FI96277B - Process for preparing a bacterial product which can be used for the prevention of Campylobacter infections - Google Patents
Process for preparing a bacterial product which can be used for the prevention of Campylobacter infections Download PDFInfo
- Publication number
- FI96277B FI96277B FI916116A FI916116A FI96277B FI 96277 B FI96277 B FI 96277B FI 916116 A FI916116 A FI 916116A FI 916116 A FI916116 A FI 916116A FI 96277 B FI96277 B FI 96277B
- Authority
- FI
- Finland
- Prior art keywords
- campylobacter
- bacteria
- bacterial
- culture
- groups
- Prior art date
Links
Landscapes
- Fodder In General (AREA)
- Feed For Specific Animals (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
Description
5 962775 96277
Menetelmä siipikarjan Campylobakteeri-infektioiden ennaltaehkäisemiseen käyttökelpoisen bakteerivalmisteen valmistamiseksi Tämä keksintö koskee menetelmää siipikarjaan käytettävän bakteerivalmisteen valmistamiseksi, joka on tarkoitettu erityisesti estämään Campylobacter-lajien suolistoon asettuminen.The present invention relates to a process for the preparation of a bacterial preparation for use in poultry, in particular for preventing the colonization of Campylobacter species.
1010
Siipikarja on tärkein ihmisen campylobakteeri- ja salmonellainfektioiden lähde. Campylobacter ieiunin ja Campylobacter colin rooli yleisenä ihmisen ruuansulatuselimistön sairauksien syynä on hyvin dokumentoitu. Viittees-15 sä King, E. O: "The laboratory recognition of Vibrio fetus and a closely related Vibrio isolated from cases of human vibrosis", Annals of the New York Academy of Sciences, 98:700-711, 1962 ehdotettiin kananpoikia ensisijaiseksi ihmisen infektioiden lähteeksi. Skirrow, M.B.: 20 "Campylobacter enteritis: a 'new' disease", Brit.Med.J.Poultry is the main source of human campylobacter and salmonella infections. The role of Campylobacter ieiun and Campylobacter coli as a common cause of diseases of the human gastrointestinal tract is well documented. References-15 to King, E. O: "The laboratory recognition of Vibrio fetus and a closely related Vibrio isolated from cases of human vibrosis", Annals of the New York Academy of Sciences, 98: 700-711, 1962 proposed chickens as the primary human as a source of infections. Skirrow, M.B .: 20 "Campylobacter enteritis: a 'new' disease", Brit.Med.J.
2:9-11 (1977) osoitti joissakin tapauksissa yhteyden ihmisen sairauden ja farmeilla, lihakaupoissa ja kotikeit-tiöissä tapahtuvan kontaktin kananpoikiin, jotka kantoivat organismia, välillä. Tämä yhteys todistettiin myöhem-25 min eräissä epidemiologisissa tutkimuksissa, esim. Harris, N.V., Weiss, N.S. ja Nolan, C.M.: "The role of poultry and meats in the etiology of Campylobacter ieiuni coli enteritis". Am. J. of Public health 76:407-411 (198- 6). On myös eräitä raportteja sairauksien puhkeamisista, 30 jolloin epidemiologisesti saastunut tai epäilty Campylobacter ioosiksen välikappale on ollut raaka, grillattu tai riittämättömästi keitetty kananpoika. WHO:n huhtikuussa . 1989 julkaiseman Newsletter nro 20 mukaan campylobaktee ri-infektioiden lukumäärä on ylittänyt salmonellainfek-35 tioiden määrän viime vuosina eräissä teollistuneissa maissa.2: 9-11 (1977) showed in some cases a link between human disease and contact with chickens carrying the organism on farms, butchers and home kitchens. This association was demonstrated later in 25 min in some epidemiological studies, e.g., Harris, N.V., Weiss, N.S. and Nolan, C.M .: "The role of poultry and meats in the etiology of Campylobacter lei coli enteritis." Am. J. of Public health 76: 407-411 (198-6). There have also been some reports of disease outbreaks in which an epidemiologically contaminated or suspected Campylobacter iosis intermediate has been raw, grilled or inadequately cooked chicken. WHO in April. According to Newsletter No 20 published in 1989, the number of campylobacter infections has exceeded the number of salmonella infections in recent years in some industrialized countries.
