HU187793B - Process for producing attenuated living virus vaccine against dog-distemper - Google Patents

Process for producing attenuated living virus vaccine against dog-distemper Download PDF

Info

Publication number
HU187793B
HU187793B HU322682A HU322682A HU187793B HU 187793 B HU187793 B HU 187793B HU 322682 A HU322682 A HU 322682A HU 322682 A HU322682 A HU 322682A HU 187793 B HU187793 B HU 187793B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
virus
vaccine
cultures
viral
cell culture
Prior art date
Application number
HU322682A
Other languages
Hungarian (hu)
Inventor
Laszlo Lenkei
Bela Nagy
Original Assignee
Phylaxia Oltoanyagtermeloe Vallalat,Hu
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Phylaxia Oltoanyagtermeloe Vallalat,Hu filed Critical Phylaxia Oltoanyagtermeloe Vallalat,Hu
Priority to HU322682A priority Critical patent/HU187793B/en
Publication of HU187793B publication Critical patent/HU187793B/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

A találmány tárgya eljárás szopornyica elleni attenuált élővírusos vakcina előállítására. A találmány értelmében az Országos Közegészségügyi Intézet Mikroorganizmusok Nemzeti Gyűjteményében 00221 szám alatt letétbe helyezett ML—32 jelű módosított Lederle-féle paramyxo-vírust primer vagy szekunder fibroblaszt-tenyészeten 25-40 passzázson át tenyésztik, az így kapott vírus-folyadékot oltóanyagként le- aratják, az oltóanyaggal újabb primer vagy szekunder fibroblaszt-szövettenyészeteket oltanak be, a tenyészeteket 4-9 napon keresztül inkubálják, majd a vírus folyadékot elkülönítik és védőkolloid hozzáadása után liofilizálják. A fentiek szerint előállított vakcina 3 hónapos vagy ennél idősebb kutyák szopornyica elleni aktív immunizálására alkalmas. 4 s Y •J 5 ΐ s 1 ϊ 1 -1-The present invention relates to a method for producing an attenuated live virus vaccine against sorghum. According to the invention, the modified Lederle paramyxo virus ML-32 deposited in the National Collection of Microorganisms of the National Institute of Public Health is cultured for 25-40 passages on primary or secondary fibroblast cultures, the virus fluid thus obtained is described as a vaccine; the vaccine is inoculated with further primary or secondary fibroblast tissue cultures, incubated for 4-9 days, and the virus fluid is isolated and lyophilized after the addition of a protective colloid. The vaccine prepared as described above is capable of active immunization against dogs of 3 months of age or older. 4 s Y • J 5 ΐ s 1 ϊ 1 -1-

Description

Λ találmány tárgya eljárás kutyák szopornyica betegsége elleni gyengített virulenciájú, élővírusos vakcina előállítására sejttenyészetben.The present invention relates to a process for the production of a live viral vaccine for attenuated virulence in dogs in cell culture.

A szopornyica vírus a XVIII, század második fele óta ismeretes Európában. Egyesek szerint a vírus Ázsiából, mások szerint Peruból származik. Fertőző természete már a múlt század közepétől ismert, a szopornyica (febris catarrhalis infectiosa canunt) nevű betegség vírusos eredetét Carré (1905) ismerte fel.Birdworm virus has been known in Europe since the second half of the 18th century. Some say the virus originates in Asia, others believe it comes from Peru. Its infectious nature has been known since the middle of the last century, and Carré (1905) recognized the viral origin of the disease called febris catarrhalis infectiosa canunt.

A szopornyica a kutyák rendkívül elterjedt fertőző betegsége. Csaknem minden kutya átesik rajta. Leggyakoribb az 1—2 éves korban. A betegség különösen nyáron szokott terjedni, mivel ebben az évszakban nyílik legtöbb lehetőség a kutyák fertőződésére. Nyáron általában a betegség jóindulatúan zajlik le. Ezzel szemben télen és tavasszal sokszor jelentkezik szövődményes alakban. A vírus iránt a kutyán kívül rendkívül fogékony a farkas és a róka is. Ezüstróka tenyészetekben sokszor nagy veszteségeket okoz. Szopornyicás megbetegedések prémes állatok tenyésztésével foglalkozó telepeken (menyét, hermelin, nyérc, vadászgörény), valamint állatkertekben vidrák között is előfordul.Piglet is a very common infectious disease in dogs. Almost every dog goes through it. It is most common at the age of 1-2. The disease is especially widespread in the summer, as this is the season when dogs are most likely to become infected. In summer, the disease is usually benign. In contrast, in winter and spring, it often occurs in a complicating form. In addition to the dog, wolves and foxes are extremely susceptible to the virus. Silverstroke often causes great losses in cultures. Glanders in fur breeding establishments (weasel, hermelin, mink, ferret) and in zoos also occur among otters.

A szopornyica vírusa (Carré, 1905) a paramyxocsoportba tartozik. A korábbi feltevés, amely szerint a vírus több immunbiológiai változatban fordulna elő, nem igazolódott. A szopornyica, a keleti marhavész és az ember kanyarójának vírusa között immunbiológiai szempontból rokonság áll fenn.Buckwheat Virus (Carré, 1905) belongs to the paramyxo group. The earlier assumption that the virus would be present in multiple immunobiological variants has not been substantiated. There are immunobiologically related relationships between bovine, oriental beef and human measles virus.

