HU176250B - Process for producing mikrobiologically 12-beta-hydroxycardenolide derivatives - Google Patents
Process for producing mikrobiologically 12-beta-hydroxycardenolide derivatives Download PDFInfo
- Publication number
- HU176250B HU176250B HUGO001428A HU176250B HU 176250 B HU176250 B HU 176250B HU GO001428 A HUGO001428 A HU GO001428A HU 176250 B HU176250 B HU 176250B
- Authority
- HU
- Hungary
- Prior art keywords
- mng
- streptomyces
- purpurascens
- blue
- color
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P33/00—Preparation of steroids
Landscapes
- Organic Chemistry (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
12beta-Hydroxy-cardenolide der sekundaeren Reihe werden auf mikrobiologischem Weg aus den entsprechenden 12-Desoxy-cardenoliden der primaeren Reihe hergestellt, indem man die letzteren mit submersen Kulturen der Staemme Streptomyces purpurascens KA-26 (MNG 179), Str. purpurascens KA-43 (MNG 178), Str. purpurascens KA-82 (MNG 177), Str. purpurascens KC-157 (MNG 176) oder Str. alboniger AB-318-ST (MNG 180), welche unter den angegebenen MNG-Nummern in der Nationalen Mikroorganismensammlung des Ungarischen Landesinstituts fuer Volkshygienie deponiert wurden,fermentiert und das umgesetzte Produkt aus der Fermentationsfluessigkeit auf an sich bekannte Weise isoliert.12beta-hydroxy-cardenolides of the secondary series are prepared by microbiological route from the corresponding 12-desoxy-cardenolides of the primary series by reacting the latter with submerged cultures of the strain Streptomyces purpurascens KA-26 (MNG 179), Str. Purpurascens KA-43 Purpurascens KA-82 (MNG 177), Str. Purpurascens KC-157 (MNG 176) or Str. Alboniger AB-318-ST (MNG 180), which are available under the indicated MNG numbers in the National Microorganism collection of the Hungarian National Institute of People's Health were deposited, fermented and the reacted product isolated from the fermentation liquid in a known per se.
Description
István oki. tanár 10%, BudapestStephen is okay. teacher 10%, Budapest
Eljárás 12|3-hidroxikardenolid származékok mikrobiológiai előállításáraMethod for microbiological production of 12β-hydroxycardenolide derivatives
A találmány tárgya új eljárás I általános képletű — ahol X jelentése hidroxil-csoport, ¥ jelentése hidroxil-csoport és R jelentése hidrogénatom vagy IV vagy V képletű csoport — kardenolidok előállítására mikrobiológiai úton.The present invention relates to a novel process for the microbiological preparation of cardardolides of formula I wherein X is hydroxy, ¥ is hydroxy and R is hydrogen or IV or V.
Ismeretes, hogy a növényi eredetű kardenolidok egy része, pl. a lanatozid-C és digoxin, közvetlenül alkalmazható gyógyszerként, más részük — mint pl. a lanatozid-A acetildigitoxin, digitoxin - viszont csak előzetes kémiai vagy mikrobiológiai átalakítás után válik gyógyászatilag hasznossá. Az átalakítások a primer glükozid glükóz- illetve acetil-csoportjának lehasítására, legfőbbképpen pedig a 12-dezoxiglükozidok hidroxilezésére irányulnak. Ezek közül a hidrolízisre nyújt lehetőséget a 29 32 577 számú Német Szövetségi Köztársaság-beli közrebocsátási irat, amely Streptomyces griseolus alkalmazásával mikrobiológiai úton lanatozid A-ból digitoxin előállításra közöl eljárást.It is known that some plant-derived cardardenolides, e.g. lanatoside C and digoxin, which can be used directly as a medicament; however, lanethoside A-acetyldigitoxin, digitoxin, only becomes therapeutically useful after prior chemical or microbiological conversion. The transformations are directed to the cleavage of the glucose and acetyl groups of the primary glucoside and, in particular, the hydroxylation of the 12-deoxyglucosides. Of these, hydrolysis is disclosed in German Patent Publication No. 29 32 577, which discloses a microbiological process for the preparation of digitoxin from lanatoside A using Streptomyces griseolus.
A 42 24498, illetve a 42 22 611 -42 22 614 számú japán szabadalmi leírások szerint Streptomyces diastatochromogenes, Streptomyces owashiensis, Trichocladium asperum, Mortierella isabellina illetve Cirdnella muscae törzsek a digitoxin hidroxilezésével állítanak elő digoxint.Japanese Patent Nos. 42,24,498 and 42,22611 to 4222614, respectively, show digoxin by hydroxylation of digoxin by strains of Streptomyces diastatochromogenes, Streptomyces owashiensis, Trichocladium asperum, Mortierella isabellina and Cirdnella muscae.
A 29 21 052 számú Német Szövetségi Köztársaság-beli közrebocsátási irat szerint Streptomyces praecox süllyesztett tenyészetével állítható elő digitoxinból, illetve acetildigitoxinból digoxin és acetildigoxin.According to German Patent Publication No. 29 21 052, digoxin and acetyldigoxin can be prepared by digestion of Streptomyces praecox from digoxin or acetyldigitoxin.
A találmány célja olyan eljárás biztosítása, amely lehetővé teszi primer sorbeli 12-dezoxi-kardenolidok 5 átalakítását egyetlen fermentációs lépésben szekunder sorbeli 12/?-hidroxil-csoportot tartalmazó kardenolidokká.SUMMARY OF THE INVENTION It is an object of the present invention to provide a process which allows the conversion of primary 12-deoxycardololids 5 into single-series 12β-hydroxylic cardedrolides in a single fermentation step.
A találmány alapja az a felismerés, hogy talajból 10 izolált sugárgomba-tenyészetek közül egyesek, mégpedig a KA-26, KA-43, KA-82, KC-157 és AB-318-ST jelű törzsek 120-oxigenáz aktivitáson kívül β-glükozidáz és dezacetiláz aktivitással is rendelkeznek.The present invention is based on the discovery that some of the 10 isolated fungal cultures of soil, namely strains KA-26, KA-43, KA-82, KC-157 and AB-318-ST, exhibit β-glucosidase activity in addition to 120-oxygenase activity. and deacetylase activity.
A törzsek legfontosabb diagnosztikai bélyegeit a közel rokon fajok típus-törzseinek leírásával is összehasonlítva az alábbiakban részletezett vizsgálatok alapján határoztuk meg.The most important diagnostic features of the strains were determined by comparing them with the description of the strains of the closely related species based on the tests detailed below.
