ES2324320T3 - Variantes de herregulina. - Google Patents

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Abstract

Variante de herregulina-a1 humana, teniendo dicha variante una secuencia de aminoácidos que no se encuentra en la naturaleza y la capacidad de unirse a un receptor ErbB con al menos un aumento de 5 veces en la afinidad por el receptor ErbB-3 con respecto a la herregulina de la que se obtiene la variante, donde dicha variante de herregulina comprende un conjunto de sustituciones de aminoácidos seleccionadas entre A183G, E184W, K185D, E186R, K187E, T188G, M226I; A183D, E184K, K185S, E186R, K187E, T138G, M226I; F197Y, M198K, K200R, D201I, M226I; P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M; P205Y, S206R, R207Y, Y208R, L209M, M226I; P205T, S206H, R207Y, Y208R, L209M; P205T, S206K, R207Y, Y208R, L209G; N223W, M226I; N223H, M226I; S177W, H178E, K181P, A183G, E184W, K185D, E186R, K187E, T188G, M226I; P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I; A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T; A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M; A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M; A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, M226I; F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M; F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I; F197Y, M198R, D201T, M226I; A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, M226I; A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I; A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I; F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H, M226I; y A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H, M226I; donde los restos se numeran desde el extremo N de herregulina-beta1 humana nativa de 645 aminoácidos.

Description

Variantes de herregulina.
Antecedentes de la invención Campo de la invención
La presente invención se refiere a variantes de herregulina, moléculas de ácido nucleico que codifican dichas variantes y vectores, células huésped, composiciones farmacéuticas y métodos relacionados.
En particular, la presente invención se refiere a variantes de sustitución de aminoácidos de herregulina-\beta1 humana que tienen una afinidad aumentada por el receptor ErbB-3.
Descripción de la técnica relacionada
La transducción de señales que regulan el crecimiento y la diferenciación celular está regulada en parte por la fosforilación de diversas proteínas celulares. Las proteínas tirosina quinasas son enzimas que catalizan este proceso. Se cree que las proteínas tirosina quinasas receptoras dirigen el crecimiento celular mediante fosforilación de tirosina estimulada por ligando de proteínas intracelulares. Las proteínas tirosina quinasas receptoras del factor de crecimiento de la subfamilia de la clase I incluyen el receptor del factor de crecimiento epidérmico (EGFR) de 170 kilodalton (kDa) codificado por el gen erbB1. erbB1 ha estado implicado en las causas del cáncer humano. En particular, una mayor expresión de este gen se ha observado en los carcinomas más agresivos de mama, vejiga, pulmón y estómago.
El segundo miembro de la subfamilia de clase I, p185^{neu} (también llamado el receptor ErbB-2 o p185^{HER2}), se identificó originalmente como el producto del gen transformante de neuroblastomas de ratas tratadas químicamente. El gen neu (erbB2 o HBR2) codifica una proteína tirosina quinasa receptora de 185 kDa.
La amplificación y/o sobreexpresión del gen erbB2 humano se correlaciona con un mal pronóstico en cánceres de mama y de ovario. Slamon et al., Science 235: 177-82 (1987); Slamon et al., Science 244: 707-12 (1989). La sobreexpresión de erbB2 se ha correlacionado con otros carcinomas incluyendo carcinomas de estómago, endometrio, glándula salival, pulmón, riñón, colon y vejiga. Por consiguiente, en la Patente de Estados Unidos Nº 4.968.603, Slamon et al., describen y reivindican diversos ensayos de diagnóstico para determinar la amplificación o expresión del gen erbB2 en células tumorales. Slamon et al., descubrieron que la presencia de múltiples copias del oncogén erbB2 en células tumorales indica que es más probable que la enfermedad se extienda más allá del punto del tumor primario, y que, por lo tanto, la enfermedad puede necesitar un tratamiento más agresivo del que, en caso contrario, podría estar indicado por otros factores de diagnóstico. Slamon et al., concluyen que el ensayo de amplificación del gen erbB2, junto con la determinación del estado del ganglio linfático, proporciona una utilidad de pronóstico enormemente mejorada.
Un gen adicional relacionado, llamado erbB3 (o HER3), que codifica el receptor ErbB-3 (p180^{HER3}) también se ha descrito. Véase la Patente de Estados Unidos Nº 5.183.884; Kraus et al., PNAS USA 86: 9193-97 (1989); Solicitud de Patente EP Nº 444.961A1; Kraus et al., PNAS USA 90: 2900-04 (1993). Kraus et al., (1989) descubrieron que niveles marcadamente elevados de ARNm de erbB3 estaban presentes en ciertas líneas celulares tumorales mamarias humanas, lo que indicaba que erbB3, al igual que erbB1 y erbB2, pueden jugar un papel en cánceres humanos. Además, Kraus et al. (1993) mostraron que la activación dependiente de EGF del dominio catalítico de ErbB-3 de un receptor quimérico EGFR/ErbB-3 dio como resultado una respuesta proliferativa en células NIH-3T3 transfectadas. Además, estos investigadores demostraron que algunas líneas celulares tumorales mamarias humanas muestran una significativa elevación de la fosforilación de tirosina del receptor ErbB-3 en estado estacionario, lo que implicaba además a este receptor en tumores humanos. El papel de erbB3 en el cáncer ha sido explorado por otros, y se ha descubierto que este gen se sobreexpresa en cánceres de mama (Lemoine et al., Br. J. Cancer 66: 1116-21 [1992]), gastrointestinales (Poller et al., J. Pathol. 168: 275-80 [1992]; Rajkumer et al., J. Pathol. 170: 271-78 [1993]; Sanidas et al., Int. J. Cancer 54: 935-40 [1993]), y pancreáticos (Lemoine et al., J. Pathol. 168: 269-73 [1992], y Friess et al., Clinical Cancer Research 1: 1413-20 [1995]).
La subfamilia de clase I de proteínas tirosina quinasas receptoras del factor de crecimiento se ha ampliado adicionalmente para incluir al receptor ErbB-4 (HER4), que es el producto del gen erbB4 (HER4). Véase la Solicitud de Patente EP Nº 599.274; Plowman et al., PNAS USA 90: 1746-50 (1993); y Plowman et al., Nature 366: 473-75 (1993). Plowman et al., descubrieron que la expresión aumentada de erbB4 se correlacionaba estrechamente con algunos carcinomas de origen epitelial, incluyendo adenocarcinomas de mama. Los métodos de diagnóstico para la detección de afecciones neoplásicas humanas (especialmente cánceres de mama) que evalúan la expresión de erbB4 se describen en la Solicitud de Patente EP Nº 599.274.
La búsqueda del activador del oncogén erbB2 condujo al descubrimiento de una familia de polipéptidos de herregulina. En seres humanos, los polipéptidos de herregulina caracterizados hasta ahora se obtienen del corte y empalme alterno de un único gen que fue mapeado en el brazo corto del cromosoma 8 por Lee y Wood, Genomics 16: 790-91 (1993).
Holmes et al., aislaron y clonaron una familia de activadores polipeptídicos para el receptor ErbB-2 que llamaron herregulina-\alpha (HRG-\alpha), herregulina-\beta1 (HRG-\beta1), herregulina-\beta2 (HRG-\beta2) y herregulina-\beta3 (HRG-\beta3). Véase Holmes et al., Science 256: 1205-10 (1992); WO 92/20798; y Patente de Estados Unidos Nº 5.367.060. Estos investigadores demostraron la capacidad de los polipéptidos de herregulina purificados para activar la fosforilación de tirosina del receptor ErbB-2 en células tumorales de mama MCF7. Además, la actividad mitogénica de los polipéptidos de herregulina sobre células SK-BR-3 (que expresan niveles altos del receptor ErbB-2) también se demostró.
Las herregulinas son grandes proteínas multi-dominio que se expresan habitualmente como "pro-herregulinas". Las pro-herregulinas han mostrado experimentar procesamiento proteolítico hasta una forma soluble madura (habitualmente de aproximadamente 44-45 kDa). Se ha mostrado que el procesamiento se produce de forma intracelular o en la superficie celular. Los dominios en la forma soluble incluyen (en orden desde el extremo N al C) un dominio de homología a inmunoglobulina (similar a Ig), una región espaciadora rica en puntos de glicosilación y un dominio similar a un dominio descubierto en EGF que es suficiente para la unión al y la activación del receptor ErbB. Véase Barbacci, et al., J. Biol. Chem. 270: 9585-89 (1995).
Los dominios similares a EGF de herregulina se caracterizan por similitudes estructurales sustanciales a (Jacobsen et al., Biochemistry 35: 3402-17 [1996]), y homología en la secuencia limitada con, los restos 1-48 de EGF (Holmes, et al., supra). Las similitudes funcionales entre los dominios similares a EGF de herregulina y EGF se han establecido mediante datos que muestran que los bloques de secuencia de EGF sustituidos en herregulina-\beta1 no alteran la unión a células que co-expresan ErbB-3 y ErbB-2. Barbacci et al., supra.
Aunque las herregulinas son sustancialmente idénticas en los primeros 213 restos de aminoácidos, se clasifican en dos tipos principales, \alpha y \beta, en base a dos dominios similares a EGF que difieren en sus partes C-terminales. Por ejemplo, el dominio similar a EGF de herregulina-\alpha difiere del de la isoforma \beta1 en nueve sustituciones cerca del extremo C. Se ha descrito que la isoforma \beta se une a receptores ErbB con aproximadamente una afinidad de ocho a 10 veces mayor que la isoforma \alpha. Wen et al., Mol. Cell. Biol. 14: 1909-19 (1994).
La estructura en solución del dominio EGF de herregulina-\alpha se ha determinado recientemente a alta resolución mediante RMN. Jacobsen et al., supra; Nagata et al., EMBO J. 13, 3517-3523 (1994). Las características principales de este dominio incluyen (1) un subdominio N-terminal que contiene una lámina \beta central de tres cadenas con una hélice intermitente y (2) un subdominio C-terminal más pequeño que contiene un corto tramo de lámina \beta. El dominio de EGF se estabiliza mediante tres puentes disulfuro, dos en el subdominio N-terminal y uno en el subdominio C-terminal. El emparejamiento de los seis restos cisteína correspondientes se conserva en los dominios similares a EGF de todas las herregulinas y de EGF.
El factor de diferenciación neu (NDF) de 44 kDa, que es el equivalente de rata de la HRG humana, fue descrito en primer lugar por Peles et al., Cell, 69: 205-16 (1992) y Wen et al., Cell, 69: 559-72 (1992). Al igual que los polipéptidos de herregulina humanos, NDF tiene un dominio similar a Ig seguido de un dominio similar a EGF y carece de un péptido señal N-terminal. Posteriormente, Wen et al., realizaron "clonación exhaustiva" para ampliar la familia de NDF. Wen et al., Mol. Cell. Biol., 14: 1909-19 (1994). Este trabajo mostró seis pro-NDF fibroblásticos distintos. Adoptando la nomenclatura de Holmes et al., los NDF se clasificaron como polipéptidos \alpha o \beta en base a las secuencias de los dominios similares a EGF. Las isoformas 1 a 4 se caracterizan en base a una región variable entre el dominio similar a EGF y el dominio transmembrana. Además, las isoformas a, b y c se definen en base a dominios citoplásmicos de longitud variable. Estos investigadores concluyen que diferentes isoformas de NDF se generan mediante corte y empalme alternativo y realizan distintas funciones específicas de tejido. Véase también EP 505 148; WO 93/22424; y WO 94/28133 (que describen NDF).
Falls et al., Cell 72: 801-815 (1993) describen otro miembro de la familia de herregulina que llaman "polipéptido con actividad inductora de receptores de acetilcolina (ARIA)". El polipéptido ARIA obtenido de pollo estimula la síntesis de receptores de acetilcolina musculares. Véase WO 94/08007. ARIA es una herregulina de tipo \beta y carece de toda la región espaciadora entre el dominio similar a Ig y el dominio similar a EGF de HRG-\alpha y HRG\beta1-\beta3.
Marchionni et al., Nature 362: 312-318 (1993) identificaron varias proteínas obtenidas de bóvidos que llaman "factores de crecimiento gliales (GGF)". Estos GGF comparten el dominio similar a Ig y el dominio similar a EGF con las otras proteínas de herregulina descritas anteriormente, pero además tienen un domino kringle amino-terminal. Los GGF generalmente no tienen la región espaciadora completa entre el dominio similar a Ig y el dominio similar a EGF. Solamente uno de los GGF, GGFII, tiene un péptido señal N-terminal. Véase también WO 92/18627; WO 94/00140; WO 94/04560; WO 94/26298; WO 95/32724 (que describen GGF y usos de los mismos).
Ho et al., describen otro miembro de la familia de herregulina llamado "factor derivado de neuronas sensoriales y motoras (SMDF)". Ho et al., J. Biol. Chem. 270: 14523-32 (1995). Esta proteína tiene un dominio similar a EGF característico de todos los demás polipéptidos de herregulina pero un dominio N-terminal distinto. Además, SMDF carece tanto del dominio similar a Ig como de la región espaciadora descubierta en otros polipéptidos de herregulina. Otra característica de SMDF es la presencia de dos tramos de aminoácidos hidrofóbicos cerca del extremo N.
Aunque los polipéptidos de herregulina se identificaron en primer lugar en base a su capacidad para activar el receptor ErbB-2 (véase Holmes et al., supra), se descubrió que algunas células de ovario que expresan neu (erbB2) y fibroblastos transfectados con neu no se unían ni reticulaban con NDF, ni experimentaban fosforilación de tirosina en respuesta a NDF. Peles et al., EMBO J. 12: 961-71 (1993). Este descubrimiento indicaba que era necesario otro componente celular para otorgar una completa sensibilidad a herregulina.
Carraway et al., posteriormente demostraron que ^{125}I-rHRG-\beta1 177-244 se unía a fibroblastos de NIH-3T3 transfectados de forma estable con erbB3 bovino pero no a células parentales no transfectadas. Estos investigadores también expresaron receptor ErbB-3 bovino en células de insecto y mostraron que HRG-\beta1 177-244 se unía a una preparación de receptor ErbB-3 solubilizado a partir de estas células. Los investigadores concluyeron que ErbB-3 es un receptor para herregulina y media la fosforilación de restos tirosina intrínsecos así como la fosforilación del receptor ErbB-2 en células que expresan ambos receptores. Carraway et al., J. Biol. Chem. 269: 14303-06 (1994). Sliwkowski et al., descubrieron que las células transfectadas con erbB3 en solitario muestran bajas afinidades por herregulina, mientras que las células transfectadas con erbB2 y erbB3 muestran afinidades más altas. Sliwkowski et al., J. Biol. Chem. 269: 14661-65 (1994).
Plowman y sus colegas han estudiado de forma similar la activación del receptor ErbB-4/ErbB-2. Ellos expresaron el receptor ErbB2 en solitario, el receptor ErbB4 en solitario, o los dos receptores juntos en linfocitos T humanos y demostraron que la herregulina es capaz de estimular la fosforilación de tirosina de ErbB-4, pero solamente podía estimular la fosforilación de ErbB-2 en células que expresan ambos receptores. Plowman et al., Nature 336: 473-75 (1993).
Estas observaciones son coherentes con el concepto de "conversación cruzada del receptor" (cross-talking) descrito anteriormente por Kokai et al., Cell 58: 287-92 (1989), Stern et al., EMBO J. 7: 995-1001 (1988), y King et al., 4: 13-18 (1989). Estos investigadores descubrieron que la unión de EGF al EGFR daba como resultado la activación del dominio quinasa de EGFR y la fosforilación cruzada del receptor ErbB-2. Se cree que esto es un resultado de la heterodimerización del receptor inducida por ligando y la fosforilación cruzada concomitante de los receptores en el heterodímero. Wada et al., Cell 61: 1339-47 (1990).
Por lo tanto, se cree que los receptores ErbB se activan mediante dimerización del receptor inducida por ligando. Específicamente, las herregulinas pueden unirse por separado a receptores ErbB-3 y ErbB-4, pero no al receptor ErbB-2. Sin embargo, ErbB-2 es necesario para la señalización y los heterodímeros que contienen ErbB-2 en combinación con ErbB-3 o ErbB-4 se unen a herregulinas con mayor afinidad que los homodímeros que contienen ErbB-3 o ErbB-4. Plowman et al., Nature 366: 473-75 (1993); Sliwkowski et al., J. Biol. Chem. 269: 14661-65 (1994).
Las actividades biológicas de herregulinas han sido investigadas por varios grupos. Por ejemplo, Holmes et al. (supra) descubrieron que la herregulina ejerce un efecto mitogénico sobre líneas celulares mamarias (tales como SK-BR-3 y MCF-7). Lewis et al., describieron que la herregulina-\beta1 estimulaba la proliferación y aumentaba la formación de colonias en agar blando en varias líneas celulares tumorales de mama y de ovario humanas. Lewis et al., Cancer Research 56: 1457-65 (1996). Estos investigadores también demostraron que ErbB-2 es un mediador crítico en la sensibilidad a herregulina.
Pinkas-Kramarski et al., descubrieron que NDF (herregulina de rata) se expresa en neuronas y células gliales en cerebro de rata embrionario y de adulto y cultivos primarios de células de cerebro de rata, y sugirieron que NDF puede actuar como un factor de supervivencia y maduración para astrocitos. Pinkas-Kramarski et al., PNAS USA 91: 9387-91 (1994). Danilenko et al., describieron que la interacción de NDF y el receptor ErbB-2 es importante para dirigir la migración y diferenciación epidérmica durante la cicatrización de heridas. Danilenko et al., Abstract 3101, FASEB 8(4-5): A535 (1994).
Meyer y Birchmeier analizaron la expresión de herregulina de ratón durante la embriogénesis y en el animal perinatal usando experimentos de hibridación in situ y protección de ARNasa. Meyer y Birchmeier, PNAS USA 91: 1064-68 (1994). Estos autores concluyen, en base a la expresión de esta molécula, que la herregulina juega un papel in vivo como factor mesenquimático y neuronal. Estos descubrimientos también indicaban que la herregulina tiene una función en el desarrollo de los epitelios.
Falls et al. (supra) descubrieron que el ARIA de pollo juega un papel en la diferenciación del miotubo, concretamente afectando a la síntesis y concentración de receptores de neurotransmisor en las células musculares postsinápticas de neuronas motoras. Corfas y Fischbach demostraron que ARIA también aumenta el número de canales de sodio en el músculo de pollo. Corfas y Fischbach, J. Neuroscience 13: 2118-25 (1993).
Se ha descrito que los GGF bovinos son mitogénicos para células de Schwann. Véase por ejemplo, Brockes et al., J. Biol. Chem. 255: 8374-77 (1980); Lemke y Brockes, J. Neurosci. 4: 75-83 (1984); Brockes et al., J. Neuroscience 4: 75-83 (1984); Brockes et al., Ann. Neurol. 20: 317-22 (1986); Brockes, Methods in Enzym. 147: 217-225 (1987); Marchionni et al., supra. Las células de Schwann proporcionan la formación de vainas de mielina alrededor de los axones de neuronas mielinizadas y, por lo tanto, juegan un papel importante en el desarrollo, función y regeneración de nervios periféricos. Las implicaciones de este papel desde un punto de vista terapéutico han sido señaladas por Levi et al., J. Neuroscience 14: 1309-19 (1994). Levi et al., describieron el potencial para la construcción de una prótesis celular que incluye células de Schwann que podían transplantarse en áreas de médula espinal dañada. Se han descrito métodos para cultivar células de Schwann ex vivo. Véase WO 94/00140; Li et al., J. Neuroscience 16: 2012-19
(1996).
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GGFII ha demostrado ser mitogénico para mioblastos humanos quiescentes subconfluentes, y la diferenciación de mioblastos humanos clonales en presencia continua de GGFII da como resultado un mayor número de miotubos después de seis días de diferenciación. Sklar et al., J. Cell Biochem., Abst. W462, 18D, 540 (1994); véase también WO 94/26298.
La relación entre la estructura y función de nuevas proteínas puede investigarse usando cualquiera de diversas técnicas de análisis mutacional disponibles. Los ejemplos de dichas técnicas incluyen mutagénesis por barrido de alanina y presentación en fagémidos. El barrido de alanina puede usarse para identificar restos activos (es decir, restos que tienen un efecto significativo sobre la función de la proteína) en una proteína o dominio proteico. Por ejemplo, Cunningham y Wells usaron barrido de alanina para identificar restos en la hormona del crecimiento humana que eran importantes para la unión a su receptor. Cunningham y Wells, Science 244: 1081-85 (1989). En el barrido de alanina, un gen que codifica la proteína o dominio a barrer se inserta en un vector de expresión, y se realiza la mutagénesis para generar una serie de vectores que codifican proteínas o dominios en los que restos secuenciales se convierten en alanina. Las proteínas o dominios codificados se expresan a partir de estos vectores, y las actividades de las variantes sustituidas por alanina se ensayan a continuación para identificar aquellas con actividad alterada. Una alteración de la actividad indica que el resto en la posición sustituida por alanina es un resto activo.
La presentación en fagémidos se desarrolló para permitir el cribado de gran número de polipéptidos variantes para una actividad de unión particular. Smith y Parmley demostraron que pueden "presentarse" eficazmente péptidos extraños en la superficie de fagos filamentosos insertando fragmentos génicos cortos en el gen III del fago fd. Smith, Science 228: 1315-17 (1985); Parmley y Smith, Gene 73: 305-18 (1985). La proteína de la envuelta del gen III está presente en aproximadamente cinco copias en un extremo de la partícula de fago. Los fagos modificados se denominaron "fagos de fusión" puesto que presentaban los péptidos extraños fusionados a la proteína de la envuelta del gen III. Puesto que cada partícula de fago de fusión presentaba aproximadamente cinco copias de la proteína de fusión, este modo de presentación en fagos se denominó "presentación polivalente".