A fertőzés, a beteg állatok orr- és tüdő váladéka val és vizeletével szennyezett anyagok útján történik. Fogékonyak oiyan kutyák, amelyek a betegségen még nem estek át, kivéve az immunis anyák 6 hetesnél fiatalabb kölykdt, amelyek a fecstej felvétele útján passzív immunitásra tettek szert. Ahhoz, hogy a fertőződés megeredjen, nincs szükség hajlamosító k nyezőkre. Bizonyos hajlamosító körülmények, így a megfázás, a hiányos vagy célszerűtlen táplálás, a szabadban való mozgás hiánya, a beltenyésztés, a bélférgcsség és egyéb bántahnak, alkalomadtán mégis jelentős szerepet játszanak, mert a szopornyica lefolyását súlyosbítják és szövődmények kialakulását segítik elő.The infection, the nasal and lung secretions of diseased animals, is caused by substances contaminated with urine and urine. Susceptible olian dogs that have not yet died of the disease, with the exception of immune mothers younger than 6 weeks, who have acquired passive immunity by uptake of swallow milk. There is no need for predisposing agents to cause infection. However, certain predisposing conditions, such as colds, inadequate or inadequate nutrition, lack of exercise, inbreeding, helminths, and other maladies, occasionally play a significant role in aggravating the course of the larynx and contributing to the development of complications.

A szopornyica első szakasza tiszta vérfertőzés, amikor a vírus előbb a fégutakban, a tesítájéki nyirokcsomókban, majd a lymphoreticularis szövetben elszaporodva viraémiát, és ennek megfelelően lázat okoz. Nagyon érzékeny állatok már ennek a vérfertőzésnek áldozatul esnek, általában azonban maga a vérfertőzés nem öli meg a beteget. A hőmérséklet emelkedése múlékony, mert csak néhány napig tart, amíg a vérfertőzés fennáll. A vérfertőzés megszűntével a hőmérséklet visszatér eredeti értékére és a vírusnak a vérből való távoztával az állat meggyógyul. Az esetek egy részében azonban ezzel nem ér véget a betegség, mert a hőmérséklet csakhamar újra felemelkedik, annak jeléül, hogy a vérben keringő vírus a vérerek endotheljének fellazítása útján az egyes nyálkahártyákban hurutot okoz, és különféle szervekben mélyreható kóros állapot fejlődik ki, részint magának a vírusnak hatására, részint szövődményképpen utólag behatolt baktériumok elszaporodása folytán. Aszerint, hogy milyen szervekben fejlődnek ki gyulladásos jelenségek, szokás volt hurutos, ideges és kiütéses szo2 pornyicárói beszélni. Gyakran csakugyan egyes szervrendszerek megbetegedése áll a kórkép előterében, általában azonban nem lehet élesen megkülönböztetni a szopornyica említett alakjait, sőt sokszor a kórkép idővel meg is változtatja jellegét. A szopornyica majdnem minden esetében korán feltűnik a légutak hurutja. Ritkábban a szaruhártya is elhomályosodik vagy a szaruhártyán fekélyek képződnek. Az emésztőcső megbetegedése a mandulák megduzzadásával járó többé-kevésbé súlyos torokgyulladásban, valamint heveny gyomor-bélhurutfcan vagy gyomor bélgyulladásban mutatkozik. Az idegrendszer bántalmazottságára utaló tünetek könnyű lefolyású esetekben is gyakran mutatkoznak, némelykor azonban súlyos jellegűek. Az idegrendszeri tünetek tompultságban vagy éppen izgatottságban, egyes izomcsoportokban rángó vagy időnként visszatérő merevgörcsökben, bénulásokban nyilvánulnak meg. A szopornyicában megbetegedett kutyák egy részében a has és a hátulsó végtagok belső felületének bőrén sajátos kiütés keletkezik. Sokszor lehet észlelni a külső hallójárat bőrén nedvező ekcémát is. A vemhes állatok el is vetélhetnek. Egyes esetekben a kórképet kiegészíti a korábban külön betegségnek tartott talpkerriényedéskór. Ilyenkor az orron, főleg pedig a talpakon a szaruréteg megvastagodik és megkeményedik.The first stage of the cilia is a pure incest, when the virus multiplies first in the lymphatic vessels, then in the lymphoreticular tissue, and then causes viraemia and, accordingly, fever. Highly susceptible animals are already victims of this infection, but usually the infection itself does not kill the patient. The temperature rise is temporary because it only lasts for a few days while the incest persists. Once the incest has ceased, the temperature returns to its original value and the virus heals when the virus is removed from the blood. However, in some cases, the disease does not end because the temperature rises soon, indicating that the circulating virus causes cataracts in each mucosa by loosening the endothelium of the blood vessels, and in some organs develops a profound disease. caused by the virus, partly due to the proliferation of bacteria that subsequently penetrated. Depending on the organs in which inflammatory phenomena develop, it has been customary to speak of cataract, nervous, and rash dust. Often, certain organ systems are at the forefront of the disease, but in general it is not possible to distinguish sharply the mentioned forms of the piglet, and in many cases the disease changes its nature over time. In almost all cases of suckling, the cataract appears early in the airway. In rare cases, the cornea also becomes cloudy or corneal ulcers are formed. Gastrointestinal disease is characterized by more or less severe throat inflammation accompanied by swelling of the tonsils and acute gastrointestinal or gastrointestinal inflammation. Symptoms of nervous system malignancy are also common in mild cases but sometimes severe. Nervous system symptoms include dullness or agitation, convulsions in some muscle groups, or occasionally recurring stiffness, paralysis. In some dogs, the skin of the abdomen and the hind limbs develops a special rash in some cases. Mild eczema on the external auditory canal is also frequently seen. Pregnant animals can miscarry. In some cases, the disease is complemented by a disease of the soles of the feet, previously considered a separate disease. In this case, the horn layer on the nose and especially on the soles thickens and hardens.