1. Az érett légmicélium szálét a nemzetközi gyakorlatban általánosan elfogadott Tresner-Backus színkerékkel [Tresner és Backus: Appl. Microbiol. 11, 335 (1963), Küster E.: Int Bull. Bact, Nőm. Tax. 14,1. The fiber of the mature aerial mycelium with the Tresner-Backus color wheel generally accepted in international practice [Tresner and Backus, Appl. Microbiol. 11, 335 (1963), Küster E .: Int Bull. Bact, Ma'am. Tax. 14
1 (1964)1 történő összehasonlítás alapján végeztük. A színmeghatározás magába foglalja a megfelelő szín-szeries megadása mellett a megfelelő szín számkóddal történő Ieúását is.1 (1964) 1. The definition of color includes not only entering the correct color but also entering the correct color with a numeric code.
2. A szubsztrátmicélium és az oldódó pigment szín 30 meghatározására a Prauser által 1964-ben elkészített szín táblázatot [H. Prauser: Z. Alig. Microbiol. 4, 95 (1964)], illletve a Baumanns Farbtonkarte Atlas II.-t használtuk. A színmeghatározás a megfelelő szín csoport és a szín számkódok megadása mellett magába foglalja a szín megjelölését a Szabó és Márton 5 [l.M. Szabó, M. Márton: Int. Bull. Bact. Nőm. Tax. 14, 17 (1964)] által bevezetett szín csoportok alapján.2. For determination of substrate mycelium and soluble pigment color, see the color chart prepared by Prauser in 1964 [H. Prauser: Z. Alig. Microbiol. 4, 95 (1964)] and Baumanns Farbtonkarte Atlas II. The definition of color includes the notation of color in the appropriate color group and the color numeric codes in Szabó & Martin 5 [l.M. Szabó, Márton M. Int. Bull. Bact. My wife. Tax. 14, 17 (1964)].
A szubsztrátmicélium indikátor karakterének meghatározása a néhány csepp 0,05 N nátriümhidroxid 10 illetve 0,05 N sósav oldat hozzáadása után (15— -20 perc múlva) jelentkező színváltozás azonosítását jelentette.Determination of the indicator character of the substrate mycelium was the identification of the color change after a few drops of 0.05 N sodium hydroxide 10 and 0.05 N hydrochloric acid solution (after 15-20 minutes).
3. Az oldódó pigment színmeghatározását a szubsztrátmicélium színének és indikátor karakteré- 15 nek meghatározásánál leírtakkal analóg módon végeztük.3. The solubility of the pigment was determined in a manner analogous to that of the substrate mycelium and indicator character.
4. A melanoid pigment termelését az M6-os és M7-es standard táptalajokon határoztuk meg.4. The production of melanoid pigment was determined on standard M6 and M7 media.
AB-318-ST-jelű törzs leírásaDescription of strain AB-318-ST
MorfológiaMorphology
A spóratartók Rectus flexibilis típusúak, hosszúak, 25 egyenesek, spóralánconként több, mint 50 spórával. Ez a morfológia figyelhető meg élesztőkivonat-malátakivonat agaron, zabpehely-agaron, szervetlen só-keményítő agaron és glicerin-aszparagjn agaron. Elektronmikroszkópos megfigyelések szerint a spórák sima 30 felületűek. A légmicélium színe a Tresner-Backus színkeverékkel végzett összehasonlító vizsgálatok alapján White sorozat (W). Valamennyi fenti standard táptalajon ez a szín azonosítható. A szubsztrátniicélium élesztőkivonat-maláta agaron: szürkés-sárga 35 (Co 81), Y-b, zabpehely agaron: nem meghatározható, szervetlen só-keményítő agaron: sárga (Co37, Co 67) Y—b, glicerin-aszparagin agaron: sárga (Co 68, Co70) Y-b. A szubsztrátmicélium pigmentje nem indikátor jellegű. Előbbi táptalajokon exopigment-ter- 40 melődés nem figyelhető meg. Pepton-vas agaron és tirozin agaron a melanin típusú pigment termelődése nem figyelhető meg: melanoid pigment reakció negatív. Jól hasznosít d-giükózt, 1-arabinózt, d-xilózt, i-inozitot, mannitot, d-fruktózt és raffinózt, nem 45 értékesít szacharózt és ramnózt.Spore racks are Rectus flexible type, long, 25 straight, with more than 50 spores per spore chain. This morphology is observed on yeast extract malate extract agar, oatmeal agar, inorganic salt starch agar and glycerol-asparagine agar. Electron microscopic observations show that the spores have a smooth surface. The color of the aerial mycelium is white series (W) based on comparative studies with the Tresner-Backus color mixture. All of the above standard media can identify this color. Substrate mycelium on yeast extract malt agar: greyish-yellow 35 (Co 81), Yb, oatmeal agar: undetectable, inorganic salt-starch agar: yellow (Co37, Co 67) Y-b, glycerol-asparagine agar: yellow (Co 68) , Co70) Yb. The pigment of the substrate mycelium is not indicative. The former media space exopigment-40 mediators are not observed. The production of melanin-type pigment is not observed on peptone-iron agar and tyrosine agar: the melanoid pigment reaction is negative. It utilizes d-glucose, 1-arabinose, d-xylose, i-inositol, mannitol, d-fructose and raffinose, not 45 sells sucrose and rhamnose.
Az AB—318—ST jelű törzs legfontosabb diagnosztikai bélyegeinek összehasonlítását a Streptomyces alboniger típus törzs standard leírásával (ISP 5043) az 50Comparison of key diagnostic features of strain AB-318-ST with standard description of Streptomyces alboniger strain (ISP 5043)
1. táblázatban összegezzük.Table 1 summarizes.
1. táblázatTable 1
1. táblázat folytatásaContinuation of Table 1
eredményekresults
A táblázatban a jelölések a következők:In the table, the notations are as follows:
RF = Rectus-flexibilis típusú spóratartó W = fehérRF = Rectus-Flexible Type Spore Holder W = White
Y-b = sárgásbarnaY-b = tan
M6 = pepton-élesztőkivonat-vas agarM6 = peptone yeast extract iron agar
M7 = tirozin agarM7 = tyrosine agar
A fenti adatok alapján az AB—318-ST jelű törzset Streptomyces alboniger-nek határoztuk meg, és a mikroorganizmusok Nemzeti Gyűjteményében MNG 180 számon letétbe helyeztük.Based on the above data, strain AB-318-ST was determined as Streptomyces alboniger and deposited in the National Collection of Microorganisms under MNG 180.
