled water once with aqueous acetone containing a decreasing amount (95, 80, 60, 40, 20, 10, 5% by volume) of acetone. Again, an equal volume of washing liquid with the gel is used. The gel is then washed with 5 volumes of gel in 0.1 M acetate buffer, pH 4.75, containing 0.02% sodium nitrite and 0.1% L-ascorbic acid as an antioxidant. Store the gel in the same composition buffer solution at - (- 4 ° C, protected from light).

A polimer hordozóhoz kötött lizin mennyiségét merkapto-etán-szulfonsavas hidrolízis után automata aminosav-analízissel határozzuk meg. A lizin koncentrációja a hordozón x 10'3 mól/liter.The amount of lysine bound to the polymeric carrier after hydrolysis of mercaptoethanesulfonic acid is determined by automated amino acid analysis. The concentration of lysine on the support is x 10 ' 3 mol / liter.

2. példaExample 2

Az 1. példában leírtak szerint járunk el, de α-amino-BOC-lizint (BOC-Lys-OH) használunk fel. A polimer hordozóhoz kötött lizin mennyiségét az 1. példában közöltek szerint határozzuk meg. A lizin koncentrációja a hordozón 2,5 x 1 ö-3 mól/liter.The procedure is as in Example 1, but α-amino-BOC-lysine (BOC-Lys-OH) is used. The amount of lysine bound to the polymeric carrier was determined as in Example 1. The concentration of lysine on the support is 2.5 x 10 3 -3 moles / liter.

3. példaExample 3

Az 1. példában leírtak szerint járunk el, de H-Pro-Lys(BOC)-Gly-NH2-t 'használunk fel.The procedure is as in Example 1, but using H-Pro-Lys (BOC) -Gly-NH 2 .

4. példaExample 4

0,5 g vízmentes Akrilex C 100 pentaklór-fenil-észtert 10 ml vízmentes dimetil-formamidban szuszpendálunk. A szuszpenzióhoz 1 ml vízmentes piridint, majd 10 ml vízmentes dimetil-formamidban oldott 20 mg H-Pro-Lys(BOC)-Gly-NH2-t adunk, és a szuszpenziót 1 napig szobahőmérsékleten rázzuk. Ezután az oldószert vízsugárvákuumban leszívatjuk, és a gélt ötször 20 ml vízmentes dimetil-formamiddal és ötször 50 ml vízmentes acetonnal mossuk. Ezután a gélt diklór-metánnal mossuk, majd 1:1 térfogatarányú diklór-metán — trifluor-ecetsav elegyet adunk hozzá, és a szus2,penziót 1 órán át rázzuk. A gélt elkülönítjük, metanollal, dimetil-formamiddal és acetonnal mossuk, és xerogél formájában tároljuk.0.5 g of anhydrous Akrilex C 100 pentachlorophenyl ester are suspended in 10 ml of anhydrous dimethylformamide. To the suspension was added 1 ml of anhydrous pyridine followed by 20 mg of H-Pro-Lys (BOC) -Gly-NH 2 in 10 ml of anhydrous dimethylformamide, and the suspension was shaken for 1 day at room temperature. The solvent was then filtered off with suction and the gel was washed five times with 20 ml of anhydrous dimethylformamide and five times with 50 ml of anhydrous acetone. The gel is then washed with dichloromethane, then dichloromethane / trifluoroacetic acid (1: 1) is added and the suspension is shaken for 1 hour. The gel was separated, washed with methanol, dimethylformamide and acetone and stored as xerogel.

Claims (1)