A szopornyica a leírt kórkép kifejlődése esetén jelentős bántalom. Szakszerű kezelés nélkül a megbetegedett állatoknak átlagosan 50 %-a elhullik.Buckwheat is a significant lesion in the development of the disease described. On average, 50% of the affected animals die without proper treatment.

A fertőzés veszélyének kitett állatok védelméről aktív immunizálással kell gondoskodni. Napjainkban immunizálásra leginkább tojásban vagy szövettenyészetben passzált gyengített, modifikált élő vírust tartalmazó vakcina használatos, amely liofilizáltan kerül forgalomba. Jelenleg hazánkban és számos országban a tojásban szaporított gyengített virulenciájú élő vírust használják vakcinakészítésre. Ezek a vírusok többnyire az illető ország izoiátumai. A tojásból nyert szopornyica vakcinák előállítása rendkívül bonyolult, munkaigényes. Az avianizált szopornyica-vírustörzsek elterjedése óta számos kutató foglalkozott különböző virulens vagy csibeembrióhoz adaptált vírustörzsek elszaporításával szövettenyészetben. Sok sikertelen próbálkozás (Cabasso, Kísér és Stebbins; Proc. Soc. exp. Bioi. 1959.100. 551. — Hopper; J. comp. Path. 1959.Animals at risk of infection should be protected by active immunization. Nowadays, the most commonly used immunization is an attenuated, modified live virus vaccine in egg or tissue culture and lyophilized. At present, live viruses of weakened virulence in eggs are used in vaccine production in Hungary and in many countries. These viruses are mostly isolates of that country. The production of egg boar vaccines is extremely complicated and labor-intensive. Since the spread of avianized chickpea virus strains, many researchers have dealt with the propagation of different virulent or chick embryo virus strains in tissue culture. Many unsuccessful attempts (Cabasso, Accompany and Stebbins; Proc. Soc. Exp. Bioi. 1959-1005. 551 - Hopper; J. comp. Path. 1959;

P. K. 78. - Bussel és Kazon; Arch. ges. Virusforsch. 1965. 17. 163.) után Dedié és Klapötke; Vet. Med. 1959. 3. 137., valamint Rockborn; Arch. ges. Virusforsch. 1958. 8. 485. szopornyica vírus szövettenyészetben való sikeres elszaporításáró! számolnak be. Az így szaporított virulens vírusok azonban élővírusos vakcina előállítására nem jöhetnek szóba. A továbbiakban több kutató különböző szopornyica vírustörzseket csibeembriofibroblaszt sejttenyészetben próbált szaporítani. A vírus a szöveten megtapadt, de látható módon nem károsította a tenyészet sejtjeit (Reculard és mtsai; Ann. Inst. Pasteur, 1960, 98. 344 - Cabasso, Kiser és Stebbins; Am. J. vet. Rés. 1962, 23,394. — Jiran; Vet. Med.Praha, 1965. 10. 87. — Dias Vigario és Ferreira; Bohn. Pecuar, 1965. 33. No. 2. 131.) Karzon és Bussel (Science, 1959. 130.1708.) az Onderstepoort törzset szaporították el sikeresen csibeembriófibroblaszt szövettenyészetben. Vizsgá-23P. K. 78. - Bussel and Kazon; Arch. ges. Virusforsch. Dedié and Klapötke after 17.1.1965; Vet. Med., 13 March 1959; and Rockborn; Arch. ges. Virusforsch. 8.8.1958 485 successful breeding virus of porcupine virus! report. However, the virulent viruses so propagated cannot be used to produce a live virus vaccine. Further, several researchers have attempted to propagate different strains of porcupine virus in chick embryo-fibroblast cell culture. The virus adhered to the tissue but did not appear to damage the cells of the culture (Reculard et al; Ann. Inst. Pasteur, 1960, 98, 344 - Cabasso, Kiser, &Stebbins; Am. J. Vess., 1962, 23,394). Jiran, Vet. Med.Praha, October 10, 1965 - Dias Vigario and Ferreira; Bohn. Pecuar, 33. No. 2. 131. 1965. Karzon and Bussel (Science, 1959. 130.1708) propagated the strain Onderstepoort. successfully in chick embryo fibroblast tissue culture. Exam-23