A KA—26, KA—43, KA-82 és KC-157 jelű törzsek leírását a 2. táblázatban összegezzük.The descriptions of KA-26, KA-43, KA-82 and KC-157 are summarized in Table 2.
/οζου/ οζου
2. táblázatTable 2
A 2. táblázatban a jelölések a következők:In Table 2, the designations are as follows:
RA = Retinaculum - apertum típusú spóratartóRA = Retinaculum - apertum spore holder
S = Spira típusú spóratartó 5S = Spira Spore Holder 5
Y—b + blue red = sárgabarna + kék+> vörösY — b + blue red = tan + blue +> red
R(7ca) = vörös (világos sárgásvörös)R (7ca) = red (light yellowish red)
V(llca) = lila (nagyon világos bíbor)V (llca) = purple (very light purple)
R(5ca) = vörös (világos sárgás vörös) 10R (5ca) = red (light yellowish red) 10
R(3ca) = vörös (világos narancs sárga)R (3ca) = red (light orange yellow)
W(13ba) =i fehér (vöröses fehér)W (13ba) = i white (reddish white)
M2 = élesztőkivonat-malátakivonat agarM2 = yeast extract malt extract agar
M3 = zabpehely agarM3 = oatmeal agar
M4 = szervetlen só - keményítő agarM4 = inorganic salt - starch agar
M5 = glicerin — aszparagin agarM5 = glycerol - asparagine agar
Mint az adatokból látható, a törzsek egymás között teljes taxonómiai azonosságot mutatnak. A spóratartó morfológiailag Spira típusú, csupán az M2 illetve M5 táptalajon észlelhető esetenként Retinaculum-apertum típus. Mind a szubsztrátmicélium, mind az oldódó pigment indikátor karakterű,As can be seen from the data, there is complete taxonomic identity between the strains. Morphologically, the spore-holder is a Spira type, with occasional retinaculum apertum types only found on M2 and M5 media. Both the substrate mycelium and the soluble pigment are indicative,
A 3. táblázatban a KA—26, KA—43, KA—82 és KC-157 jelű törzsek és a Streptomyces purpurascens típus törzs standard leírását (ISP 5310) tüntettük fel.Table 3 shows the standard description (ISP 5310) of strains KA-26, KA-43, KA-82, and KC-157 and Streptomyces purpurascens.
3. táblázatTable 3
(A jelölések azonosak az 1. és 2. táblázatoknál írtakkal(The notations are the same as in Tables 1 and 2
A kulcsfontosságú diagnosztikai bélyegek egyezése alapján a törzseket a Streptomyces purpurascens fajnévvel illettük, és' a Mikroorganizmusok Nemzeti 60 Gyűjteményében a Streptomyces purpurascens KA—26 jelű törzset MNG 179 számon, a Streptomyces purpurascens KA-43 jelű törzset MNG 178 számon, a Streptomyces purpurascens KA-82 jelű törzset MNG 177 számon, a Streptomyces purpuras- 65 cens KC—157 jelű törzset MNG 176 számon helyeztük letétbe.According to key diagnostic stamps, the strains were labeled with the genus Streptomyces purpurascens, and strains KA-26 of Streptomyces purpurascens were identified by MNG 179, strains of Streptomyces purpurascens KA-43, streptomyces purpurascens KA-43 and Strain 82 was deposited under MNG 177 and Streptomyces purpura-censed KC-157 under MNG 176.
Fentiek alapján a találmány eljárás I általános képletű - ahol X jelentése hidroxil-csoport, Y jelentése hidrogénatom vagy hidroxil-csoport, R jelentése IV vagy V képletű csoport - kardenolidok előállítására mikrobiológiai úton, amely abban áll, hogy valamely I általános képletű — ahol X jelentése uo250 hidrogénatom vagy hidroxil-csoport, Y jelentése hidrogénatom, R jelentése II, III, IV vagy V képletű csoport - kardenolidot Streptomyces purpurascens KA—26 (MNG 179) vagy Streptomyces purpurascens KA—43 (MNG 178) vagy Streptomyces purpurascens KA—82 (MNG 177) vagy Streptomyces purpurascens KC—157 (MNG 176) vagy Streptomyces alboniger AB-318-ST (MNG 180) törzsek (letétbe helyezve az Országos Közegészségügyi Intézet Mikroorganizmusok Nemzeti Gyűjteményében) süllyesztett tenyészetével fermentálunk, és az átalakított terméket vagy termékeket a fermentléből önmagában ismert módon elkülönítjük.Accordingly, the present invention provides a process for preparing a microbiological process for the preparation of cardiolides of Formula I wherein X is hydroxy, Y is hydrogen or hydroxy, R is IV or V, wherein X is hydroxy, uo250 hydrogen or hydroxy, Y is hydrogen, R is II, III, IV or V - cardardenolide Streptomyces purpurascens KA-26 (MNG 179) or Streptomyces purpurascens KA-43 (MNG 178) or Streptomyces purpurascens KA-82 ( MNG 177) or Streptomyces purpurascens KC-157 (MNG 176) or Streptomyces alboniger AB-318-ST (MNG 180) strain (deposited in National Collection of Microorganisms of National Institute of Public Health) and fermented from the product by self-fermentation and self-fermented product isolated in a known manner.
A találmány szerinti eljárás gyakorlati kivitelezése érdekében legfontosabb szempont az aszeptikus körülmény k mindenkori biztosítása. A Streptomyces törzseket a sugárgombák tenyésztésére általánosan alkalmazott körülmények között növesztjük.The most important aspect of practicing the method of the invention is to provide aseptic conditions at all times. Streptomyces strains are grown under conditions commonly used for the cultivation of ray fungi.
Erőteljes növekedést kapunk szén- és energiaforrásként mindazon cukrokat alkalmazva, amelyeket a törzsek jól hasznosítanak, így pl. glükóz, arabinóz, xilóz, mannit, fruktóz, szacharóz vagy raffínóz használata esetén. Nitrogénforrásként mogyorólisztet, kukoricalekvárt, peptont, előnyösen szójalisztet, kazeint vagy ezek hidrolizátumát, aminosavakat és szervetlen ammóniumsókat használhatunk.Strong growth is obtained using all sugars which are well utilized by the strains as carbon and energy sources, e.g. glucose, arabinose, xylose, mannitol, fructose, sucrose or raffinose. The nitrogen source used is hazelnut flour, corn jam, peptone, preferably soy flour, casein or hydrolyzate thereof, amino acids and inorganic ammonium salts.