Eräässä Suomen Eläinlääketieteellisen laitoksen suorittamassa tutkimuksessa vahvistettiin, että todennäköinen syy 96277 2 broilerien alttiuteen salmonellan asettumiselle (kasvulle ja kiinnittymiselle) suolistoon on tavallisen suolisto-bakteerikasvuston viivästynyt kehittyminen. Tämä viivästyminen on tulos nykyaikaisen broilerikasvatuksen massa-5 ruokintamenetelmistä. Tällaisilla eläimillä on sen vuoksi alhainen vastustuskyky kehoon saapuvia eksogeenisiä bakteereja kohtaan. E. Nurmi ja M. Rantala, Nature 241: 210-211,1973 osoittivat, että normaalin aikuisen suolen sisältö annettuna äskettäin kuoriutuneille kananpoikasille 10 lisäsi niiden vastustuskykyä salmonellan asettumiselle. Perustuen tähän pioneerityöhön formuloitiin kilpailevan poissulkemisen teoria (seuraavassa CE). Bakteerivalmis-teita erityisesti salmonellainfektioiden estämiseksi on esitetty esim. julkaisuissa EP 6696, EP 33854 sekä EP 15 154478. Onnistuminen Salmonellan estämisessä broilerika- nanpojissa kilpailevan poissulkemisen avulla on rohkaissut eräitä työryhmiä ympäri maailmaa soveltamaan samaa menetelmää Campvlobacter-laiien estämiseen. Soerjadi-Lien, Snoeyenbos ja Weinack, Avian Diseases 26: 520-524 20 (1982) ja 28: 139-146 (1983) ovat ilmoittaneet, että kun 10%:ista ulostesuspensiota spesifisistä patogeenivapaista (SPF) ryhmistä, joihin oli asettunut optimaalisesti suo-jaava mikrofloora, annettiin nuorille kananpojille, niiden vastustuskyky C^. ieiunia kohtaan lisääntyi. Tämä työ-25 ryhmä ilmoitti lisäksi, että annetun mikroflooran CE-vai-kutus väheni, kun Campvlobacter-lai ien annetut annokset lisääntyivät. Toisten tutkimusten mukaan, joissa tutkittiin CE:n vaikutusta Campvlobacter-laieihin. mitään vaikutusta ei havaittu käytettäessä joko CE-flooraa, joka 30 oli saatu uloste- tai umpisuolieritteistä (Stern, Bailey ja Blankenship, Avian Diseases 22: 330-334, 1988) tai CE-flooraa, joka oli saatu terveen aikuisen umpisuolen floorasta (Shanker, Lee & Sorrel, Epidemiology and Infection 100:27-34, 1988).A study carried out by the Finnish Veterinary Department confirmed that the probable reason for the susceptibility of 96277 2 broilers to the introduction (growth and attachment) of salmonella into the intestine is the delayed development of normal intestinal bacterial growth. This delay is the result of mass-5 feeding methods in modern broiler farming. Such animals therefore have low resistance to exogenous bacteria entering the body. E. Nurmi and M. Rantala, Nature, 241: 210 to 211.1973 showed that normal adult gut contents given newly hatched chicks 10 increased their resistance to salmonella settling down. Based on this pioneering work, the theory of competitive foreclosure (hereinafter CE) was formulated. Bacterial preparations, in particular for the prevention of salmonella infections, have been described, for example, in EP 6696, EP 33854 and EP 154447. Soerjadi-Lien, Snoeyenbos, and Weinack, Avian Diseases 26: 520-524 20 (1982) and 28: 139-146 (1983) have reported that when a 10% stool suspension from specific pathogen-free (SPF) groups that were optimally -dividing microflora, was given to young chickens, their resistance to C ^. towards ieiun increased. This working group 25 further reported that the CE effect of the administered microflora decreased as the administered doses of Camplobacter species increased. According to other studies investigating the effect of CE on Campvlobacter species. no effect was observed when using either the CE-flora, which was obtained in 30 fecal or umpisuolieritteistä (Stern, Bailey and Blankenship, Avian Diseases 22: 330-334, 1988) and CE-flora, which was obtained from a healthy adult caecal flora of (Shanker, Lee & Sorrel, Epidemiology and Infection 100: 27-34, 1988).
Tässä keksinnössä esitetään menetelmä sellaisen bakteeri-valmisteen valmistamiseksi, joka on käyttökelpoinen es- 35 3 96277 tämään ihmisen patogeenisten bakteerien asettumisen siipikarjaan, käsittäen bakteereita, jotka ovat peräisin täysikasvuisesta linnusta, mikroekologisesta paikasta, jossa patogeeniset bakteerit ovat olemassa.The present invention provides a method of preparing a bacterial preparation useful for preventing the introduction of this human pathogenic bacterium into poultry, comprising bacteria derived from an adult bird, a microecological site where the pathogenic bacteria exist.