187 793187,793

Iataikban a vírus elszaporodását specifikus cytopathogén hatás kísérte. Busscl és Karzon későbbi vizsgálataikban megállapították, hogy a szövethez szoktatott Onderstepoort törzs később kevésbé képes a chorioallantois membránon léziók kiváltására. Paganini és Papparella; Acta Med. Vet. Napoli, 1960. 6. 253., hasonló eredménnyel szaporított el avianizált szopornyica vírustörzset csibeembrió-fibroblaszt sejttenyészetben. Vasic. B., Vasic N. Lukic és Kristic (1976) szintén az Onderstepoort törzset szaporították el csirkeembrió-fibroblaszt sejttenyészetben. Vizsgálatainkban a vírus szaporodását cytopathogén hatás nem követte, a vírus szaporodását chorioallantois membránra történő visszaoltással igazolták.In their cells, viral replication was accompanied by a specific cytopathogenic effect. In their later studies, Busscl and Karzon found that tissue-trained Onderstepoort strains were later less able to induce lesions on the chorioallantoic membrane. Paganini and Papparella; Acta Med. Vet. Napoli, 6 June 253, 1960, with similar results, propagated avianized porcine virus strain in chick embryo fibroblast cell culture. Vasic. B., Vasic N. Lukic and Kristic (1976) also propagated the Onderstepoort strain in chicken embryo fibroblast cell culture. In our studies, virus growth was not followed by a cytopathogenic effect, and viral growth was confirmed by reversal on the chorioallantoic membrane.

A szopornyica vírustörzsek sejttenyészetben való szaporítását illetően ellentmondásosak az irodalmi adatok. A virulens szopornyica vírustörzseket némely esetben sikerült sejttenyészetben elszaporítani, és a vírus szaporodását egyes esetekben sejtkárosító hatás is kísérte. A szopornyica elleni vakcinatermelésre használt vírustörzsek közül az Onderstepoort vírustörzset sikerült egyes szerzőknek szövctteiiyészetbcn elszaporítania. Az esetek egy részében a vírus szaporodását specifikus cytopathogén hatás is kísérte, de az így szaporított vírus később kevésbé képes chorioailantois membránon léziók kiváltására. Mások szerint a sejttenyészetben szaporított Onderstepoort vírustörzsnek nincs cytopathogén hatása és a vírus szaporodás csak choriallantois membránra történő visszaoltással igazolható. A sejttenyészetben szaporítható virulens szopornyica vírusok élovírusos vakcina előállítására a betegség terjedése, illetve fennmaradása miatt nem használhatók fel. A vakcinatermelésre használt vírusok sejttenyészetben is szaporítható törzseinek általában nincs sejtkárosító hatása és a vírusszaporodás, illetve a vírustiter ellenőrzése csak bonyolult és munkaigényes módszerekkel (például a Rockborm törzs esetében immunfluoreszcenciás módszer) végezhető el.There is contradictory literature on the growth of sturgeon virus strains in cell culture. In some cases, virulent strains of porcine viruses have been successfully propagated in cell culture, and in some cases, cell proliferation has been associated with viral proliferation. Among the strains of virus used for the production of vaccine against porcupine, the Onderstepoort virus strain was successfully propagated by tissue culture. In some cases, viral replication was accompanied by a specific cytopathogenic effect, but the virus thus propagated was later less able to induce lesions on the chorioallantoic membrane. Others have suggested that the strain of Onderstepoort virus grown in cell culture has no cytopathogenic effect and that viral growth can only be demonstrated by inoculation into the choriallantoic membrane. Virulent piglet viruses propagated in cell culture cannot be used for the production of live virus vaccine due to the spread or survival of the disease. Cell culture strains of viruses used for vaccine production generally have no cellular damage and viral growth and virus titer control can only be accomplished using sophisticated and laborious methods (such as the immunofluorescence method for the Rockborm strain).

A találmány célja, hogy egyszerű eljárást biztosítson szopornyica elleni védettséget adó, sejttenyészetben szaporított, modifikált élővírusos vakcina előállítására.It is an object of the present invention to provide a simple process for the preparation of a modified live virus vaccine which is propagated in cell culture and provides protection against porcine.