A táptalaj pH-ját 6 és 8 közé, előnyösen pH = 7-re állítjuk, és pufferkapacitásának növelésére alkalmazhatunk kalcium-karbonátot.The pH of the medium is adjusted to between 6 and 8, preferably to pH 7, and calcium carbonate can be used to increase its buffer capacity.
Az esetleges habzás elkerülésére célszerű már a sterilezés előtt a táptalajhoz növényi olajat — előnyösen pálma, illetve napraforgóolajat - vagy szintetikus habzásgátlót adni. A táptalaj sterilezését 30-60 percen át 120 °C-on, 1 atni. túlnyomáson végezzük.To prevent possible foaming, it is advisable to add vegetable oil, preferably palm or sunflower oil, or a synthetic antifoam agent to the medium prior to sterilization. The medium was sterilized for 30-60 minutes at 120 ° C for 1 min. overpressure.
A tenyésztést és az átalakítást a Streptomycesek számára kedvező 30-40 °C-on, előnyösen 32 °C-on célszerű végrehajtani, de alkalmazhatunk a növesztés során 32 °C-ot az átalakításkor pedig 37 °C-ot. Lényeges, hogy a teljes folyamat alatt megfelelő ievegőcserét biztosítsunk a süllyesztett tenyészetben, amit a lombikok rázatásával, illetve a fermentorokon átáramoltatott steril levegő megfelelő mértékű keverésével érünk el.Culturing and conversion is preferably carried out at 30-40 ° C, preferably 32 ° C, which is favorable for Streptomyces, but 32 ° C during growth and 37 ° C during transformation can be used. It is important to ensure proper air exchange throughout the process in the submerged culture by shaking the flasks or mixing the sterile air flowing through the fermentors properly.
A szubsztrátum átalakítását erőteljesen kinőtt tenyészettel, előnyösen 1% körüli szárazanyag-tartalom elérése esetén indíthatjuk, de lehetséges azt a tenyésztéssel egyidőben is végezni.Substrate conversion can be initiated by vigorously grown culture, preferably at a dry matter content of about 1%, but it is also possible to do so at the same time as culture.
Adagoláshoz a szubsztrátumot vízzel elegyedő, az átalakítást nem gátló oldószerben oldva juttatjuk a fermentlébe, az oldatot előzetesen szűréssel vagy hővel sterilezve. A szubsztrátum adagolását előnyösen a 2 034 353 számú Nagv-Britannia-i közrebocsátási iratban - mely megfelelő oldószer kiválasztásával lehetővé teszi a fermentlére számolt szubsztrátum-koncentráció jelentős növelését is - leírt módon végezhetjük. Az átalakítás előrehaladását az időközben kivett minták rétegkromatográfiás elválasztása után a kardenolid-tartalom dixantilkarbamiddal képzett színének fotometrálásával ellenőrizhetjük.For dosing, the substrate is introduced into the fermentation broth by dissolving in a water-miscible, non-inhibiting solvent, prior to filtration or heat sterilization. Preferably, substrate addition can be effected as described in U. S. Patent No. 2,034,353, which also allows for a significant increase in the substrate concentration of the fermentation broth by selecting the appropriate solvent. The progress of the conversion can be monitored by photometry of the color of the cardardenol content with dixantylurea after separation of the samples taken in the meantime.
A fermentálást akkor fejezzük be, amikor az analitikai vizsgálat a szubsztrátum elfogyása mellett a kívánt tennék maximális felszaporodását jelzi. Ekkor a fermentlevet szűrjük, és a képződött terméket a sejtmasszából, illetve a fermentléből szerves oldószer rel extraháljuk. Az extraktum szárazmaradékát kromatografálással, illetve átkristályosítással tisztítjuk.Fermentation is terminated when the analytical test indicates the maximum growth of the desired product when the substrate is exhausted. The fermentation broth is then filtered and the resulting product is extracted from the cell mass or the fermentation broth with an organic solvent. The dry residue of the extract was purified by chromatography or recrystallization.
A találmány szerinti eljárás fő előnye, hogy két 5 egymást követő mikrobiológiai átalakítás helyett egyetlen fermentációs lépésben teszi lehetővé a primer 12-dezoxikardenolidok átalakítását szekunder 120-hidroxil-csoportot tartalmazó kardenoliddá. Az egyik fermentációs lépés kiesése egyben a költséges és 0 anyagveszteséggel járó extrahálási-feldolgozási művelet megtakarítását is jelenti. Ennek következtében egyszerűbben és lényegesen jobb hatásfokkal állítható elő 12/?-hidroxikardenolid.The main advantage of the process according to the invention is that, instead of two successive microbiological transformations, it enables the conversion of the primary 12-deoxycardenolides to the secondary 120-hydroxyl group in one single fermentation step. The loss of one fermentation step also saves the costly extraction-processing operation with 0 material losses. As a result, 12β-hydroxycardenolide can be prepared more easily and with much greater efficiency.
Nagy jelentősége van annak is, hogy a találmány 5 szerinti eljárás alkalmazásával nincs szükség a drog feldolgozásakor - a primer glükozidok szekunder glükoziddá alakításának elősegítésére - energia igényes szárításos fermentálásra.It is also of great importance that the process according to the invention does not require energy-intensive drying fermentation to aid in the conversion of the primary glycosides to the secondary glycosides.
Az eljárás birtokában a növény termesztési körül!0 ményei miatt változó glükozid összetételétől - az összglükozid-lanatozid-C arány értékéből - függetlenül biztosítható a gyógyászatilag legfontosabb digoxin előállítása.This process allows the production of the most important digoxin, irrespective of the composition of the glycoside, due to the varying glycoside composition of the plant, the value of the total glucoside to lanososide C ratio.
A találmány szerinti eljárás további előnye, hogy !5 alkalmazásával nemcsak a lanatozid —, hanem a purpurea-glükozidok is átalakíthatok gyógyászatilag hasznos termékké.A further advantage of the process according to the invention is that not only the lanatoside but also the purpurea-glucosides can be converted into a pharmaceutically useful product by using.