5 Tämän keksinnön mukaisesti valmistettava valmiste käsittää bakteerikasvuston, joka on erityisesti peräisin täysikasvuisen linnun umpisuolen limakalvojen floorasta ja jota voidaan käyttää estämään ihmisen patogeenisten bak-10 teerien, erityisesti Campylobakteerin asettumisen nuoriin lintuihin. Tässä ilmoitetut tulokset käsittävät C. ieiu-nin biotyyppi l:n kasvun vähenemisen broilerikananpojis-sa. Bakteerivalmiste on tehokas myös muita Campylobaktee-rilajeja vastaan sekä mahdollisesti myös muita patogeeni-15 siä bakteereja vastaan.manufactured in accordance with the preparation 5 of the present invention comprises a bacteria flora, which is in particular derived from an adult bird's cecum flora of the mucous membranes and may be used to inhibit the human pathogenic bacteria to the bak 10, especially Campylobacter settling of the young birds. The results reported herein include a reduction in the growth of C. ieiu biotype 1 in broiler chickens. The bacterial preparation is also effective against other Campylobacter species and possibly also against other pathogenic bacteria.
Keksinnössä käytettävä viljelmä on valittu samasta mikroekologisesta ympäristöstä, jossa Campylobakteeri on taipuvainen esiintymään broilerikananpoikien umpisuoles-20 sa. Erittäin tehokkaita kasvustoja saadaan viljelemällä bakteeriflooraa, joka on peräisin täysikasvuisen linnun umpisuolen seinämän limakalvolta, joko anaerobisissa tai mikroaerofiilisissä olosuhteissa, mielellään musiini-alustalla. On myös edullista valita bakteerit, joilla on 25 hyvä liikkumiskyky musiinissa.The culture used in the invention is selected from the same microecological environment in which the Campylobacter tends to be present in the colon of broiler chickens. Very effective in cultures obtained by culturing the bacterial flora, which is derived from an adult bird's cecum wall mucosa, either anaerobic or microaerophilic conditions, preferably in mucin surface. It is also advantageous to select bacteria with good motility in mucin.
Kokeissa käytetyt kasvustot olivat kaikki peräisin vanhemmasta, munivasta kanasta.The crops used in the experiments were all derived from an older, laying hen.
30 KASVUSTOJEN LUOMINEN30 CREATING CROPS
Umoisuolihomogenaatti (kasvusto ' Koko umpisuoli homogenisoitiin ja laimennettiin 0,1%:- 35 isella peptoni vedellä laboratoriomittakaavan kokeissa ja tavallisella juomavedellä maatilamittakaavan kokeissa.Bowel homogenate (culture) The entire caecum was homogenized and diluted with 0.1% peptone water in laboratory scale experiments and standard drinking water in farm scale experiments.
96277 496277 4
Kasvusto ei sisältänyt Salmonella- tai Campvlobacter-la-jeja. Testimenetelmä oli seuraavanlainen:The culture did not contain Salmonella or Campvlobacter species. The test method was as follows:
Salmonella: 1 %:inen puskuroitu peptoni-vesi (37 5 °C/20 h), Rappaport-Vassiliadis-alusta 41,5 °C/20 h) ja tetrationaatti-alusta (37 °C/20 h), Onöz ja brilliant-green-agarit (37 °C/20 h),Salmonella: 1% buffered peptone-water (37 5 ° C / 20 h), Rappaport-Vassiliadis medium 41.5 ° C / 20 h) and tetrathionate medium (37 ° C / 20 h), Onöz and brilliant -green agar (37 ° C / 20 h),
Campylobakteeri: Brucella-alusta, johon oli lisätty 10 pyruvaattia, metabisulfiittia ja fer- rorautaa (FBP) (41,5°C/20 h mikro-aerofiilisessä ilmakehässä) CCD agar (41,5 °C/44 h mikroaerofiilisessä ilmakehässä).Campylobacter: Brucella medium supplemented with 10 pyruvate, metabisulfite and ferric iron (FBP) (41.5 ° C / 20 h in a micro-aerophilic atmosphere) CCD agar (41.5 ° C / 44 h in a microaerophilic atmosphere).
1515
Viljelty umpisuolihomogenaatti (kasvusto B) 1 ml umpisuolihomogenaatista käytettiin ymppäämään 100 ml Brucella-alustaa, johon oli lisätty 1 g Porcine Gastric 20 Mucin (SIGMA). Musiini suspendoitiin pieninä annoksina kiehuvaan veteen ja neutraloitiin ennen lisäämistä muun elatusaineen joukkoon. Cefoperazone (Cefobis, Pfizer) lisättiin aseptisesti autoklavoinnin jälkeen lopulliseen konsentraatioonsa 32 mg/1. Inkubointia jatkettiin 48 h 25 41,5 °C:ssa mikroaerofiilisessä ilmakehässä.Cultured colon homogenate (culture B) 1 ml of colon homogenate was used to inoculate 100 ml of Brucella medium supplemented with 1 g of Porcine Gastric 20 Mucin (SIGMA). Mucin was suspended in small portions in boiling water and neutralized before being added to other media. Cefoperazone (Cefobis, Pfizer) was added aseptically after autoclaving to a final concentration of 32 mg / l. Incubation was continued for 48 h at 41.5 ° C in a microaerophilic atmosphere.
