ES2317939T3 - Oligonucleotidos para marcar sondas oligonucleotidicas y proteinas. - Google Patents

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Abstract

Una sonda oligonucleotídica sintética que comprende un primer dominio que tiene un dominio marcador compuesto por una secuencia no específica de gen de un polímero de la secuencia repetitiva (CTATTTT)n, y un segundo dominio que comprende un dominio diana que tiene una secuencia diana específica de gen, donde el dominio marcador está marcado de forma detectable.

Description

Oligonucleótidos para marcar sondas oligonucleotídicas y proteínas.
1. Campo de la invención
Esta invención se refiere a sondas oligonucleotídicas y colecciones de sondas oligonucleotídicas para detectar o localizar dianas génicas de ácido nucleico dentro de una muestra celular o tisular. En particular, la invención se refiere a colecciones de oligosondas.
2. Antecedentes de la invención
El análisis in situ incluye hibridación in situ e inmunohistoquímica. La hibridación in situ (ISH) emplea moléculas sonda de ADN o ARN marcadas que son anti-sentido para una secuencia génica diana o transcrito para detectar o localizar genes diana de ácido nucleico diana dentro de una muestra celular o tisular. Se ha demostrado que la ISH es una herramienta útil en varios campos biomédicos, incluyendo biología del desarrollo, biología celular, y biología molecular. La ISH se ha usado, por ejemplo, para diagnosticar trastornos genéticos, mapear genes, estudiar la expresión génica, y localizar sitios de expresión de genes diana.
Típicamente, la ISH se realiza exponiendo una muestra celular o tisular inmovilizada sobre un portaobjetos de vidrio a una sonda de ácido nucleico marcada que es capaz de hibridar específicamente con un gen diana dado en la muestra celular o tisular (In Situ Hybridization: Medical Applications (G. R. Coulton y J. de Belleroche, eds., Kluwer Academic Publishers, 1992); In Situ Hybridization: In Neurobiology; Advances in Methodology (J. H. Eberwine, K. L. Valentino, y J. D. Barchas, eds., Oxford University Press, 1994); In Situ Hybridization: A Practical Approach (D. G. Wilkinson, ed., Oxford University Press, 1992)). La hibridación de moléculas sonda marcadas con ácidos nucleicos en la muestra celular o tisular después puede detectarse usando, por ejemplo, métodos de detección directa basada en radiactividad, métodos de detección directa basada en fluorescencia, o métodos de detección indirecta basados en la unión de una proteína marcada con fluorescencia que se une a un hapteno tal como BrdU, nucleótidos marcados con digoxigenina o marcados con biotina incorporados en sondas. Los métodos basados en haptenos se han ampliado adicionalmente para que incluyan aquellas moléculas a unir por conjugados proteína-enzima de unión tales como conjugados anticuerpo-enzima y química de detección basada en colorimetría. Además, pueden analizarse varios genes diana simultáneamente exponiendo una muestra celular o tisular a una pluralidad de sondas de ácido nucleico que se ha marcado con una pluralidad de diferentes marcas de ácido nucleico. Por ejemplo, puede marcarse una pluralidad de sondas de ácido nucleico con una pluralidad de compuestos fluorescentes que tienen diferentes longitudes de onda de emisión, permitiendo de este modo el análisis multicoloreado simultáneo a realizar en una única etapa sobre una única muestra celular o tisular diana.
Un problema significativo asociado con la incorporación de nucleótidos marcados en sondas oligonucleotídicas es que los restos de conjugación que se unen al nucleótido habitualmente impiden la formación de apareamiento de bases de Watson-Crick, afectando de este modo de forma negativa a la hibridación de la sonda con su diana. Esto se ha observado con el uso de marcadores unidos mediante nucleótidos citosina N4-sustituidos, a causa del impedimento estérico y el desplazamiento esperado al estado menos reactivo de una amina secundaria (como se observa con citosina N4 marcada), en comparación con el enlace G-C natural formado con una citosina no sustituida (una amina primaria). Cualquier pequeño cambio o interferencia con la unión G-C en un pequeño oligonucleótido (de 25 a 50 bases) puede reducir la capacidad de estos oligos de hibridar con la secuencia diana pretendida.
Sigue existiendo la necesidad en la técnica de desarrollar diseños de sondas adecuadas para incorporar nucleótidos marcados en sondas oligonucleotídicas. Se demuestra que unas pocas secuencias artificiales son alternativas viables para el marcaje de sondas y también funcionan tanto individualmente como en mezclas de sondas oligonucleotídicas complejas para detectar o localizar genes diana de ácido nucleico dentro de una muestra celular o tisular. El desarrollo de dichas secuencias genéricas y la estrategia de marcaje para colecciones de sondas tienen amplia aplicación en las técnicas médica, genética, y de biología molecular.