Scott et al. y Cwirla et al., mostraron que las bibliotecas de presentación en fagos de fusión podían cribarse mediante selecciones secuenciales por afinidad conocidas como "panning" (o inmunopurificación) Scott et al., Science 249: 386-90 (1990); Cwirla et al., PNAS USA 87: 6378-82 (1990). Sin embargo, los primeros esfuerzos para seleccionar fagos de fusión de alta afinidad fracasaron, presumiblemente debido a la polivalencia de las partículas de fago. Este problema se resolvió con el desarrollo de un "sistema de presentación en fagos monovalente" en el que la proteína de fusión se expresa a un nivel bajo a partir de de un fagémido y un fago ayudante proporciona un gran exceso de proteína de la envuelta de tipo salvaje. Bass et al., Proteins 8: 309-14 (1990); Lowman et al., Biochem. 30: 10832-38 (1991). La presentación en fagos monovalente puede usarse para generar y cribar gran número de polipéptidos variantes para aislar aquellos que se unen con alta afinidad a una diana de interés.
Descripción resumida de la invención
La presente invención proporciona una variante de herregulina que tiene una secuencia de aminoácidos que no se encuentra en la naturaleza y la capacidad de unirse a un receptor ErbB, con al menos un aumento en 5 veces de la afinidad por el receptor ErbB-3 con respecto a la herregulina de la que se obtiene la variante, donde dicha variante de herregulina comprende un conjunto de sustituciones de aminoácidos seleccionadas entre
A183G, E184W, K185D, E186R K187E, T188G, M2261;
A183D, E184K, K185S, E186R, K187E, T188G, M226I;
F197Y, M198K, K200R, D201I, M2261;
P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
P205Y, S206R, R207Y, Y208R, L209M, M226I;
P205T, S206H, R207Y, Y208R, L209M;
P205T, S206K, R207Y, Y208R, L209G;
N223W, M2261;
N223H, M226I;
S177W, H178E, K181P, A183G, E184W, K185D, E186R, K187E, T188G, M226I;
P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, M2261;
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
F197Y, M198R, D201T, M226I;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, M226I;
A183G, K18SE, E186R, K187E, T188G, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
A183G, K185F, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H, M226I; y
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H, M226I;
donde los restos se numeran desde el extremo N de herregulina-\beta1 humana nativa de 645 aminoácidos.
La variante de herregulina puede ser una variante de cualquier miembro de la familia de herregulina de cualquier especie. En una realización, la variante de herregulina es una variante de una herregulina humana, tal como, por ejemplo, herregulina-\beta1 humana.
Algunas variantes de herregulina de la invención que tienen conjuntos de sustituciones de aminoácidos muestran al menos un aumento en 50 veces de la afinidad por el receptor ErbB-3, que también está acompañado por un aumento de la afinidad por el receptor ErbB-4.
Además de incluir una o más de las mutaciones descritas en este documento, la variante de herregulina puede tener una o más modificaciones diferentes, tales como una sustitución de aminoácidos, una inserción de al menos un aminoácido, una eliminación de al menos un aminoácido o una modificación química. Por ejemplo, la presente invención proporciona una variante de herregulina que es un fragmento. En una variación de esta realización, el fragmento incluye restos correspondientes a una parte de herregulina-\beta1 humana que se extienden de aproximadamente el resto 175 a aproximadamente el resto 230 (es decir, el dominio similar a EGF).
Además de una variante de herregulina, la presente invención proporciona una molécula de ácido nucleico, vector y célula huésped relacionada. La presente invención también proporciona un método de producción de una variante de herregulina en el que una célula huésped que contiene un vector de expresión capaz de expresar la variante de herregulina se cultiva en condiciones que permiten la expresión de la variante de herregulina, y a continuación la variante de herregulina se recupera del cultivo.
Otros aspectos de la invención se refieren a diversos usos de una variante de herregulina. Por ejemplo, la presente invención proporciona un método de unión a un receptor ErbB en el que la variante de herregulina se pone en contacto con una célula que expresa un receptor ErbB. La variante de herregulina puede ponerse en contacto con células en cultivo, por ejemplo, para promover la supervivencia, proliferación o diferenciación ex vivo de células, tales como células gliales, de Schwann o musculares.
Como alternativa, la variante de herregulina puede combinarse con un portador farmacéuticamente aceptable y usarse para tratar uno de una amplia gama de cánceres, así como enfermedades y trastornos que afectan al sistema nervioso, musculatura y epitelios. Por lo tanto, la presente invención proporciona una composición farmacéutica.
La presente invención también incluye un método para determinar si una muestra contiene un receptor ErbB que se une a herregulina. En particular, una variante de herregulina se pone en contacto con una muestra, y la unión específica entre la variante de herregulina y un componente de la muestra se determina como una indicación de la presencia y/o cantidad de receptor o receptores ErbB presentes en la muestra.
Breve descripción de los dibujos
La Figura 1 muestra un alineamiento entre las secuencias de aminoácidos en los dominios similares a EGF de varios polipéptidos de herregulina y la secuencia de aminoácidos del dominio similar a EGF de herregulina-\beta1 humana ("beta1"). Las secuencias alineadas son las siguientes: herregulina-\alpha humana (alfa), herregulina-\beta2 y -\beta3 humana (beta2 y beta3), factores de diferenciación neu a2 y b1 a b4 (ndfa2 y ndfb1-4), factor de crecimiento glial II (ggf), factor derivado de neuronas sensoriales y motoras (smdf), herregulina-\gamma humana, y polipéptido que induce la actividad de receptores de acetilcolina (aria). El número mostrado para cada secuencia es el número de restos del primer aminoácido mostrado, según se numera desde el extremo N del polipéptido nativo cuya secuencia se muestra. "#" indica las diferencias entre los dominios similares a EGF de tipo \alpha y \beta.
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La Figura 2 muestra los resultados de un barrido de alanina del dominio similar a EGF de herregulina-\beta1 (restos 177-228 de herregulina-\beta1). Los aminoácidos individuales en este dominio se mutaron a alanina y se presentaron de forma monovalente en fagos como proteínas de fusión a gIII, como se describe en el Ejemplo 2. El histograma muestra el cambio de afinidad de unión de cada variante de alanina por fusiones del receptor ErbB-3 y ErbB-4-Ig (ErbB-3-Ig e ErbB-4-Ig), según lo medido con ELISA de fagos. El eje X enumera cada aminoácido que se cambió por alanina y su posición. El eje Y es la relación de la CE_{50} para cada variante con respecto a la CE_{50} para el dominio similar a EGF de herregulina-\beta1 de tipo salvaje, también presentado en un fago. La CE_{50} se calculó como la concentración de fusión de receptor soluble necesaria para desplazar el 50% de la cantidad total de fago unido a una fusión de receptor inmovilizada. Los resultados de unión a ErbB-3 se muestran con barras negras, y los resultados de unión a ErbB-4 se muestran con barras blancas.
La Figura 3 muestra los aminoácidos seleccionados para la unión a ErbB-3-Ig en cada posición en el dominio similar a EGF de herregulina-\beta1 (restos 177-228 de herregulina-\beta1) aleatorizado en los estudios de presentación en fagos descritos en el Ejemplo 3. La longitud de las barras indica la frecuencia de aparición de un aminoácido particular en cada posición en las variantes de bibliotecas de presentación en fagos A-E y G-I para las que se determinaron secuencias (es decir, una barra más larga indica una mayor frecuencia). Se secuenciaron doce clones de cada biblioteca, aunque en la biblioteca H, solamente un clon de los doce representaba una variante que tiene mutaciones en la ventana de aleatorización deseada (véase el Ejemplo 3). "WT" indica la secuencia de aminoácidos de tipo salvaje del dominio similar a EGF de herregulina-\beta1.
La Figura 4 muestra las sustituciones de aminoácidos en los dominios similares a EGF de variantes de combinación descritas en el Ejemplo 3. La secuencia de aminoácidos del dominio similar a EGF de herregulina-\beta1 de tipo salvaje (HRG8), una variante de este dominio que contiene una eliminación de los restos 202-204 de herregulina-\beta1 (HRG63), y el dominio análogo en EGF se muestran en la parte superior. La numeración de restos para la parte de la secuencia de aminoácidos de herregulina-\beta1 mostrada se indica encima de esta secuencia (numerada desde el extremo N de la herregulina-\beta1 humana nativa). La numeración de restos para la parte de la secuencia de aminoácidos de EGF mostrada se indica debajo de esta secuencia (numerada desde el extremo N de EGF humano nativo). Un "." indica un resto que es idéntico al resto de tipo salvaje en la posición particular. Una "-" indica la ausencia de un resto.
Descripción detallada de la invención
La presente invención proporciona una variante de herregulina-\beta1 humana, teniendo dicha variante una secuencia de aminoácidos que no se encuentra en la naturaleza y la capacidad de unirse a un receptor ErbB con al menos un aumento en 5 veces de la afinidad por el receptor ErbB-3 con respecto a la herregulina de la que se obtiene la variante, donde dicha variante de herregulina comprende un conjunto de sustituciones de aminoácidos seleccionadas entre
A183G, E184W, K185D, E186R, K187E, T188G, M226I;
A183D, E184K, K185S, E186R, K187E, T188G, M226I;
F197Y, M198K, K200R, D201I, M226I;
P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
P205Y, S206R, R207Y, Y208R, L209M, M226I;
P205T, S206H, R207Y, Y208R, L209M;
P205T, S206K, R207Y, Y208R, L209G;
N223W, M226I;
N223H, M226I;
S177W, H178E, K181P, A183G, E184W, K185D, E186R, K187E, T188G, M226I;
P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, M226I;
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
F197Y, M198R, D201T, M226I;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, M226I;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H, M226I; y
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H, M226I;
donde los restos se numeran desde el extremo N de herregulina-\beta1 humana nativa de 645 aminoácidos.
Además de las sustituciones de aminoácidos especificadas en este documento, las variantes de herregulina según la presente invención pueden tener modificaciones adicionales, incluyendo, por ejemplo, eliminaciones de aminoácidos. En una realización, una variante de herregulina tiene eliminaciones N- y C-terminales, dejando solamente aminoácidos correspondientes a "el dominio similar a EGF mínimo" que es suficiente para la unión a y la activación de un receptor ErbB.
Una variante de herregulina de la invención es capaz de unirse al receptor ErbB-3. Además de la unión al receptor ErbB, la variante de herregulina puede poseer una o más actividades biológicas diferentes de una herregulina nativa.
La presente invención también proporciona moléculas de ácido nucleico, vectores y células huésped relacionadas con las variantes de herregulina. Una molécula de ácido nucleico de la invención codifica, o es complementaria a una molécula de ácido nucleico que codifica, una variante de herregulina de la invención o un fragmento de la misma. La molécula de ácido nucleico puede ser ADN o ARN de cadena doble o sencilla. Una molécula de ácido nucleico de la invención puede insertarse en un vector apropiado para la propagación y/o expresión de una variante de herregulina codificada. Dichos vectores se introducen en huéspedes adecuados, por ejemplo, para permitir la reproducción recombinante de una variante de herregulina.
Las variantes de herregulina de la invención son útiles en diversas aplicaciones terapéuticas o no terapéuticas. En particular, las variantes de herregulina pueden usarse para tratar cáncer y diversas enfermedades y trastornos del sistema nervioso, musculatura y epitelios. Por consiguiente, la presente invención abarca una composición farmacéutica que incluye una variante de herregulina.
Las variantes de herregulina también pueden emplearse en diversas aplicaciones no terapéuticas, tales como métodos de cultivo celular y métodos de diagnóstico. Por ejemplo, las variantes de herregulina pueden usarse para promover la supervivencia, proliferación o diferenciación ex vivo de células, incluyendo células gliales y musculares. En una aplicación de diagnóstico ejemplar, se emplean variantes de herregulina en el diagnóstico de un cáncer caracterizado por sobreexpresión de erbB (por ejemplo, erbB2).
Definiciones
Como se usan en este documento, las siguientes palabras o frases tienen las definiciones que se indican posteriormente, a no ser que se indique otra cosa.
Los términos "aminoácido" y "resto" se usan de forma intercambiable en este documento.
La expresión "aminoácido de tipo salvaje" o "resto de tipo salvaje" significa el aminoácido presente en una posición o posiciones dadas en un polipéptido nativo.
Los aminoácidos se representan en este documento mediante el código estándar de tres letras o una letra.
Se dice que los restos en dos o más polipéptidos "se corresponden" si los restos ocupan una posición análoga en las estructuras polipeptídicas. Como se conoce bien en el sector, posiciones análogas en dos o más polipéptidos pueden determinarse alineando las secuencias polipeptídicas en base a la secuencia de aminoácidos o a similitudes estructurales. Los expertos en la materia comprenden que puede ser necesario introducir huecos en cualquier secuencia para producir un alineamiento satisfactorio. Por ejemplo, los restos en EGF humano que corresponden a restos en herregulina-\beta1 humana se muestran en un alineamiento entre la secuencia de aminoácidos del dominio similar a EGF de herregulina-\beta1 (restos 177-228 de herregulina-\beta1) y el dominio de EGF análogo (restos 1-48 de EGF) en la
Figura 4.
Se dice que los restos en dos o más herregulinas se "corresponden" si los restos se alinean en el mejor alineamiento de secuencia. El "mejor alineamiento de secuencia" entre dos polipéptidos se define como el alineamiento que produce el mayor número de restos idénticos alineados. El mejor alineamiento de secuencia para varios polipéptidos de herregulina se muestra en la Figura 1.
Las posiciones de restos en herregulina-\beta1 se designan en este documento mediante el código de tres letras o de una letra para el aminoácido, seguido del número de posición, numerado desde el extremo N de pro-herregulina-\beta1 humana nativa (que tiene 645 aminoácidos de longitud). Por ejemplo, la serina en la posición 177 de herregulina-\beta1 se denomina "Ser177" o "S177".
En lo sucesivo en este documento, a no ser que se indique otra cosa, las posiciones de los restos en una herregulina, variante de herregulina o proteína relacionada, tal como EGF, se especifican en este documento en referencia a la numeración de aminoácidos de herregulina-\beta1 humana nativa. Por ejemplo, una variante de herregulina-\beta1 puede tener una eliminación N-terminal de los restos 1-176. El primer aminoácido en esta variante se identifica en este documento como "el resto correspondiente a Ser177 de herregulina-\beta1 humana de 645 aminoácidos" puesto que el primer resto de la variante de herregulina y Ser177 de herregulina-\beta1 están alineados en el mejor alineamiento entre los dos polipéptidos.
El ejemplo 3 describe variantes de herregulina-\beta1 que contienen restos correspondientes a los restos 177 a 228 de herregulina-\beta1, que se denomina "el dominio similar a EGF mínimo". Para estas variantes, los números de restos también se expresan, entre paréntesis, en términos de la posición del resto en el dominio similar a EGF mínimo (en lo sucesivo en este documento "herregulina-\beta1 EGF" o "HRG-\beta1 EGF"), es decir, los restos 1-52. Las posiciones de los restos numeradas según la herregulina-\beta1 humana nativa pueden convertirse en posiciones de restos en el dominio similar a EGF mínimo restando 176 del número de posición original. Por ejemplo, para herregulina-\beta1 Ser177, la resta de 176 de 177 da 1, y de este modo herregulina-\beta1 EGF Ser1 identifica la misma posición que herregulina-\beta1 Ser177. El mismo sistema de numeración se usa en el Ejemplo 4.
Las sustituciones de aminoácidos se indican enumerando la posición del resto seguida del código para el aminoácido sustituido en el polipéptido de herregulina. De este modo, una sustitución de alanina en Ser177 de herregulina-\beta1 se expresa como "herregulina-\beta1 Ser177Ala", "Ser177Ala", o "S177A". En este ejemplo, serina es el "aminoácido sustituido", y alanina es el "aminoácido de sustitución".
Como se usa para describir dos secuencias de aminoácidos, el término "homólogas" indica que las secuencias de aminoácidos tienen cierto grado de identidad en la secuencia de aminoácidos.
Variantes de Herregulina
La presente invención incluye una variante de herregulina. La expresión "variante de herregulina" significa una variante polipeptídica de una herregulina nativa. Una herregulina nativa se define como un polipéptido que tiene la secuencia de aminoácidos de longitud completa de cualquiera de la familia de polipéptidos de herregulina de origen natural. Esta familia abarca pro-herregulinas así como las formas solubles de estas proteínas. La presente invención se ejemplifica con variantes de herregulina-\beta1 humana. Véase los Ejemplos 1-3. Sin embargo, la familia de herregulina abarca cualquier polipéptido de origen natural que tiene un dominio similar a EGF que tiene al menos el 70 por ciento de identidad en la secuencia con el dominio similar a EGF de herregulina-\beta1 cuando estos dominios se alinean en el mejor alineamiento. Por lo tanto, una herregulina nativa puede ser de cualquier especie y una entre varias isoformas o formas alélicas de origen natural. Los polipéptidos de herregulina ejemplares incluyen factores de diferenciación neu, factores de crecimiento gliales, factor derivado de neuronas sensoriales y motoras, y polipéptido que induce la actividad de receptores de acetilcolina.
La variante de herregulina puede ser una variante de una herregulina de mamífero. En una variación de esta realización, la variante de herregulina puede ser una variante de una herregulina humana. Los ejemplos de herregulinas humanas incluyen herregulina-\alpha (HRG-\alpha), herregulina-\beta1 (HRG-\beta1), herregulina-\beta2 (HRG-\beta2), herregulina-\beta3 (HRG-\beta3) y herregulina-\gamma (HRG-\gamma).
Una variante de herregulina según la presente invención tiene una secuencia de aminoácidos que no se encuentra en la naturaleza en la que un resto de tipo salvaje en una herregulina nativa se sustituye por un resto diferente.
Generalmente, si hay que conservar la función en una posición seleccionada para la sustitución, el resto usado para sustituir al resto seleccionado no tiene un carácter sustancialmente diferente del resto de tipo salvaje, es decir, la sustitución de aminoácidos es una sustitución conservativa. Los aminoácidos pueden agruparse según el carácter como se muestra en la Tabla 1.
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TABLA 1 Grupos de Aminoácidos Que tienen Caracteres Similares
1
Para preservar la función, por lo tanto, el resto usado para sustituir al resto de tipo salvaje se seleccionaría habitualmente entre el mismo grupo o un grupo relacionado. Además, puede usarse serina o alanina para sustituir a la mayoría de los demás restos. La Tabla 2 muestra sustituciones conservativas para cada aminoácido, identificando grupos relacionados para cada uno e indicando qué aminoácidos pueden sustituirse por serina o alanina. La Tabla 2 también muestra sustituciones de aminoácidos preferidas.
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TABLA 2 Sustituciones Conservativas de Aminoácidos
2
3
\vskip1.000000\baselineskip
La presente invención es una variante de herregulina-\beta1 humana que incluye un conjunto de sustituciones de aminoácidos, tales como cualquiera de las variantes de herregulina descritas en el Ejemplo 3. El conjunto de sustituciones de aminoácidos se selecciona entre el grupo indicado posteriormente (el número de variante del Ejemplo 3 se muestra en la columna de la izquierda, seguido por el conjunto de sustituciones de aminoácidos para esa variante):
B5:
A183G, E184W, K185D, E186R, K187E, T188G, M226I;
B10:
A183D, E184K, K185S, E186R, K187E, T188G, M226I;
D1:
F197Y, M198K, K200R, D201I, M226I;
E2:
P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
E3:
P205Y, S206R, R207Y, Y208R, L209M, M226I;
E6:
P205T, S206H, R207Y, Y208R, L209M;
E8:
P205T, S206K, R207Y, Y208R, L209G;
I1:
N223W, M226I;
I2:
N223H, M226I;
HRG37:
S177W, H178E, K181P, A183G, E184W, K185D, E186R, K187E, T188G, M226I;
HRG48:
P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
HRG53:
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T;
HRG54:
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
HRG55:
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
HRG56:
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, M226I;
HRG57:
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
HRG58:
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
HRG59:
F197Y; M198R, D201T, M226I;
HRG60:
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, M226I;
HRG61:
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
HRG62:
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
HRG71:
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H, M226I; y
HRG73:
A183G, K18SE, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H, M226I.
\vskip1.000000\baselineskip
Cada uno de estos conjuntos de sustituciones de aminoácidos produce al menos un aumento en cinco veces de la afinidad por el receptor ErbB-3, según se determina mediante ELISA de fagos. Véase el Ejemplo 3.
\vskip1.000000\baselineskip
En una variación de esta realización, el conjunto de sustituciones de aminoácidos se selecciona entre el siguiente grupo:
B5:
A183G, E184W, K185D, E186R, K187E, T188G, M226I;
E2:
P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
I2:
N223H, M226I;
HRG48:
P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
HRG53:
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T;
HRG56:
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, M226I;
HRG57:
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
HRG58:
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
HRG59:
F197Y, M198R, D201T, M226I;
HRG60:
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, M226I;
HRG61:
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
HRG62:
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
HRG71:
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H, M226I; y
HRG73:
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H, M226I.
\vskip1.000000\baselineskip
Cada uno de estos conjuntos de sustituciones de aminoácidos produce al menos un aumento de 20 veces en la afinidad por el receptor ErbB-3, según se determina mediante ELISA de fagos. Véase el Ejemplo 3.
En otra variación de esta realización, el conjunto de sustituciones de aminoácidos se selecciona entre el siguiente grupo:
HRG58:
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
HRG60:
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, M226I;
HRG71:
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H, M226I; y
HRG73:
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H, M226I.
\vskip1.000000\baselineskip
Cada uno de estos conjuntos de sustituciones de aminoácidos produce al menos un aumento de 50 veces en la afinidad por el receptor ErbB-3, según se determina mediante ELISA de fagos. Véase el Ejemplo 3.
Además de las anteriores sustituciones de aminoácidos, la variante de herregulina puede tener opcionalmente cualquiera de las siguientes modificaciones, de forma aislada o en combinación: (1) una o más sustituciones de aminoácidos adicionales; (2) uno o más aminoácidos añadidos al extremo N o C de, o insertados en, la secuencia de aminoácidos de la variante de herregulina; (3) uno o más aminoácidos eliminados de la variante de herregulina; y (4) una o más modificaciones covalentes de un aminoácido en la variante de herregulina.