Eljárás az (I) általános képletű affinitás-szorbensek előállításáraProcess for the preparation of affinity sorbents of formula (I) P - A - CO - NH - Β (I) — a képletbenP - A - CO - NH - Β (I) - in the formula P 10 000 és 100 000 közötti polimerizációfokú, affinitáskromatográfiai célokra alkalmas poliszacharid-típusú hordozót, célszerűen agarózt vagy cellulózt, vagy akril-amid telítetlen karbonsavval képezett, divinil-vegyülettel térhálósított, 10 000 és 100 000 közötti polimerizációfokú kopolimerjét jelenti az -A-COOH oldallánc nélkül,P is a polysaccharide-OH copolymer of 10,000 to 100,000 polymers having a degree of polymerisation of 10,000 to 100,000 and a polysaccharide-type support, preferably agarose or cellulose or acrylamide, crosslinked with an unsaturated carboxylic acid and suitable for affinity chromatography. without, A - (CH2)«- csoportot jelent, ahol n értéke 1 és 10 közötti egész szám, ésA - (CH 2 ) - is - where n is an integer from 1 to 10, and B egy aminosav, polipeptid vagy neurotranszmitter-karbonsav maradékát jelenti az -NH2 végcsoport nélkül —, azzal jellemezve, hogy (II) általános képletű polimer hordozóhozB represents a residue of an amino acid, polypeptide or neurotransmitter carboxylic acid without the -NH 2 end group, characterized in that P - A - COOH (II) — a képletben P és A jelentése a fenti — aktív észter-módszerrel egy (III) általános képletű aminosav, polipeptid vagy neurotranszmitter-karbonsavP - A - COOH (II) - wherein P and A are as defined above - by an active ester method an amino acid, polypeptide or neurotransmitter carboxylic acid of formula (III) Β - NH2 (III) — a képletben B jelentése a fenti — olyan védett származékát kapcsoljuk, amely az összes jelenlévő aminocsoportot (a terminális aminocsoport kivételével) és adott esetben a jelenlévő heterociklusos amino-, hidroxil- és/vagy karboxilcsoporto(ka)t is savval lehasítható védőcsoporttal védett állapotban tartalmazza, ésΒ - NH 2 (III) - in which B is as defined above - is a protected derivative which has all the amino groups present (except the terminal amino group) and optionally the heterocyclic amino, hydroxy and / or carboxyl group present also in an acid protected protecting group; and -4193406-4193406 a) ha P poliszacharid-típusú hordozót jelent, a gélt acetonos és diklór-metános kezeléssel vízmentesítjük, a védőcsoportokat diklór-metános közegben trifluor-ecetsavval lehasítjuk, és a kapott terméket csökkenő aceton8 tartalmú aceton — víz elegyekkel, végül vízzel kezelve rehidratáljuk, vagy(a) where P is a polysaccharide-type support, the gel is dehydrated by treatment with acetone and dichloromethane, the protecting groups are removed with trifluoroacetic acid in dichloromethane and the resulting product is rehydrated with acetone / water containing decreasing acetone8, or b) ha P akril-kopolimert jelent, a védőcsoportokat savas kezeléssel lehasítjuk, és ab) when P is an acrylic copolymer, the protecting groups are cleaved by acid treatment; 5 gélt mossuk és szárítjuk.Wash 5 gels and dry.
HU862619A 1983-08-17 1983-08-17 Method for producing affinity sorbents HU193406B (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU862619A HU193406B (en) 1983-08-17 1983-08-17 Method for producing affinity sorbents

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU862619A HU193406B (en) 1983-08-17 1983-08-17 Method for producing affinity sorbents

Publications (1)

Publication Number Publication Date
HU193406B true HU193406B (en) 1987-10-28

Family

ID=10960291

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU862619A HU193406B (en) 1983-08-17 1983-08-17 Method for producing affinity sorbents

Country Status (1)

Country Link
HU (1) HU193406B (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Brückner et al. HPLC separation of DL-amino acids derivatized with N 2-(5-fluoro-2, 4-dinitrophenyl)-L-amino acid amides
Fridkin et al. Use of polymers as chemical reagents. I. Preparation of peptides
KR860000526B1 (en) Preparation process of new amind-functionalized acrylic copolymers
CA1066847A (en) Specific sorbents and a method of their preparation
US4411832A (en) Polysaccharide matrices comprising macromolecular spacer arms for use as adsorbents in affinity chromatography techniques
Sela et al. Multichain polyamino acids
JP2796599B2 (en) Solid phase protein sequencing membrane
CA2660300A1 (en) Sugar chain-capturing substance and use thereof
US4420424A (en) New peptides and a process for their preparation
Ollivier et al. A simple and traceless solid phase method simplifies the assembly of large peptides and the access to challenging proteins
US4525465A (en) Water-insoluble biospecific absorbent containing argininal derivative
NO165549B (en) PROCEDURE FOR POWDERING A VINYLAROMATIC MONOMER AND AN ACRYLIC MONOMER ON POLYBUTADIA BY EMULSION POLYMERIZATION.
CN109790202A (en) Cyclic peptide, affinity chromatography carrier, labelled antibody, antibody drug complex and pharmaceutical preparation
JP2960257B2 (en) Biotin introduction reagent and method for purifying synthetic peptide using the same
US4376760A (en) Tridecapeptide
SU1396970A3 (en) Method of producing derivatives of gonadoliberine
WO1991019984A1 (en) Carboxyl-terminal protein sequencing method and apparatus
HU193406B (en) Method for producing affinity sorbents
US4038282A (en) Pyridyl-4-methyl-succinimidocarbonate and process for its preparation
US20040152155A1 (en) Method for selectively collecting N-terminal peptide fragment of protein
CN112898172B (en) Synthesis method of amphiphilic functional group compound capable of being enzymolyzed by carboxypeptidase
JP4120580B2 (en) Method for selectively recovering N-terminal fragments of proteins
HU192842B (en) Process for preparing affinity sorbents
EP1621546B1 (en) Peptide ligands specific to immonoglobulins
US4370312A (en) Decapeptide

Legal Events

Date Code Title Description
HU90 Patent valid on 900628
HMM4 Cancellation of final prot. due to non-payment of fee