ES2399933B1 - Diluyente para suspension seminal - Google Patents

Diluyente para suspension seminal

Info

Publication number
ES2399933B1
ES2399933B1 ES201130842A ES201130842A ES2399933B1 ES 2399933 B1 ES2399933 B1 ES 2399933B1 ES 201130842 A ES201130842 A ES 201130842A ES 201130842 A ES201130842 A ES 201130842A ES 2399933 B1 ES2399933 B1 ES 2399933B1
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
diluent
sperm
alginate
diluent according
gil
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
ES201130842A
Other languages
English (en)
Other versions
ES2399933A2 (es
ES2399933R1 (es
Inventor
Javier Gil Pascual
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Tecnovet SL
Original Assignee
Iberica de Reproduccion Asistida SL
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Iberica de Reproduccion Asistida SL filed Critical Iberica de Reproduccion Asistida SL
Priority to ES201130842A priority Critical patent/ES2399933B1/es
Priority to US13/480,280 priority patent/US20120301868A1/en
Priority to EP12382199A priority patent/EP2526768A1/en
Publication of ES2399933A2 publication Critical patent/ES2399933A2/es
Publication of ES2399933R1 publication Critical patent/ES2399933R1/es
Application granted granted Critical
Publication of ES2399933B1 publication Critical patent/ES2399933B1/es
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02Preservation of living parts
    • A01N1/0205Chemical aspects
    • A01N1/0231Chemically defined matrices, e.g. alginate gels, for immobilising, holding or storing cells, tissue or organs for preservation purposes; Chemically altering or fixing cells, tissue or organs, e.g. by cross-linking, for preservation purposes
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61DVETERINARY INSTRUMENTS, IMPLEMENTS, TOOLS, OR METHODS
    • A61D19/00Instruments or methods for reproduction or fertilisation
    • A61D19/02Instruments or methods for reproduction or fertilisation for artificial insemination
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0608Germ cells
    • C12N5/061Sperm cells, spermatogonia

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Reproductive Health (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Diluyente para suspensión seminal.#La presente invención pertenece al campo de la veterinaria, y en particular a la reproducción asistida. Más concretamente, la invención consiste en un diluyente de semen que comprende alginato y su utilización para la conservación de esperma y para el aumento del porcentaje de progenie con un sexo determinado.