A találmány szerinti eljárást az alábbi kiviteli példákkal szemléltetjük:The process of the invention is illustrated by the following embodiments:
A példákban szereplő glükozidok minőségi és mennyiségi meghatározását az alábbiak szerint végeztük:The qualitative and quantitative determination of the glycosides in the examples was carried out as follows:
A glükozidok minőségi meghatározására rétegkromatográflát alkalmaztunk: Kieselgél HF254 (Merek, 5 Darmstadt, Német Szövetség Köztársaság) 0,25 mm vastagságú, 20 x 20 cm-es rétegen futtattunk telített gőzterű Desaga kádban, a primer glükozidok esetén kloroform-metanol, 90 :10 rendszerben (1), a szekunder glükozidok esetén etilacetát - ciklohexán 0 abszolút etanol, 55 :35 :10 rendszerben (2), valamennyi esetben háromszor fejlesztve ki a kromatogTamot.The quality of the glycosides was determined by layer chromatography: Kieselgel HF 254 (Merek, 5 Darmstadt, Federal Republic of Germany) was run on a 0.25 mm, 20 x 20 cm layer in a saturated steam Desaga bath, with chloroform-methanol 90: 10 as the primary glycosides. in the system (1), in the case of the secondary glycosides ethyl acetate - cyclohexane 0 absolute ethanol, in the system 55: 35: 10 (2), in each case developing the chromatogam three times.
A vizsgálandó mintából annyit vittünk a rétegre, hogy a felcseppentett térfogat 10-50 Mg mennyiséget 5 tartalmazzon az egyes glükozidokból. Azonosításhoz a meghatározandó minták mellett standard referens glükozidokat futattunk.The sample to be examined was applied to the layer in such a way that the volume of droplet contained 10-50 Mg of each glycoside. Standard reference glycosides were run alongside the samples to be identified for identification.
A kromatogramot ánizsaldehides reagenssel, illetve 0 A. Waldi klóraminos reagensével [Arch. Pharm. 292. :206(1959)] hívtuk elő.Chromatogram with anisaldehyde reagent and 0 A. Waldi chloramine reagent [Arch. Pharm. 292: 206 (1959)].
Az ánizsaldehides reagenssel (500 ml 99,6%-os ecetsavban 3 ml ánizsaldehid és 4 ml koncentrált kénsav) a réteget átnedvesítésig egyenletesen leperme5 teztük majd 110°C-on 10 percig melegítettük. A kromatogramon az egyes glükozidok jellemző színnel jelentek meg (1.4. táblázat).The anisaldehyde reagent (500 mL of 99.6% acetic acid, 3 mL of anisaldehyde and 4 mL of concentrated sulfuric acid) was uniformly sprayed until moistened and heated at 110 ° C for 10 minutes. In the chromatogram, each glycoside was represented by a characteristic color (Table 1.4).
A Waldi féle reagenssel előhívott kromatogramon a glükozidok UV lámpa alatt jellemző színnel fluoresz3 kainak (E. Stahl, Dünnschicht-Chromatographie. Springer Verlag, 1967. 344. old.).In a chromatogram developed with Waldi reagent, glycosides under fluorescent UV light are typically fluorescent (E. Stahl, Dunnschicht-Chromatographie, Springer Verlag, 1967, 344).
A glükozidok Rf, Rg/lanatozid A-ra illetve digitoxinra vonatkoztatott) adatait, illetve az ánizsaldehides reagenssel adott színeit a 4. táblázatban adjuk meg.Data for glycosides (Rf, Rg / Lanososide A and Digitoxin) and the colors given with the anisaldehyde reagent are given in Table 4.
4. táblázatTable 4
ÁnizsaldehidesÁnizsaldehides
A kvantitatív meghatározás a vékonyrétegkroma- 20 +ográfiával elválasztott glükozidok dixantilkarbamiddal adott színreakcióján alapszik.The quantitative determination of the separated vékonyrétegkroma- 20+ ográfiával glucosides based on specific dixantilkarbamiddal színreakcióján.
A kromatogramot jódgőzben előhíva, a foltokat a standard glükozidoknak megfelelően bejelöltük, majd a jódot az adszorbensről légáramban elszublimáltat- 25 tűk, hogy az adszorbens teljesen kifehéredjék.The chromatogram was pre-evaporated in iodine vapor, the spots were labeled according to standard glycosides, and the iodine was sublimated from the adsorbent in an air stream to completely whiten the adsorbent.
A bejelölt foltokat csiszoltdugós kémcsövekbe kapartuk, és 4 ml dixantilkarbamidos reagenst [H. Pötter : Pharmazie 20. 737 (1965)]mértünk rájuk.The labeled spots were scraped into stoppered test tubes and 4 ml of dixantylurea reagent [H. Pötter, Pharmazie 20, 737 (1965)].
Alaposan összerázva a kémcsöveket 3 percre 30 100 °C-os vízfürdőbe helyeztük. Szobahőmérsékletre való hűtés után a felrázott szuszpenziót élesre fugáltuk. A tiszta felülúszó színintenzitását 535 nm-en mértük glükozidokat nem tartalmazó oldattal szemben. 35After thoroughly shaking, the test tubes were placed in a 30 ° C water bath for 3 minutes. After cooling to room temperature, the agitated slurry was spun to sharpness. The color intensity of the clear supernatant was measured at 535 nm against a solution containing no glycosides. 35
A glükozidot nem tartalmazó oldatot az illető glükozid foltjának magasságában, az azzal azonos területű, de glükozidot nem tartalmazó „üres” foltnak a rétegről való lekaparásával a fent leírt módon készítettük. 40The glucoside-free solution was prepared as described above by scrubbing the same area of the glycoside spot with the same area but without the glucoside free spot. 40
Az egyes glükozidok koncentrációját a mért extinkcióból a mindenkori hígítás és a felvitt térfogat figyelembevételével, a standard koncentrációgörbéből kapott szorzószám segítségével számítottuk ki.The concentration of each glycoside was calculated from the measured extinction by taking into account the respective dilution and volume applied, using the multiplication obtained from the standard concentration curve.
1. példaExample 1
Streptomyces purpurascens KA—43 (MNG 178) jelű törzs 3—4 hetes burgonyás-dextrózos ferdeagaron 50 nőtt tenyészetéről 10 ml steril vízzel szuszpenziót készítettünk. A szuszpenzió 1 ml-ével oltottunk 500ml-es Erlenmeyer lombikban sterilezett 100 ml PS-jelű táptalajt.A suspension of 50 cultures of potato dextrose slant agar on Streptomyces purpurascens KA-43 (MNG 178) for 3-4 weeks was prepared in 10 ml of sterile water. 1 ml of the suspension was inoculated into 100 ml PS medium sterilized in a 500 ml Erlenmeyer flask.