Vizsgálatainkban a Behringwerke A. G. által rendelkezésünkre bocsátott csirkeembrióhoz adaptált, Lederle-féle szopornyica vírustörzset használtuk. A vírus csirkeembrió chorioailantois membránján szaporodott és sejttenyészetben cythopathogén hatást nem, mutatott. Kísérleteink során II napos csírkcembrióbót; tripszines emésztéssel fibroblaszt-tenyészeteket készítettünk. A tenyésztéshez 0,5 % lactalbumin hidrolizátumot, 10% tyúkvérsavót, vagy 10 % borjú vérsavót, 100 E/ml penicillint, SOpg/ml streptomycint használtunk. Felhasználás előtt a táp folyadékot leöntöttük és fenntartó folyadékként 1 % tyúksavót, illetve 1 % borjúsavót tartalmazó Hanks oldat és amnionfolyadék azonos mennyiségű keverékét alkalmaztunk. Az avianizált Lederle-féle vírust hetente passzáltuk a leírt fibroblaszt tenyészeten. A tenyésztőedényeket 37 °C-on tartottuk és naponta vizsgáltuk. A vírussal való oltást követő 7. napon a tenyészetek fenntartó folyadékát sterilen leszívtuk és a learatott folyadékot továbboltottuk. Az első 4 passzázsban cytopathogén hatásra utaló elválasztásokat nem találtunk. Az 5.In our study, we used a strain of Lederle piglet virus adapted to the chicken embryo provided by Behringwerke A.G. The virus multiplied on the chorioallantoic membrane of chicken embryo and showed no cytopathogenic effect in cell culture. During our experiments, II-day germ embryo booby; fibroblast cultures were prepared by trypsin digestion. 0.5% lactalbumin hydrolyzate, 10% chicken blood serum or 10% calf serum, 100 U / ml penicillin, SOpg / ml streptomycin were used for culture. Prior to use, the culture medium was drained and an equal amount of a mixture of Hanks' solution containing 1% chicken and 1% calf serum and amniotic fluid was used as a maintenance fluid. The avianized Lederle virus was passaged weekly on the described fibroblast culture. The culture vessels were maintained at 37 ° C and examined daily. On day 7 after virus inoculation, the culture fluid was sterile aspirated and the harvested fluid inoculated. No cytopathogenic separations were found in the first 4 passages. 5.

passzázsnál a tyúksavós tenyészet sejtjei a 4. napon gócokban zsugorodtak. Az 5. napon a tenyészet a fókuszok körül kezdett felszakadozni és a 6.-7. napra hálózatos szerkezetűvé vált. A kontroll tenyészetek ugyanakkor teljesen épek maradták. Λ vírusnak ez a szövetkárosító hatása a további passzázsokban következetesen megfigyelhető voit. Az 5. napos tenyészetek szövettani vizsgálata során többmagvú óriássejteket találtunk, míg a 6,-7. napos tenyészeteket syntitiumos, hálózatos szerkezet és az óriássejtek számának csökkenése jellemezte. A borjúsavós tenyészetekben csak a 10. passzázsnál észleltünk sejtkárosító hatást. A sejtkárosító hatás szopornyica vírustól való eredetének igazolására vírusneutralizációs próbát végeztünk chorioailantois membránon és szövettenyészetben. A 10. passzázs 103,33 1DSO és 102,25 TCIDS0 titerü vírusát az l:10-es hígítású szopornyica elleni szérum közömbösítette. A 10. passzázsban a 7. napon learatott vírust centrifugáltuk és azonos menynyiségű 3 súlyrész lósavót, 1 súlyrész húslevest, valamint 7,5 % glükózt tartalmazó védőkolloid hozzáadásával liofilizáltuk. Λ vírus további passzázsaiban a scjtlcnyészclek előállításához szükséges tápfolyadékot és a vírus liofilizálásához szükséges védőkolloidot mind összetevőiben, mind arányaiban módosítottuk a vírustiter növelése, illetve megóvása céljából.at passage, the cells of the chicken serum culture shrunk in foci on day 4. On day 5, the culture began to rupture around the foci and by day 6-7. by day it became networked. The control cultures, however, remained intact. This tissue damaging effect of the virus can be consistently observed in further passages. Histological examination of 5-day cultures revealed multinucleated giant cells, while 6, -7. day cultures were characterized by a synaptic, networked structure and a decrease in giant cell numbers. In calf serum cultures, cell damage was only observed at passage 10. To verify the origin of the cellular damage from Porcupine Virus, a viral neutralization assay was performed on chorioallantoic membrane and tissue culture. Passage 10 was neutralized with 10 3.33 1DSO and 10 2.25 TCIDS0 titers against 1: 10 diluted piglet serum. In passage 10, the virus harvested on day 7 was centrifuged and lyophilized by the addition of an equal volume of 3 parts of horse serum, 1 part of broth and 7.5% glucose in a protective colloid. További In further passages of the virus, the medium necessary for the production of the scabies and the protective colloid for lyophilization of the virus were modified in both components and proportions to increase or protect the virus titer.