Por lo tanto, la variante de herregulina puede ser "sustancialmente de longitud completa", que, como se usa en este documento, significa que la variante de herregulina tiene al menos 90% de la longitud de la herregulina nativa con la que la variante es más homóloga. Como alternativa, la variante de herregulina puede ser un "fragmento" que tiene menos del 90% de la longitud de la herregulina nativa más homóloga. Las variantes de herregulina que son fragmentos son habitualmente de aproximadamente 30 a aproximadamente 100 aminoácidos, más habitualmente de aproximadamente 40 a aproximadamente 60 aminoácidos, aún más habitualmente de aproximadamente 45 a aproximadamente 65 aminoácidos y lo más habitualmente de aproximadamente 50 aminoácidos de longitud.
Por ejemplo, la variante de herregulina puede incluir aminoácidos correspondientes a "el dominio similar a EGF mínimo". El dominio similar a EGF mínimo es una parte de una herregulina nativa que es suficiente para la unión y activación de un receptor ErbB. En general, el dominio similar a EGF mínimo tiene menos de aproximadamente 70 aminoácidos y habitualmente menos de aproximadamente 60 aminoácidos de longitud. Como se usa en este documento en referencia a herregulina-\beta1 humana, el dominio similar a EGF mínimo se extiende desde los restos 177-228. A no ser que se indique otra cosa, "HRG-\beta1 EGF" se refiere al dominio similar a EGF mínimo.
Ejemplos de modificaciones covalentes adecuadas de una variante de herregulina según la presente invención incluyen, aunque sin limitación, conjugación con una marca detectable, "pegilación" y conjugación con un agente citotóxico. Una variante de herregulina puede conjugarse con cualquiera de una gran diversidad de marcas disponibles para producir un conjugado útil para detectar la presencia de receptores ErbB en una muestra. Las marcas adecuadas incluyen un radioisótopo, una marca fluorescente y una marca enzimática. Las marcas de radioisótopo ejemplares son ^{35}S, ^{14}C, ^{125}I, ^{3}H y ^{131}I. Las variantes de herregulina pueden estar conjugadas a radioisótopos como se describe generalmente en Current Protocols in Immunology Vols. 1 & 2 (Coligen et al. ed., Wiley Publishers).
Las marcas fluorescentes adecuadas para la conjugación a una variante de herregulina incluyen un quelato de tierra rara (un quelato de europio), fluoresceína, rodamina, dansilo, Lisamina, ficoeritrina y Rojo Texas, y derivados de los mismos. Pueden prepararse conjugados como se describe, por ejemplo, en Current Protocols in Immunology, supra.
Diversos sistemas enzima-sustrato están disponibles, y la Patente de Estados Unidos Nº 4.275.149 proporciona una revisión de algunos de estos. En general, las enzimas útiles en dichos sistemas catalizan una alteración de un sustrato fácilmente detectable. Por ejemplo, la enzima puede catalizar un cambio de color, que puede medirse mediante espectrofotometría, o un cambio de fluorescencia o quimioluminiscencia, que puede detectarse usando un fluorímetro o quimioluminómetro, respectivamente. Las marcas enzimáticas ejemplares incluyen una luciferasa, malato deshidrogenasa, ureasa, una peroxidasa, fosfatasa alcalina, \beta-galactosidasa, glucoamilasa, lisozima, una sacárido oxidasa, una oxidasa heterocíclica, lactoperoxidasa, microperoxidasa y similares. Las variantes de herregulina pueden conjugarse con marcas enzimáticas como se describe generalmente en O'Sullivan et al., Methods in Enzym. 73: 47-166 (1981), y en Current Protocols in Immunology (supra). Los sustratos adecuados para su uso con una marca enzimática dada son bien conocidos por los expertos en la materia.
Otra modificación ejemplar de una variante de herregulina de la invención es la pegilación, que se refiere a la conjugación de uno o más grupos polietilenglicol (PEG) al grupo o grupos e-amino de un polipéptido. La pegilación puede desearse cuando la variante de herregulina esté destinada a un uso farmacéutico, puesto que la pegilación puede aumentar la semi-vida in vivo y/o reducir la inmunogenicidad y la potencial toxicidad de proteínas terapéuticas. Véase por ejemplo, Abuchowski et al., J. Biol. Chem. 252: 3582-86 (1977).
La conjugación de una variante de herregulina con un agente citotóxico produce un agente citotóxico dirigido que se une específicamente a células que expresan receptores ErbB apropiados en su superficie. La expresión "agente citotóxico" se refiere a una sustancia que inhibe o impide la función de las células y/o causa la destrucción de las células. La expresión incluye, por ejemplo, un isótopo radiactivo (por ejemplo, I, Y, Pr) y un agente quimioterapéutico.
Un "agente quimioterapéutico" se define en este documento como cualquier compuesto químico útil en el tratamiento del cáncer. El término "cáncer" se refiere a la afección fisiológica en mamíferos que se caracteriza por crecimiento celular no regulado. Los ejemplos de cáncer incluyen aunque sin limitación, carcinoma, linfoma, blastoma, sarcoma y leucemia. Ejemplos más particulares de dichos cánceres incluyen cáncer de células escamosas, cáncer de pulmón microcítico, cáncer de pulmón macrocítico, cáncer gástrico, cáncer pancreático, tumores de células gliales tales como glioblastoma y neurofibromatosis, cáncer de cuello del útero, cáncer de ovario, cáncer de hígado, cáncer de vejiga, hepatoma, cáncer de mama, cáncer de colon, cáncer colorrectal, carcinoma de endometrio, carcinoma de las glándulas salivales, cáncer de riñón, cáncer renal, cáncer de próstata, cáncer de vulva, cáncer de la tiroides, carcinoma hepático y diversos tipos de cáncer de cabeza y cuello. Los ejemplos de agentes quimioterapéuticos incluyen Adriamicina, Doxorrubicina, 5-Fluorouracilo (5-FU), Citosina arabinósido (Ara-C), Ciclofosfamida, Tiotepa, Busulfan, Citoxina, Taxol, Metotrexato, Cisplatino, Melfalan, Vinblastina, Bleomicina, Etopósido, Ifosfamida, Mitomicina C, Mitoxantrona, Vincristina, VP-16, Vinorrelbina, Carboplatino, Tenipósido, Daunomicina, Carminomicina, Aminopterina, Dactinomicina, una Mitomicina, Nicotinamida, una Esperamicina, Melfalan y cualquier mostaza de nitrógeno relacionada, y un agente terapéutico endocrino (tal como dietilestilbestrol [DES], Tamoxifeno, un fármaco que antagoniza la hormona liberadora de hormona luteinizante, una progestina, una anti-progestina, etc)..
Además de la conjugación a un compuesto químico, cualquiera de las variantes de herregulina descritas anteriormente puede modificarse mediante fusión a un polipéptido heterólogo para producir una "variante de herregulina quimérica". (Las variantes de herregulina quiméricas también se denominan en este documento como "proteínas de fusión"). Habitualmente, el polipéptido heterólogo está fusionado en el extremo N o C de la variante de herregulina para preservar la actividad biológica (descrita con más detalle posteriormente) de la variante de herregulina. Sin embargo, el polipéptido heterólogo también puede introducirse en regiones de la variante de herregulina que no son críticas para la actividad biológica. Generalmente, las variantes de herregulina quiméricas se producen mediante técnicas recombinantes. Los ejemplos de variantes de herregulina quiméricas incluyen una variante de herregulina fusionada a una "secuencia señal", un "asa de purificación" y una secuencia de inmunoglobulina.
Una "secuencia señal" es una secuencia de aminoácidos que dirige la secreción de un polipéptido fusionado a ella a partir de una célula que expresa la proteína quimérica. Por lo tanto, la fusión de una variante de herregulina a una secuencia señal facilita la producción recombinante de la variante de herregulina puesto que la variante de herregulina quimérica se secreta en el medio de cultivo de la célula huésped, del que la variante de herregulina quimérica puede recuperarse con relativa facilidad.
Una secuencia señal adecuada puede obtenerse de cualquier proteína que tenga una secuencia señal y habitualmente (pero no siempre) está fusionada al extremo N de la variante de herregulina. El ADN que codifica secuencias señal procariotas puede obtenerse, por ejemplo, a partir de lamB u ompF, MalE, PhoA y otros genes. Una secuencia señal procariota conveniente para poner en práctica la presente invención es la secuencia señal de enterotoxina II (STII) termoestable de E. coli.
Un "asa de purificación" es una parte de un polipéptido que se une a otro polipéptido, llamado un "socio de unión". La fusión de un asa de purificación a una variante de herregulina otorga a la variante la capacidad de unirse al socio de unión, lo que facilita la purificación de la variante de herregulina quimérica resultante. Generalmente, el asa de purificación se selecciona de modo que el socio de unión no reaccione sustancialmente de forma cruzada con otros componentes presentes en la mezcla de la que debe purificarse la variante de herregulina quimérica. Como se usa en este documento, la expresión "no reacciona sustancialmente de forma cruzada" significa que la afinidad del socio de unión por el asa de purificación es al menos aproximadamente 20 veces, habitualmente al menos aproximadamente 100 veces, más habitualmente al menos aproximadamente 1000 veces, cualquier afinidad por cualesquiera otros componentes presentes en la mezcla.
En una realización, el asa de purificación es un epítopo reconocido por un anticuerpo, y la variante de herregulina quimérica se denomina por lo tanto una "variante de herregulina marcada con epítopo". Los epítopos adecuados generalmente tienen al menos cinco aminoácidos, habitualmente entre aproximadamente 10 y aproximadamente 50 aminoácidos y más habitualmente entre aproximadamente 10 y aproximadamente 30 aminoácidos.
Una molécula quimérica que incluye una variante de herregulina fusionada a una secuencia de inmunoglobulina se denomina "una inmunoadhesina variante de herregulina". En una realización, la secuencia de inmunoglobulina es un dominio constante de inmunoglobulina. La secuencia de inmunoglobulina en una inmunoadhesina variante de herregulina puede obtenerse a partir de los subtipos IgG_{1}, IgG_{2}, IgG_{3} o IgG_{4}, IgA, IgE, IgD o IgM. En una realización, la secuencia de inmunoglobulina se obtiene a partir de IgG_{1} o IgG_{3}.
Otros ejemplos de variantes de herregulina quiméricas incluyen variantes de herregulina fusionadas a tiorredoxina, un "epítopo de unión al receptor salvaje", o un polipéptido citotóxico. La fusión de una variante de herregulina con tiorredoxina aumenta la expresión y proporciona un asa de purificación que facilita la purificación usando fenilarsina óxido, que puede unirse covalentemente a un soporte sólido, tal como agarosa. (Agarosa funcionalizada con fenilarsina está disponible en el mercado como resina Thibond^{TM} de Invitrogen Corp., San Diego, CA). Las proteínas de fusión a variantes de tiorredoxina ejemplares se describen en el Ejemplo 2.
La expresión "epítopo de unión al receptor salvaje" se refiere a un epítopo de la región Fc de una molécula de IgG (por ejemplo, IgG_{1}, IgG_{2}, IgG_{3} o IgG_{4}) que aumenta la semi-vida en suero in vivo de la IgG. Epítopos de unión al receptor salvaje adecuados para fusión a una variante de herregulina según la presente invención incluyen cualquiera de los epítopos de unión al receptor salvaje conocidos.
La expresión "polipéptido citotóxico" se refiere a un polipéptido que inhibe una función celular o destruye células. Polipéptidos citotóxicos adecuados para fusión a una variante de herregulina incluyen una toxina enzimáticamente activa de origen bacteriano, fúngico, vegetal o animal y fragmentos de la misma y un producto de oncogén/inhibidor de tirosina quinasa, tales como un péptido que inhibe la unión de una tirosina quinasa a una proteína sustrato que contiene SH2 (véase WO 94/07913, por ejemplo).
En una realización, una variante de herregulina quimérica incluye una variante de herregulina fusionada a una enzima que convierte a un "profármaco" en un fármaco activo. Habitualmente, el "profármaco" es una forma precursora o derivada de un fármaco citotóxico que es menos citotóxica que el propio fármaco y es capaz de ser activado enzimáticamente o convertido en el fármaco citotóxico. Los profármacos de la presente invención incluyen, aunque sin limitación, un profármaco que contiene fosfato, un profármaco que contiene tiofosfato, un profármaco que contiene sulfato, un profármaco que contiene un péptido, un profármaco modificado con D-aminoácido, un profármaco glicosilado, un profármaco que contiene \beta-lactama, un profármaco que contiene fenoxiacetamida, un profármaco que contiene fenilacetamida, 5-fluorocitosina, un profármaco de 5-fluorouridina y derivados de los mismos. Los ejemplos de fármacos citotóxicos que pueden derivatizarse para producir un profármaco para su uso en la presente invención incluyen, aunque sin limitación, los agentes quimioterapéuticos descritos anteriormente.
Una variante de herregulina según la presente invención es capaz de unirse a un receptor ErbB. La expresión "receptor ErbB" se refiere a cualquiera de los receptores de tirosina quinasa de clase I de mamífero. Los ejemplos de dicho receptores incluyen el receptor ErbB-1 (también conocido como "el receptor EGF"), el receptor ErbB-2 (también llamado "el receptor HER2"), el receptor ErbB-3 (o "HER3"), y el receptor ErbB4 (o "HER4"). La frase "capaz de unirse a" se usa para describir un polipéptido que se une a otro polipéptido con una constante de disociación (K_{d}) de al menos 1 mM.
Variantes de herregulina que son capaces de unirse a los receptores ErbB-3 y ErbB-4 se han descrito anteriormente y se describen en los ejemplos. La producción de variantes de herregulina adicionales, que tienen modificaciones adicionales (por ejemplo sustituciones, adiciones, inserciones, o eliminaciones o modificaciones covalentes de aminoácidos adicionales) y de variantes de herregulina quiméricas está dentro del alcance del experto en la materia.
Además, a la luz de las enseñanzas en este documento, los expertos en la materia pueden diseñar gran número de variantes adicionales que preservan la actividad de unión de las variantes de herregulina de la invención. Por ejemplo, no se espera que una sustitución conservativa en un resto no crítico de una variante de herregulina (como se identifica en el Ejemplo 2) altere significativamente la unión al receptor ErbB. Además, cualesquiera efectos sobre la unión al receptor ErbB pueden determinarse fácilmente en un ensayo de unión a una muestra, tal como los descritos en los Ejemplos 1-3. Por lo tanto, la presente invención abarca todas las variantes de herregulina que tienen al menos un aumento de 5 veces en la afinidad del receptor ErB-3 con respecto a la herregulina de la que se obtiene la variante y que comprenden sustituciones de aminoácidos en las posiciones específicas descritas anteriormente, independientemente de cualesquiera modificaciones adicionales que puedan estar presentes.
Además de la unión al receptor ErbB, una variante de herregulina de la invención puede poseer una o más actividades biológicas diferentes de una herregulina nativa. Por ejemplo, la variante de herregulina también puede tener la capacidad de activar un receptor ErbB. La frase "capacidad de activar un receptor ErbB" se refiere a la capacidad de hacer que el dominio quinasa intracelular de un receptor ErbB fosforile restos tirosina. Generalmente, la activación del receptor implica la unión de una herregulina a un complejo receptor de dos o más receptores ErbB (por ejemplo, un complejo ErbB-2/ErbB-3 o ErbB-2/ErbB-4). La unión al receptor activa un dominio quinasa de uno o más de los receptores, lo que da como resultado la fosforilación de restos tirosina en uno o más de los receptores y/o fosforilación de restos tirosina en polipéptido o polipéptidos de sustrato adicionales. La fosforilación de receptor ErbB puede cuantificarse usando los ensayos de fosforilación de tirosina descritos en el
Ejemplo 3.
Además, una variante de herregulina de la invención puede ser capaz de aumentar la supervivencia, proliferación y/o diferenciación de células que tienen receptores ErbB adecuados. La frase "aumentar la supervivencia de células" se refiere a aumentar el periodo de existencia de células, in vitro o in vivo, con respecto al periodo de existencia de células que no han sido expuestas a la variante de herregulina ("células no tratadas").
La expresión "aumentar la proliferación de células" significa aumentar la tasa o número de divisiones mitóticas, in vitro o in vivo, con respecto a células no tratadas. Un aumento de la proliferación celular en cultivo celular puede detectarse contando el número de células antes y después de la exposición a la variante de herregulina o mediante examen microscópico del grado de confluencia. La proliferación celular también puede cuantificarse midiendo la captación de ^{3}H-timidina por las células.
La frase "aumentar la diferenciación de células" se refiere a aumentar el grado de especialización celular. La especialización celular se caracteriza por la adquisición de una o más características que difieren de las de las células originales. Por lo tanto, el grado de especialización celular se determina habitualmente cribando un cambio en el fenotipo de la célula (por ejemplo, identificando un cambio en la morfología celular).
Células ejemplares que expresan receptores ErbB, y por lo tanto son sensibles a herregulinas, incluyen células SK-BR-3, células gliales, células de glioblastoma, células de Schwann, hepatocitos, células epiteliales y células musculares. Las células gliales se obtienen del sistema nervioso central e incluyen oligodendrocitos y astrocitos. Las células musculares que expresan receptores ErbB incluyen precursores de células musculares (mioblastos) así como las más especializadas células esqueléticas, cardiacas y de músculo liso.
Otras actividades biológicas que puede poseer una variante de herregulina de la invención incluyen inducción de la formación de canales iónicos (por ejemplo canal de Na^{+}); inducción de síntesis de receptor de acetilcolina en la unión neuromuscular; potenciación de la formación de una unión sináptica entre una neurona y una célula muscular, nerviosa o glandular; regulación negativa del receptor de estrógeno; e internalización celular (posiblemente asociada con localización nuclear).
Una variante de herregulina se produce mediante cualquier método adecuado, incluyendo síntesis peptídica y técnicas recombinantes. Generalmente, se emplean técnicas recombinantes, que se describen en detalle posteriormente, para una variante de herregulina más larga de aproximadamente 50 aminoácidos.
Moléculas de Ácido Nucleico
La presente invención también incluye una molécula de ácido nucleico relacionada con la variante de herregulina. La expresión "molécula de ácido nucleico" abarca moléculas de ADN de cadena sencilla y de cadena doble, incluyendo ADN genómico, ADNc, ADN producido mediante una reacción de amplificación (tal como reacción en cadena de la polimerasa ["PCR"]), y ADN producido mediante síntesis de oligonucleótidos, así como moléculas de ARN, tales como ARNm. El ADN genómico puede incluir regiones no transcritas y transcritas (tales como regiones no codificantes 5' y 3', intrones y regiones codificantes de variante de herregulina). Las moléculas de ADNc y ARN contienen secuencias correspondientes a regiones transcritas.
Una molécula de ácido nucleico según la presente invención tiene una secuencia de nucleótidos que no se encuentra en la naturaleza y codifica, o es complementaria a, una molécula de ácido nucleico que codifica una variante de herregulina de la invención. Una secuencia de nucleótidos complementaria es capaz de formar enlaces de Watson-Crick con su complemento, en los que la adenina se empareja con timina o uracilo y guanina se empareja con citosina. Una molécula de ADN de doble cadena codifica una de las variantes de herregulina, mientras que una molécula de ADN o ARN de cadena sencilla es la cadena codificante (sentido) o la cadena no codificante (anti-sentido).
Debido a la redundancia del código genético, hay gran número de posibles moléculas de ácido nucleico relacionadas con cada variante de herregulina. Más específicamente, puesto que varios codones diferentes codifican el mismo aminoácido, gran número de diferentes moléculas de ácido nucleico codifican (o son complementarias a una molécula de ácido nucleico que codifica) la misma variante de herregulina.
Generalmente, una variante de herregulina de la invención se produce mutando una secuencia de ADN de origen natural para introducir las mutaciones deseadas en la secuencia de aminoácidos de la variante de herregulina. Sin embargo, también puede ser ventajoso cambiar uno o más codones en una molécula de ácido nucleico sin alterar el aminoácido codificado. Ejemplos de dichas "mutaciones silenciosas" en el alcance de la presente invención incluyen, por ejemplo, mutaciones que crean o destruyen puntos de endonucleasa de restricción para facilitar la construcción de un vector deseado y mutaciones que aumentan la expresión de la variante de herregulina codificada. Los ejemplos de estas últimas incluyen sustituciones de nucleótidos diseñadas para reducir la formación de estructuras de tipo stem-loop 5' en el ARNm transcrito o para proporcionar codones que se transcriben más fácilmente por el huésped seleccionado (por ejemplo, los bien conocidos codones de preferencia para expresión en E. coli o levadura).
Una molécula de ácido nucleico de la invención puede incorporarse en un vector (como se describe adicionalmente posteriormente) o usarse, por ejemplo, como una sonda de hibridación o un cebador de amplificación. Una sonda de hibridación que comprende un ácido nucleico según la presente invención es útil para detectar una molécula de ácido nucleico que contiene una mutación deseada, tal como, por ejemplo; en el cribado de transformantes bacterianos para identificar clones que contienen la molécula de ácido nucleico mutada.
Dichas sondas son generalmente de al menos aproximadamente 20 nucleótidos y habitualmente de menos de dos kilobases. La sonda incluye un número de nucleótidos que es suficiente, en las condiciones de hibridación usadas, para hibridar con una secuencia mutada a detectar y para estar sustancialmente libre de hibridación con otras secuencias. Habitualmente, una sonda que comprende un ácido nucleico de la presente invención es de al menos aproximadamente 50 nucleótidos, y habitualmente aproximadamente 100 nucleótidos de longitud.