A PS táptalaj összetétele:Composition of PS medium:
0,8% porszója0.8% porosity
3,0% glükóz pH = 7,0 sterilezés előtt. 45 percig 120°C-on sterileztünk. A táptalajhoz a glükózt 50%-os oldatban külön sterileztük 30 percig 120 °C-on.3.0% glucose pH 7.0 before sterilization. Sterilized at 120 ° C for 45 minutes. For the medium, glucose was separately sterilized in 50% solution for 30 minutes at 120 ° C.
Porszója készítés: 0,4 mm fonaltávolságú szitán átszitált, extrahált szójadarából csapvízzel készült 10%-os szuszpenziót egy órán át 1 atm túlnyomáson hővel majd 37 °C-ra lehűtve 0,4% pankreatinnal két órán át keverés közben hidrolizáltunk, a pH-t nátriumhidroxid adagolással 7,5 és 8,0 közötti értéken tartva. Ezután a szuszpenziót centrifugáltuk, és a felülúszót porlasztva szárítottuk. Az így készült termék a porszója, 9% nitrogén-tartalommal.Powdery soy preparation: A 10% suspension of extracted soybean meal sieved through a sieve with a 0.4 mm mesh sieve was hydrolysed with 0.4% pancreatin for 2 hours under heating with 1 atm of pressure and then cooled to 37 ° C with 0.4% pancreatin. with sodium hydroxide added between 7.5 and 8.0. The suspension was then centrifuged and the supernatant was spray dried. The product thus obtained is in the form of a powder containing 9% nitrogen.
A beoltott táptalajt tartalmazó lombikot percenként 300 fordulatszámú, 2,5 cm kilengésű síkrázógépen két napig 32 °C-on rázattuk, majd a tenyészethez 0,5 ml dioxánban oldott 50 mg lanatozid-A sterilre szűrt oldatát adtuk. Adagolás után a lombikot még négy napig ugyancsak 32 °C-on rázattuk, majd a tenyészetet 2 x 50 ml kloroformmal extraháltuk. Az extraktum glükozid tartalmát a fentiekben megadott módon meghatározva 12 mg digoxint találtunk.The inoculated culture flask was shaken at 300 rpm for 2.5 days at 32 ° C on a flat-bed shaker and then treated with a solution of 50 mg of lanatoside A in sterile filtered in 0.5 ml of dioxane. After addition, the flask was shaken for another four days at 32 ° C and the culture was extracted with chloroform (2 x 50 mL). The glucoside content of the extract was determined to be 12 mg digoxin as described above.
2. példaExample 2
Az 1. példában leírtak szerint eljárva, de a tenyészethez lanatozid-A helyett 1 ml dimetilszulfoxidban oldott 50 mg acetildigitoxint adagolva 9 mg digoxin képződött.Proceeding as in Example 1, but adding 50 mg of acetyldithitoxin in 1 ml of dimethylsulfoxide instead of lanatoside A, 9 mg of digoxin was formed.
3. példaExample 3
Az 1. példában leírtak szerint eljárva, de a tenyészethez lanatozid-A helyett 1 ml tetrahidrofurfurúalkoholban oldott 50 mg purpurea-glükozid A-t adagolva 8 mg digoxin képződött.Proceeding as in Example 1, but adding to the culture 50 mg of purpurea-glucoside A dissolved in 1 ml of tetrahydrofurfuric alcohol instead of lanatoside A, 8 mg of digoxin was formed.
4. példaExample 4
Az 1. példában leírtak szerint eljárva, de a tenyészethez lanatozid-A helyett 1 ml dimetilszulfoxidban oldott 50 mg digitoxint adagolva 8 mg digoxin képződött. A meghatározás szerint 15 mg digitoxin átalakulatlan maradt.Proceeding as in Example 1, but adding 50 mg of digitoxin dissolved in 1 ml of dimethyl sulfoxide instead of lanatoside A, 8 mg of digoxin was formed. By definition, 15 mg of digitoxin remained unchanged.
5. példaExample 5
Mindenben az 1. példában leírtak szerint jártunk el, de a szuszpenziót az 1. lombiknál Streptomyces 65 purpurascens KA-26 (MNG 179), a 2,. lombiknálAll procedures were carried out as described in Example 1, but the suspension in flask 1 was Streptomyces 65 purpurascens KA-26 (MNG 179), 2. lombiknál
Streptomyces purpurascens KA—82 (MNG 177), aStreptomyces purpurascens KA-82 (MNG 177), a
3. lombiknál Streptomyces purpurascens KC—157 (MNG 176), a 4. lombiknál Streptomyces albonigerFlask 3 Streptomyces purpurascens KC-157 (MNG 176), Flask 4 Streptomyces alboniger
AB-316-ST (MNG 180) tenyészetéről készítettük. Az extraktumok glükozid-tartalmát az 5. táblázat szemlélteti.AB-316-ST (MNG 180). The glucoside content of the extracts is shown in Table 5.
5. táblázatTable 5
6. példaExample 6
8. példaExample 8
Mindenben az 5. példában leírtak szerint járunk el, de a tenyészetekhez lanatozid-A helyett 1 ml tetrahidrofurfurilalkoholban oldott 50 mg purpurea-glükozid A-t adagoltunk. Az extraktumok glükozid tartalmát aAll procedures were carried out as described in Example 5 except that 50 mg of purpurea-glucoside A dissolved in 1 ml of tetrahydrofurfuryl alcohol were added to the cultures instead of lanatoside A. The glucoside content of the extracts is determined by
6. táblázat szemlélteti.Table 6 illustrates this.
Mindenben az 5. példában leírtak szerint jártunk el, de a tenyészetekhez lanatozid-A helyett 1 ml 25 dimetilszulfoxidban oldott digitoxint adagoltunk. Az extraktumok glükozid-tartalmát a 8. táblázat szemlélteti.All were performed as described in Example 5, but cultures were treated with 1 ml of digitoxin dissolved in dimethylsulfoxide instead of lanatoside A. The glycoside content of the extracts is shown in Table 8.
6. táblázatTable 6
8. táblázatTable 8
7. példaExample 7
Mindenben az 5. példában leírtak szerint jártunk el, de a tenyészetekhez lanatozid-A helyett 1 ml dimetilszulfoxidban oldott 50 mg acetüdigitoxint adagoltunk. Az extraktumok glükozid-tartalmát a 7. táblázat szemlélteti. 50 All were performed as described in Example 5, but 50 mg of acetidigitoxin dissolved in 1 ml of dimethyl sulfoxide was added to the cultures instead of lanatoside A. The glycoside content of the extracts is shown in Table 7. 50
9. példaExample 9
Mindenben az 5. példában leírtak szerint jártunk el, de a tenyészetekhez lanatozid-A helyett 1 ml dimetilszulfoxidban oldott 50 mg lanatozid-C-t adagoltunk. Az extraktumok glükozid tartalmát a 9. táblázat szemlélteti.All were carried out as in Example 5, but 50 mg of lanatoside C dissolved in 1 ml of dimethyl sulfoxide was added to the cultures instead of lanatoside A. The glucoside content of the extracts is shown in Table 9.