A találmány szerinti eljárásban a Lederle-féle avianizált szopornyica vírustörzs sejt tenyészet ben szaporított 32. passzázsát alkalmazzuk vakcinatermelésre. A vírusszaporításra alkalmas sejttenyészeteket (primer vagy secunder csirkeembrió-fibroblaszt) 10% triptózfoszfát levest, 4 % borjúsavót és 86 % Parker 199-et tartalmazó tápfolyadék alkalmazásával állítjuk elő. A minimálisan 103 TCIDSO/0,2 ml titerű szövetoltó vírustörzsanyagot —196 °C-on vagy liofilizált állapotban —20 °C-on tároljuk. A vakcinatermelés céljára előállított szövettenyészeteket a szövetoltó vírustörzsanyag sejttenyészetben készült 1. passzázsával fertőzzük és az inkubációs idő eltelte után megfelelő védőkolloid hozzáadásával liofilizáljuk. Az ily módon előállított vakcina 3 hónapos vagy ennél idősebb kutyák szopornyica elleni aktív immunizálására alkalmas.In the method of the invention, passage 32 of Lederle avianized strain of avian strain virus cultured in cell culture is used for vaccine production. Cell cultures suitable for virus propagation (primary or secondary chicken embryo fibroblast) were prepared using media containing 10% tryptose phosphate broth, 4% calf serum and 86% Parker 199. A tissue stock virus stock of a minimum of 10 3 TCID SO / 0.2 ml is stored at -196 ° C or lyophilized at -20 ° C. Tissue cultures prepared for vaccine production are inoculated with passage 1 of tissue inoculum virus stock in cell culture and lyophilized after the incubation period with the addition of appropriate protective colloid. The vaccine thus prepared is suitable for the active immunization of piglets of 3 months or older against porcine animals.

A találmány szerinti eljárásban alkalmazott vírustörzs cytopathogén hatással rendelkezik, emiatt a vírusszaporodás a sejttenyészetben fénymikroszkópos vizsgálattal nyomon követhető. A vírus a sorozatpasszázsok során megtartotta jó antigén hatását és nem veszítette el a csirkeembrió chorioailantois membránjára való pathogenitását sem. A vírusértékmérés ily módon sejttenyészetben és chorioailantois membránra történő oltással egyaránt elvégezhető. Sok egyéb, sejttenyészetben szaporított szopornyica vírustörzs esetében a vírustitrálás csak a bonyolult és költséges immunfluoreszcenciás eljárással vagy csak kizárólagosan chorioailantois membránra történő visszaoltással végezhető el. A vírustörzs csirkeembriófibroblaszt sejttenyészeten szaporodik, amely bármelyik szövettenyésztő laboratóriumban rendkívül könnyen, rutinszerűen előállítható. Sok helyütt a szopornyica vírusokat primer menyét- vagy görényvese sejttenyészetben, máshol Verő sejteken szaporítják. Számos országban, így hazánkban is a szopor3The virus strain used in the method of the present invention has a cytopathogenic effect, and therefore viral growth in cell culture can be monitored by light microscopy. The virus retained good antigen activity during serial passages and did not lose pathogenicity to the chorioallantoic membrane of the chicken embryo. Viral measurement can thus be performed both in cell culture and by inoculation onto a chorioallantoic membrane. For many other strain of cellulose virus grown in cell culture, virus titration can only be accomplished by a complicated and costly immunofluorescence procedure or only by inoculation onto a chorioallantoic membrane. The virus strain is propagated on chicken embryo fibroblast cell culture, which can be produced easily and routinely in any tissue culture laboratory. In many places, porcupine viruses are propagated in primary cultures of weasel or ferret cells, while elsewhere they are propagated on Blood cells. In many countries, including Hungary, is a multiplier3

187 793 nyica elleni vakcinát csirkeembriók chorioallantois membránjának oltásával, illetve feldolgozásával állítják elő. Ez a módszer rendkívül költséges és munkaigényes. 30—40 ezer adag vakcina előállításához az előbbi módszerrel mintegy 100 000 darab einbriós tojásra van szükség. Ugyanennyi adag vakcina előállításához a találmány szerinti eljárásban alkalmazott, csirkeembrió-fibroblaszt sejttenyészetben paszszált és CP hatás kíséretében szaporított vírustörzs felhasználásával, mintegy 150—200 db embriós tojásra van szükség. Λ vakcina chorioallantois membránon történő előállítása esetén 1000 adag gyártásához körülbelül száz munkaórára van szükség. Csirkeembrió-fibroblaszt sejttenyészetben a találmányban leírt vírus alkalmazásával 1000 adag vakcina készítéséhez körülbelül tíz munkaóra elegendő.A vaccine against 187,793 ducks is produced by inoculating or processing the chorioallantoic membrane of chicken embryos. This method is extremely costly and labor intensive. For the production of 30 to 40 thousand doses of the vaccine, the above method requires about 100,000 pieces of Einbri eggs. Approximately 150 to 200 embryonated eggs are required to produce the same dose of vaccine using a strain of chicken embryo fibroblasts used in the method of the invention and propagated under the influence of CP. 1000 For producing a vaccine on a chorioallantoic membrane, it will take about 100 hours to produce 1000 doses. In chicken embryo fibroblast cell culture, using the virus of the present invention, it is sufficient to produce 1000 doses of vaccine for about ten hours.

A találmányt az alábbi példával világítjuk meg közelebbről.The invention is illustrated by the following example.