Un cebador de amplificación que comprende un ácido nucleico según la presente invención puede usarse en un protocolo de amplificación convencional, tal como PCR, para detectar una molécula de ácido nucleico que contiene una mutación deseada o para producir suficientes cantidades de dicha molécula para secuenciación, inserción en un vector, etc. Un cebador de amplificación se usa habitualmente como miembro de un par de cebadores, que incluye un cebador cadena arriba 5' que hibrida con el extremo 5' de la secuencia de ácido nucleico a amplificar y un cebador cadena abajo 3' que hibrida con el complemento del extremo 3' de la secuencia a amplificar.
En general, un cebador que comprende un ácido nucleico según la presente invención incluye un número de nucleótidos que es suficiente, en las condiciones de hibridación usadas, para hibridar con una secuencia mutada y para estar sustancialmente libre de hibridación con otras secuencias. La especificidad del cebador aumenta con el número de nucleótidos que hibridan con la secuencia mutada. Además, la especificidad se correlaciona con la proporción de restos en el cebador que hibridan con la secuencia mutada. Un cebador que comprende un ácido nucleico de la presente invención generalmente incluye al menos aproximadamente 15 nucleótidos, y habitualmente al menos aproximadamente 20 nucleótidos. No es necesario que el cebador supere aproximadamente los 30 nucleótidos, y habitualmente no supera aproximadamente los 25 nucleótidos. En una variación de esta realización, el cebador incluye entre aproximadamente 20 y aproximadamente 25 nucleótidos. Generalmente, el cebador debe tener una T_{m} en el intervalo de aproximadamente 55ºC a aproximadamente 75ºC. En la práctica, la T_{m} está habitualmente entre aproximadamente 60ºC y aproximadamente 65ºC para facilitar la amplificación en condiciones astringentes.
Vectores y Células Huésped
Una molécula de ácido nucleico de la presente invención puede incorporarse en un vector para propagación y/o expresión en una célula huésped. Dichos vectores habitualmente contienen una secuencia de replicación capaz de realizar la replicación del vector en una célula huésped adecuada (es decir, un origen de replicación) así como secuencias que codifican un marcador seleccionable, tales como un gen de resistencia a antibióticos. Después de la transformación de un huésped adecuado, el vector puede replicarse y funcionar independientemente del genoma de huésped o integrarse en el genoma del huésped. El diseño del vector depende, entre otras cosas, del uso pretendido y de la célula huésped para el vector, y el diseño de un vector de variante de herregulina para un uso y célula huésped particular está dentro del alcance de un experto en la materia.
Si el vector es para la expresión de una variante de herregulina, el vector incluye una o más secuencias de control capaces de realizar y/o aumentar la expresión de una secuencia codificante de variante de herregulina unida de forma operativa. Las secuencias de control que son adecuadas para la expresión en procariotas, por ejemplo, incluyen una secuencia promotora, una secuencia operadora y un punto de unión al ribosoma. Las secuencias de control para la expresión en células eucariotas incluyen un promotor, un potenciador y una secuencia de terminación de la transcripción (es decir, una señal de poliadenilación).
La expresión "unido de forma operativa" significa que dos secuencias de ácido nucleico están en una relación funcional entre sí. Por ejemplo, un promotor (o potenciador) está unido de forma operativa a una secuencia codificante si realiza (o aumenta) la transcripción de la secuencia. Un punto de unión al ribosoma está unido de forma operativa a una secuencia codificante si está situado de forma que facilite la traducción. Las secuencias de ácido nucleico unidas de forma operativa a menudo son contiguas, pero esto no es un requisito. Por ejemplo, no es necesario que los potenciadores sean contiguos con una secuencia codificante para aumentar la transcripción de la secuencia codificante.
Un vector de expresión de variante de herregulina también puede incluir otras secuencias, tales como, por ejemplo, secuencias de ácido nucleico que codifican una secuencia señal o un gen amplificable. Como se ha descrito anteriormente, una secuencia señal dirige la secreción de un polipéptido fusionado a ella desde una célula que expresa la proteína quimérica.
En el vector de expresión, el ácido nucleico que codifica una secuencia señal está unido a una secuencia codificante de variante de herregulina para preservar el marco de lectura de la secuencia codificante de variante de herregulina. La inclusión de un gen amplificable (por ejemplo, el gen de dihidrofolato reductasa [DHFR]) en un vector de expresión de variante de herregulina permite la selección de células huésped que contienen múltiples copias de la molécula de ácido nucleico que codifica la variante de herregulina.
Un vector de la presente invención se produce uniendo elementos deseados mediante ligamiento en puntos de restricción convenientes. Si dichos puntos no existen, pueden introducirse puntos adecuados mediante mutagénesis convencional (por ejemplo, mutagénesis dirigida o con casete) o pueden usarse adaptadores o enlazadores de oligonucleótidos sintéticos según la práctica convencional.
La presente invención también proporciona una célula huésped que contiene un vector de la presente invención. Una gran variedad de células huésped están disponibles para propagación y/o expresión de vectores. Los ejemplos incluyen células procariotas (tales como E. coli y cepas de Bacillus, Pseudomonas y otras bacterias), levaduras y otras células fúngicas, células de insecto, células vegetales y fagos, así como células de eucariotas superiores (tales como células de ovario de hámster chino y otras células de mamífero). Las células huésped según la presente invención incluyen células en cultivo y células presentes en animales vivos, tales como animales transgénicos. Véase la Patente de Estados Unidos 5.364.934 para más información sobre vectores y células huésped adecuadas para su uso en la producción recombinante de una variante de herregulina.
Un vector de la presente invención se introduce en una célula huésped mediante cualquier método conveniente, que variará dependiendo del sistema vector-huésped empleado. Generalmente, un vector se introduce en una célula huésped mediante transformación (también conocida como "transfección") o infección con un virus (por ejemplo, fago) que porta el vector. Si la célula huésped es una célula procariota (u otra célula que tiene una pared celular), los métodos de transformación convenientes incluyen el método de tratamiento con calcio descrito por Cohen et al., PNAS USA 69: 2110-14 (1972), y el método de polietilenglicol de Chung et al., Nuc. Acids. Res. 16: 3580 (1988). Si una célula procariota se usa como huésped y el vector es un vector fagémido, el vector puede introducirse en la célula huésped mediante infección, como se describe en el Ejemplo 1. Las células de levadura pueden transformarse usando polietilenglicol, por ejemplo, como describe Hinnen, PNAS U.S.A. 75: 1929-33 (1978). Las células de mamífero se transforman convenientemente usando el método de precipitación con fosfato de calcio descrito por Graham et al., Virology 52: 546 (1978), y Gorman et al., DNA and Protein Eng. Tech. 2: 3-10 (1990). Sin embargo, otros métodos conocidos para introducir ADN en células huésped, tales como inyección nuclear, electroporación (véase el Ejemplo 1) y fusión de protoplastos también son adecuados para su uso en la presente invención.
Una célula huésped que contiene una molécula de ácido nucleico que codifica una variante de herregulina puede producirse mediante recombinación homóloga, como se describe en WO 91/06667. En resumen, este método implica transformar una célula huésped que contiene un gen de herregulina endógeno con un vector de recombinación homóloga que incluye la secuencia a introducir. El vector de recombinación homóloga también incluye al menos una secuencia de al menos aproximadamente 150 nucleótidos de longitud que es homóloga con una secuencia endógena que flanquea al gen de herregulina endógeno. Las secuencias flanqueantes adecuadas se identifican fácilmente, por ejemplo, mediante el método de paseo cromosómico, usando como punto de partida una secuencia de ácido nucleico de herregulina nativa conocida. El vector de recombinación homóloga adicionalmente incluye un gen amplificable, tal como el gen DHFR.
La transformación se realiza en condiciones tales que el vector se integra en el genoma de la célula huésped mediante recombinación. Las células que integran el vector se cultivan a continuación en condiciones que seleccionan la amplificación del gen amplificable. Las células resultantes se criban a continuación para niveles altos de producción de variante de herregulina.
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Producción Recombinante de Variantes de Herregulina
Para producir una variante de herregulina de forma recombinante, se preparan células huésped que contienen un vector de expresión de variante de herregulina y se cultivan en condiciones adecuadas para el crecimiento celular y para la expresión de la variante de herregulina. En particular, el medio de cultivo contiene nutrientes apropiados y factores de crecimiento para la célula huésped empleada. Los nutrientes y factores de crecimiento necesarios para el crecimiento de una célula huésped seleccionada son, en muchos casos, bien conocidos o pueden determinarse fácilmente de forma empírica por los expertos en la materia. Las condiciones de cultivo adecuadas para células huésped de mamífero, por ejemplo, se describen en Mammalian Cell Culture (Mather ed., Plenum Press 1984), y en Barnes y Sato, Cell 22: 649 (1980).
Además, las condiciones de cultivo deben permitir la transcripción, traducción y transporte de proteínas entre compartimentos celulares. Los factores que afectan a estos procesos se conocen bien e incluyen, por ejemplo, el número de AND/ARN; los factores que estabilizan el ARN; nutrientes, suplementos, e inductores o represores transcripcionales presentes en el medio de cultivo; temperatura, pH, y osmolalidad del cultivo; y densidad celular. El ajuste de estos factores para promover la expresión en un sistema vector-célula huésped particular está dentro del alcance de un experto en la materia. Los principios y técnicas prácticas para maximizar la productividad de cultivos de células de mamífero in vitro, por ejemplo, pueden encontrarse en Mammalian Cell Biotechnology: a Practical Approach (Butler ed., IRL Press 1991).
El procedimiento de cultivo celular empleado en la producción de una variante de herregulina de la presente invención puede ser cualquiera de varios procedimientos bien conocidos para producción a gran o pequeña escala de proteínas. Estos incluyen, aunque sin limitación, el uso de un biorreactor de lecho fluidizado, un biorreactor de fibra hueca, un sistema de cultivo en frasco rotatorio y un sistema de biorreactor con tanque agitado. Una variante de herregulina puede producirse, por ejemplo, en un proceso discontinuo (batch), semi-continuo (fed-batch) o de modo continuo.
Los métodos para la recuperación de proteínas recombinantes producidas como se ha descrito anteriormente se conocen bien y varían dependiendo del sistema de expresión empleado. Por ejemplo, si, como es habitual, la variante de herregulina está fusionada a una secuencia señal, la variante de herregulina se recupera del medio de cultivo o del periplasma. Convenientemente, la variante se secreta al espacio periplásmico en forma de proteína madura. La variante de herregulina también puede expresarse de forma intracelular y recuperarse de lisados celulares.
La variante de herregulina puede purificarse del medio de cultivo o un lisado celular mediante cualquier método capaz de separar la variante de componentes de la célula huésped o medio de cultivo. Habitualmente, la variante de herregulina se separa de los componentes de la célula huésped y/o el medio de cultivo que interferirían en el uso pretendido de la variante de herregulina. Como primera etapa, el medio de cultivo o lisado celular se centrifuga o filtra habitualmente para eliminar restos celulares. A continuación, el sobrenadante se concentra habitualmente o diluye a un volumen deseado o se diafiltra en un tampón adecuado para acondicionar la preparación para una purificación adicional.
La variante de herregulina se purifica adicionalmente habitualmente de la misma manera que la herregulina nativa más homóloga, teniendo en cuenta cualesquiera diferencias sustanciales de propiedades entre las dos moléculas. Por ejemplo, si la variante de herregulina es una variante de herregulina marcada con epítopo, la purificación puede realizarse usando una columna de inmunoafinidad que contiene anticuerpo para la marca epitópica. Los siguientes procedimientos ejemplares para purificar herregulinas pueden usarse o adaptarse para purificar una variante de herregulina de la invención: fraccionamiento en una columna de inmunoafinidad, fraccionamiento en una columna de intercambio iónico, precipitación con sulfato de amonio o etanol, HPLC de fase inversa, cromatografía en sílice, cromatografía en heparina-Sepharose, cromatografía en una resina de intercambio catiónico, cromatoenfoque, SDS-PAGE y filtración en gel (por ejemplo, usando una columna High Load Superdex 75^{TM} prep grade).
Si la variante de herregulina se expresa inicialmente en forma insoluble, agregada (especialmente en células huésped bacterianas), puede ser necesario disolver y renaturalizar la variante de herregulina usando técnicas disponibles en el sector para solubilizar y renaturalizar cuerpos refráctiles de proteína recombinante. Véase por ejemplo la Patente de Estados Unidos Nº 4.511.502.
En una variación de esta realización, la variante de herregulina se purifica (1) a un grado suficiente para obtener al menos 15 restos, y preferentemente 20 restos, de secuencia de aminoácidos N-terminal o interna, usando un secuenciador de taza giratoria, o (2) a homogeneidad mediante SDS-PAGE en condiciones no reductoras o reductoras usando tinción de azul de Coomassie. Como se usa en este documento, "homogeneidad" significa menos de aproximadamente el 5% de contaminación con otras proteínas fuente, según se determina tiñendo con azul de Coomassie.
Utilidad de las Variantes de Herregulina
En términos generales, las variantes de herregulina según la presente invención pueden usarse en las mismas aplicaciones que las herregulinas nativas. Por supuesto, algunas variantes de herregulina dentro del alcance de la invención pueden ser más adecuadas para una aplicación que para otras aplicaciones. Sin embargo, los expertos en la materia pueden averiguar fácilmente qué variantes de herregulina son apropiadas para una aplicación dada usando uno o más ensayos convencionales para determinar la actividad biológica de las variantes.
Composiciones Farmacéuticas y Métodos de Tratamiento
Las herregulinas son útiles para tratar un amplio intervalo de enfermedades y trastornos que afectan al sistema nervioso, musculatura y epitelios. Además, pueden usarse herregulinas en el tratamiento del cáncer. Como se usa en este documento, "tratamiento" abarca el tratamiento de una enfermedad o trastorno existente así como medidas profilácticas.
Por consiguiente, la presente invención proporciona una composición farmacéutica que incluye una variante de herregulina que es útil para tratar cualquiera de diversas enfermedades o trastornos. Una composición farmacéutica con variante de herregulina puede emplearse para tratar a un mamífero. En particular, la composición es útil para tratar seres humanos, animales de granja (por ejemplo, vacas y ovejas), animales de zoológico, animales usados en deportes (por ejemplo, caballos) y mascotas (por ejemplo, perros y gatos).
La composición también puede ser útil para tratar a un paciente humano.
Una variante de herregulina según la presente invención puede ser útil para promover el desarrollo, mantenimiento y/o regeneración de una neurona in vivo. Las neuronas que responden a dicha variante incluyen neuronas del sistema nervioso central (cerebro y médula espinal), neuronas del sistema nervioso periférico (incluyendo neuronas simpáticas, parasimpáticas, sensoriales y entéricas) y motoneuronas. Enfermedades o trastornos susceptibles al tratamiento con variante de herregulina aparecen en individuos que han sufrido daño del sistema nervioso debido, por ejemplo, a trauma, cirugía, apoplejía, isquemia, infección, enfermedad metabólica, deficiencia alimenticia, cáncer o un agente tóxico.
Una variante de herregulina puede proporcionar beneficios terapéuticos a dichos individuos promoviendo la supervivencia, proliferación o diferenciación de neuronas. Por ejemplo, puede usarse una variante de herregulina para promover la supervivencia o proliferación de motoneuronas que han sido dañadas por trauma o cirugía. Una variante de herregulina también puede emplearse para tratar trastornos motoneuronales, tales como esclerosis lateral amiotrófica (enfermedad de Lou Gehrig), parálisis de Bell y diversas afecciones que implican atrofia o parálisis muscular espinal. Además, una variante de herregulina también puede ser útil para tratar un trastorno neurodegenerativo humano, tal como enfermedad de Alzheimer, enfermedad de Parkinson, epilepsia, esclerosis múltiple, corea de Huntington, síndrome de Down, sordera nerviosa y enfermedad de Meniere.
Además, una variante de herregulina de la invención puede usarse para tratar neuropatía, especialmente neuropatía periférica. Como se usa en este documento, la expresión "neuropatía periférica" se refiere a un trastorno que afecta al sistema nervioso periférico, generalmente manifestado como uno o una combinación de disfunciones motoras, sensoriales, sensorimotoras o autonómicas neurales. Los ejemplos incluyen, aunque sin limitación, neuropatía sensorimotora distal y neuropatías autonómicas, tales como motilidad reducida del tracto gastrointestinal o atonía de la vejiga urinaria. Las neuropatías periféricas susceptibles al tratamiento con variante de herregulina pueden heredarse, pueden resultar de una enfermedad sistémica o pueden ser inducidas por un agente tóxico. Los ejemplos de neuropatías hereditarias incluyen enfermedad de Charcot-Marie-Tooth, enfermedad de Refsum, Abetalipoproteinemia, enfermedad de Tangier, enfermedad de Krabbe, leucodistrofia metacromática, enfermedad de Fabry y síndrome de Dejerine-Sottas. Los ejemplos de neuropatías asociadas con enfermedad sistémica incluyen síndrome post-polio; y los ejemplos neuropatías inducidas por un agente tóxico incluyen las causadas por el tratamiento con un agente
quimioterapéutico.
Una variante de herregulina también puede emplearse para mejorar la función neural. Los efectos beneficiosos del tratamiento con la variante de herregulina se atribuyen a la inducción de la formación de canales iónicos en membranas celulares y al aumento de la formación de uniones sinápticas.
Una variante de herregulina según la presente invención también puede usarse para tratar células musculares y afecciones médicas que afectan a células musculares. En particular, dicha variante de herregulina puede ser útil para tratar daño muscular, reduciendo la atrofia de las células musculares, y aumentando la supervivencia, proliferación y/o regeneración de células musculares. Los ejemplos de afecciones patofisiológicas de la musculatura susceptibles al tratamiento con una variante de herregulina incluyen enfermedades del músculo esquelético (por ejemplo, miopatía o distrofia), trastornos del músculo cardiaco (incluyendo arritmias cardiacas auriculares, cardiomiopatía, daño isquémico, enfermedad congénita y trauma cardiaco) y trastornos del músculo liso (tales como esclerosis arterial, lesión vascular o enfermedad vascular congénita). Una variante de herregulina también puede emplearse para reducir la hipertensión y para aumentar los receptores de acetilcolina funcionales en células musculares (por ejemplo, en individuos que tienen miastenia gravis o taquicardia).
Una variante de herregulina de la invención también puede potenciar la reparación y/o regeneración de tejidos que expresan receptores ErbB, especialmente ErbB-2 y receptores ErbB-3 o ErbB-4. Por consiguiente, una variante de herregulina puede ser útil para tratar heridas dérmicas, enfermedades gastrointestinales, esófago de Barrett, enfermedad renal en fase terminal quística o no quística o enfermedad intestinal inflamatoria. Una variante de herregulina también puede emplearse para promover la re-epitelización en el tracto gastrointestinal, respiratorio, reproductor o urinario humano.
Además, una variante de herregulina según la presente invención puede ser útil para inhibir la invasión y metástasis de células tumorales. En particular, un tumor caracterizado por niveles reducidos de herregulina endógena (Park et al., Proc. Am. Assoc. Cancer Res. 34: 521 [1993]) es sensible al tratamiento con una variante de herregulina de la invención. Adicionalmente, un tumor que sobreexpresa receptores ErbB puede tratarse usando una variante de herregulina conjugada a un agente citotóxico (descrito anteriormente) para dirigir al agente citotóxico al tejido tumoral. Un conjugado de variante de herregulina-enzima también puede emplearse para dirigir una terapia con profármaco (descrita anteriormente) a células que expresan receptores ErbB.
Una composición farmacéutica según la presente invención se prepara para almacenamiento mezclando una variante de herregulina que tiene el grado de pureza deseado con un portador, excipiente o estabilizante fisiológicamente aceptable opcional, tal como se describen en Remington's Pharmaceutical Sciences 16ª Edición (Osol ed., 1980). La composición puede almacenarse en forma de una torta liofilizada o una solución acuosa. Un portador, excipiente o estabilizante farmacéuticamente aceptable no es tóxico para receptores a las dosificaciones empleadas, y puede incluir un tampón (tal como un tampón fosfato, tampón citrato y tampones hechos a partir de otros ácidos orgánicos), un antioxidante (por ejemplo, ácido ascórbico), un polipéptido de bajo peso molecular (menos de aproximadamente 10 restos), una proteína (tal como albúmina del suero, gelatina y una inmunoglobulina), un polímero hidrofílico (tal como polivinilpirrolidona), un aminoácido (tal como glicina, glutamina, asparagina, arginina y lisina), un monosacárido, un disacárido y otros carbohidratos (incluyendo glucosa, manosa y dextrinas), un agente quelante (por ejemplo, ácido etilendiaminotetraacético [EDTA]), un alcohol de azúcar (tal como manitol y sorbitol), un contraión formador de sal (por ejemplo, sodio) y/o un tensioactivo no iónico (tal como Tween^{TM}, Pluronics^{TM} y PEG). El portador fisiológicamente aceptable puede ser una solución acuosa tamponada.
Una composición con variante de herregulina para administración in vivo habitualmente es estéril. La esterilización se realiza fácilmente mediante filtración a través de una membrana de filtración estéril. Si la composición se almacena en forma liofilizada, la composición puede filtrarse antes o después de la liofilización y reconstitución.
Una composición farmacéutica con variante de herregulina de la invención se coloca generalmente en un recipiente que tiene un puerto de acceso estéril, tal como, por ejemplo, una bolsa de solución intravenosa o un vial que tiene un tapón perforable por una aguja de inyección hipodérmica.
Los métodos para administrar una composición farmacéutica con variante de herregulina no difieren de métodos conocidos para administrar proteínas terapéuticas. Las vías de administración adecuadas incluyen, por ejemplo, vías intravenosa, intraperitoneal, intracerebral, intramuscular, intraocular, intraarterial o intralesional. Una composición farmacéutica con variante de herregulina puede administrarse de forma continua mediante infusión o mediante inyección en embolada.