Puhdas umpisuolen limakalvovilielmä (kasvusto C)Pure limakalvovilielmä the caecum (flora C)
Olennainen osa kasvusto B:n liikkumattomista bakteereista 30 hylättiin puolikiinteän l0%:isen musiiniagarin avulla, jolla oli seuraava koostumusA substantial portion of the immobile bacteria in culture B was discarded using semi-solid 10% mucin agar having the following composition
I ' IH I l;llt I ( I «II 'IH I l; llt I (I «I
5 962775 96277
Puolikiinteä 10%:inen musiiniagar:Semi-solid 10% musine agar:
Musiinia 10,00 g 5 Brucella alustaa 0,50 g K2HP04 0,25 gMucin 10.00 g 5 Brucella medium 0.50 g K2HPO4 0.25 g
Agaria 1,10 gAgaria 1.10 g
Vettä 100 ml 10 Musiini täytyy liuottaa kiehuvaan veteen ennen autoklavoimista. pH säädetään 7,2:een 0,1 N NaOHilla.Water 100 ml 10 Mucin must be dissolved in boiling water before autoclaving. The pH is adjusted to 7.2 with 0.1 N NaOH.
Kasvusto B siirrettiin linjaan 12 cm:n petrimaljalle, 15 joka sisälsi 33 ml puolikiinteää 10%:ista musiiniagaria.Culture B was transferred to a 12 cm petri dish containing 33 ml of semi-solid 10% mucin agar.
Mikroaerofiilisen inkuboinnin jälkeen (41,5 °C/48 h/ happea 5 %, C02 15 % ja typpeä 80 %) pieni osa agarista välillä 2 ja 4 cm linjan ulkopuolelta siirrettiin 10%:isel-20 le musiinialustalle. Tämän alustan koostumus oli sama kuin musiiniagarinkin, paitsi ettei se sisältänyt cefape-razonia tai agaria. Menettelyä toistettiin, kunnes alustalla ei havaittu enää liikkumattomia bakteereita.After microaerophilic incubation (41.5 ° C / 48 h / oxygen 5%, CO 2 15% and nitrogen 80%), a small portion of the agar between 2 and 4 cm from the outside of the line was transferred to 10% isine-20 mucin medium. The composition of this medium was the same as that of mucin agar, except that it did not contain cefaprazone or agar. The procedure was repeated until no more immobile bacteria were detected on the medium.
25 Bakteerien eristäminen25 Isolation of bacteria
Kasvustoa C viljeltiin Brucella-agarilla ja mikroaerofii-lisessä ilmakehässä 41,5 °C:ssa 48:sta 96:een tuntiin. Liikkumiskykyiset spiraalin muotoiset organismit eristet-30 tiin.Culture C was cultured on Brucella agar and in a microaerophilic atmosphere at 41.5 ° C for 48 to 96 hours. Mobile helical organisms were isolated.
Kasvusto B siirrettiin linjaan 12 cm:n petrimaljalle, joka sisälsi 33 ml puolikiinteää 10%lista musiiniagaria.Culture B was transferred to a 12 cm petri dish containing 33 ml of semi-solid 10% mucin agar.
' Anaerobisen inkuboinnin jälkeen (41,5 °C/48 h) pieni määrä 35 agaria 2:sta 4:ään cm linjan ulkopuolelta siirrettiin 10%:iselle musiinialustalle II, jota myös inkuboitiin anaerobisessa ilmakehässä. Menettelyä jatkettiin, kunnes 96277 6 alustalla ei enää havaittu liikkumattomia bakteereita. Kolmen toistokerran jälkeen alustallla oli jäljellä enää yhdenlaatuisia bakteereita, joita merkittiin Y:llä.After anaerobic incubation (41.5 ° C / 48 h), a small amount of 35 agar from 2 to 4 cm outside the line was transferred to 10% mucin medium II, which was also incubated in an anaerobic atmosphere. The procedure was continued until immobile bacteria were no longer detected on 96277 6 medium. After three repetitions, there were only monocotyledonous bacteria remaining on the medium, which were marked with Y.