PéldaExample

A sejttenyészetben előállított szopornyica vakcina (Distevac) leírása:Description of the cell-borne porcine vaccine (Distevac):

A vírus elszaporítása 10—11 napos csirkeembrióból készített primer vagy secunder fibroblaszt tenyészeten történik. A tenyészeteket 0.07—0,08 %-os tripszines emésztéssel készítjük. A sejtek szaporítását 10% triptózfoszfát levest, 4% borjúsavót és 86% Parker 199-et tartalmazó oldatban végezzük. A Roux palackokban 24-48 órára benőtt sejtkultúrát a legalább 103 TCIDSO/0,2 ml títeríí vírus (Lederle-féle avianizált szopornyica vírustörzs sejttenyészetben előállított 32. passzázsa) 15 ml mennyiségével oltjuk be. Egy óra adszorbeáltatás után a vírusmennyiséget 120-200 ml 10% triptózfoszfát levest, 2% borjúsavót és 88 % Parker 199-et tartalmazó oldattal cseréljük le. A palackokat 37 °C-on tartva, az aratás azThe virus is propagated on a primary or secondary fibroblast culture of 10-11 day old chicken embryos. Cultures are prepared by trypsin digestion of 0.07-0.08%. Cells were grown in 10% tryptose phosphate broth, 4% calf serum and 86% Parker 199. Cell culture overgrown in Roux flasks for 24-48 hours is inoculated with 15 ml of at least 10 3 TCID SO / 0.2 ml Titer virus (passage 32 in Lederle avianized pig strain virus cell culture). After one hour of adsorption, the amount of virus was replaced with 120-200 ml of a solution containing 10% tryptose phosphate broth, 2% calf serum and 88% Parker 199. Keeping the bottles at 37 ° C is the harvest

5.-6. napon történik, amikor a tenyészetek 80— 100%-os cytopathogén hatást mutatnak. Az összegyűjtött vírusfolyadék sterilitását a VI. Magyar Gyógyszerkönyv előírása szerint vizsgáljuk. A steril és legalább 103 TC1DSO títeríí szövetoltő vírustörzsanyagot műanyag ampullákban —196°C-on és liofilizálva —20 °C-on tároljuk.5th-6th days when the cultures show 80-100% cytopathogenic activity. The sterility of the collected viral fluid is shown in Table VI. Test according to Hungarian Pharmacopoeia. Sterile and at least 10 3 TC1D SO- titer-vaccinia virus stock is stored in plastic ampoules at -196 ° C and lyophilized at -20 ° C.

A vakcina termelése a szövetoltó vírustörzsanyag előállításával azonos módon történik. Az összegyűjtött vírusfolyadékot 1 % zselatin, 1 % szaharóz, 0,75 % tripton és 0,5 % kollidon hozzáadásával liofilizáljuk.The vaccine is produced in the same manner as the production of the tissue inoculum virus stock. The collected viral fluid was lyophilized by addition of 1% gelatin, 1% sucrose, 0.75% tryptone and 0.5% collidone.

A liofilizált vakcina sterilitási vizsgálatát a VI. Magyar Gyógyszerkönyv előírása szerint végezzük.The sterility test of the lyophilized vaccine is described in Annex VI. Follow the instructions of the Hungarian Pharmacopoeia.

A vakcina élőcsírát nem tartalmazhat.The vaccine must not contain live germ.

Λ liofilizált vakcina vírustarlnlmát 7 napos előkeltetett csirkeembrió chorioallantois membránján titráiással vagy csirkeembrió-fibroblaszt sejttenyészetben való vírusértékméréssel határozzuk meg. Megfelelő a vakcina, ha legalább 10ls ID5O/0,2 ml vírustartalomma! rendelkezik. Λ vakcina a sikeres kipróbálástól számított 6 hónapig tartható el —20 °C-on. A vakcina lejárati ideje újabb eredményes vizsgálat esetén, a titertő! függően 3-6 hónappal meghosszabbítható.The viral content of the lyophilized vaccine was determined by titration on the chorioallantoic membrane of 7 days of pre-incubated chicken embryo or by measurement of viral value in chicken embryo fibroblast cell culture. Suitable vaccine, at least 10 ls ID N5 / 0.2 ml vírustartalomma! It has. Λ The vaccine can be stored for 6 months at successful trial at -20 ° C. The expiration date of the vaccine in case of another successful test is the titer! 3-6 months, depending on the extension.

A vakcina ártalmatlanságát és hatékonyságát szúrópróbaszerűen állatkísérlettel is ellenőrizni kell. A gyakorlati adagra feloldott vakcinával 3 szopornyica iránt fogékony, 3 ’i hónapos kutyát kell combizomba ol2θ tani. Az oltott ebek a 21 napos megfigyelési idő alatt semmiféle betegségre utaló tünetet nem mutathatnak. A vizsgálat 21. napján a vakcinázott kutyákat lehetőleg velük azonos alomból származó 2 oltatlan kontrollal együtt 10 100 LD virulens szopornyicaThe safety and efficacy of the vaccine should also be randomly tested in animal models. The vaccine administered at a practical dose should be used to inject a 3 '1-month-old dog susceptible to 3 piglets into the thigh muscle. Inoculated dogs should show no signs of disease during the 21-day observation period. On day 21 of the study, vaccinated dogs, preferably with 2 unvaccinated controls from the same litter, received 10,100 LD virulent piglets

2g vírussal kel! fertőzni intracerebrálisan. A 14 napos megfigyelési idő alatt a vakcinázott kutyák csak átmenetileg, enyhén betegedhetnek meg. A két kontroll állat közül az egyiknek a megfigyelési idő végéig szopornyicában el kell hullania.Comes with 2g virus! infect intracerebrally. During the 14-day observation period, vaccinated dogs may become mildly affected only temporarily. One of the two control animals should die in the littermate by the end of the observation period.