Esta interferencia debida a la química de marcaje y la rigurosidad y la cinética de hibridación se resuelve en este documento diseñando el oligo para que tenga al menos dos dominio funcionales distintos, un dominio o secuencia que sea específico de gen y esté implicado en la formación de pares de bases, y el segundo dominio que sea una secuencia artificial, no específica (con referencia al genoma de la muestra) comprendido de nucleótidos espaciados y el nucleótido marcado. Estos elementos se posicionan de tal modo que estos oligonucleótidos marcadores son más accesibles como haptenos para las proteínas de unión (inmunoglobulina(s) o avidina(s)) y por tanto no impiden el apareamiento de bases de Watson-Crick en el dominio específico de gen.
Sumario de la invención
La presente invención proporciona una nueva estrategia para incorporar un marcador en sondas oligonucleotídicas y colecciones de sondas oligonucleotídicas marcadas para detectar o localizar genes diana de ácido nucleico dentro de una muestra celular o tisular. En particular, la presente invención proporciona sondas oligonucleotídicas sintéticas caracterizadas en las reivindicaciones. La invención se refiere a secuencias no específicas de gen usando fórmulas de secuencia para hacer polímeros repetitivos de dichas secuencias que pueden incorporarse en colecciones de sondas oligonucleotídicas para su uso en análisis de hibridación in situ. Además, el uso de polímeros oligonucleotídicos sintéticos marcados, basados en fórmulas de secuencia, cuando se conjugan con proteínas de unión, es decir inmunoglobulinas, es un proceso muy eficaz y controlado para marcar dichas proteínas usadas en análisis inmunohistoquímico. La presente invención proporciona colecciones o "cócteles" de sondas oligonucleotídicas para detectar o localizar genes diana de ácido nucleico específicos dentro de una muestra celular o tisular. El cóctel es útil para detectar el gen Kappa (SEC ID Nº 1-16 inclusive).
La invención también se refiere a un conjunto de sondas para detectar el ARNm de cadena ligera de la inmunoglobulina Kappa o ARN heteronuclear correspondiente donde las sondas se seleccionan entre el grupo compuesto por las SEC ID Nº 401 a 416, inclusive.
Las realizaciones preferidas específicas de la presente invención llegarán a ser evidentes a partir de la siguiente descripción más detallada de ciertas realizaciones preferidas y las reivindicaciones.
Breve descripción de los dibujos
La Figura 1 ilustra una estructura de sonda genérica del diseño de sonda de dos dominios. Este es el diseño de oligonucleótido usado para las sondas en los cócteles específicos de gen descritos en los siguientes ejemplos. Cada sonda está compuesta por dos dominios: un dominio de marcaje 5' y un dominio específico de gen diana 3'. El dominio de marcaje consta de esta secuencia específica (CTATTTT)n, donde cada citosina puede estar marcada con un fluoróforo o un conjugado citosina-hapteno, siendo el hapteno fluoresceína en esta realización. Esta ilustración muestra específicamente las secuencias de ácido nucleico para las sondas 301 (SEC ID Nº 55) y 302 (SEC ID Nº 56), cada una de las cuales tiene dominios específicos del gen diana correspondientes a secuencias Alu repetitivas humanas y dominios de marcaje que tienen un hapteno fluoresceína.
La Figura 2 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de hibridación in situ (ISH) de tejido cutáneo humano usando una sonda que comprende el dominio de marcaje (sonda 330; SEC ID Nº 58). La ausencia de una señal detectable indica que la fórmula de secuencia, (CTATTTT)n, del dominio de marcaje común a los oligonucleótidos usados en estos ejemplos de ISH es no específica, y no reactiva en su capacidad de formar apareamientos de bases de Watson-Crick con secuencias de ácido nucleico humanas porque no hibridan.
La Figura 3 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido cutáneo humano usando una sonda que comprende el dominio de marcaje y un dominio específico de gen diana poli d(T) (sonda 320; SEC ID Nº 57). La presencia de una señal detectable localizada en el citoplasma indica que esta sonda es capaz de hibridar específicamente son la región poliadenilada del ARN mensajero.
Las Figuras 4A-4B ilustran los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido cutáneo humano usando la sonda 320, donde la muestra tisular no se trató con ribonucleasa A antes de la hibridación in situ (A), o se trató con ribonucleasa A antes de la hibridación in situ (B). La disminución en la señal detectable en (B) indica que esta sonda hibrida específicamente con la región poliadenilada común al ARN mensajero.
Las Figuras 5A-5B ilustran los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido esplénico humano usando la sonda 320, donde la hibridación y el lavado riguroso se realizaron a temperatura ambiente (A), o a 37ºC (B). Este resultado ilustra que la intensidad de color está relacionada con la rigurosidad de las condiciones de hibridación, indicando el color más intenso condiciones menos rigurosas.
La Figura 6 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de la línea celular Raji humana usando la sonda 320. Esto muestra que este diseño de sonda también es funcional con líneas celulares embebidas así como tejido embebido.
La Figura 7 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de la línea celular Raji humana usando una colección de sondas compuesta por las sondas 301 y 302.
La Figura 8 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de la línea celular HT humana usando una colección de sondas compuesta por las sondas 301 y 302.
La Figura 9 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de una línea celular de rata usando una colección de sondas compuesta por las sondas 301 y 302. La ausencia de una señal detectable indica que esta colección de sondas es específica para secuencias de ácido nucleico humanas.