Description

DILUYENTE PARA SUSPENSiÓN SEMINAL
CAMPO DE LA INVENCiÓN
La presente invención pertenece al campo de la inseminación artificial de animales. Más concretamente, la invención consiste en un diluyente de semen que comprende alginato y su utilización para la conservación de esperma y para el aumento del porcentaje de progenie con un sexo determinado.
ANTECEDENTES DE LA INVENCIÓN
En la actualidad, uno de los mayores problemas planteados en las técnicas de inseminación artificial es la conservación del esperma (o semen) y de su poder fecundante hasta que llega el momento de la inseminación. Para solucionar este problema, habitualmente se utiliza un medio denominado "diluyente" en el cual se diluye el esperma inmediatamente después de su recogida. De esta manera, se conserva hasta el momento de la inseminación.
El tiempo de conservación que se puede obtener en presencia de diluyente depende de la especie en cuestión y de las condiciones de conservación, y en particular del tipo de diluyente escogido; dicho tiempo varía generalmente de unas horas a unos días. En algunas especies, se puede prolongar este tiempo mediante la congelación del esperma; sin embargo, esta técnica produce igualmente la destrucción o la inactivación de un número importante de espermatozoides, y por consiguiente una baja de la fertilidad del esperma. Además, existen considerables diferencias de eficacia en la conservación al utilizar el proceso de congelación segun la especie animal de que se trate. A este respecto, es especialmente problemática la inseminación artificial en los cerdos ya que aunque la técnica de congelación ha significado una buena estandarización de los métodos de conservación en otras especies domesticas, es prácticamente inaplicable con el material seminal porcino. Las peculiares particularidades que presenta el espermatozoide porcino hace que sea muy sensible al shock por frio, que produce una alteración de la viabilidad espermática. Esta susceptibilidad al choque por frío, supone en la práctica que las muestras seminales deban ser conservadas a 15-20°C, ya que una reducción en la temperatura de almacenamiento limita la viabilidad de las muestras seminales (Paulenz el al., 2000).
La presente invención se refiere a la adición de alginato a entre 0,25 giL Y 10 gIL, en diluyentes de semen convencionales (tanto de verracos como de otras especies de animales), para mejorar la supervivencia de los espermatozoides y su comportamiento en la fecundación con miras a la inseminación artificial o cualquier otra práctica de reproducción asistida.
Son muchos los estudios que divulgan la utilización del alginato como diluyente de semen, por ejemplo en las especies caprina, ovina, bovina, y equina. Sin embargo, todos ellos requieren del proceso de encapsulación para conseguir la conservación del semen (ES2202723; EP0922451; Herrler el al., 2006). Sorprendentemente, en la presente invención se describe el uso de alginato en solución a una concentración entre 0,25 gIL Y 10 gIL que permite conservar el esperma sin necesidad de llevar a cabo el proceso de encapsulación. En el diluyente con alginato de la presente invención, no se produce o se reduce el contacto entre las células espermáticas por lo que en parte o en su totalidad éstas se mantienen en suspensión favoreciendo el contacto con el diluyente y con ello su conservación, viabilidad y capacidad fecundante, todo ello sin someterlas a las reacciones químicas requerídas para la encapsulación.
Por esperma, o semen, se entiende, en los términos de la presente invención, al conjunto de espermatozoides y sustancias fluidas que se producen en el aparato genital masculino de los animales y de la especie humana. Por diluyente de semen convencional se entiende, en los términos de esta invención, la solución acuosa que permite aumentar el volumen seminal (mayor número de dosis seminales por eyaculado) y preservar las características funcionales de las células espermáticas y mantener el nivel de fertilidad adecuado. Los espermatozoides se encuentran en el plasma seminal que suministra los nutrientes necesarios para mantener una elevada actividad metabólica necesaria para el proceso de transporte espermático a través del tracto genital femenino. Para llevar a cabo su función, el diluyente debe aportar los nutrientes necesarios para el mantenimiento metabólico de la célula espermática, controlar el pH del medio, la presión osmótica y la inhibición del desarrollo microbiano. Por ello, la mayoría de diluyentes comprenden azúcares, como la glucosa, galactosa, fructosa, ribosa o trehalosa; sales de NaCI o KCI; bicarbonato, TRIS y/o HEPES. Adicionalmente, pueden contener agentes quelantes, como el EDTA, antibióticos y/o BSA.
Así, los diluyentes convencionales para semen de verraco y conejo son mezclas de productos químicos encaminadas a producir un ambiente en el que los espermatozoides puedan encontrar la energía y las condiciones de presión osmótica, fuerza iónica y pH que les permita mantener su capacidad fecundante durante un determinado lapso de tiempo.