Claims (2)

Szabadalmi igénypontokPatent claims 1. Eljárás szopornyica elleni attenuált élővirusos vakcina előállítására sejttenyészetben, azzal jellemezze ve, hogy az Országos Közegészségügyi Intézet Mikroorganizmusok Nemzeti Gyűjteményében 00221 szám alatt letétbe helyezett ML—32 jelű módosított Lederle-féle paramyxo-vírust primer vagy szekunder fibroblaszt tenyészeten 25-40 passzázson át te40 nyésztjük, az így kapott vírus-folyadékot oltóanyagként learatjuk, az oltóanyaggal újabb primer vagy szekunder fibroblaszt-szövettenyészeteket oltunk be, a tenyészeteket 4- 9 napon át inkubáljuk, majd a vírusfolyadékot elkülönítjük és védőkolloid hozzáadásaA method for producing an attenuated live viral vaccine against porcine animals in cell culture, characterized in that ML-32 modified Lederle's paramyxo virus modified by depositing ML-32 in the National Collection of Microorganisms is a primary or secondary fibroblastase40. cultures, harvest the virus fluid thus obtained as inoculants, inoculate additional primary or secondary fibroblast tissue cultures, incubate the cultures for 4-9 days, and isolate the viral fluid and add a protective colloid. 45 után liofilizáljuk.After 45 minutes, lyophilize. 2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy védőkolloidként zselatin, szacharóz, tripton és kollidon keverékének a vírusfolyadékra vonatkoztatva 2-5 %-át alkalmazzuk.2. The method of claim 1, wherein the protective colloid is from 2% to 5% of a mixture of gelatin, sucrose, tryptone and collidone relative to the viral fluid.
HU322682A 1982-10-08 1982-10-08 Process for producing attenuated living virus vaccine against dog-distemper HU187793B (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU322682A HU187793B (en) 1982-10-08 1982-10-08 Process for producing attenuated living virus vaccine against dog-distemper

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU322682A HU187793B (en) 1982-10-08 1982-10-08 Process for producing attenuated living virus vaccine against dog-distemper

Publications (1)

Publication Number Publication Date
HU187793B true HU187793B (en) 1986-02-28

Family

ID=10963197

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU322682A HU187793B (en) 1982-10-08 1982-10-08 Process for producing attenuated living virus vaccine against dog-distemper

Country Status (1)

Country Link
HU (1) HU187793B (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Baskerville et al. Aujeszky's disease in pigs.
US3911108A (en) Process of producing bovine milk products containing specific antibodies
Bryans et al. Herpesviral diseases of the horse
KR19990014840A (en) Viral drugs associated with the mysterious swine disease
Jericho et al. Aerosol vaccination of calves with pasteurella haemolytica against experimental respiratory disease.
Powell Viral respiratory disease of the horse
DK162421B (en) DOG COURSE VACCINE, PROCEDURES FOR PRODUCING IT AND VIRUS STEMS FOR USING THE VACCINE
Hull The simian herpesviruses
US4302444A (en) Vaccines for immunizing egg-laying birds against Egg Drop disease, preparation of said vaccines, and method of use of said vaccines
US4110433A (en) Equine rhinopneumonitis virus
Burrows et al. Studies of persistent and latent equid herpesvirus 1 and herpesvirus 3 infections in the Pirbright pony herd
CN108969492B (en) Oral attenuated freeze-dried vaccine for swine fever and preparation method thereof
Lin et al. The primary hamster kidney cell rabies vaccine: adaptation of viral strain, production of vaccine, and pre-and postexposure treatment
NO159782B (en) SPRING SYSTEM DEVICE, FIRST AND FIRST ON VEHICLES.
RU2403063C1 (en) Inactivated combined vaccine against viral diarrhea, rota-, corona-virus diseases and escherichiosis of cattle
De Leeuw et al. Vaccination of Pigs with Formaldehyde Inactivated Aluminium Hydroxide Foot‐and‐Mouth Disease Vaccines, Potentiated with Diethylaminoethyldextran (DEAE‐D)
IE46498B1 (en) New vaccine
US4322404A (en) Process for the production of new mutants of herpes simplex virus type 1 and type 2
Khehra et al. In vitro and in vivo studies on the pathogenicity of avian pneumovirus for the chicken oviduct
US3479430A (en) Indirect passive immunization against transmissible gastroenteritis virus in nursing piglets at birth by active immunization of sows prior to farrowing with transmissible gastroenteritis vaccine and method of producing the same
CN108703952B (en) Freeze-drying protective agent for swine fever oral attenuated freeze-dried vaccine and application
HU187793B (en) Process for producing attenuated living virus vaccine against dog-distemper
Crick The vaccination of man and other animals against rabies
JP2892767B2 (en) Canine coronavirus vaccine
EP0069407B1 (en) Method of immunizing pigs against aujeszky's disease

Legal Events

Date Code Title Description
HU90 Patent valid on 900628