5 KASVUSTOJEN ANTAMINEN5 CROP PROVISION
Laboratoriokokeetlaboratory tests
Laboratoriokokeissa 60-72 vastakuoriutunutta kananpoikaa 10 jaettiin 12 ryhmään. CE-kasvustot annettiin 2x4 linnun ryhmille lintujen rehun mukana. Loput 4 ryhmää käytettiin kontrolleina, eivätkä ne saaneet CE-kasvustoa. Seuraavana päivänä annettiin C. ieiunin biotyyppiä I Penner 15 tai Penner 3/43/59 1000-3000 CFU:ta, samalla menetelmällä 15 kaikille ryhmille, paitsi kahdelle neljästä kontrolliryhmästä. Puolet linnuista tapettiin viikon kuluttua ja loput kahden viikon kuluttua. Lintujen umpisuolesta suoritettiin Campylobakteerien kvantitatiivinen tutkimus.In laboratory experiments, 60-72 newly hatched chickens 10 were divided into 12 groups. CE crops were given to groups of 2x4 birds with bird feed. The remaining 4 groups were used as controls and did not receive CE culture. The next day, C. ieiun biotype I Penner 15 or Penner 3/43/59 1000-3000 CFU was administered by the same method to all groups except two of the four control groups. Half of the birds were killed after a week and the rest after two weeks. A quantitative study of Campylobacter was performed on the colon of birds.
20 Kenttäkokeet20 Field tests
Kenttäkokeissa 1600-1700 kananpoikaa jaettiin 16 ryhmään, joista kahdeksan toimi testiryhminä, neljä Campylobakteerien positiivisina kontrolliryhminä ja neljä vertailuryh-25 minä. CE-kasvustot sekoitettiin kahdeksan testiryhmän ensimmäiseen juomaveteen. 4,16-5,80 log10 CFU:ta C. ieiunin biotyyppi 1 Penner 15:sta annettiin seuraavana päivänä kolmelle tartuttavalle linnulle jokaisessa häkissä, paitsi neljän vertailuryhmän häkissä. Jokaisella viikol-30 la, kasvuperiodin loppuun saakka, jokaisesta häkistä tapettiin kolmesta viiteen lintua ja umpisuolesta tutkittiin kvantitatiivisesti Campylobakteerilajit.In the field experiments, 1600-1700 chickens were divided into 16 groups, of which eight served as test groups, four as Campylobacter positive control groups, and four as control groups. CE cultures were mixed with the first drinking water of eight test groups. 4.16-5.80 log10 CFU of C. ieiun biotype 1 from Penner 15 was administered the following day to three infectious birds in each cage except in the cages of the four control groups. At each week-30 Sat, until the end of the growing season, three to five birds from each cage were killed and Campylobacter species were quantitatively examined from the cecum.
Brucella-alustaa, jossa oli FBT:tä (ferrosulfaattia, nat-35 riummetabisulfiittia ja natriumpyruvaattia, kaikkia 0,5 g/1) ja cefaperazonia (32 mg/1) sekä hiili-Cefaperazone-deoksikolaatti (CCD) agaria, käytettiin Campylobakteeri- 7 96277 lajien kvalitatiivisissa ja kvantitatiivisissa tutkimuksissa. Alustoja inkuboitiin 20 h ja agareita 44 h 41,5 °C:ssa mikroaerofiilisessä ilmakehässä.Brucella medium with FBT (ferrous sulphate, sodium metabisulphite and sodium pyruvate, all 0.5 g / l) and cefaperazone (32 mg / l) and carbon-Cefaperazone deoxycholate (CCD) agar was used for Campylobacter. 96277 in qualitative and quantitative studies of species. The media were incubated for 20 h and the agar for 44 h at 41.5 ° C in a microaerophilic atmosphere.
5 Tulokset5 Results
Asettumistekijä on aritmeettinen keskiarvo yksittäisten lintujen CFU:n määrän per g umpisuolen sisältöä log10-arvoista, jokaisessa testi- tai kontrolliryhmässä.Asettumistekijä is the arithmetic average of the CFU of individual birds in an amount per g of caecal content of the log 10 values for each test or control group.
1010
Sopimuksen mukaan Campylobakteerinegatiivisella (sekä kvantitatiivisessa että kvalitatiivisessa kokeessa) linnulla on laskelmissa log10-arvo 0,1.According to the agreement, a Campylobacter-negative bird (in both quantitative and qualitative experiments) has a log10 value of 0.1 in the calculations.
15 Koe 115 Test 1
Laboratoriokokeetlaboratory tests
Taulukosta 1 näkyy, että kasvusto B:n mikroaerofiilinen 20 inkubointi aikaansai tehokkaammman Campylobakteerilajien kilpailevan estämisen kuin kasvusto B:n anaerobinen inkubointi .Table 1 shows that microaerophilic incubation of culture B produced more effective competitive inhibition of Campylobacter species than anaerobic incubation of culture B.
Taulukko 1. C.ieiunin biotyypin I lämpöstabiilin serotyy-25 pin 15 vasteannos 895 CFU/kananpoika.Table 1. C.eiun biotype I thermostable serotype-25 pin 15 response dose 895 CFU / chicken.