En la siguiente tabla (Tabla 1) se muestra la composición publicada de varios diluyentes clásicos para semen porcino (Gadea J., 2003).
Tabla 1.-Composición (en gIL) de varios diluyentes clásicos para semen porcino para un litro de agua destilada.
IVT
Kiev BTS Zarles co MRA ZORP VA Readin 9 Modena Androhep
Glucosa
3 60 37 11.5 + 11.5 11 .5 25' 26
C itrato sódico
24.3 3.7 6.0 11.7 + 11.65 11.65 6.90 8.0
EDTA
3.7 1.25 2.3 + 2.35 2.35 2.25 2.4
Bicarbonato sódico
2.4 1.2 1.25 1.25 + 1.75 1.75 1.00 1.2
Cloruro potásico
0.4 0.75 - 0.75
Acelilcisleina
0.05
HEPES
9.0
BSA
5.0 + 3.00 2.5
TRIS
6.5 - 5.5 5.5 5.65
Acido Cítrico
4.1 - 4.1 4.1 2.00
C isleina
0.1 + 0.7 0.7 0.05
Treha losa
1
PVA
1 1
Acetato potásico
+
MOPS
+
Presión osmótica (mOsm)
290 380 330 240 290 275 300 282 309
pH
7.2 7.2 6.9 6.9 6.8
-a: glucosa monohidrato
Asimismo, en la siguiente tabla (Tabla 2) se muestra la composición publicada del diluyente DLBR para semen de conejo (ES2190723).
Tabla 2.-Composición del diluyente DLBR para semen de conejo por litro de agua destilada.
Compuesto
Concentración
Tris(hidroximetil)amino metano
0,250 M
Acido Cítrico
0.0828 M
Glucosa
0,050 M
EOTA
0,100 mM
Dihidroestretomicina sulfato
1,250 mg
Penicilina G sódica
300.000 UI
Penicilina G procaina
700.000 UI
En el mercado existen distintos diluyentes de semen convencionales, entre ellos,
5 Import-Vet S.A. comercializa dos tipos de diluyente para semen de verraco (ND-4 y NO5) y uno para semen de conejo (NO-e7). El ND-4 de porcino es un diluyente apto para el mantenimiento del esperma de 3 a 4 días, el ND-5 de porcino lo es para el mantenimiento de 6 a 7 días y el NO-e? para cunicultura lo es para 1 a 2 días.
La siguiente tabla (Tabla 3) muestra la composición cualitativa de los tres diluyentes
10 comercializados por Import-Vet S.A. (ND-4, NO-S, NO-C?), donde el simbolo (+) indica la presencia en el diluyente del compuesto en cuestión (Gil Pascual J., resultados no publicados).
Tabla 3.-Composición cualitativa de los diluyentes NO-4, NO-5 y NO-C7.
N0-4
NO-5 NO-Cl
Glucosa
+ + +
Citrato sódico
+ + +
EOTA
+ +
Bicarbonato sódico
+ + +
Cloruro potásico
+ + +
Acetilcisteina
+ +
MOPS
+ +
Presión Osmótica (mOsm)
300 293 276
pH
7,20 6.90 6.40
Cuando se utilizan diluyentes convencionales (sin alginato), los espermatozoides, con el paso del tiempo, se depositan en el fondo del recipiente utilizado para contener la dosis seminal, ya sea una botella, un tubo lermosellado o un blísler. La compactación generada reduce el contacto de los espermatozoides con el diluyente, dificulta el transporte de nutrientes al interior de la célula, altera el metabolismo y favorece la formación de aglutinaciones lo que en su conjunto altera el estado de la membrana espermática y reduce el mantenimiento del poder fecundanle de los espermatozoides a lo largo del tiempo.
Cualquier diluyente convencional, entre otros los fabricados por Import-Vet S.A. (ND-4, NO-5, ND-e7), al que se ha añadido alginato en una concentración entre 0,25 y 10 gIL, objeto de la presente invención, mejora la conservación del esperma y de su poder fecundante. El diluyente de la presente invención tiene una mayor densidad, la cual varía según la concentracíón de algínato (mayor densídad cuanto más concentracíón de algínato). De esta manera, reduce o impide la decantacíón de los espermatozoides que al mantenerse separados los unos de los otros mantienen el contacto con el diluyente, permitiendo el intercambio metabólico con el medio y reduciendo o impidiendo la formación de aglutinaciones a través del tiempo. Así, las características de la membrana espermática se mantienen durante más tiempo mejorando la capacidad de conservación y de fecundación del esperma. Entre otras características mejoradas por el uso del diluyente de la presente invención se encuentran la motilidad (Figura 2) y la agregación de los espermatozoides (Figuras 3).
Por último, diversos estudios demuestran que la segregación normal de sexos tanto en monta natural como en inseminación artificial está próxima al 50/50 (Soede et al., 2000). Sin embargo, utilizando el diluyente objeto de la presente invención el porcentaje en la progenie de un sexo u otro se puede aumentar, según se deseen más machos o más hembras. Los espermatozoides machos, portadores de cromosomas Y, Y los espermatozoides hembra, portadores de cromosomas X, presentan ciertas características diferentes, como por ejemplo en cuanto a su peso y capacidad de movimiento (Tabla 4).
Tabla 4.-Diferentes parámetros entre espermatozoides X e Y.
Parámetro
Diferencia
DNA
X mayor que Y
Tamaño
X mayor que Y
Molilidad
Y más rápido que X
F-Body
He1erocromatina en Y
Carga superficial
X migra hacía el cátodo
El diluyente de la presente invención permite que, con el paso del tiempo, los espermatozoides se segreguen parcialmente en diferentes estratos. Debido a las características diferenciales de los espermatozoides hembra y macho, más espermatozoides hembras quedan en el estrato superior y más espermatozoides