7.táblázatTable 7
9.táblázatTable 9
10. példaExample 10
Mindenben az 1. példa szerint jártunk el, de adagolás után a fermentációt két nap után állítottuk le. A fermentlevet kloroformmal extraháltuk. Az extraktumról felvett vékonyrétegkromatogramon kevés át nem alakult lanatozid-A szubsztrátumon kívül jelentős mennyiségű acetildígitoxint, acetildigoxint, digitoxint és kevés digoxint azonosítottunk.In each case, the procedure of Example 1 was followed, but after addition, the fermentation was stopped after two days. The fermentation broth was extracted with chloroform. In addition to a small amount of untransformed lanososide A substrate, significant amounts of acetyldigitoxin, acetyldigoxin, digitoxin, and little digoxin were identified in the TLC.
11. példaExample 11
Streptomyces purpurascens KA—43 (MNG 178) jelű törzs 3—4 hetes burgonyás-dextrózos ferdeagaron 15 nőtt tenyészettéről 10 ml steril vízzel szuszpenziót készítettünk. A szuszpenzió 1 —1 ml-ével 500 ml-es Erlenmeyer-lombikban sterilezett 100—100 ml PS jelű táptalajt oltottunk. A lombikokat 32°C-on rázattuk 2 napig, majd 4 lombik összeöntött tartalmával 20 oltottunk 5 liter, laboratóriumi fermentorban 60 percig 120°C-on sterilezett, 0,2% pálmaolajat is tartalmazó PS táptalajt.Streptomyces purpurascens strain KA-43 (MNG 178) was resuspended in 10 ml of sterile water from 15 grown cultures of 3-4 week potato-dextrose inclined agar. 1-1 ml of the suspension was inoculated into 100-100 ml PS medium sterilized in a 500 ml Erlenmeyer flask. The flasks were shaken at 32 ° C for 2 days, then inoculated with 4 flasks of 5 liters of PS medium containing 0.2% palm oil sterilized in a laboratory fermenter for 60 minutes at 120 ° C.
A beoltott fermentort 32 °C-os vízfürdőben, 5 liter/perc steril levegő átáramoltatás és 350/perc 25 fordulatszámú kevertetés mellett egy napig inkubáltuk, majd a tenyészethez 5 g lanatozid-A 25 ml dioxánban készült, sterilre szűrt oldatát adagoltuk. További 5 nap inkubálás után a; fermentlét szűrtük.The inoculated fermenter was incubated in a 32 ° C water bath for 5 days at 5 L / min sterile air flow and 350 rpm at 25 rpm, and then added to a sterile filtered solution of 5 g of lanosozide A in 25 mL of dioxane. After another 5 days incubation, the; fermentation broth was filtered.
A sejtmentes szűrletet kétszer 1/3 térfogatnyi 30 benzollal extraháltuk. (A benzolos extraktum tartalmazza az esetlegesen át nem alakult szubsztrátumot, valamint digitoxint mint közbenső terméket, illetve a melléktermékek egy részét. Ezt követően a fermentlevet háromszor 1/3 térfogatnyi kloroformmal extrahál- 35 tűk. Az extraktumot vízmentes nátriumszulfáttal szárítva és szűrve, vákuumban 50 °C-nál nem magasabb hőmérsékleten .szárazra pároltuk. Az így kapott 2,1 g szárazmaradék 40% digoxint, 14% 70-hidroxidigoxint és további 20% nem azonosított szerkezetű glükozidot tartalmazott. Lanatozid-A, acetildigitoxin, illetve acetildigoxin a szárazmaradék5 bán nem volt.The cell-free filtrate was extracted twice with 1/3 volume of benzene. (The benzene extract contains the unmodified substrate, as well as digitoxin as an intermediate or part of the by-products. Thereafter, the fermentation broth was extracted three times with 1/3 volume of chloroform. The extract was dried over anhydrous sodium sulfate and filtered under vacuum at 50 ° C. It was evaporated to dryness at a temperature not higher than C. The resulting 2.1 g dry residue contained 40% digoxin, 14% 70-hydroxydigoxin and an additional 20% glycoside of unidentified structure Lanatoside A, acetyldigitoxin and acetyldigoxin were not .
A fenti összetételű kloroformos extraktum szárazmaradékát 60 ml metanol és 60 ml benzol elegyében feloldottuk, és 400 mg fenilbórsavat adva hozzá 5 percen keresztül reagáltattuk. Állandó keverés mellett 60 ml vizet adtunk a reakcióelegyhez. A fázisok szétválása után az alsó vizes-metanolos fázist elválasztottuk, majd 60 ml benzollal extraháltuk. Az alsó fázist leválasztva a metanolt vákuumban 50 °C-nál nem magasabb hőmérsékleten eltávolítottuk, a kivált kristályos anyagot szűrtük, 60 ml vízzel mostuk, majd szárítottuk. így 0,75 g kristályos digoxint nyertünk. [«]>$6 = +13,6° (c = 10%, piridin).The dry residue of the chloroform extract of the above composition was dissolved in a mixture of methanol (60 ml) and benzene (60 ml) and reacted with phenylboronic acid (400 mg) for 5 minutes. Water (60 mL) was added with constant stirring. After separation of the phases, the lower aqueous methanol layer was separated and extracted with 60 ml of benzene. After separation of the lower phase, the methanol was removed in vacuo at a temperature not higher than 50 ° C, the precipitated crystalline material was filtered off, washed with water (60 ml) and dried. 0.75 g of crystalline digoxin was obtained. [.Alpha.] D @ 20 = + 13.6 DEG (c = 10%, pyridine).