Si se desea, también puede usarse una preparación de liberación sostenida para administrar una variante de herregulina. Una preparación de liberación sostenida ejemplar tiene una matriz semipermeable de un polímero hidrofóbico al que está unida la variante de herregulina. Los ejemplos de polímeros adecuados incluyen un poliéster, un hidrogel, un polilacturo, un copolímero de ácido L-glutámico y \gamma-etil-L-glutamato, acetato de etilen-vinilo no degradable, un copolímero degradable de ácido láctico-ácido glicólico y ácido poli-D-(-)-3-hidroxibutírico. Dichas matrices están en forma de artículos conformados, tales como películas o microcápsulas.
Una preparación de variante de herregulina de liberación sostenida puede incluir una variante de herregulina atrapada en liposomas. Los liposomas son pequeñas vesículas compuestas por diversos tipos de lípidos, fosfolípidos y/o tensioactivos. Estos componentes se disponen habitualmente en una formación de bicapa, similar a la disposición lipídica de membranas biológicas. Los liposomas que contienen variantes de herregulina se preparan mediante métodos conocidos, tales como, por ejemplo, los descritos en Epstein et al., PNAS USA 82: 3688-92 (1985), y Hwang et al., PNAS USA 77: 4030-34 (1980). Habitualmente, los liposomas en dichas preparaciones son del tipo pequeño unilamelar (aproximadamente 200-800 Angstroms) en que el contenido de lípido es mayor de aproximadamente el 30 por ciento en moles de colesterol, estando el porcentaje específico ajustado para proporcionar la terapia óptima. Los liposomas útiles pueden generarse mediante método de evaporación de fase inversa, usando una composición lipídica que incluye, por ejemplo, fosfatidilcolina, colesterol y fosfatidiletanolamina derivatizada con PEG (PEG-PE). Los liposomas se extruyen a través de filtros de tamaño de poro definido para dar liposomas con el diámetro deseado.
Para el tratamiento de enfermedades o trastornos neurológicos, una variante de herregulina puede adsorberse a una membrana, tal como una membrana silástica, que puede implantarse en las proximidades del tejido neural dañado, como se describe en WO 91/04014.
La dosificación de una composición con variante de herregulina a emplear terapéuticamente depende, por ejemplo, de los objetivos terapéuticos, la vía de administración y el estado del paciente. Por consiguiente, es necesario que el médico valore cuantitativamente la dosificación y modifique la vía de administración según sea necesario para obtener el efecto terapéutico óptimo. Una dosificación diaria típica puede variar entre aproximadamente 1 \mug/kg hasta 100 mg/kg de peso corporal o más al día, pero habitualmente está entre aproximadamente 10 \mug/kg/día y 10 mg/kg/día. Generalmente, el médico comienza con una dosificación baja de una composición farmacéutica con variante de herregulina y aumenta la dosificación hasta que se alcanza el efecto terapéutico deseado.
La administración de una variante de herregulina de la invención puede combinarse con otros regímenes terapéuticos. Para el tratamiento de afecciones neurológicas, una variante de herregulina se combina opcionalmente, o se administra en concierto, con otro factor neurotrófico para conseguir un efecto terapéutico deseado. Por ejemplo, una variante de herregulina puede usarse junto con factor de crecimiento nervioso (NGF), una neurotrofina (por ejemplo, NT-3, -4, o -5), factor nervioso derivado del cerebro (BDNF), y factor de crecimiento similar a insulina (por ejemplo, IGF-1 o IGF-2), gas6, u otro factor neurotrófico para conseguir un efecto estimulador sinérgico sobre neuronas. Las dosificaciones adecuadas para los factores neurotróficos no difieren de las conocidas en el sector para dichas moléculas.
Para el tratamiento del cáncer, pueden administrarse radiación y/o un agente quimioterapéutico de forma concomitante con una variante de herregulina. Los programas de preparación y dosificación adecuados para dichos agentes quimioterapéuticos son según lo recomendado por el fabricante o según lo determinado empíricamente por el médico. Para programas de preparación y dosificación para agentes quimioterapéuticos convencionales, véase Chemotherapy Service (Perry ed., Williams & Wilkins 1992). La administración del agente quimioterapéutico puede preceder, o seguir, a la administración de la variante de herregulina, o el agente quimioterapéutico puede administrarse simultáneamente con ésta. Los anticuerpos contra antígenos asociados a tumores, tales como anticuerpos que se unen a al receptor EGFR, ErbB-2, ErbB-3, o ErbB-4, o factor de crecimiento endotelial vascular (VEGF) también pueden co-administrase con una variante de herregulina, como puede ser el caso de una o más citoquinas.
Métodos No Terapéuticos
Las variantes de herregulina según la presente invención también pueden emplearse en diversas aplicaciones no terapéuticas, tales como métodos de cultivo celular y métodos de diagnóstico. Por ejemplo, puede usarse una variante de herregulina para promover la supervivencia, proliferación o diferenciación de células ex vivo, tales como células gliales, de Schwann y musculares. Los cultivos de dichas células son útiles para producir factores específicos de células, tales como, por ejemplo, el receptor del factor de crecimiento nervioso (P75^{NGFR}) que es un factor específico de células de Schwann. Los factores específicos de células pueden emplearse directamente como herramientas de diagnóstico o emplearse para generar anticuerpos para uso en diagnóstico.
Los cultivos celulares ex vivo también puede usarse como prótesis celulares para transplante. Por ejemplo, cultivos de células de Schwann pueden transplantarse en áreas de médula espinal dañada para promover la regeneración de axones centrales interrumpidos o pueden usarse para ayudar en la reparación de lesiones nerviosas periféricas.
Por consiguiente, puede realizarse un método de cultivo celular en el que se proporcionan células sensibles a herregulina en un medio de cultivo celular adecuado. Los medios de cultivo tisular adecuados son bien conocidos por los expertos en la materia e incluyen, aunque sin limitación, Medio Mínimo Esencial (MEM), RPMI-1640 y Medio Eagle Modificado por Dulbecco (DMEM). Estos medios de cultivo tisular están disponibles en el mercado de Sigma Chemical Company (St. Louis, MO) y GIBCO (Grand Island, NY). Las células se cultivan en el medio de cultivo celular en condiciones que permiten que las células crezcan en presencia de una variante de herregulina. Los procedimientos adecuados para el cultivo celular no difieren de procedimientos conocidos e incluyen, por ejemplo, cultivo líquido, cultivo en agar y cultivo en un coágulo.
Las células se cultivan en presencia de una cantidad eficaz de una variante de herregulina. La cantidad de variante de herregulina puede variar, dependiendo del tipo celular y de las condiciones de cultivo celular, pero generalmente está en el intervalo de aproximadamente 10 ng/ml a aproximadamente 1 mg/ml. Una concentración apropiada para un cultivo celular dado puede determinarse fácilmente empíricamente por los expertos en la materia.
Técnicas para cultivar células de Schwann ex vivo se describen en Li et al. (supra), y Sklar et al. (supra) describen el cultivo ex vivo de mioblastos humanos clonales. Una variante de herregulina de la invención puede sustituir a los otros polipéptidos de herregulina usados en estos métodos.
Una variante de herregulina también puede emplearse en el diagnóstico de un cáncer caracterizado por sobreexpresión de erbB (por ejemplo, erbB2). En un método de diagnóstico según la presente invención, se obtiene una muestra de un individuo y se pone en contacto con una variante de herregulina en condiciones que permiten la unión específica entre la variante y cualesquiera receptores ErbB presentes en la muestra. La muestra puede ser una muestra de tejido, una muestra de fluido corporal o una célula. En el caso de un tumor sólido, puede tomarse una muestra de tejido de un tumor extirpado quirúrgicamente y prepararse para un ensayo mediante técnicas convencionales. En el caso de linfomas y leucemias, se obtiene una muestra que contiene linfocitos, células de leucemia o tejidos linfáticos. Otras muestras, incluyendo muestras de orina, lágrimas, suero, líquido cefalorraquídeo, heces, esputo, extracto celular y similares, pueden ser útiles para diagnosticar tumores particulares. Como se usa con respecto a este método, la expresión "unión específica" significa que la variante de herregulina se une a un receptor ErbB con una afinidad que es lo suficientemente alta para que la variante de herregulina no reaccione sustancialmente de forma cruzada con otros componentes presentes en la muestra en las condiciones de reacción adecuadas.
La cantidad de variante de herregulina que se une específicamente a la muestra se determina como una indicación del contenido de receptor ErbB. Por ejemplo, una muestra de tejido puede obtenerse de un tumor primario y usarse para preparar bloques fijados con formalina, incluidos en parafina. Véase Muss et al., supra; Press et al., Cancer Research 54: 2771-77 (1994). A continuación se preparan secciones tisulares según técnicas conocidas.
Una variante de herregulina se pone en contacto con una sección tisular en condiciones que permitan la unión específica entre la variante y receptores ErbB presentes en la sección. La unión se detecta generalmente usando una marca, tal como un radioisótopo, una marca fluorescente, o un sistema de marcado enzima-sustrato. La marca puede conjugarse directamente con la variante de herregulina, como se ha descrito anteriormente.
Como alternativa, la marca puede estar unida a la variante de herregulina indirectamente. Por ejemplo, la marca puede conjugarse a un anticuerpo anti-variante de herregulina o conjugarse a biotina o avidina y usarse con un anticuerpo anti-variante de herregulina conjugado a avidina o biotina (respectivamente), como se describe generalmente en Current Protocols in Immunology (supra). La unión selectiva entre biotina y avidina enlaza la marca a la variante de herregulina.
Aunque normalmente se contempla el análisis in vitro, también pueden realizarse análisis in vivo usando una variante de herregulina conjugada con una marca detectable adecuada (por ejemplo, In para la formación de imágenes). Véase por ejemplo, la Patente de Estados Unidos Nº 4.938.948.
Un método de diagnóstico descrito en este documento puede usarse en combinación con otras evaluaciones de diagnóstico/terapéuticas tales como determinación del estado de los ganglios linfáticos, tamaño del tumor primario, grado histológico, estado de estrógeno o progesterona, contenido de ADN del tumor (ploidía), o proliferación celular (fracción de la fase S). Véase Muss et al., New Eng. J. Med. 330: 1260-66 (1994).
Una variante de herregulina según la presente invención también es útil como patrón en ensayos para herregulinas (tales como un radioinmunoensayo, un inmunoensayo ligado a enzimas y un ensayo con radiorreceptor), en una técnica de purificación por afinidad (por ejemplo, para un receptor ErbB tal como receptor ErbB-3 o ErbB-4), en un ensayo de unión competitiva al receptor. Una variante de herregulina también puede emplearse como inmunógeno para generar anticuerpos anti-variante de herregulina útiles en la detección y/o purificación de variantes de herregulina.
Kits de Diagnóstico y Artículos de Fabricación
Un kit de diagnóstico puede ser útil para poner en práctica los métodos descritos anteriormente es decir, una combinación envasada de reactivos para su uso para ensayar una muestra. Los componentes del kit se proporcionan habitualmente en proporciones predeterminadas. Un kit para detectar receptores ErbB puede incluir, por ejemplo, una variante de herregulina marcada con una marca adecuada o una variante de herregulina con un reactivo o reactivos marcados para el marcado indirecto. Si la marca es una enzima, el kit habitualmente incluye cualquier sustrato o cofactor requerido por la marca enzimática. Otros aditivos, tales como estabilizantes, tampones y similares, también pueden incluirse en el kit. Los reactivos del kit pueden proporcionarse en forma de polvos secos, habitualmente liofilizados, junto con excipientes para preparar soluciones de reactivos del kit de la concentración apropiada. Los kits habitualmente también incluyen instrucciones para realizar el ensayo para el que está diseñado el kit.
También puede proporcionarse un artículo de fabricación que contenga una composición farmacéutica con variante de herregulina útil para el tratamiento de un trastorno descrito anteriormente. El artículo de fabricación incluye un recipiente y una marca. Los recipientes adecuados incluyen, por ejemplo, frascos, viales, jeringas y tubos de ensayo. El recipiente puede estar hecho de cualquiera de diversos materiales, tales como vidrio o plástico y puede tener un puerto de acceso estéril. La marca en, o asociada con, el recipiente indica el trastorno para cuyo tratamiento se usará la composición.
El artículo de fabricación puede ser un componente de un kit que incluye un segundo recipiente que incluye un tampón farmacéuticamente aceptable, tal como solución salina tamponada con fosfato, solución de Ringer o solución de dextrosa. El kit también puede incluir otros materiales que son deseables desde un punto de vista comercial o del usuario, tales como otros tampones, diluyentes, filtros, agujas, jeringas e insertos en el envase con instrucciones de uso.
Los siguientes ejemplos se ofrecen a modo de ilustración y no a modo de limitación.
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Ejemplo 1
Determinación del Dominio Similar a EGF Mínimo de Herregulina-\beta1
La parte más pequeña de HRG-\beta1 EGF que proporciona unión de alta afinidad al receptor en el contexto de presentación en fagos se determinó preparando vectores fagémidos que producían HRG-\beta1 147-227, 147-244, 177-227, o 177-244 fusionados al extremo C de pIII de M13. Estos fragmentos de dominio similar a HRG-\beta1 EGF se amplificaron a partir del vector pHL89 (que se describe en Holmes, et al., Science 256: 1205-10 [1992]) mediante PCR con cebadores que tienen salientes que contienen NsiI/XbaI.
Estos fragmentos se insertaron en el vector de presentación en fagémidos pam-g3 mediante ligamiento-digestión por restricción en los mismos puntos para generar construcciones pHRG1-g3 (177-227), pHRG2-g3 (177-244), pHRG4-g3 (147-227) y pHRG5-g3 (147-244). pam-g3 era un derivado de phGHam-g3, que se diseñó para presentación en fagos de hormona del crecimiento humana (hGH) y se describió en Lowman et al., Biochemistry 30: 10832-38 (1991). pam-g3 se produjo eliminando el gen de hGH presente en phGHam-g3 y sustituyendo este gen por un fragmento "de relleno", que proporciona espacio para escisión en los puntos de restricción usados para la clonación. pHRG1-g3 contenía una mutación Ala227Val que se había introducido al generar la construcción. Una plantilla que contenía uracilo de cadena sencilla se produjo a partir de esta construcción y se usó en mutagénesis dirigida para restaurar Ala227, generando pHRG6-g3 (177-227). En cada una de las construcciones descritas anteriormente, el fragmento de dominio similar a HRG-\beta1 EGF estaba unido al resto 247 de pIII.
En un esfuerzo para determinar si la inclusión de un enlazador flexible extendido en la unión entre HRG-\beta1 EGF y pIII podría aliviar la potencial interferencia de pIII en la unión a ErbB-3, se prepararon dos construcciones que tenían enlazadores en esta unión a partir de la plantilla pHRG1-g3. pHRG8-g3 expresaba HRG-\beta1 177-228 unido a pIII 323 a través de un enlazador que contiene tres repeticiones de GGGS consecutivas (SEC ID Nº: 34), y pHRG11-g3 expresaba HRG-\beta1 177-230 unida a pIII 247 a través de un enlace GGGSGGG (SEC ID Nº: 35).
Los dominios similares a HRG-\beta1 EGF expresados a partir de las construcciones descritas anteriormente se designan en este documento eliminando la "p" y la "-g3" que aparecen en el nombre de la construcción. Por lo tanto, el dominio similar a HRG-\beta1 EGF expresado a partir de la construcción pHRG2-g3 se designa como "HRG2".
Los dominios se presentaron de forma monovalente en fagos como proteínas de fusión pIII, según lo descrito por Bass et al., Proteins 8: 309-14 (1990), y después se analizó su unión a la fusión de alta afinidad de receptor ErbB-2/3-Ig (ErbB-2/3-Ig) usando la técnica de ELISA de fagos descrita por Cunningham et al., EMBO J. 13: 2508-15 (1994), con ligeras modificaciones. Para producir los fagos que presentaban los dominios, las mezclas de reacción de mutagénesis se electrotransformaron en células XL1-Blue^{TM} (Stratagene, Inc., La Jolla, CA), según el protocolo del fabricante. Las células transformadas se infectaron a continuación con 10^{11} unidades formadoras de placa (pfu) del fago ayudante M13K07 (Promega Corp., Madison, WI). Se prepararon soluciones madre de fago (aproximadamente 10^{14} fagémidos/ml) precipitando caldos de cultivo de las células después de 18-24 horas (h) de cultivo con PEG al 20% (2000)/NaCl 2,5 M, según el método de Sambrook y Maniatis, Molecular Cloning a Laboratory Manual Cold Spring Harbor Press 429 (1989). Los fagos se resuspendieron en solución salina tamponada con fosfato (PBS: fosfato sódico 0,01 M, NaCl 0,1 M, pH 7,5).
Se prepararon fusiones de receptor ErbB-Ig usando vectores que expresaban el dominio extracelular (ECD) del receptor ErbB-2, ErbB-3 o ErbB-4 fusionado a un dominio constante de IgG humana. En primer lugar un único punto MIuI se insertó en un vector que expresa una cadena pesada de IgG humana (pDR2) en la región que codifica el dominio bisagra de la inmunoglobulina. También se introdujeron puntos MIuI en un conjunto de vectores de expresión de ErbB en la región que codifica el ECD/uniones transmembrana de estos receptores. Toda la mutagénesis se realizó según el método de Kunkel et al., Methods Enzymol. 154: 367-82. (1987).
Los puntos MIuI se usaron para preparar construcciones que expresaban la fusión de receptor ErbB-Ig deseada. Las uniones de fusión de las diversas fusiones del receptor eran las siguientes (en orden desde el extremo N al extremo C): para ErbB-2, Glu646 de ErbB2 se fusionó a Thr-Arg-Asp-Lys-Thr (TRDKT; SEC ID Nº: 36), que se fusionó a His224 de VH (H224_{VH}); para ErbB-3, Leu617 de ErbB-3 se fusionó a TRDKT-H224_{VH}; para ErbB-4, Gly640 de ErbB-4 se fusionó a TRDKT-H224_{VH}. Los números de restos del receptor ErbB se indican según el sistema de numeración de Plowman et al. PNAS USA 90: 1746-50 (1993). La secuencia TR conservada se obtenía del punto MIuI, y la secuencia DKT conservada se obtenía de un enlazador. Las construcciones de expresión final tenían una estructura principal de plásmido de tipo pRK donde la expresión eucariota estaba impulsada por un promotor de citomegalovirus (CMV).
Las fusiones de receptor se expresaron a partir de estas construcciones, se purificaron y se les dejó formar dímeros unidos mediante puentes disulfuro. Las fusiones homodiméricas de receptor ErbB-2, ErbB-3 y ErbB-4-Ig se produjeron transfectando células con la construcción que codifica la fusión de receptor apropiada. Las fusiones de receptor heterodiméricas se generaron co-transfectando dos vectores de expresión que codifican diferentes fusiones de receptor en las mismas células. Las fusiones de receptor secretadas resultantes eran mezclas de dos tipos de homodímeros y el heterodímero esperado.
Para expresar las fusiones de receptor, células HEK-293 adherentes (ATCC No. CRL1573) se transfectaron con el vector o vectores de expresión apropiados usando el método de precipitación con fosfato cálcico descrito por Gorman et al., DNA and Protein Eng. Tech. 2: 3-10 (1990). El medio que contenía suero se sustituyo por medio libre de suero a las 15 h después de la transfección y las células transfectadas se cultivaron sin suero durante 5-7 días.
El medio acondicionado resultante se recogió y se pasó a través de columnas Protein A (1 ml Pharmacia HiTrap^{TM}, Piscataway, NJ). Las fusiones de receptor purificadas se eluyeron con ácido cítrico 0,1 M (pH 4,2) en tubos que contenían Tris-HCl 1 M (pH 9,0). Las proteínas eluídas se dializaron a continuación contra PBS y se concentraron usando filtros Centri-prep-30^{TM} (Amicon, Beverly, MA). Se añadió glicerol a una concentración final del 25% y la preparación se almacenó a -20ºC. La concentración de fusión de receptor se determinó mediante un Fc-ELISA.
Placas de microvaloración (placas de 96 pocillos Nunc Maxisorp^{TM}, Inter Med, Dinamarca) para ELISA de fagos se prepararon de la siguiente manera. Los pocillos se pre-recubrieron durante una noche con 0,5 \mug de anticuerpos de conejo anti-IgG humana (específicos del fragmento Fc gamma) (Jackson Immunoresearch, West Grove, PA) en 100 \mul de NaCO_{3} 50 mM (pH 9,6). Los pocillos se bloquearon durante 30 minutos (min) con 200 \mul de PBS que contenía el 0,1% de albúmina de suero bovino (BSA) y se aclararon con tampón de lavado (PBS que contenía Tween 20^{TM} al 0,05%). Los pocillos se recubrieron a continuación con 0,1 \mug de ErbB-2/3-Ig en tampón de unión (PBS, BSA al 0,1%, Tween 20^{TM} al 0,05%) durante 1 h, y se lavaron de nuevo.
Diluciones sucesivas de ErbB-2/3-Ig soluble (competidor) y una concentración de fago predeterminada para dar el 60% de saturación (sin competidor) se añadieron a los pocillos en 100 \mul de tampón de unión. Después de la incubación durante 2 h a temperatura ambiente, las placas se lavaron exhaustivamente y se trataron con una dilución 1:900 de conjugado de peroxidasa de rábano picante anti-M13 (Pharmacia, Piscataway, NJ) durante 20 min. La cantidad de unión al fago se determinó ensayando la actividad de peroxidasa de rábano picante usando solución de sustrato de o-fenilendiamina diclorhidrato (Sigma Chemical Company, St. Louis, MO). Los valores de CE_{50} se calcularon como la concentración de ErbB-2/3-Ig soluble requerida para competir con la mitad del fago de la placa.
Los resultados se muestran en la Tabla 3.