5 machos en el estrato inferior. Seleccionando uno u otro estrato se favorece que el porcentaje de progenie sea mayor para un sexo u otro. Se obtienen más crías hembras con los espermatozoides tomados del estrato superior y más crías machos con los espermatozoides del estrato inferior.
10 OBJETO DE LA INVENCIÓN
Un objeto de la presente invención consiste en un diluyente de semen que comprende alginato. Asimismo, es objeto de la presente invención la aplicación de dicha solución para la mejor conservación del esperma a lo largo del tiempo y para el aumento del porcentaje de la progenie con un sexo determinado.
BREVE DESCRIPCIÓN DE LAS FIGURAS
Figura 1: Se muestran varias botellas con una misma cantidad de semen diluido en distintos diluyentes: una con diluyente convencional (N) (en este caso el diluyente ND-5 de Import-Vet S.A.) y cuatro en las que al diluyente ND-5 de Import-Vet se le ha añadido 20 diferentes concentraciones de alginato, denominadas de aquí en adelante: SO, PO, XPD y MPD. SO hace referencia a Semi Denso y contiene entre 5.00 y 10,00 gIL de alginato; PD a Poco Denso y contiene entre 2,5 y 4,9 giL de alginato; MPD a Muy Poco Denso y contiene entre 1,25 Y 2,4 gIL de alginato; y XPD: Extra Poco Denso y contiene entre 0,75 y 1,24 giL de alginato. Asimismo, hay una botella con diluyente convencional 25 y sin semen (SD sin S). A mayor concentración de alginato se produce una menor decantación. En SD y PD se observa como la inmensa mayoría de los espermatozoides, a pesar de haber transcurrido un mes desde la fabricación de las dosis, se mantienen en flotación. En XPD y MPD aunque los espermatozoides han decantado, el pellet formado es mucho menos denso, es más ancho, que en la dosis
30 fabricada con el diluyente convencional (N).
Figura 2.-Representación gráfica del porcentaje de motilidad (%) del esperma frente al tiempo (días). El esperma se encuentra diluido en diluyente convencional (NO-5), diluyente poco denso (PO, diluyente ND-5 con alginato en una concentración entre 2,5 y 4,9 gIL) Y diluyente extra poco denso (XPD, diluyente ND-5 con alginato en una concentración entre 0,75 y 1,24 gIL). Se observa que la adición de alginato mantiene la motilidad de los espermatozoides más elevada a lo largo del tiempo que el diluyente convencional.
Figura 3.-Representación gráfica del porcentaje de aglutinación (%) del esperma frente al tiempo (días). El esperma está diluido en diluyente convencional (NO-5), diluyente poco denso (PO) y diluyente extra poco denso (XPO). Se observa que la adición de alginato retarda la aglutinación de los espermatozoides hasta el sexto día de conservación, a diferencia del diluyente convencional, donde se aprecia un aumento de la aglutinación desde el segundo día de almacenamiento. Por tanto, la aglutinación se ve reducida por la adición de alginato frente a la aglutinación observada con el diluyente convencional.
Figura 4.-Representación gráfica del porcentaje de acrosomas normales (%) en los espermatozoides frente al tiempo (dias), estando el esperma diluido en diluyente convencional (NO-5) y en diluyente poco denso (PO). Se observa que la adición de la composición objeto de esta invención mantiene el porcentaje de acrosomas normales en los espermatozoides más elevado a lo largo del tiempo.
Figura 5.-Dibujo que representa el enriquecimiento de espermatozoides hembra (H) en el estrato superior y de espermatozoide macho (M) en el estrato inferior conseguido tras dejar en reposo durante entre 10 y 20 horas el semen diluido en diluyente con alginato, en bolsas con forma de tubo.
DESCRIPCiÓN DETALLADA DE LA INVENCiÓN El objeto técnico de la presente invención es un diluyente de semen caracterizado por que comprende alginato en una concentración de 0,25 a 10 giL, Y donde los espermatozoides se encuentran en suspensión. En el contexto de la presente invención, se entiende que los espermatozoides se encuentran en suspensión cuando se mantienen dentro de un fluido, en este caso el diluyente con alginato de la invención, sin precipitarse al fondo.
En una realización particular de la presente invención, el diluyente comprende alginato de sodio, de bario o de calcio. En una realización más particular, el diluyente comprende alginato sódico.
La concentración de alginato en el diluyente de la invención varia entre 0,25 y 10 gIL de diluyente. En una realización particular, el diluyente comprende entre 5,00 y 10,00 giL de alginato resultando en un diluyente Semi-Denso (SO). En otra realización particular, el diluyente comprende entre 2,5 y 4,9 gIL de alginato resultando en un diluyente PocoDenso (PO). En otra realización particular, el diluyente comprende entre 1,25 Y 2,40 gIL de alginato resultando en un diluyente Muy Poco Denso (MPD). En otra realización particular, el diluyente comprende entre 0,75 y 1,24 gIL de alginato resultando en un diluyente Extra Poco Denso (XPD).
En una realización particular de la presente invención el alginato se añade a un diluyente de semen convencional, como puede ser MR-A (Tabla 1), Acromax (fabricado por GVP-Gestión Veterinaria Porcina), Duragen (fabricado por Magapor), Diluyente Esperma Porcino SP Veterinaria (fabricado por SP Veterinaria), Safe-cell (fabricado por IMV-Technologies), Androhep (Tabla 1), ND-4, ND-5 Y ND-e7 (Tabla 3). En una realización preferida, el alginato se añade a NO-4, NO-5 o NO-e7,