Asettumistekijä 1 viikko 2 viikkoa 30 Vertailu 1 5,13 7,74Settlement factor 1 week 2 weeks 30 Comparison 1 5.13 7.74
Vertailu 2 5,96 8,35Comparison 2 5.96 8.35
Kasvusto B mikroaerofiilinen viljelmä Ryhmä 1 <2,00 <2,00 35 Ryhmä 2 <2,00 <2,00Culture B microaerophilic culture Group 1 <2.00 <2.00 35 Group 2 <2.00 <2.00
Ryhmä 3 <2,00 <2,00Group 3 <2.00 <2.00
Ryhmä 4 2,34 <2,00 96277 8Group 4 2.34 <2.00 96277 8
Kasvusto B anaerobinen viljelmä Ryhmä 1 <2,00 3,24Culture B anaerobic culture Group 1 <2.00 3.24
Ryhmä 2 4,91 <2,00Group 2 4.91 <2.00
Ryhmä 3 3,89 <2,00 5 Ryhmä 4 3,70 7,04Group 3 3.89 <2.00 5 Group 4 3.70 7.04
Koe 2Test 2
Kasvusto B puhdistettiin liikkuvuuden ja ilmakehän perus-10 teella mikroaerofiiliseen kasvustoon C ja anaerobiseen bakteerikasvustoon Y kuten edellä on kuvattu. Anaerobiset bakteerit Y eivät yksinään herättäneet CE-vaikutusta. Näiden kasvustojen yhdistelmä (1:1) toi CE-vaikutuksen takaisin, kuten on esitetty ryhmissä 3 ja 4, taulukko 2.Culture B was purified on a mobility and atmospheric basis to microaerophilic culture C and anaerobic bacterial culture Y as described above. Anaerobic bacteria Y alone did not elicit a CE effect. The combination of these cultures (1: 1) brought back the CE effect, as shown in Groups 3 and 4, Table 2.
1515
Laboratoriokokeetlaboratory tests
Taulukko 2. C. ieiunin biotyyppi I lämpöstabiilin sero-tyypin 15 vasteannos 245 CFU/kananpoika 20 asetustekijä 1 viikko 2 viikkoaTable 2. C. ieiun biotype I thermostable serotype 15 response dose 245 CFU / chicken 20 setting factor 1 week 2 weeks
Kontrolli 1 7,78 7,58Check 1 7.78 7.58
Kontrolli 2 8,33 8,74 25Check 2 8.33 8.74 25
Kasvusto Y yksinCrop Y alone
Ryhmä 1 1,90 6,70Group 1 1.90 6.70
Ryhmä 2 6,55 8,06 30 Kasvusto Y + kasvusto C (1:1)Group 2 6.55 8.06 30 Crop Y + crop C (1: 1)
Ryhmä 3 1,80 <2,00Group 3 1.80 <2.00
Ryhmä 4 3,22 <2,00Group 4 3.22 <2.00
Kenttäkokeet 16 x 100 broilerikananpoikaa kasvatettiin normaalissa kasvatusyksikössä kuuden viikon ajan. Kahdeksan ryhmää 35Field experiments 16 x 100 broiler chickens were reared in a normal rearing unit for six weeks. Eight groups 35
Il SH 1 Slit! I i « SI ; .Il SH 1 Slit! I i «SI; .
9 96277 käytettiin kilpailevan estämisen kokeeseen. Neljä ryhmää toimi negatiivisena vertailuna, joita ei ole esitetty kuviossa. Testiryhmille annettiin kahta lajia määriteltyä ’ umpisuolikasvustoa niiden ensimmäisessä juomavedessä.9 96277 was used for the competitive inhibition experiment. Four groups served as negative comparisons not shown in the figure. The test groups were given two species of ‘defined intestinal growth’ in their first drinking water.
5 Kasvustojen laimennos oli 1/30. Jokainen lintu sai arviolta 0,25 ml käsittelynestettä.5 The dilution of the crops was 1/30. Each bird received an estimated 0.25 ml of treatment fluid.
Neljälle testiryhmälle annettiin musiinisopeutettuja anaerobisia liikkuvia bakteereita (kasvusto Y). Loput neljä 10 ryhmää saivat yhdistettyä kasvustoa (1:1), joka sisälsi kasvustoa Y ja kasvustoa C, joka on musiinisopeutettua mikroaerofiilista kasvustoa kuten edellä on kuvattu.Four test groups were given mucin-adapted anaerobic motile bacteria (culture Y). The remaining four groups received a combined culture (1: 1) containing culture Y and culture C, a mucin-adapted microaerophilic culture as described above.
36 broilerikananpoikaa infektoitiin Campylobacter ieiunin 15 biotyypillä 1, Penner serotyyppi 15 yhden päivän ikäisinä. Annos oli log10 4,16 CFU. Kolme näistä tartuttavista yksilöistä jaettiin jokaiseen ryhmään.36 broiler chickens were infected with Campylobacter ieiun 15 biotype 1, Penner serotype 15 at one day of age. The dose was log10 4.16 CFU. Three of these infectious individuals were divided into each group.