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TABLA 3 Variantes de Herregulina-Fago Iniciales
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Todas las soluciones madre de fagos se unían específicamente a ErbB-2/3-Ig inmovilizado y podían sufrir la competencia de valores de CE_{50} similares (5-42 nM). Estos valores eran aproximadamente 100 veces más altos que la constante de disociación (K_{d}) medida anteriormente. Holmes, et al., supra. Sin embargo, los valores de CE_{50} obtenidos de la ELISA de fagos a menudo son más altos que la auténtica K_{d}, particularmente para interacciones de alta afinidad. Esto puede deberse a la alta concentración de recubrimiento con receptor necesaria para dar una señal razonable para el fago unido, un bajo porcentaje de receptor activo en soluciones competidoras, o interferencia por parte del enlace de la proteína a pIII.
En cualquier caso, la HRG-\beta1 147-176 no parecía aumentar la unión del fago que presenta el dominio similar a HRG-\beta1 EGF a ErbB-3-Ig, mientras que HRG-\beta1 228-244 contribuía ligeramente a la afinidad de unión. Por lo tanto, el dominio similar a EGF mínimo de HRG-\beta1 se definió como HRG-\beta1 177-228.
También se realizó ELISA de fagos para las construcciones que codifican fusiones de HRG-\beta1 EGF-pIII que contienen enlazadores insertados entre HRG-\beta1 EGF y el fragmento pIII. Se observaron mejoras moderadas de la afinidad de unión para las fusiones que contenían enlazador, junto con una expresión aumentada de fusiones funcionales, según se determinó mediante valoraciones cuantitativas de unión de las soluciones madre de fagos. La fusión de HRG-\beta1 EGF mediante un enlazador al resto 323 de pIII, en lugar de al resto 247 (pHRG8-g3) dio como resultado una ligera mejora de la afinidad. Esta construcción se usaba, por lo tanto, como el vector plantilla para la construcción de bibliotecas de presentación en fagos.
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Ejemplo 2
Identificación de Restos Activos en el Dominio EGF de Herregulina-\beta1 mediante Barrido de Alanina
Este ejemplo describe la identificación de restos activos en el dominio similar a EGF de herregulina-\beta1 (HRG-\beta1) (HRG-\beta1 177-229) que juega un papel en la unión de HRG-\beta1 a los receptores ErbB-3 y ErbB-4. Los restos activos se identificaron mutando aminoácidos individuales en este dominio a alanina. Los dominios mutados (en lo sucesivo en este documento "variantes") se presentaron de forma monovalente en el fago en forma de proteínas de fusión a pIII y las afinidades de variantes por ErbB-3 y ErbB-4 se determinaron mediante ELISA de fagos. Las variantes seleccionadas se expresaron como proteínas de fusión a tiorredoxina, cuya afinidad por ErbB-3 y ErbB-4 también se ensayó.
Mutagénesis por Barrido de Alanina y Presentación en Fagos
Se generaron variantes sustituidas por alanina mediante mutagénesis dirigida según Kunkel et al., Methods Enzymol. 154: 367-82 (1987) (en lo sucesivo en este documento "mutagénesis de Kunkel"), usando una plantilla de ADN de cadena sencilla que contiene uracilo preparada a partir de pHRG2-g3. pHRG2-g3, que se describe en el Ejemplo 1, expresaba HRG-\beta1 177-244 fusionada a pIII 247. Se usó una serie de oligonucleótidos para generar una serie de construcciones que expresaban una serie de variantes en las que se mutaron restos consecutivos a alanina. Se prepararon soluciones madre de fagos a partir de estas construcciones como se describe en el Ejemplo 1, excepto que se usó PEG (8000) para precipitar el fago. Las afinidades de las variantes sustituidas por alanina por ErbB-3-Ig y ErbB-4-Ig se determinaron mediante ELISA de fagos como se describe en el Ejemplo 1. Los resultados se muestran en la Figura 2, que indica la proporción de la CE_{50} para cada variante comparada con la CE_{50} para HRG-\beta1 177-244 de tipo salvaje, también presentada en fagos. En este diagrama, una proporción de uno indica que no había diferencia de afinidad por la unión a la variante en comparación con HRG-\beta1 177-224 de tipo salvaje, y una proporción de, por ejemplo, cinco indica que la variante se unía al receptor con una afinidad cinco veces menor que la de HRG-\beta1 177-224 de tipo salvaje.
Expresión, Purificación y Ensayo de Variantes Sustituidas por Alanina Solubles
Varias variantes sustituidas por alanina se expresaron en forma soluble como proteínas de fusión a tiorredoxina (Trx). Para preparar vectores de expresión adecuados, un vector de expresión de Trx se generó en primer lugar a partir de pET23a (Novagen, Inc., Madison, WI). pET23a se digirió con NdeI (que corta en la base 238) y HindIII (que corta en la base 173) y se inserto un fragmento que codifica Trx. Este fragmento se obtuvo de pTrxFus (bases 2722-3180; Invitrogen Corp., San Diego, CA). El punto NdeI, que incluye el punto de inicio de la traducción de Trx, se destruyó a continuación cortando con NdeI y ligando de nuevo con Klenow. Esto eliminaba el sitio NdeI, al tiempo que conservaba el inicio de la traducción de Trx.
Los vectores que codifican variantes de HRG-\beta1 sustituidas por alanina se generaron inicialmente mediante mutagénesis de Kunkel en un vector pRK5.gDhrgB1 (descrito en Gorman et al., DNA Prot. Eng. Tech. 2: 2-10 [1990]). Las secuencias que codifican las variantes podían escindirse de estos vectores usando NdeI y BamHI. Para facilitar la clonación de dichos fragmentos en el vector de expresión de Trx, se usó mutagénesis de Kunkel para introducir un sitio KpnI en el vector pRK5.gDhrgB1 que codifica HRG-\beta1 146-244 de tipo salvaje inmediatamente cadena arriba del sitio NdeI (en la base 5407). Un fragmento KpnI-BamHI que codifica HRG-\beta1 146-244 de tipo salvaje se escindió a continuación de pRK5.gDhrgB1 y se insertó en el vector de expresión de Trx en los sitios de clonación KpnI y BamHI en el extremo 3' de la secuencia que codifica Trx. Esto introdujo un sitio NdeI inmediatamente cadena abajo del sitio KpnI. En el vector resultante, la secuencia de HRG-\beta1 de tipo salvaje podía eliminarse digiriendo con NdeI y BamHI y sustituirse por un fragmento NdeI-BamHI que codifica una variante. La serie de vectores de expresión de Trx-variante obtenida de este modo expresaba fusiones de Trx-variante que contenían un punto de reconocimiento de enteroquinasa proteasa (DDDDK; SEC ID Nº: 37) entre las secuencias de Trx y la variante.
La expresión de proteínas de fusión Trx-variante era impulsada por el promotor de T7 inducible a partir de pET23a. La clonación, el cultivo celular y la expresión se realizaron como se describe en el manual del sistema Novagen pET. En resumen, la clonación se realizó en células XL1-Blue^{TM} (Stratagene, Inc., La Jolla, CA) y la expresión de proteína soluble en células huésped BL21DE3 (Novagen, Inc., Madison, WI). Las células BL21DE3 que contenían un vector de expresión de Trx-variante se cultivaron a 37ºC en medio LB hasta que la DO_{550} alcanzaba 0,3-0,6. La expresión de Trx-variante se indujo a continuación mediante la adición de isopropil-\beta-D-tiogalactopiranósido 0,4 nM (IPTG), y se permitió que el crecimiento continuara durante 2-4 h a 28ºC. Las células se recogieron mediante centrifugado, se resuspendieron en Tris-HCl 0,02 M, EDTA 0,025 M (pH 7,5) a un volumen que era 1/20avo del volumen del cultivo celular.
Las células se lisaron mediante congelación en hielo seco, descongelación a 37ºC, seguida de sonicación vigorosa. El ciclo de congelación, descongelación y sonicación se repitió tres veces. La proteína se disolvió adicionalmente en GdHCl 6 M, Tris-HCl 0,1 M (pH 8,8), se sometió a sulfitolisis mediante la adición de Na_{2}SO_{3} 0,1 M, Na_{2}S_{4}O_{6} 0,2 M y se agitó a temperatura ambiente durante 1,5 h. la proteína se dializó en Tris-HCl 0,05 M (pH 7,5), metionina 0,01 M. Después de la diálisis, el material insoluble se eliminó mediante centrifugado a 35K x g durante 15 min.
El sobrenadante se purificó mediante cromatografía Fast Flow Q Sepharose^{TM} (Pharmacia, Piscataway, NJ) usando una columna de 15 ml equilibrada con Tris-HCl 0,01 M (pH 7,5). La proteína se eluyó usando un gradiente de NaCl 0-2 M con un caudal de 5 ml/min. La fusiones de Trx-variante se eluyeron entre NaCl 0,5-0,6 M y se volvieron a plegar durante una noche a temperatura ambiente después de la adición de cisteína 1 mM. La preparación resultante se dializó en Tris-HCl 0,05 M (pH 7,5), metionina 0,01 M. se descubrió que las fusiones de Trx-variante eran esencialmente homogéneas según se determinó mediante análisis de aminoácidos y SDS-PAGE.
Las afinidades de las fusiones de Trx-variante por las fusiones de receptor ErbB-Ig se determinaron midiendo la inhibición de la unión de ^{125}I-HRG-\beta1 177-244 a ErbB-3-Ig y ErbB-4-Ig. Las fusiones de receptor recubrieron placas (Nunc Maxisorp C^{TM} pocillos con tiras separables, Inter Med, Dinamarca) mediante anti-IgG humana, como se describe en el Ejemplo 1 para el ELISA de fagos. Se realizaron ensayos de unión con una cantidad constante de ^{125}I-HRG-\beta1 177-244 (100-300 pM) y concentraciones variables (100 pM - 4 \muM) de fusión Trx-variante sin marcar. Después de la incubación durante 1-3 h a temperatura ambiente, las placas se lavaron y la cantidad de ^{125}I-HRG-\beta1 177-244 unida en cada pocillo se contó en un contador gamma (Isodata, ICN Biomedic Systems, Huntsville, AL). Para los ensayos de unión a ErbB-3, el tampón de bloqueo era TBST (Tris-HCl 0,025 M [pH 7,5], NaCl 0,15 M, Tween 20^{TM} al 0,02%) que contenía BSA al 1%; el tampón de unión era medio de cultivo celular RPMI 1640^{TM} (Gibco-BRL, Gaithersburg, MD) que contenía glutamina 2 mM, 100 U/ml de penicilina, 100 \mug/ml de estreptomicina, tampón HEPES 10 mM (pH 7,2), BSA al 0,2%; y el tampón de lavado era TBST. Para los ensayos de unión a ErbB-4, se usó PBS que contenía BSA al 1% como tampones de bloqueo y unión, y el tampón de lavado era PBS que contenía Tween 20^{TM} al 0,05%.
Los resultados se muestran en las Tablas 4 y 5.
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TABLA 4 Valores de CE_{50} para Unión de Fago y Variantes Sustituida por Alanina Soluble al Receptor ErbB-3
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TABLA 5 Valores de CE_{50} para Unión de Fago y Variantes Sustituida por Alanina Soluble al Receptor ErbB-4
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Ejemplo 3
Selección de Variantes del Dominio EGF de Herregulina-\beta1 Usando Presentación en Fagos Monovalente
Este ejemplo describe la selección de variantes de HRG-\beta1 que contienen restos correspondientes al dominio similar a EGF mínimo (HRG-\beta1 177-228). Para estas variantes, los números de restos también se expresan, entre paréntesis, en términos de la posición del resto en el dominio similar a EGF mínimo (es decir, HRG-\beta1 EGF 1-52).
Se prepararon variantes de HRG-\beta1 EGF y se seleccionaron para la unión a ErbB-3-Ig usando presentación en fagos monovalente, según el método de Bass et al., Proteins 8: 309-14 (1990). Como se describe con detalle posteriormente, se preparó un vector fagémido de HRG-\beta1 EGF, en el que HRG-\beta1 EGF se fusionó a un fragmento C-terminal de la proteína de la envuelta pIII de M13. Se realizó mutagénesis de Kunkel para introducir codones de terminación en este vector en puntos seleccionados para aleatorización. Esta etapa asegura que el vector de partida es incapaz de expresar el polipéptido de tipo salvaje. Tramos de cuatro a seis restos por biblioteca se aleatorizaron de forma lineal, excepto las seis cisteínas, Phe189 (HRG-\beta1 EGF Phe13) y los dos restos más C-terminales (véase la Figura 3). Phe189 no se alteraba puesto que este resto se conserva como resto aromático en EGF y TGF-\alpha y forma una interacción de pegado con Tyr208 (HRG-\beta1 EGF Tyr32) Jacobsen et al., Biochemistry 35: 3402-17 (1996). De este modo HRG-\beta1 EGF estaba abarcado en ocho bibliotecas, designadas A-E, G, H e I.
La biblioteca E, que abarcaba HRG-\beta1 202-209 (HRG-\beta1 EGF 26-33), contenía una eliminación de tres restos. La región eliminada corresponde a un giro desordenado entre la segunda y tercera lámina \beta de HRG-\beta1 EGF, y los aminoácidos equivalentes están ausentes en EGF y TGF-\alpha. Una variante de HRG-\beta1 EGF de control en la que HRG-\beta1 202-204 (HRG-\beta1 EGF 26-28) de HRG8 se eliminan (HRG63) se unía a ErbB-3-Ig con una afinidad similar a la del tipo salvaje (Tabla 13).
Una biblioteca adicional (F) se creó para aleatorizar un parche superficial compuesto por cadenas laterales de la primera y segunda láminas \beta, que incluía HRG-\beta1 178, 180, 198, y 200 (HRG-\beta1 EGF 2, 4, 22 y 24).
Los puntos seleccionados en los vectores de partida se aleatorizaron mediante mutagénesis de Kunkel para producir bibliotecas de HRG-\beta1 EGF. Se produjeron fagos que presentaban HRG-\beta1 EGF mutados a partir de las bibliotecas en condiciones tales que, estadísticamente, cada partícula de fago presentaba no más de una copia del HRG-\beta1 EGF mutado. Véase Bass et al., supra. Estos fagos se seleccionaron a continuación por la unión a (se clasificaron contra) ErbB-3-Ig inmovilizado en una placa de ELISA. Los fagos unidos se eluyeron y se usaron para reinfectar células huésped, que se usaron para producir nuevos fagos para otra ronda de clasificación. Este proceso se repitió de seis a siete veces para cada biblioteca. A continuación se secuenciaron doce clones del fago seleccionado de cada biblioteca.
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Construcción de Bibliotecas de Fagos
Se construyeron bibliotecas de fagos mediante mutagénesis de Kunkel usando una plantilla de ADN de cadena sencilla que contenía uracilo preparada a partir de pHRG8-g3. pHRG8-g3, que se describe en el Ejemplo 1, expresaba HRG-\beta1 177-228 (HRG-\beta1 EGF 1-52) fusionado mediante un enlazador al resto 323 de pIII. Para cada biblioteca, codones de terminación TAA y TGA se instalaron en posiciones seleccionadas para aleatorización para generar plantillas a medida, que eliminaban el fondo de tipo salvaje de las reservas. Las posiciones se aleatorizaron completamente mediante mutación a codones NNS (donde N es cualquiera de las cuatro bases y S es G o C). Se usó un oligonucleótido para la reacción de mutagénesis de cada biblioteca excepto para la biblioteca F, para la cual se usaron simultáneamente dos oligonucleótidos (uno que aleatorizaba HRG-\beta1 178 y 180 [HRG-\beta1 EGF 2 y 4] y el otro que aleatorizaba HRG\beta-1 198 y 200 [HRG-\beta1 EGF 22 y 24]). Los oligonucleótidos de mutagénesis contenían salientes de 18 bases en cualquier lado de los restos aleatorizados.
Las mezclas de reacción de mutagénesis se electro-transformaron en células XL-1 Blue (Stratagene, Inc., La Jolla, CA), según el protocolo del fabricante. Las células transformadas se infectaron a continuación con 10^{11} pfu de fago ayudante M13K07 (Promega Corp., Madison, WI), y se prepararon soluciones madre de fagos (aproximadamente 10^{14} fagémidos/ml) como se describe en el Ejemplo 1.
Entre 1,0 x 10^{8} y 6,4 x 10^{8} transformantes se obtuvieron para cada biblioteca, lo que significaba que las bibliotecas que contienen cinco o menos codones aleatorizados tenían una excelente representación de las posibles combinaciones de secuencia de aminoácidos (3,36 x 10^{7} posibles secuencias de ADN; 3,2 x 10^{6} posibles secuencias de aminoácidos). La biblioteca B, que contiene seis codones aleatorizados (1,1 x 10^{9} secuencias de ADN), tenía 4,8 x 10^{6} transformantes totales.
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Selección de Fagos para Unión a ErbB-3-Ig
Se prepararon fagos monovalentes y se realizó la selección en ErbB-3-Ig unido previamente a placas de microvaloración mediante captura con anticuerpos policlonales para el fragmento Fc humano, como se describe en el Ejemplo 1. Aproximadamente 10^{12} fagos en 100 \mul de tampón de unión (PBS, BSA al 0,1%, Tween 20^{TM} al 0,05%) se aplicaron a una placa recubierta con ErbB-3-Ig y una placa de control a la que no se había añadido ErbB-3-Ig. Después de una incubación de 2 h a temperatura ambiente, las placas se lavaron exhaustivamente (12x) y los fagos se eluyeron añadiendo 100 \mul de una solución de HCl 50 mM y Tween^{TM} 20 al 0,05% y agitando durante 10 min.
Los eluatos se neutralizaron con 10 \mul de Tris-HCl 1 M (pH 8,0) y se usaron 20 \mul para valoración cuantitativa en células XL-1 Blue en fase logarítmica. El resto se usó para infectar 1 ml de células XL-1 Blue en fase logarítmica (30 min a 37ºC), que a continuación se superinfectaron con 2 x 10^{10} pfu de fago M13KO7 y se cultivaron en 25 ml de caldo 2YT (16 g/l de triptona, 10 g/l de extracto de levadura, 5 g/l de NaCl) que contenía 50 \mug/ml de carbenicilina durante 18-24 h. Los fagos se recogieron como se ha descrito anteriormente y el ciclo se repitió. Las bibliotecas se enriquecieron rápidamente, de modo que en la roda seis de selección la proporción de fago eluído de los pocillos positivos (recubiertos con ErbB-3-Ig) con respecto a los pocillos negativos (pre-recubrimiento anti-Fc humano solamente) estaba entre 39 y 9200.
Después de la ronda seis (bibliotecas A, B, D-F) o ronda siete (bibliotecas C, G-I) de selección, doce clones de cada biblioteca se tomaron aleatoriamente y se secuenciaron mediante el método didesoxi. Véase Sanger et al., PNAS USA 74: 5463-67 (1977). Los aminoácidos en las posiciones aleatorizadas deducidos a partir de las secuencias de ADN se muestran en las Tablas 6-12 (un "." indica un resto que es idéntico al resto de tipo salvaje). Los restos consenso seleccionados en cada posición se presentan gráficamente en la Figura 3. En general, había gran número de mutaciones, en algunos casos con cambios drásticos en el carácter de las cadenas laterales. En varias posiciones que clasificaban para un resto particular, se descubrió una mezcla de codones de ADN, lo que proporcionaba confianza en que las bibliotecas tenían gran diversidad y que la selección era a nivel de proteínas. En varias de las bibliotecas, había una mutación espontánea de HRG-\beta1 Met22.6Ile (HRG-\beta1 EGF Met50Ile) debida a un cambio de una base en este codón. Esta mutación da como resultado un aumento significativo de la afinidad por la unión a ErbB-3-Ig. Los resultados de secuenciación para cada biblioteca se resumen posteriormente.
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Biblioteca A - HRG-\beta1 177-181 (HRG-\beta1 EGF 1-5)
HRG-\beta1 177-181 (HRG-\beta1 EGF 1-5) está presente en la primera cadena \beta en el subdominio N-terminal de tipo salvaje. Los cambios de aminoácidos en las variantes seleccionadas de esta biblioteca se muestran en la Tabla 6.
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TABLA 6 Variantes de la Biblioteca A Posición de HRG-\beta1
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Después de la aleatorización, Ser177 (Ser1) clasificaba exclusivamente para Trp. His178 (His2) clasificaba para restos hidrofílicos mezclados, pero el resto de tipo salvaje no estaba entre ellos. Leu179 (Leu3) se conservaba en todas las variantes secuenciadas. Val180 (Val4) clasificaba para tipo salvaje en ocho de 12 variantes, y las restantes variantes tenían sustituciones conservativas en esta posición, con la excepción de una mutación Val180Glu (Val4Glu). En Lys181 (Lys5), Pro aparecía en ocho variantes, y el resto de tipo salvaje se descubrió en dos variantes.
Cuatro variantes de la biblioteca A no contenían sustituciones de aminoácidos en posiciones aleatorizadas en la biblioteca A. En su lugar, estas variantes contenían sustituciones de aminoácidos en posiciones aleatorizadas en la biblioteca B, y por lo tanto estas variantes se enumeran como variantes B1-B4 en la Tabla 7. Análogamente, cuatro variantes de la biblioteca B no contenían sustituciones de aminoácidos en posiciones aleatorizadas en la biblioteca B, sino que en su lugar contenían substituciones en posiciones aleatorizadas en la biblioteca A. Estas variantes se enumeran como variantes A5-A8 en la Tabla 6.
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Biblioteca B - HRG-\beta1 183-188 (HRG-\beta1 EGF 7-12)
HRG-\beta1 183-188 (HRG-\beta1 EGF 7-12) tenía carácter helicoidal en la proteína de tipo salvaje. Los cambios de aminoácidos en las variantes seleccionadas de esta biblioteca se muestran en la Tabla 7.