Asimismo, es objeto de la presente invención el uso del diluyente de la invención para reducir la aglutinación y favorecer la conservación de esperma, así como para mejorar los resultados reproductivos en la inseminación artificial de ganado y de manera más particular de cerdos y conejos. En otra realización particular, es objeto de la presente invención el uso del diluyente de la invención para la segregación de espermatozoides de distinto sexo (Y o X), así como para aumentar el porcentaje de progenie con un determinado sexo.
Por último, también es objeto de la presente invención un método para aumentar el porcentaje de espermatozoides hembra o macho caracterizado por que comprende las siguientes etapas:
a) obtener semen del animal macho,
b) diluir dicho semen en el diluyente objeto de la invención hasta alcanzar un
ratio de dilución de entre 1/2 y 1/10 eyaculado/diluyente de la invención,
c) llenar con dicho semen diluido bolsas de plástico con forma de tubo de entre
35 a 45 mm de ancho y 350 Y 450 mm de largo, d) dejar la bolsa en reposo en posición vertical durante 10 y 20 horas, a entre
19 y 25°C, para que se separen los espermatozoides en distintos estratos,
e) pinzar los tubos separando los distintos estratos,
f) obtener espermatozoides del estrato superior para aumentar el número de
crias hembra y del estrato inferior para aumentar el número de crías macho.
Por último, es objeto de la presente invención un método de aumento del porcentaje de un sexo en la progenie caracterizado por que comprende las siguientes etapas:
i) llevar a cabo el método de aumento del porcentaje de espermatozoides machos o hembras anteriormente descrito,
ii) inseminación artificial con el semen obtenido en la etapa i).
A continuación se describen una serie de ejemplos que ilustran la presente invención, pero no limitan su alcance en modo alguno.
EJEMPLO 1.-Conservación y mantenimiento del potencial fecundante de los espermatozoides.
Se llevaron a cabo estudios de motilidad, agregación y acrosomas del esperma diluido en distintos diluyentes (sin y con alginato sódico en distintas concentraciones), como sigue:
Motilidad: Dos operarios diferentes en dos laboratorios diferentes recibieron las mismas muestras de semen. Sobre una placa calentable a 39 oC se disponen portaobjetos sobre los que se deposita una gota de semen diluido en los distintos diluyentes (sin y con alginato), pasados unos segundos la muestra se cubre con un cubreobjetos también atemperado y se observa al microscopio a 200 y 400 aumentos. Subjetivamente se calcula el porcentaje de espermatozoides con movimiento.
Aglutinación: Siguiendo el mismo procedimiento que para el estudio de la motilidad, se valora el grado de aglutinación de O a 3.
Acrosomas: Se mezcla 1 mi de semen diluido en cada uno de los distintos diluyentes con 1 mi de una solución salina formolada que mata y fija los espermatozoides. En frio y sobre un portaobjetos se deposita una pequeña gota de esta mezcla, se cubre con un cubreobjetos y usando aceite de inmersión se observa a 1500 aumentos en un microscopio de contraste de fases el porcentaje de acrosomas normales.
Los resultados obtenidos aparecen representados en las figuras 2, 3 Y 4, en las que se aprecia como la motilidad de los espermatozoides se mantiene más elevada a lo largo del tiempo en los diluyentes con alginato de la presente invención. Igualmente, se observa cómo prácticamente no aumenta la aglutinación hasta el día sexto de
5 conservación en los diluyentes densos cuando en el diluyente convencional lo hace a partir del segundo día. Por último, se aprecia que el porcentaje de acrosomas normales se mantiene más elevado en los espermatozoides diluidos en diluyente con alginato de la presente invención que en aquellos con diluyente convencional.
Con el esperma así conservado se realizaron inseminaciones artificiales (Manual de
10 inseminación Artificial, Kubu5 S.A.) y se analizaron los resultados en base a la progenie obtenida. Se cuantificaron los Nacidos Totales (NT), Nacidos Vivos (NV), Nacidos Muertos (NM) y el Diagnóstico de gestación positivo mediante ecografía (Eco+). La "Media" hace referencia a la media por camada, es decir, número total de nacidos vivos/número de partos (Tabla 5).
Tabla 5.-Fertilidad y prolificidad tras inseminación artificial (lA).
SEMANA cubrición
NOS XPO
N° IA
Eco + % N° lA Eco + %
32
8 5 62,50 12 10 83,33
33
8 8 100,00 11 10 90,91
34
9 9 100,00 8 8 100,00
35
8 7 87,50 10 10 100,00
36
5 3 60,00 7 7 100,00
37
9 6 66,67 12 11 91,67
Total
47 38 80,85 60 56 93,33
SEMANA cubrición
NOS XPO
Partos
N.V N.M. N.T. Partos N.V. N.M . N.T.
32
4 37 4 41 10 112 10 122
33
8 86 6 92 9 101 8 109
34
9 97 10 107 8 88 10 98
35
7 82 8 90 9 100 11 111
36
3 32 4 36 6 64 7 71
37
4 48 3 51 8 93 6 99
Total
35 382 35 417 50 558 52 610
Media
10,91 1,00 11,91 11,16 1,04 12,20