Jokaisesta ryhmästä tutkittiin kvantitatiivisesti kolmen 20 linnun umpisuolen sisältö Campylobakteerien suhteen CCD-agareilla viikon väliajoin. Asettumistekijä laskettiin log10-arvojen aritmeettisena keskiarvona yksittäisten lintujen CFU:n määrästä per gramma umpisuolen sisältöä jokaisessa ryhmässä. Negatiivinen kontrolli pysyi kvalita-25 tiivisesti negatiivisena Campylobakteerilajien suhteen teurastukseen saakka.For each group were examined quantitatively the content of the three bird's cecum campylobacteria 20 relative to the CCD agareilla week intervals. Asettumistekijä was calculated from the arithmetic mean of the log 10 values of the individual birds CFU per gram of the amount of cecal contents in each group. The negative control remained qualitatively negative for Campylobacter species until slaughter.
Tulokset on esitetty kuviossa 1. Voidaan havaita, että musiinisopeutetut anaerobiset liikkuvat bakteerit (kas-30 vusto Y) eivät suojanneet umpisuolta Campylobakteerila-jien asettumiselta vaikka Campylobakteerilajien baktee-' rimäärä väheni hiukan (<1 log10-yksikköä). Kasvusto Y:n ja kasvusto C:n yhdistelmä (1:1) viivästytti Campylobakteerilaj ien asettumisen alkamista kahdella viikolla. 3 vii-35 kon kuluttua infektiosta Campylobakteerilajien bakteeri-määrä oli edelleen 4 log10-yksikköä alemmalla tasolla kuin vertailuryhmissä.The results are shown in Figure 1. It can be seen that mucin-adapted anaerobic motile bacteria (culture Y) did not protect the colon from the settlement of Campylobacter species, although the bacterial count of Campylobacter species was slightly reduced (<1 log10 units). The combination of culture Y and culture C (1: 1) delayed the onset of settling of Campylobacter species by two weeks. 3 vii-35 h after infection, the bacterial count of Campylobacter species was still 4 log10 units lower than in the control groups.
Koe 3 96277 10Experiment 3 96277 10
Umpisuolen laimennetun homogenaatin (kasvusto A) CE-vai-kutusta verrattiin määrittelemättömän anaerobisessa ilma-5 kehässä kasvaneen umpisuolikasvuston, CE-vaikutukseen.The diluted homogenate of the caecum (flora A) or CE-kutusta was compared to an unspecified anaerobic atmosphere for 5 air-umpisuolikasvuston increased, the CE-effect.
Testattujen lintujen ja ryhmien määrät kuten myös annetun CE-kasvuston määrä lintua kohti olivat samoja kuin edellisessä kokeessakin. Neljä testiryhmää sai kasvustoa A ja neljä ryhmää määrittelemätöntä umpisuolikasvustoa, joka 10 oli kasvanut anaerobisessa ilmakehässä. Tätä kasvustoa kutsutaan 427/C:ksi. Kahdeksantoista broilerikananpoikaa infektoitiin Campylobacter ieiunin biotyypillä 1, Penner serotyyppi 15, 18 päivän ikäisenä. Annos oli log10 5,80 CFU. Jokaiseen ryhmään jaettiin kolme näistä tartuttajis-15 ta.The numbers of birds and groups tested as well as the number of CE crops administered per bird were the same as in the previous experiment. Four test groups received culture A and four groups of unspecified colon growth 10 grown in an anaerobic atmosphere. This crop is called 427 / C. Eighteen broiler chickens were infected with Campylobacter ieiun biotype 1, Penner serotype 15, at 18 days of age. The dose was log10 5.80 CFU. Three of these infectious agents were assigned to each group.
Kuvio 2 osoittaa, että kasvusto A (umpisuolen laimennettu homogenaatti), osoitti tehokkaampaa CE-vaikutusta.Figure 2 shows that flora A (the diluted homogenate of the caecum) showed the more efficient CE effect.