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TABLA 7 Variantes de la Biblioteca B Posición de HRG-\beta1
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La aleatorización de esta región producía los cambios más dramáticos a partir de la secuencia de tipo salvaje, aunque el carácter generalmente hidrofílico de esta región se mantuvo en las variantes secuenciadas. En particular, este tramo de seis restos clasificaba para restos Gly en la primera y última posiciones, A1a183 y Thr188 (Ala7 y Thrl2). También había un cambio de registro de cargas positivas y negativas en Lys185 (Lys9), que clasificaba para Glu y Asp, entre otros; Glu186 (Glu10), que clasificaba exclusivamente para Arg; y Lys187 (Lys11), que clasificaba para Glu y Asp. Glu184 (Glu8) clasificaba para diversos tipos diferentes de restos, lo que indicaba que esta cadena lateral no juega un papel importante en la unión al receptor ErbB-3.
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Biblioteca C - HRG-\beta1 191-195 (HRG-\beta1 EGF 15-19)
HRG-\beta1 191-195 (HRG-\beta1 EGF 15-19) incluye el giro \beta entre la hélice y la segunda cadena \beta. Los cambios de aminoácidos en las variantes seleccionadas de esta biblioteca se muestran en la Tabla 8.
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TABLA 8 Variantes de la Biblioteca C Posición de HRG-\beta1
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La aleatorización y selección producían variantes en las que la secuencia de aminoácidos de tipo salvaje en esta región estaba casi completamente conservada. Se encontraron mutaciones solamente en dos variantes, ambas en Glu195 (Glu19). Este resultado es coherente con un papel importante para los restos de tipo salvaje en esta región en la unión al receptor ErbB-3.
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Biblioteca D - HRG-\beta1 197-201 (HRG-\beta1 EGF 21-25)
HRG-\beta1 197-201 (HRG-\beta1 EGF 21-25) está presente en la segunda cadena \beta en el subdominio N-terminal. Los cambios de aminoácidos en las variantes seleccionadas de esta biblioteca se muestran en la Tabla 9.
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TABLA 9 Variantes de la Biblioteca D Posición de HRG-\beta1
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La aleatorización en esta región produjo un aumento o una pérdida de carga para dos de los cinco restos. Phe197 (Phe21) clasificaba para Tyr en 10 de 12 variantes, manteniendo la aromaticidad en esta posición. Met198 (Met22) clasificaba para un resto cargado positivamente en 11 de 12 variantes. Val199 (Va123) se conservaba en todas las variantes, y Lys200 (Lys24) clasificaba para tipo salvaje o para Arg, conservando la carga positiva en esta posición. Asp201 (Asp25) clasificaba para restos no cargados Thr o Ile, conservando el carácter de rama \beta de esta posición. Las variantes D1, D2, D8, D12 también incluían la mutación espontánea que aumentaba la afinidad Met226Ile
(Met50Ile).
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Biblioteca E - HRG-\beta1 205-209 (HRG-\beta1 EGF 29-33)
HRG-\beta1 205-209 (HRG-\beta1 EGF 29-33) incluye restos presentes en la tercera cadena \beta en el subdominio N-terminal. Los cambios de aminoácidos en las variantes seleccionadas de esta biblioteca se muestran en la Tabla 10.
TABLA 10 Variantes de la Biblioteca E Posición de HRG-\beta1
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Después de la aleatorización, Pro205 (Pro29) clasificaba para Thr o Tyr. Ser206 (Ser30) clasificaba para restos mezclados, predominantemente aquellos que tenían cadenas laterales básicas, aunque Gly también aparece dos veces (en secuencias obtenidas de la misma variante). Una inversión de cadenas laterales se producía para Arg207 (Arg31) y Tyr208 (Tyr32), la primera de las cuales clasificaba exclusivamente para Tyr y la segunda de las cuales clasificaba principalmente para Arg (siete variantes) y Leu (cuatro variantes). Este descubrimiento era particularmente inesperado, dado que Tyr208 se pega a Phe189 (Phe13) en la estructura y se conserva en la secuencia de EGF. Véase Jacobsen et al., Biochemistry 35: 3402-17 (1996). En Leu209 (Leu33), La sustitución relativamente conservativa de Met se descubrió en la mayoría de las variantes, pero también se encontraba Gly.
Biblioteca G - HRG-\beta1 211-216 (HRG-\beta1 EGF 35-40)
HRG-\beta1 211-216 (HRG-\beta1 EGF 35-40) incluye La primera cadena \beta del subdominio C-terminal de HRG-\beta1 EGF. Los cambios de aminoácidos en las variantes seleccionadas de esta biblioteca se muestran en la Tabla 11.
TABLA 11 Variantes de la Biblioteca G Posición de HRG-\beta1
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Después de la aleatorización, 10 de 12 variantes contenían una mutación Lys211Arg (Lys35Arg), conservando de este modo una carga positiva en esta posición, que se encuentra entre dos cisteínas. Pro213 (Pro37) clasificaba para restos hidrofílicos mezclados, y Asn214 (Asn38) clasificaba para una mezcla de restos, con Leu y Val apareciendo con mayor frecuencia. Glu215 (Glu39) se conservaba en todas las variantes y Phe216 (Phe40) se conservaba en ocho de 12 variantes con una sustitución conservativa de Tyr en tres de las restantes variantes.
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Biblioteca H - HRG-\beta1 217-220 (HRG-\beta1 41-44)
La biblioteca de HRG-\beta1 217-220 (HRG-\beta1 EGF 41-44) demostró ser vulnerable a contaminación por una variante de alta afinidad de la biblioteca B (variante B5). Esta variante se descubrió en 11 de 12 variantes. En la única variante no afectada, la secuencia de aminoácidos de tipo salvaje se conservaba excepto por una mutación Asp219Glu (Asp43Glu). Este resultado sugiere que esta región requiere el tipo salvaje o secuencias similares para la unión óptima.
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Biblioteca I HRG-\beta1 222-226 (HRG-\beta1 EGF 46-50)
HRG-\beta1 222-226 (HRG-\beta1 EGF 46-50) incluye una corta cadena de lamina \beta que se alinea con la cadena de lámina \beta en HRG-\beta1 213-216 (HRG-\beta1 EGF 38-40). Los cambios de aminoácidos en las variantes seleccionadas de esta biblioteca se muestran en la Tabla 12.
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TABLA 12 Variantes de la Biblioteca I Posición de HRG-\beta1
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Después de la aleatorización de HRG-\beta1 222-226, solamente dos tipos de variantes se descubrieron en las 12 secuenciadas, las que tienen restos de tipo salvaje conservadas en Gln222 (Gln46), Tyr224 (Tyr48) y Val225 (Val49), y las que tienen una mutación Met226Ile (Met50Ile). Asn223 (Asn47) clasificaba para His (nueve variantes) o Trp (tres variantes). El fuerte efecto potenciador de la afinidad de Met226Ile se demuestra por su presencia en todas las variantes secuenciadas de esta biblioteca y una alta frecuencia de aparición en variantes de varias otras bibliotecas.
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Biblioteca F - HRG-\beta1 178, 180, 198, y 200 (HRG-\beta1 EGF 2, 4, 22 y 24)
Cuando His178 (His2), Val180 (Val4), Met198 (Met22) y Lys200 (Lys24) se aleatorizaban simultáneamente, solamente se descubría un tipo de variante. His178, Val180 y Lys200 clasificaban para restos de tipo salvaje, y Met198 clasificaba para Lys. Estas variantes contenían adicionalmente la mutación espontánea Met226Ile (Met50Ile), que daba a las variantes una ventaja selectiva significativa sobre otras secuencias. Es sorprendente que la His de tipo salvaje se descubriera en la posición 178, puesto que ninguna de las 12 variantes secuenciadas de la biblioteca A contenía His178.
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Conservación de Restos de HRG-\beta1 EGF en Resultados de Presentación en Fagos y Barrido de Alanina
Las posiciones en las que la sustitución por alanina afectaba fuertemente a la afinidad de unión tendían a clasificar para el resto de tipo salvaje. Véase, por ejemplo, los datos para posiciones en la unión entre los subdominios N- y C-terminales, (es decir, el giro \beta en HRG-\beta1 191-195 [HRG-\beta1 EGF 15-19] y el bucle en HRG-\beta1 217-220 [HRG-\beta1 EGF 41-44]) Adicionalmente, las posiciones en las que la sustitución por alanina producía efectos menos significativos tendían a experimentar mutación sustancial después de la presentación en fagos, como se observa para el tramo helicoidal en HRG-\beta1 183-188 (HRG-\beta1 EGF 7-12).
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Análisis del Impacto de Mutaciones Seleccionadas sobre la Afinidad y Especificidad del Receptor
Las variantes individuales de cada biblioteca se seleccionaron por producción de fagos y caracterización adicional de los HRG-\beta1 EGF mutados ("variantes") presentados en los fagos. La elección de variantes para caracterización adicional se basaba en la frecuencia de selección, con una tendencia hacia secuencias que no contenían la ventajosa sustitución Met226Ile (Met50Ile). Además, los vectores de fagémidos para uso en la producción de fagos que presentan HRG-\beta1 EGF mutados que contienen diversas combinaciones de las anteriores mutaciones ("variantes de combinación") se prepararon mediante mutagénesis de Kunkel, usando plantillas preparadas a partir de varias de las variantes descritas anteriormente. Las sustituciones de aminoácidos en las variantes de combinación se indican en la Figura 4. Las afinidades de las variantes y variantes de combinación por la unión a ErbB-3-Ig (con respecto a la afinidad de HRG-\beta1 EGF de tipo salvaje) se determinaban mediante ELISA de fagos, como se describe en el Ejemplo 1. Los resultados se muestran en la Tabla 13. También se ensayó la afinidad de unión a ErbB-4-Ig con respecto a algunas de las variantes y variantes de combinación para evaluar la especificidad.
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TABLA 13 Afinidad de Variantes de Herregulina-\beta1 EGF y Variantes de Combinación por ErbH-3-Ig y ErbH-4-Ig según se Determinó mediante ELISA de fagos
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Las variantes de la biblioteca A tenían valores de CE_{50} muy similares a HRG-\beta1 EGF de tipo salvaje. Las variantes de las bibliotecas B y D tenían una afinidad significativamente aumentada por ErbB-3-Ig y ErbB-4-Ig, en el intervalo de tres a cinco veces la afinidad de tipo salvaje por variantes seleccionadas que no contienen Met226Ile (Met50Ile). (Véase las variantes B3 y D4). Aumentos de afinidad sustancialmente mayores (hasta 26 veces la del HRG-\beta1 EGF de tipo salvaje) se midieron para variantes que contenían Met226Ile (Met50Ile). (Véase las variantes B5, B10,
y D1).
Las variantes de la biblioteca E mostraban aumentos de afinidad aún mayores. Por ejemplo, la variante E2, que difería de la secuencia consenso de la biblioteca (Figura 3) en HRG-\beta1 206 y 208 (HRG-\beta1 EGF 30 y 32), tenía un aumento de afinidad de 28 veces. Los efectos parecen estar asociados con las sustituciones de aminoácidos en HRG-\beta1 205-209 (HRG-\beta1 EGF 29-33) en lugar de con la eliminación de tres restos adyacentes, puesto que la afinidad por ErbB-3-Ig de una variante 202-204 (\Delta26-28) de control (HRG63) era similar a la del HRG-\beta1 EGF de tipo salvaje (Tabla 13).
La única variante de la biblioteca F, que tiene sustituciones Met198Lys (Met22Lys) y Met226Ile (Met50Ile), mostraba un aumento solamente ligeramente superior a la de Met226Ile en solitario, lo que indicaba un pequeño efecto atribuible a la mutación Met198Lys. Las variantes de la biblioteca G mostraban poco, si mostraban algún, aumento de la afinidad por ErbB-3-Ig. La única mutación Asp219Glu (Asp43Glu) de la solitaria variante de la biblioteca H proporcionaba un modesto aumento de afinidad. Las dos variantes de la biblioteca I tenían aumentos significativos de afinidad por ErbB-3-Ig y ErbB-4-Ig. Los aumentos eran atribuibles a un efecto de aproximadamente seis veces de la mutación Met226Ile (Met50Ile) (véase la variante HRG90), y un aumento adicional de aproximadamente dos a tres veces de Asn223 (Asn47) para mutaciones de Trp o His. La Presentación en fagos de variantes de combinación que contenían mutaciones de la variante A3 presentaba un mal rendimiento. La combinación A3 + B3 tenía una CE_{50} para ErbB-3-Ig similar a la de la variante B3, pero las demás combinaciones ensayadas no se unieron con afinidad detectable. Esto podía deberse a una interacción desventajosa de las mutaciones Ser177Trp, His178Glu o Lys181Pro (Ser1Trp, His2Glu o Lys5Pro) con mutaciones de las otras bibliotecas. La combinación de las mutaciones B3 y E2 produjo afinidades ligeramente disminuidas con respecto a la de la variante E2.
La combinación de mutaciones de variantes de las otras bibliotecas dio un comportamiento cercano al aditivo y dio como resultado el aumento de valores de CE_{50} en más de 50 veces. Los valores de CE_{50} para las mejores variantes de combinación estaban próximos al límite inferior del ensayo a la concentración de recubrimiento del receptor usada (aproximadamente 4 nM). El uso de niveles inferiores de recubrimiento de receptor produjo valores de CE_{50} sub-nanomolares para estas variantes de combinación, pero no permitió la medición de afinidad de tipo salvaje, debido a la unión mínima de fago de HRG-\beta1 EGF de tipo salvaje. Las mejoras variantes de combinación contenían la secuencia D4, la secuencia B3 o E2 y la única mutación Met50Ile o la secuencia 12.
En general, las variantes que mostraban aumentos de afinidad por ErbB-3-Ig también mostraban aumentos similares de afinidad por ErbB-4-Ig.
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Expresión, Purificación y Ensayo de Variantes de HRG-\beta1 EGF Solubles
Varias variantes se expresaron en forma soluble (es decir, HRG-\beta1 EGF mutados se expresaron sin pIII de M13). Para facilitar la expresión periplásmica de variantes solubles, se instalaron codones TAG después de HRG-\beta1 226 (HRG-\beta1 EGF 52) en el fagémido correspondiente mediante mutagénesis de Kunkel, y las construcciones resultantes se transformaron en células 34B8 (genotipo: ton\DeltaD pho\DeltaDE15 \Delta (argF-lac)169 deoC2 ompT\Delta degP41 (\DeltaPstI-kanR)). Las construcciones incluían aquellas para expresar variantes A3, E2 y F1, y variantes de combinación HRG58 (D4+E2+M50I) y HRG73 (B3+D4+E2+I2), así como la construcción que expresaba HRG-\beta1 EGF de tipo salvaje (HRG8).
La expresión a niveles de aproximadamente 1 mg/l se consiguió de la siguiente manera. Los cultivos celulares se cultivaron a una densidad de DO_{550} = 1,0 en medio LB que contenía 50 \mug/ml de carbenicilina y se usaron para inocular medio AP5 modificado a una dilución 1/100. (El medio AP5 modificado contenía: 1,5 g/l de glucosa, 11 g/l de Hycase SF, 0,6 g/l de extracto de levadura, 0,19 g/l de MgSO_{4} anhidro o 0,394 g/l de MgSO_{4}*7H_{2}O, 1,07 g/l de cloruro de amonio, 3,73 g/l de KCl, 1,2 g/l de NaCl, 120 ml/l de trietanolamina 1 M [pH 7,4]).
HRG-\beta1 EGF de tipo salvaje y variantes del mismo se purificaron a homogeneidad a partir de productos resultantes de choques periplásmicos en una única etapa de HPLC de fase inversa. En resumen, Las células se recogieron después de 24 h de cultivo a 30ºC (DO_{550} = 1,2) mediante centrifugado a 4500 rpm, y los sedimentos se congelaron en etanol/hielo seco durante 2 h. Después de la resuspensión y descongelación en MgCl_{2} 5 mM, CaCl_{2} 75 mM fenil metil sulfonil fluoruro 1 mM, y Tris-HCl 10 mM (pH 7,6), las células sometidas a choque se retiraron mediante centrifugado, dejando los productos resultantes del choque. Los productos resultantes del choque se filtraron y se cromatografiaron mediante HPLC de fase inversa C18 semipreparativa usando un gradiente del 0-40% de acetonitrilo durante 80 min, con un caudal de 3 ml/min. Las fracciones que mostraron mediante espectrometría de masas por electropulverización contener HRG-\beta1 EGF (o variantes del mismo) se liofilizaron y se resuspendieron en EDTA 1 mM, Tris-HCl 10 mM (pH 7,6). Se descubrió que las proteínas eran esencialmente homogéneas según lo determinado mediante análisis de aminoácidos y SDS-PAGE.
Las afinidades de las variantes solubles por ErbB-Ig se determinaron midiendo la inhibición de la unión de ^{125}I-HRG a las fusiones de receptor ErbB-2/3, -3 y -4-Ig, como se ha descrito anteriormente en el Ejemplo 1. Aunque la preparación de ErbB-2/3-Ig también contiene homodímeros ErbB-2/2 y 3/3 (como resultado de la co-expresión de ErbB-2- y -3-Ig), el desplazamiento de ^{125}IHRG debe ser predominantemente a partir de ErbB-2/3-Ig debido a la aproximadamente 100 veces mayor afinidad del HRG-\beta1 EGF de tipo salvaje por el heterodímero 2/3 frente al homodímero 3/3.
Los resultados se muestran en la Tabla 14.
TABLA 14 Parámetros de Unión y Activación Para Variantes de Herregulina-\beta1 EGF Solubles
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Las variantes mostraban mayor afinidad por ErbB-3-Ig que HRG-\beta1 EGF de tipo salvaje (hasta 4 veces), aunque los aumentos de afinidad eran menos dramáticos que los determinados mediante ELISA de fagos. El análisis en este formato también mostró que las mutaciones E2 otorgan afinidad enormemente aumentada, y que las mutaciones adicionales D4 y Met50Ile (en la construcción HRG58) no contribuyen de forma aditiva. Como se observó en las ELISA de fagos, las variantes mostraron aumentos de afinidad por ErbB-4-Ig que eran similares a los aumentos de afinidad por ErbB-3-Ig. Las afinidades de las variantes por ErbB-2/3-Ig eran similares a la afinidad de HRG-\beta1 EGF de tipo salvaje por el heterodímero 2/3, aunque la construcción sustituida al máximo (HRG72) se unía de forma 6 veces más débil a ErbB-2/3-Ig que el HRG-\beta1 EGF de tipo salvaje.
También se ensayo la capacidad de las variantes solubles para estimular la fosforilación de tirosina del receptor ErbB-2 en células de carcinoma de cáncer de mama MCF7. Esto se consiguió en un formato KIRA-ELISA como se describe en Sadick et al., Analyt. Biochem. 235: 207-214, en el que se cree que la fosforilación de ErbB-2 detectada se debe principalmente a la formación de heterodímeros ErbB-2/3.
En resumen, se añadieron células 2 x 10^{5} MCF-7 a cada pocillo de una placa de cultivo de 96 pocillos de fondo plano y se cultivaron durante una noche. A la mañana siguiente el medio de cultivo se sustituyó por medio que contenía una variante o HRG8 (de tipo salvaje) a concentraciones que varían entre 0 y 10 nM. Las células se estimularon a 37ºC durante 30 min, el medio de cultivo se decantó. Para lisar las células y disolver los receptores, se añadieron 100 \mul de tampón de lisis a cada pocillo. El tampón de lisis consistía en NaCl 150 mM, HEPES 50 mM, Triton-X100 al 0,5%, timerosol al 0,01%, 30 kIU/ml de aprotinina (ICN Biochemicals, Aurora, OH), clorhidrato de 4-(2-aminoetil)bencenosulfonil fluoruro 1 mM (AEBSF; ICN Biochemicals), y ortovanadato sódico 2 mM. La placa se agitó a continuación suavemente en un agitador de placas (Bellco Instruments, Vineland, NJ) durante 60 min a temperatura ambiente.
Mientras las células se estaban solubilizando, una placa de microvaloración de ELISA (Nunc Maxisorp^{TM}, Inter Med, Dinamarca) que se había recubierto durante una noche a 4ºC con el anticuerpo policlonal anti-ErbB-2 ECD purificado por afinidad (1,0 \mug/ml en tampón carbonato 50 mM (pH 9,6) se decantó, y se bloqueó con tampón de bloqueo (PBS, BSA al 0,5% [Intergen Co., Purchase, NY], timerosol al 0,01%) durante 60 min a temperatura ambiente con agitación suave. Después de 60 min, la placa recubierta con el anticuerpo anti-ErbB-2 ECD se lavó seis veces con tampón de lavado (PBS, Tween 20^{TM} al 0,05%, timerosol al 0,01%) usando un lavador de placas automatizado (ScanWasher 300, Skatron Instruments, Inc., Sterling, VA).
El lisado que contenía ErbB-2 solubilizado de cada pocillo de microvaloración de cultivo celular se transfirió a cada pocillo de ELISA recubierto con anticuerpo anti-ErbB2 ECD y bloqueado y se incubaron durante 2 h a temperatura ambiente con agitación suave. El receptor no unido se eliminó lavando con tampón de lavado, y se añadieron 100 \mul de 4G10 biotinilado (anticuerpo antifosfotirosina) diluido a 0,2 \mug/ml en tampón de dilución (PBS, BSA al 0,5%, Tween 20^{TM} al 0,05%, EDTA 5 mM, timerosol al 0,01%) a cada pocillo. Después de la incubación durante 2 h a temperatura ambiente, se lavó la placa, y se añadieron 100 \mul de estreptavidina conjugada a peroxidasa de rábano picante (Zymed Laboratories, S. San Francisco, CA), diluida a 1:50000 en tampón de dilución a cada pocillo. La placa se incubó durante 30 min a temperatura ambiente con agitación suave. El conjugado de avidina libre se eliminó lavando, y se añadieron 100 \mul de solución de sustrato recién preparada (tetrametil benzidina, TMB, kit de sustrato de dos componentes, Kirkegard y Perry, Gaithersburg, MD) a cada pocillo. Se dejó continuar a la reacción durante 10 min, después de lo cual el desarrollo de color se interrumpió mediante la adición de H_{3}PO_{4}
1,0 M.