En esta tabla se puede observar que la fertilidad y la prolificidad son mayores cuando se utiliza un diluyente denso, en este caso extra-poco denso, es decir, con una concentración de alginato sódico entre 0,75 y 1,24 gIL (XPD, Tabla 5).
Por su lado, en cunicultura los resultados también demuestran el buen comportamiento reproductivo obtenido con dosis en las que se ha utilizado el diluyente semi-denso (NOe7 con alginato en una concentración entre 5,00 y 10,00 gIL) frente al diluyente convencional (NO-el) (Tabla 6).
Tabla 6.-Prolificidad tras inseminación artificial de conejas.
Diluyente Semi-Denso
Diluyente Convencional
lA
Positivas % Paren % lA Positivas % Paren %
Conejas
21 18 85,71 17 80,95 40 33 82,50 32 80,00
Conejas
20 20 100 19 95,00 44 38 86,36 38 86,36
Total
41 38 92,68 36 87,80 84 71 84,52 70 83,33
En las conejas testigo inseminadas con diluyente convencional (No-C7 , sin alginato) la
fertilidad a la confirmación de la gestación por palpación (Positivas) es
considerablemente inferior 84,52 % frente a 92,68 % que se obtienen con el diluyente
15 Semi-Denso. Asimismo, la tasa de partos con el diluyente convencional también es menor 83,33% frente a 87,80 % de las conejas inseminadas con el diluyente SemiDenso (con alginalo sódico entre 5,00 y 10,00 gi L).
EJEMPLO 2.-Aumento del porcentaje de la progenie con un sexo determinado
20 Cuando se suspende semen de verraco en el diluyente Semi-Denso (SO) objeto de la presente invención, con el paso del tiempo los espermatozoides se segregan parcialmente en diferentes estratos quedando más espermatozoides hembras en el estrato superior y más espermatozoides machos en el estrato inferior (Figura 5).
El semen se recoge sobre una pequeña cantidad de diluyente denso, se contrasta para
25 determinar su calidad y conocer cuantas dosis se pueden realizar, se añade más diluyente denso hasta conseguir un nivel suficiente de dilución que garantice la conservación del semen durante al menos 24 horas (dilución entre 1/2 Y 1110 eyaculado/diluyente de la invención. Se llenan con dicho semen diluido bolsas de
plástico con forma de tubo de entre 35 a 45 mm de ancho y de entre 350 a 450 mm de largo (bolsa de decantación). Se dejan las bolsas en reposos, en posición vertical de 10 a 20 horas, a una temperatura de entre 19 y 25 oC, para que se separen los espermatozoides hembra y macho en distintos estratos (fracciones). Tras la separación
5 clara de las fracciones, se pinzan los tubos para separar su contenido en una fracción enriquecida en espermatozoides hembra (estrato superior), otra mixto (estrato medio) y otra enriquecido en espermatozoides macho (estrato inferior). Cada fracción se pesa y se rediluyen con diluyente convencional, hasta alcanzar el volumen necesario para poder fabricar el total de las dosis calculadas durante la contrastaciÓn.
10 Una vez en la granja las dosis se conservan a 15 oC, hasta un máximo de 6 días. Las cerdas se inseminan 2 ó 3 veces cada 12 ó 24 horas y segun la longitud del celo, con el diluyente obtenido de los distintos estratos superior, medio o, inferior. Resultados representativos se muestran en la Tabla 7.
15 Tabla 7.-Aumento del porcentaje de un sexo determinado en la progenie.
Fracción IA Paren MACHOS IHEMBRAS I Total IMedia N.T I
Diferencia
Superior 14 12 64 96 160 13,33
70 85,7 40,0 60,0 20,0
Media 5 4 23 31 54 13,50
70 80,0 42,6 57,4 14,8
Inferior 14 14 100 90 190 13,57
70 lOO 52,6 47,4 -5,3
Todas 33 30 187 217 404 13,47
70 90,9 46,3 53,7 7,4
Los resultados globales, al consolidar los tres grupos, muestran que la media de las 30 cerdas que paren es de 46,3 % de machos y 53,7 % de hembras por lo que entre ambos grupos solo hay un 7,4 % de diferencia entre la cantidad de machos y de hembras.
Sin embargo en el grupo inseminado con la fracción superior, el porcentaje de machos es del 40 % Y de hembras del 60 % por lo que la diferencia entre sexos aumenta hasta
el 20 %. También se observa una reducción progresiva del porcentaje de hembras de la fracción superior a la media e inferior con un 60 %, 57,4 % Y 47,4%, respectivamente.
Por tanto, la segregación del número de espermatozoides machos y hembras en las diferentes fracciones de la bolsa de decantación es progresiva y real y por tanto, la 5 utilización del alginato en los diluyentes convencionales permite favorecer la obtención de machos o hembras según la fracción tomada para la inseminación.
BIBLIOGRAFíA EP0922451 (16/06/1999)
10 ES2190723 (01/08/2003) Gadea J., 200 3. Los diluyentes de inseminación artificial porcina. Revisión. Spanish Joumal ofAgricultural Research.1 (2): 17-27. Herrler A. , Eisner S, Bach V, Weissenborn U, Beier HM., 2006. Cryopreservation of spermatozoa in alginic acid capsules. Fertil. Steril. 85( 1 ):208-13.
15 Kubu5 S.A. (Depósito legal: M 8929-1999), Manual de inseminación artificial. Paulenz H., Kommisrud E., Hofmo P.O., 2000. Effect of Long-Term storage at different temperatures on quality of liquid boar semen. Reprod. Dom. Anim. 35, 83-85. Soede NM, Nissen AK, Kemp B. Timing of insemination relative lo ovulation in pigs: effecls on sex ratio of offspring. Theriogenology, 2000 Mar 1 ;53(4):1003-11.