20 Kasvusto A asettui ilmeisesti kananpoikien umpisuoleen ja esti C. ieiunin asettumisen kahdessa ryhmässä sekä vähensi asettumisastetta kahdessa ryhmässä (neljällä log,0-yk-siköllä). Kasvusto 427/C viivästytti infektion alkamista 1-2 viikolla, mutta todennäköisesti kahden viikon kulut-25 tua Campylobakteerien määrä kananpoikien umpisuolessa olisi samalla tasolla kuin vertailuryhmien umpisuolessakin (täysin asettuneita Campylobakteerilajeilla).20 Culture A apparently settled in the caecum of chickens and prevented C. ieiun from settling in two groups and reduced the degree of colonization in two groups (by four log, 0-unit). Culture 427 / C delayed the onset of infection by 1-2 weeks, but it is likely that after two weeks, the amount of Campylobacter in the colon of chickens would be at the same level as in the colon of control groups (fully established in Campylobacter species).
ii : a&.i i l i e· . .·ii: a & .i i l i e ·. . ·
Claims (4)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
FI916116A FI96277C (en) | 1989-06-30 | 1991-12-23 | Method for the preparation of a bacterial preparation useful for the prevention of Campylobacter infections in poultry |
Applications Claiming Priority (6)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GB8915027 | 1989-06-30 | ||
GB8915027A GB2233343B (en) | 1989-06-30 | 1989-06-30 | A bacterial preparation for use in poultry |
FI9000171 | 1990-06-27 | ||
PCT/FI1990/000171 WO1991000099A1 (en) | 1989-06-30 | 1990-06-27 | A bacterial preparation for use in poultry |
FI916116A FI96277C (en) | 1989-06-30 | 1991-12-23 | Method for the preparation of a bacterial preparation useful for the prevention of Campylobacter infections in poultry |
FI916116 | 1991-12-23 |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
FI916116A0 FI916116A0 (en) | 1991-12-23 |
FI96277B true FI96277B (en) | 1996-02-29 |
FI96277C FI96277C (en) | 1996-06-10 |
Family
ID=26159102
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
FI916116A FI96277C (en) | 1989-06-30 | 1991-12-23 | Method for the preparation of a bacterial preparation useful for the prevention of Campylobacter infections in poultry |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
FI (1) | FI96277C (en) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN107115368B (en) * | 2017-04-21 | 2021-01-15 | 安徽农业大学 | Pomegranate peel microecological preparation for preventing animal diarrhea and application thereof |
-
1991
- 1991-12-23 FI FI916116A patent/FI96277C/en active
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
FI96277C (en) | 1996-06-10 |
FI916116A0 (en) | 1991-12-23 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Gharib et al. | Comparison of the effects of probiotic, organic acid and medicinal plant on Campylobacter jejuni challenged broiler chickens | |
Baba et al. | The role of intestinal microflora on the prevention of Salmonella colonization in gnotobiotic chickens | |
Nisbet | Defined competitive exclusion cultures in the prevention of enteropathogen colonisation in poultry and swine | |
JPS647049B2 (en) | ||
AU679733B2 (en) | Mucosal competitive exclusion flora | |
Snoeyenbos et al. | Gastrointestinal colonization by salmonellae and pathogenic Escherichia coli in monoxenic and holoxenic chicks and poults | |
EP1715755B1 (en) | Use of live bacteria for growth promotion in animals | |
AU8409598A (en) | Control of enterohemorrhagic e. coli O157:H7 in cattle by probiotic bacteria | |
US5252329A (en) | Bacterial preparation for use in poultry | |
Al‐Tarazi et al. | Effect of dietary formic and propionic acids on Salmonella pullorum shedding and mortality in layer chicks after experimental infection | |
Barrow et al. | Inhibition of colonization of the chicken caecum with Salmonella typhimurium by pre-treatment with strains of Escherichia coli | |
Shanker et al. | Experimental colonization of broiler chicks with Campylobacter jejuni | |
US6010695A (en) | Saccharomyces boulardii treatment to diminish campylobacter and salmonella in poultry | |
US6214335B1 (en) | Livestock mucosal competitive exclusion culture to reduce enteropathogenic bacteria | |
Barrow | Further observations on the effect of feeding diets containing avoparcin on the excretion of salmonellas by experimentally infected chickens | |
KR100654427B1 (en) | Lactobacillus plantarum cu03 kacc 91103 having provention of formating a foul odor and a deodorizing acitivy | |
Obi et al. | Prevalence and antibiogram profile of salmonellae in intensively reared and backyard chickens in Nsukka Area, Nigeria | |
FI96277B (en) | Process for preparing a bacterial product which can be used for the prevention of Campylobacter infections | |
US6136325A (en) | Live vaccine constituting minor risk for humans | |
Marciňáková et al. | Effect of potential probiotic activity of Enterococcus faecium EE3 strain against Salmonella infection in Japanese quails | |
US6479056B1 (en) | Live vaccine constituting minor risk for humans | |
احمد et al. | effect of probiotic on growth performance and certain parmeters in broiler infected with E. coli | |
CZ309378B6 (en) | Probiotic preparation for poultry and its use | |
CA2196100C (en) | Saccharomyces treatment to diminish campylobacter and salmonella populations in poultry | |
CZ35185U1 (en) | Probiotic preparation for poultry |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
BB | Publication of examined application |