Los resultados se muestran en la Tabla 14. La CE_{50} es la concentración de variante (o HRG8) necesaria para alcanzar el 50% de la fosforilación máxima de tirosina. En general, las CE_{50} para la estimulación de la fosforilación mediante las variantes ensayadas no diferían sustancialmente de la CE_{50} para HRG-\beta1 EGF de tipo salvaje. Además, los valores se correlacionaban bien con las CI_{50} para la unión a las fusiones de receptor anteriores.
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Ejemplo 4
Selección de Variantes del Dominio EGF de Herregulina-\beta1 Para la Unión al Receptor ErbB-4 Usando Presentación en Fagos Monovalente
Este ejemplo describe la selección de variantes de HRG-\beta1 para la unión al receptor ErbB-4 y, en particular, variantes que tienen una mayor especificidad por el receptor ErbB-4, con respecto al receptor ErbB-3, que la HRG-\beta1 de tipo salvaje. Dichas variantes tienen, por ejemplo, una proporción más baja de CE_{50} de la variante:del tipo salvaje para la unión a ErbB-4-Ig que para la unión a ErbB-3-Ig. Las variantes estudiadas contenían restos correspondientes a HRG-\beta1 177-244, que incluye el dominio similar a EGF mínimo (HRG-\beta1 177-228). En este ejemplo, "HRG-\beta1 EGF" se refiere a la región del dominio similar a EGF que se extiende desde los restos 177-244. Los números de los restos se expresan en términos de posición en HRG-\beta1 humana nativa de 645 aminoácidos y, entre paréntesis, en términos de posición en HRG-\beta1 EGF (es decir, HRG-\beta1 EGF 1-68).
Las variantes se produjeron mediante aleatorización en His178, Leu179 y Arg207 (His2, Leu3 y Arg31). Estos restos se seleccionaron porque el barrido de alanina (Ejemplo 2) indicaba que la sustitución de alanina en estas posiciones daba como resultado una pérdida significativamente mayor de afinidad por el receptor ErbB-3, en comparación con el receptor ErbB-4, lo que sugería que estos restos pueden ser más importantes para la unión al receptor ErbB-3 que para la unión al receptor ErbB-4. Adicionalmente, se predijo que estos restos están próximos entre sí en la superficie de la molécula de HRG-\beta1, formando potencialmente un punto de unión.
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Cribado de Biblioteca de Fagos para la Unión a ErbB-4-Ig
Se prepararon y seleccionaron variantes de HRG-\beta1 EGF para la unión a ErbB-4-Ig usando presentación en fagos monovalente, según el método de Bass et al., Proteins 8: 309-14 (1990). En resumen, el vector fagémido de HRG-\beta1 EGF era pHRG2-p3 (descrito en el Ejemplo 1), en el que HRG-\beta1 177-244 se fusionó a un fragmento C-terminal de la proteína de la envuelta pIII de M13. Se realizó mutagénesis de Kunkel para introducir codones de terminación en este vector en His178, Leu179 y Arg207 (His2, Leu3 y Arg31) para asegurarse de que el vector de partida no podía expresar el polipéptido de tipo salvaje.
A continuación estos sitios se aleatorizaron mediante mutagénesis de Kunkel para producir una biblioteca de HRG-\beta1 EGF. Se produjeron HRG-\beta1 EGF mutados de forma monovalente mediante presentación en fagos a partir de la biblioteca. Véase Bass et al., supra. Estos fagos se clasificaron a continuación contra homodímeros ErbB-4-Ig inmovilizados en una placa de ELISA. Los fagos unidos se eluyeron y se usaron para reinfectar células huésped, que se usaron para producir nuevos fagos. La mitad de los fagos de la primera ronda de clasificación se clasificaron contra ErbB-4-Ig inmovilizado durante tres rondas adicionales de clasificación. La otra mitad de los fagos de la primera ronda se clasificó contra ErbB-4-Ig inmovilizado durante tres rondas adicionales en presencia de ErbB-3-Ig soluble (10 nM). Se esperaba que la clasificación de la presencia de ErbB-3-Ig soluble (es decir, "contra-selección" contra ErbB-3-Ig) eliminara variantes con mayor afinidad por ErbB-3-Ig, permitiendo el enriquecimiento de aquellas con mayor afinidad por ErbB-4-Ig en cada ronda de clasificación. Después de la clasificación, se secuenciaron doce clones de cada una de las dos bibliotecas resultantes.
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Construcción de la Biblioteca de Fagos Inicial
La biblioteca de fagos inicial se construyó mediante mutagénesis de Kunkel usando una plantilla de ADN de cadena sencilla que contenía uracilo. Se instalaron codones de terminación TAA y TGA en posiciones seleccionadas por aleatorización para generar una plantilla a medida, que eliminaba el fondo de tipo salvaje de las reservas. Las posiciones se aleatorizaron completamente mediante mutación a codones NNS (donde N es cualquiera de las cuatro bases y S es G o C). Se usaron dos oligonucleótidos de mutagénesis, uno para aleatorizar His178 y Leu179 (His2 y Leu3) y uno para aleatorizar Arg207 (Arg31). Los oligonucleótidos contenían salientes de 15 bases en cualquier lado de los restos aleatorizados.
La mezcla de reacción de mutagénesis final se electro-transformó en células XL-1 Blue (Stratagene, Inc., La Jolla, CA), según el protocolo del fabricante. Las células transformadas se infectaron a continuación con 10^{11} pfu de fago ayudante M13K07 (Promega Corp., Madison, WI), y se prepararon soluciones madre de fagos (aproximadamente 10^{14} fagémidos/ml) como se describe en el Ejemplo 1.
Se obtuvieron al menos 10^{8} transformantes, lo que indicaba que la biblioteca tenía una excelente representación de las posibles combinaciones de secuencia de aminoácidos.
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Selección de Fagos para la Unión a ErbB-4-Ig
Se prepararon fagos monovalentes y la selección se realizó en ErbB-4-Ig unido previamente a placas de microvaloración mediante captura con anticuerpos policlonales para el fragmento Fc humano, como se describe en el Ejemplo 1. Aproximadamente 10^{12} fagos en 100 \mul de tampón de unión (PBS, BSA al 0,1%, Tween 20^{TM} al 0,05%) se aplicaron a una placa recubierta con ErbB-4-Ig y una placa de control a la que no se había añadido ErbB-4-Ig. Después de la primera ronda de clasificación, la mitad de los fagos resultantes (en lo sucesivo en este documento la "biblioteca contraseleccionada") se clasificaron en presencia de ErbB-3-Ig 10 mM en el tampón de unión. Después de una incubación de 2 h a temperatura ambiente, las placas se lavaron exhaustivamente (12x) y los fagos se eluyeron añadiendo 100 \mul de una solución de HCl 50 mM y Tween^{TM} 20 al 0,05% y agitando durante 10 min.
Los eluatos se neutralizaron con 10 \mul de Tris-HCl 1 M (pH 8,0) y 20 \mul se usaron para valoración cuantitativa en células XL-1 Blue en fase logarítmica. El resto se usó para infectar 1 ml de células XL-1 Blue en fase logarítmica (30 min a 37ºC), que a continuación se superinfectaron con 2 x 10^{10} pfu de fago M13KO7 y se cultivaron en 25 ml de caldo 2YT (16 g/l de triptona, 10 g/l de extracto de levadura, 5 g/l de NaCl) que contenía 50 \mug/ml de carbenicilina durante 18-24 h. Los fagos se recogieron como se ha descrito anteriormente y el ciclo se repitió.
Después de la ronda cuatro de selección, doce clones de cada biblioteca se tomaron aleatoriamente y se secuenciaron mediante el método didesoxi. Véase Sanger et al., PNAS USA 74: 5463-67 (1977). Los aminoácidos en las posiciones aleatorizadas deducidos de las secuencias de ADN se muestran en la Tabla 15 (un "." indica un resto que es idéntico al resto de tipo salvaje).
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TABLA 15 Mutaciones y Afinidades por ErbB-3- y ErbB-4-Ig en ELISA de Fagos
20
21
Una variante predominaba en cada biblioteca, estando representada en siete de los doce clones secuenciados a partir de cada biblioteca. La variante predominante de la biblioteca contra-seleccionada contra ErbB-3-Ig volvía a clasificar para el resto de tipo salvaje en las posiciones His178 y Leu179 (His2 y Leu3) y tenía Pro en Arg207 (Arg31). La variante predominante de la biblioteca que se clasificó sin contra-selección clasificaba para tipo salvaje en las posiciones His178 y Arg207 (His2 y Arg31) y tenía Met en Leu179 (Leu3). En variantes de cada una de las bibliotecas, había una sustitución espontánea de Met por HRG-\beta1 228-231 (HRG-\beta1 EGF 52-55).
Análisis del Impacto de Mutaciones sobre la Afinidad y Especificidad del Receptor
Las afinidades de unión al receptor se midieron mediante ELISA de fagos para todas las variantes únicas de cada biblioteca, como se describe en el Ejemplo 1. Los resultados se muestran en la Tabla 15. Las afinidades de las variantes por ErbB-3-Ig y ErbB-4-Ig se determinaron para evaluar la especificidad.
Las afinidades de la mayoría de las variantes por las fusiones del receptor ErbB-Ig se reducían entre aproximadamente 1,2 veces y 2,2 veces. Solamente una variante mostraba un ligero aumento de afinidad, y solamente por ErbB-3-Ig. Sin embargo, tres variantes tenían afinidades por ErbB-4-Ig que estaban menos de dos veces por debajo de la afinidad de HRG-\beta1 de tipo salvaje, mientras que sus afinidades por ErbB-3-Ig estaban de 6 a 9 veces por debajo de la afinidad de HRG-\beta1 de tipo salvaje. Todas estas variantes volvían a clasificar para el resto de tipo salvaje en Leu179 (Leu3). Una variante clasificaba para Glu en His178 (His2) y para tipo salvaje en Arg207 (Arg31). Otra variante clasificaba para tipo salvaje en His178 (His2) y para Pro en Arg 207 (Arg31). Ésta era la variante predominante en la biblioteca contraseleccionada.
La tercera variante clasificaba para Leu en His178 (His2) y para tipo salvaje en Arg207 (Arg31) y también tenía la sustitución espontánea de Met por HRG-\beta1 228-231 (HRG-\beta1 EGF 52-55). La afinidad de esta variante por ErbB-3-Ig se reducía 6,4 veces, mientras que otra variante con la misma secuencia en His178, Leu179 y Arg207 (His2, Leu3 y Arg31), pero que carecía de la sustitución espontánea, conservaba aproximadamente la afinidad de tipo salvaje por ErbB-3-Ig. Por lo tanto, la reducción de afinidad por la unión a ErbB-3-Ig es atribuible en gran medida a esta sustitución espontánea. Puesto que es improbable que HRG-\beta1 228-231 (HRG-\beta1 EGF 52-55) esté en posición proximal respecto a la región aleatorizada en la superficie de la molécula de HRG-\beta1, los datos sugieren que al menos dos regiones distintas de HRG-\beta1 son importantes para la unión al receptor ErbB, concretamente restos His178, Leu179 y Arg207 (His2, Leu3, y Arg31) y HRG-\beta1 228-231 (HRG-\beta1 EGF 52-55).
Dos de las tres variantes que muestran una especificidad aumentada por la unión a ErbB-4-Ig representaban ocho de los doce clones aislados de la biblioteca contra-seleccionada. La otra variante representaba solamente uno de los doce clones aislados de la biblioteca que se clasificó sin contra-selección. Por lo tanto, la contra-selección contra ErbB-3-Ig produjo un enriquecimiento significativo en variantes que mostraban una mayor especificidad por ErbB-4-Ig, con respecto a ErbB-3-Ig, que la de HRG-\beta1 de tipo salvaje.
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Referencias citadas en la descripción
Esta lista de referencias citadas por el solicitante está prevista únicamente para ayudar al lector y no forma parte del documento de patente europea. Aunque se ha puesto el máximo cuidado en su realización, no se pueden excluir errores u omisiones y la OEP declina cualquier responsabilidad en este respecto.
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\bulletSADICK et al. Analyt. Biochem., vol. 235, 207-214 [0215]
\global\parskip0.000000\baselineskip
(1) INFORMACIÓN GENERAL:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
SOLICITANTE: Ballinger, Marcus D.
\hskip3.9cm
Jones, Jennifer T.
\hskip3.9cm
Fairbrother, Wayne J.
\hskip3.9cm
Sliwkowski, Mark X.
\hskip3.9cm
Wells, James A.
\hskip3.9cm
Genentech, Inc.
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TÍTULO DE LA INVENCIÓN: VARIANTES DE HERREGULINA
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
NÚMERO DE SECUENCIAS: 92
\vskip0.800000\baselineskip
(iv)
DIRECCIÓN POSTAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
DESTINATARIO: Skjerven, Morrill, MacPherson, et al.
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
CALLE: 25 Metro Drive, Suite 700
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CIUDAD: San Jose
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
ESTADO: California
\vskip0.500000\baselineskip
(E)
PAÍS: EEUU
\vskip0.500000\baselineskip
(F)
CÓDIGO POSTAL: 95110
\vskip0.800000\baselineskip
(v)
FORMA LEGIBLE POR EL ORDENADOR:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
TIPO DE MEDIO: Disco flexible
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
ORDENADOR: IBM compatible con PC
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
SISTEMA OPERATIVO: PC-DOS/MS-DOS
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
SOFTWARE: PatentIn Release #1.0, Versión #1.30
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
DATOS DE LA PRESENTE SOLICITUD:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
NÚMERO DE SOLICITUD: Pendiente
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
FECHA DE PRESENTACIÓN: 10-FEB-1998
\vskip0.800000\baselineskip
(vii)
DATOS DE LA SOLICITUD ANTERIOR:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
NÚMERO DE SOLICITUD: 08/799.054
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
FECHA DE PRESENTACIÓN: 10-FEB-1997
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CLASIFICACIÓN:
\vskip0.800000\baselineskip
(viii)
INFORMACIÓN DEL ABOGADO/AGENTE:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
NOMBRE: Haliday, Emily M.
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
NÚMERO DE REGISTRO: 38,903
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
NÚMERO DE REFERENCIA/EXPEDIENTE: M-4761-1P PCT
\vskip0.800000\baselineskip
(ix)
INFORMACIÓN DE TELECOMMUNICACIÓN:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
TELÉFONO: (408) 453-9200
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
FAX: (408) 453-7979
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº:1:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 71 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 1:
22
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 2:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 66 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 2:
23
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 3:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 63 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 3:
24
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 4:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 65 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 4:
25
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 5:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 66 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Rattus rattus
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 5:
26
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 6:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 71 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Rattus rattus
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 6:
27
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 7:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 63 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Rattus rattus
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 7:
28
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 8:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 64 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Rattus rattus
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 8:
29
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 9:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 81 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Rattus rattus
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 9:
30
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 10:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 65 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº 10:
31
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 11:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 65 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 11:
32
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 12:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 65 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 12:
\vskip1.000000\baselineskip
33
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 13:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 71 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Gallus domesticus
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 13:
34
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 14:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 49 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 14:
35
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 15:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 48 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 15:
36
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 16:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 49 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 16:
37
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 17:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 52 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 17:
38
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 18:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 49 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 18:
39
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 19:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 49 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 19:
40
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 20:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 49 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 20:
41
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 21:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 49 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 21:
42
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 22:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 52 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 22:
43
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 23:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 49 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 23:
44
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 24:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 49 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 24:
45
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 25:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 52 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 25:
46
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 26:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 49 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 26:
47
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 27:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 49 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 27:
48
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 28:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 52 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 28:
49
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 29:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 52 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 29:
50
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 30:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 49 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 30:
51
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 31:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 49 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 31:
52
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 32:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 49 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 32:
53
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 33:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 49 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 33:
54
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 34:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 4 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 34:
55
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 35:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 7 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 35:
56
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 36:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 36:
57
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 37:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 37:
58
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 38:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 38:
59
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 39:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 39:
60
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 40:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 40:
61
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 41:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 41:
62
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 42:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 42:
63
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 43:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 43:
64
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 44:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 44:
65
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 45:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 45:
66
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 46:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 46:
67
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 47:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 47:
68
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 48:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 48:
69
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 49:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 49:
70
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 50:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 50:
71
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 51:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 51:
72
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 52.
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 52:
73
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 53:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 53:
74
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 54:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.500000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 54:
75
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 55:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 55:
76
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 56:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 56:
77
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 57:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 57:
78
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 58:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 58:
79
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 59:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 59:
80
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 60:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 60:
81
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 61:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 61:
82
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 62:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 62:
83
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 63:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 63:
84
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 64:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 64:
85
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 65:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 65:
86
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 66:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 66:
87
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 67:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 67:
88
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 68:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 68:
89
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 69:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 69:
90
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 70:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 70:
91
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 71:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 71:
92
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 72:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 72:
93
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 73:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 73:
94
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 74:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 74:
95
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 75:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 75:
96
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 76:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 76:
97
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 77:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 77:
98
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 78:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 78:
99
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 79:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 79:
100
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 80:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 80:
101
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 81:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 81:
102
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 82:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 82:
103
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 83:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 83:
104
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 84:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 84:
105
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 85:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 85:
106
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 86:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 86:
107
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 87:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 87:
108
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 88:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 6 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 88:
109
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 89:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 89:
110
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 90:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 90:
111
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 91:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 5 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: No relevante (recombinante)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 91:
112
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID Nº: 92:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 52 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TIPO DE CADENA: no relevante
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: no relevante
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: NO
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 92:
113

Claims (17)

1. Variante de herregulina-\beta1 humana, teniendo dicha variante una secuencia de aminoácidos que no se encuentra en la naturaleza y la capacidad de unirse a un receptor ErbB con al menos un aumento de 5 veces en la afinidad por el receptor ErbB-3 con respecto a la herregulina de la que se obtiene la variante, donde dicha variante de herregulina comprende un conjunto de sustituciones de aminoácidos seleccionadas entre
A183G, E184W, K185D, E186R, K187E, T188G, M226I;
A183D, E184K, K185S, E186R, K187E, T138G, M226I;
F197Y, M198K, K200R, D201I, M226I;
P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
P205Y, S206R, R207Y, Y208R, L209M, M226I;
P205T, S206H, R207Y, Y208R, L209M;
P205T, S206K, R207Y, Y208R, L209G;
N223W, M226I;
N223H, M226I;
S177W, H178E, K181P, A183G, E184W, K185D, E186R, K187E, T188G, M226I;
P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, M226I;
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
F197Y, M198R, D201T, M226I;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, M226I;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H, M226I; y
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H,
M226I;
donde los restos se numeran desde el extremo N de herregulina-\beta1 humana nativa de 645 aminoácidos.
2. Variantes de herregulina según la reivindicación 1, donde dicha variante de herregulina comprende un conjunto de sustituciones de aminoácidos seleccionadas entre
A183G, E184W, K185D, E186R, K187E, T188G, M226I;
P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
N223H, M226I;
P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
A183G, K185F, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, M226I;
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M;
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M2261;
F197Y, M198R, D201T, M226I;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, M226I;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H, M226I; y
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H,
M226I;
donde la variante tiene al menos un aumento de 20 veces en la afinidad por el receptor ErbB-3 con respecto a la herregulina de la que se obtiene la variante.
3. Variante de herregulina según la reivindicación 1, donde dicha variante de herregulina comprende un conjunto de sustituciones de aminoácidos seleccionadas entre
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, M226I;
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, M226I;
F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H, M2261; y
A183G, K185E, E186R, K187E, T188G, F197Y, M198R, D201T, P205Y, S206G, R207Y, Y208L, L209M, N223H,
M226I;
donde la variante tiene al menos un aumento de 50 veces en la afinidad por el receptor ErbB-3 con respecto a la herregulina de la que se obtiene la variante.
4. Variante de herregulina según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, donde dicha variante de herregulina es un fragmento.
5. Variante de herregulina según la reivindicación 4, donde dicho fragmento comprende restos correspondientes a una parte de herregulina-\beta1 humana que se extiende desde aproximadamente el resto 175 hasta aproximadamente el resto 230.
6. Molécula de ácido nucleico que codifica la variante de herregulina según cualquiera de las reivindicaciones anteriores.
7. Vector que comprende la molécula de ácido nucleico según la reivindicación 6.
8. Célula huésped que comprende el vector según la reivindicación 7.
9. Método de producción de una variante de una herregulina que comprende:
(a) cultivar la célula huésped según la reivindicación 8 en condiciones que permiten la expresión de la variante de herregulina; y
(b) recuperar la variante de herregulina del cultivo.
10. Composición que comprende la variante de herregulina según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 y un portador farmacéuticamente aceptable.
11. Método de unión a un receptor ErbB que comprende poner en contacto la variante de herregulina según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 con una célula que expresa dicho receptor ErbB, donde dicha célula está en cultivo celular.
12. Método según la reivindicación 11, donde dicha unión aumenta la supervivencia, proliferación o diferenciación de dicha célula.
13. Método según la reivindicación 12, donde dicha célula se selecciona entre una célula glial, una célula de Schwann y una célula muscular.
14. Variante de herregulina según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 para uso en el tratamiento de heridas dérmicas, enfermedad gastrointestinal, síndrome esofágico de Barrett, enfermedad renal quística o no quística en fase terminal o enfermedad intestinal inflamatoria.
15. Uso de una variante de herregulina según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 para la fabricación de un medicamento para uso en el tratamiento de heridas dérmicas, enfermedad gastrointestinal, síndrome esofágico de Barrett, enfermedad renal quística o no quística en fase terminal o enfermedad intestinal inflamatoria.
16. Método para determinar si una muestra contiene un receptor ErbB que se une a herregulina que comprende:
(a) poner en contacto la variante de herregulina según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 con dicha muestra; y
(b) determinar si dicha variante de herregulina se une específicamente a un componente de dicha muestra.
17. Método, variante o uso según cualquiera de las reivindicaciones 11 a 16, donde dicha variante de herregulina está purificada.
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