Claims (13)

  1. REIVINDICACIONES
    1.-Diluyente de semen no humano caracterizado por que comprende alginato en una concentración de 0,25 a 10 gIL, Y donde los espermatozoides se encuentran en suspensión.
  2. 2.-Diluyente según la reivindicación anterior caracterizada por que el alginato es de bario, de calcio o de sodio.
  3. 3.-Diluyente según la reivindicación anterior caracterizada por que el alginato es alginato sódico.
  4. 4.-Diluyente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3 caracterizada por que comprende entre 5 y 10 giL de alginato.
  5. 5.-Diluyente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3 caracterizada por que comprende entre 2,5 y 4,90 giL de alginato.
  6. 6.-Diluyente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3 caracterizada por que comprende entre 1,25 Y 2,40 gIL de alginato.
  7. 7.-Diluyente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3 caracterizada por que comprende entre 0,75 y 1 ,24 gIL de alginato.
  8. 8.-Uso del diluyente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7 para reducir la aglutinación y favorecer la conservación del esperma.
  9. 9.-Uso del diluyente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7 para la preparación de una composición veterinaria para la inseminación artificial de ganado.
  10. 10.· Uso según la reivindicación 9 para la preparación de una composición veterinaria para inseminación artificial de cerdos y conejos.
  11. 11.-Uso del diluyente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7 para la segregación de espermatozoides de distinto sexo.
  12. 12.-Uso del diluyente según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7 para la preparación de una composición veterinaria para aumentar el porcentaje de progenie con un determinado sexo.
  13. 13.-Procedimiento para aumentar el porcentaje de espermatozoides hembra o macho caracterizado por que comprende las siguientes etapas:
    a) obtener semen de un animal no humano macho, b) dilución del eyaculado a entre 1/2 y l /la eyaculado/diluyente de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7,
    e)
    llenar con dicho semen diluido bolsas de plástico con forma de tubo de 35 a 45
    mm de ancho y de 350 a 450 mm de largo,
    d)
    dejar la bolsa en reposo , en posición vertical, de 10 a 20 horas, a una
    temperatura
    entre 19 y 25°C, para que se separen los espermatozoides en
    5
    distintos estratos,
    e)
    pinzar las bolsas separando los distintos estratos superior, medio e inferior,
    f)
    obtener espermatozoides del estrato superior para aumentar el número de crías
    hembra y del estrato inferior para aumentar el número de crías macho .
ES201130842A 2011-05-24 2011-05-24 Diluyente para suspension seminal Expired - Fee Related ES2399933B1 (es)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ES201130842A ES2399933B1 (es) 2011-05-24 2011-05-24 Diluyente para suspension seminal
US13/480,280 US20120301868A1 (en) 2011-05-24 2012-05-24 Extender for a semen suspension
EP12382199A EP2526768A1 (en) 2011-05-24 2012-05-24 Extender for a semen suspension