Claims (1)
Priority Applications (6)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
HUGO001428 HU176250B (en) | 1978-10-30 | 1978-10-30 | Process for producing mikrobiologically 12-beta-hydroxycardenolide derivatives |
DD21649079A DD147113A5 (en) | 1978-10-30 | 1979-10-26 | PREPARATION OF 12 BETA HYDROXY CARDENOLIDE DERIVATIVES BY MICROBIOLOGICAL WAYS |
CH962579A CH646995A5 (en) | 1978-10-30 | 1979-10-26 | METHOD FOR THE PRODUCTION OF 12BETA-HYDROXYCARDENOLIDE DERIVATIVES ON A MICROBIOLOGICAL WAY. |
NL7907937A NL7907937A (en) | 1978-10-30 | 1979-10-29 | NEW MICROBIOLOGICAL PROCEDURE FOR THE PREPARATION OF 12 BETA HYDROXYCARDENOLIDE COMPOUNDS. |
GB7937475A GB2034716B (en) | 1978-10-30 | 1979-10-29 | Microbiological method for the preparation of 12-hydroxy-cardenolide compounds |
DE19792943817 DE2943817A1 (en) | 1978-10-30 | 1979-10-30 | FOR FERMENTATION IN SUBMERSE CULTURE FOR THE INTRODUCTION OF THE 12 BETA-HYDROXY GROUPS AND Possibly. 7 BETA HYDROXY GROUP IN THE AGLY COMPONENT OF HEART GLYCOSIDES OR IN THEIR OWN aglycones AND CLEAVAGE OF D-GLUCOSE GROUP AND acetyl group of primary digitalis, OF D-GLUCOSE GROUP OF PURPUREAGLYKOSIDEN AND acetyl group from acetyl derivatives of secondary digitalis enabled from soils available MIKROORGANISMENSTAEMME AND METHOD FOR MICROBIOLOGICAL PRODUCTION OF BETA 12 -HYDROXYCARDENOLIDVERBINDUNGEN |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
HUGO001428 HU176250B (en) | 1978-10-30 | 1978-10-30 | Process for producing mikrobiologically 12-beta-hydroxycardenolide derivatives |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
HU176250B true HU176250B (en) | 1981-01-28 |
Family
ID=10996878
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
HUGO001428 HU176250B (en) | 1978-10-30 | 1978-10-30 | Process for producing mikrobiologically 12-beta-hydroxycardenolide derivatives |
Country Status (6)
Country | Link |
---|---|
CH (1) | CH646995A5 (en) |
DD (1) | DD147113A5 (en) |
DE (1) | DE2943817A1 (en) |
GB (1) | GB2034716B (en) |
HU (1) | HU176250B (en) |
NL (1) | NL7907937A (en) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
HU190784B (en) * | 1981-09-28 | 1986-11-28 | Richter Gedeon Vegyeszeti Gyar Rt,Hu | Process for the intensification of the microbiological transformation of steroid compounds |
Family Cites Families (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
HU175474B (en) * | 1978-05-23 | 1980-08-28 | Gyogyszerkutato Intezet | New microbiological process for producingcardenolide compounds containing 12-beta-hydroxyl-group |
HU175601B (en) * | 1978-08-11 | 1980-09-28 | Gyogyszerkutato Intezet | Microbiological process for preparing secondary glucosides from primary digitalis glucosides |
CA2037985A1 (en) * | 1990-03-23 | 1991-09-24 | Robert C. Gmelin | Economical air separator |
DE69124276T2 (en) * | 1990-03-29 | 1997-05-07 | Boc Group Inc | Process for the production of an oxygen enriched product stream |
ZA911499B (en) * | 1990-03-30 | 1991-12-24 | Boc Group Inc | Purifying fluids by adsorption |
JPH04222611A (en) * | 1990-12-21 | 1992-08-12 | Matsushita Electric Ind Co Ltd | Filter apparatus |
JPH04224498A (en) * | 1990-12-26 | 1992-08-13 | Kayseven Co Ltd | Alarm device for failure in ship light |
-
1978
- 1978-10-30 HU HUGO001428 patent/HU176250B/en not_active IP Right Cessation
-
1979
- 1979-10-26 DD DD21649079A patent/DD147113A5/en not_active IP Right Cessation
- 1979-10-26 CH CH962579A patent/CH646995A5/en not_active IP Right Cessation
- 1979-10-29 GB GB7937475A patent/GB2034716B/en not_active Expired
- 1979-10-29 NL NL7907937A patent/NL7907937A/en not_active Application Discontinuation
- 1979-10-30 DE DE19792943817 patent/DE2943817A1/en active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
GB2034716A (en) | 1980-06-11 |
CH646995A5 (en) | 1984-12-28 |
DE2943817A1 (en) | 1980-05-14 |
GB2034716B (en) | 1983-01-12 |
DD147113A5 (en) | 1981-03-18 |
NL7907937A (en) | 1980-05-02 |
DE2943817C2 (en) | 1988-01-14 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Iwai et al. | Production of deoxyfrenolicin and a new antibiotic, frenolicin B by Streptomyces roseofulvus strain AM-3867 | |
EP0277621B1 (en) | Antifungal antibiotics | |
TSUNAKAWA et al. | Quartromicin, a Complex of Novel Antiviral Antibiotics I. Production, Isolation, Physico-Chemical Properties and Antiviral Activity | |
US3721684A (en) | Rabelomycin | |
HU195855B (en) | Process for production of ll-e 33288-marked antibioticumkomplex and its components with antitumor effect and medical compositions containing them | |
GB2050384A (en) | Antitumor antibacterial agents | |
CA1165709A (en) | Antitumor antibacterial agents | |
EP0050724B1 (en) | Process for anthracycline glycosides | |
HU176250B (en) | Process for producing mikrobiologically 12-beta-hydroxycardenolide derivatives | |
US4372947A (en) | Antibiotic saframycin S and process for producing the same | |
US4248863A (en) | Antibiotics saframycins A, B, C, D and E and process for producing the same | |
US5372816A (en) | Trehalostatin and process for the preparation thereof | |
US4990497A (en) | Antifungal antibiotics | |
EP0456474B1 (en) | UCF1 compounds derivatives thereof and processes for their preparation | |
EP0478064B1 (en) | Microbial preparation of 13beta-13-deoxy-22,23-dihydro avermectin-B1a/B1b aglycone | |
US4592999A (en) | Process for producing daunomycin | |
US4451456A (en) | Antitumor antibacterial agents | |
US4780416A (en) | Microorganism for BBM 928 production | |
JPS60156391A (en) | Antibiotic em5487 | |
US4631256A (en) | Fermentation process for BBM-928 | |
US5110960A (en) | Antifungal antibiotics | |
US4421851A (en) | Antitumor antibiotics | |
US5002959A (en) | BU-4146T antibiotic | |
EP0174181B1 (en) | Novel vasodilator and process for the preparation thereof | |
US5656736A (en) | Compound UCH9 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
HU90 | Patent valid on 900628 | ||
HMM4 | Cancellation of final prot. due to non-payment of fee |