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ES201130842A ES2399933B1 (es) 2011-05-24 2011-05-24 Diluyente para suspension seminal

Publications (3)

Publication Number Publication Date
ES2399933A2 ES2399933A2 (es) 2013-04-04
ES2399933R1 ES2399933R1 (es) 2013-05-09
ES2399933B1 true ES2399933B1 (es) 2014-03-26

Family

ID=46207948

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES201130842A Expired - Fee Related ES2399933B1 (es) 2011-05-24 2011-05-24 Diluyente para suspension seminal

Country Status (3)

Country Link
US (1) US20120301868A1 (es)
EP (1) EP2526768A1 (es)
ES (1) ES2399933B1 (es)

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US9433195B2 (en) 2012-06-06 2016-09-06 Inguran, Llc Methods for increasing genetic progress in a line or breed of swine using sex-selected sperm cells
US9888990B2 (en) 2012-06-06 2018-02-13 Inguran, Llc Methods for use of sex sorted semen to improve genetic management in swine
FR3021522A1 (fr) * 2014-05-28 2015-12-04 Imv Technologies Paillette pour la conservation d'une dose predeterminee de substance a base liquide, notamment de la semence animale diluee ; milieu de dilution pour donner une telle substance ; et systeme les comportant
RU2637774C2 (ru) * 2016-05-04 2017-12-07 Федеральный научный центр "Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт птицеводства" Российской академии наук (ФНЦ "ВНИТИП" РАН) Среда для разбавления спермы сельскохозяйственной птицы
DK3547834T3 (da) * 2016-12-05 2021-11-08 Spermvital As Sammensætning med langvarig frigivelse

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2664156B1 (fr) * 1990-07-06 1992-09-11 Siam 2000 Dispositif pour le traitement et le conditionnement de semence animale destinee a l'insemination artificielle.
IT1296585B1 (it) 1997-11-28 1999-07-14 Uni Di Pavia Microcapsule contenenti materiale seminale per l'inseminazione strumentale nella specie suina
ES2190723B1 (es) 2001-01-30 2004-10-16 Universidad Politecnica De Valencia Diluyente de semen de conejo y metodo de inseminacion artificial basado en el mismo.
KR101396776B1 (ko) * 2006-07-04 2014-05-22 스펌바이탈 에이에스 정자의 보존 및 조절된 전달/방출

Also Published As

Publication number Publication date
US20120301868A1 (en) 2012-11-29
ES2399933A2 (es) 2013-04-04
ES2399933R1 (es) 2013-05-09
EP2526768A1 (en) 2012-11-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Graham Cryopreservation of stallion spermatozoa
ES2237473T3 (es) Procedimiento de crioconservacion de celulas de esperma seleccionadas.
Walters et al. The history of sperm cryopreservation
Mahadevan et al. Effect of cryoprotective media and dilution methods on the preservation of human spermatozoa
Gutiérrez-Pérez et al. Boar spermatozoa cryopreservation in low glycerol/trehalose enriched freezing media improves cellular integrity
CN101496747B (zh) 以少量精细胞对哺乳动物进行有性别选择的授精
WEIDEL et al. Cryosurvival of human spermatozoa frozen in eight different buffer systems
ES2399933B1 (es) Diluyente para suspension seminal
Prieto et al. Sperm cryopreservation in wild animals
NZ532939A (en) A method of producing multiple non-human mammalian embryos having predetermined sex
Wright et al. Use of sugars in cryopreserving human oocytes
CN101418282A (zh) 猪袋装冷冻精液保存液及其保存方法
Eilts Theoretical aspects of canine semen cryopreservation
Naik et al. Conventional slow freezing, vitrification and open pulled straw (OPS) vitrification of rabbit embryos
Franklin et al. Red wolf (Canis rufus) sperm quality and quantity is affected by semen collection method, extender components, and post-thaw holding temperature
Setyawan et al. Maintaining canine sperm function and osmolyte content with multistep freezing protocol and different cryoprotective agents
Thilak Pon Jawahar et al. Cryopreservation of fish gametes: An overview
Bratton et al. Preliminary fertility results with frozen bovine spermatozoa
Sukirman et al. The influence of breed and type of extender on the quality of bull semen
US10681907B2 (en) Use of tree sap to preserve sperm cell lines
CN106818709A (zh) 牛冷冻精液稀释液制备方法
Marshall Considerations for cryopreservation of semen
Zhang et al. Glycine betaine improves survival of fresh bovine spermatozoa
Biggers Evaporative drying of mouse spermatozoa
Widjiati et al. Comparison of Morula and Blastula Embryo Vitrification by Using Cryoprotectant Ethylene Glycol, Propanediol, DMSO and Insulin Transferrin Selenium

Legal Events

Date Code Title Description
PC2A Transfer of patent

Owner name: JAVIER GIL PASCUAL

Effective date: 20120626

FG2A Definitive protection

Ref document number: 2399933

Country of ref document: ES

Kind code of ref document: B1

Effective date: 20140326

PC2A Transfer of patent

Owner name: TECNOVET, S.L.

Effective date: 20150121

FD2A Announcement of lapse in spain

Effective date: 20210915