La Figura 10 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de una línea celular HT humana negativa al virus Epstein-Barr (EBV) usando una sonda que tiene un dominio específico de gen diana correspondiente al ARN nuclear de EBER de EBV [SEC ID Nº 51 a SEC ID Nº 54].
La Figura 11 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido esplénico humano usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ADN nuclear de de EBER 1 y 2 de EBV [SEC ID Nº 51 a SEC ID Nº 54].
La Figura 12 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido de amígdala humano usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARN nuclear de EBER 1 y 2 de EBV [SEC ID Nº 51 a SEC ID Nº 54].
Las Figuras 13A-13B ilustran los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido esplénico humano usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARN nuclear de EBER 1 y 2 de EBV [SEC ID Nº 51 a SEC ID Nº 54], donde la muestra tisular no se trató con ribonucleasa A antes de la hibridación in situ (A), o se trató con ribonucleasa A antes de la hibridación in situ (B). La disminución en la señal detectable en (B) indica que esta sonda hibrida específicamente con el ARN nuclear de EBER 1 y EBER 2 humano.
La Figura 14 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido de amígdala humano positivo a la cadena ligera kappa usando una sonda que tiene un dominio específico de gen diana correspondiente al ARNm de cadena ligera lambda de inmunoglobulina humana [SEC ID Nº 15].
La Figura 15 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejidos de linfoma usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARNm de cadena ligera kappa de inmunoglobulina humana [SEC ID Nº 2 - 4, SEC ID Nº 7 - 12, SEC ID Nº 14, 15]. El tejido de linfoma en (A) sobre-expresa la cadena ligera kappa y el tejido en (B) sobre-expresa la cadena ligera lambda. La ausencia de una señal detectable en (B) indica que la colección de sondas de cadena ligera kappa es específica para el ARNm de cadena ligera kappa.
La Figura 16 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido de amígdala humano positivo a la cadena ligera lambda usando una sonda que tiene un dominio específico de gen diana correspondiente al ARNm de la región variable de la cadena ligera lambda de inmunoglobulina humana [SEC ID Nº 19 a 29].
La Figura 17 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de una línea celular RPMI 8226 humana positiva a la cadena ligera lambda usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARNm de cadena ligera lambda de inmunoglobulina humana [SEC ID Nº 19 a 29].
Las Figuras 18A-18B ilustran los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido esplénico humano usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARNm de cadena ligera lambda de inmunoglobulina humana [SEC ID Nº 19 a 29]. El tejido en (A) sobre-expresa la cadena ligera lambda y el tejido en (B) sobre-expresa la cadena ligera kappa. La ausencia de una señal detectable en (B) indica que la colección de sondas de cadena ligera lambda es específica para el ARNm de cadena ligera lambda humana.
La Figura 19 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido pulmonar humano positivo a citomegalovirus (CMV) usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARN temprano inmediato de CMV [SEC ID Nº 30 - 32, SEC ID Nº 34 - 35, SEC ID Nº 38, SEC ID Nº 50]. [célula infectada por CMV]
La Figura 20 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de una línea celular 9G de rata en que la expresión del ARN temprano inmediato de CMV no se ha inducido por ciclohexamida usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARNm temprano inmediato de CMV [SEC ID Nº 30 - 32, SEC ID Nº 34 - 35, SEC ID Nº 38, SEC ID Nº 50].
Las Figuras 21A-21B ilustran los resultados obtenidos para el análisis de ISH de una línea celular 9G de rata en que la expresión del ARN temprano inmediato de CMV se ha inducido por ciclohexamida usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARN temprano inmediato de CMV [SEC ID Nº 30 - 32, SEC ID Nº 34 - 35, SEC ID Nº 38, SEC ID Nº 50]. El tejido en (A) se muestra a un aumento de 40X y el tejido en (B) se muestra a un aumento de 20X.
Descripción detallada de las realizaciones preferidas
La presente invención proporciona sondas oligonucleotídicas y colecciones de sondas oligonucleotídicas para detectar o localizar genes diana de ácido nucleico dentro de una muestra celular o tisular. En particular, la invención se refiere a colecciones de sondas oligonucleotídicas para su uso en análisis de hibridación in situ.
Más específicamente, esta invención se refiere al uso de fórmulas de secuencia específicas para polímeros nucleotídicos o dominios marcadores para unir un resto detectable (un marcador) a sondas oligonucleotídicas o proteínas. La utilidad específica de estas secuencias o derivados de las mismas, es la característica inerte o no reactiva que no hibrida con ADN o ARN humano a un nivel detectable en condiciones de hibridación de rigurosidad convencional. Se demostró que estos dominios marcadores o polímeros eran secuencias genéricas útiles para la incorporación en sondas oligonucleotídicas para detectar secuencias específicas de gen dentro de muestras celulares o tisulares en análisis de hibridación in situ. Además, este conjunto inerte de secuencias es útil para unir un marcador a inmunoglobulinas u otras proteínas para detectar haptenos y antígenos en análisis inmunohistoquímicos.
Como se usa en este documento, los términos "sonda" o "sonda oligonucleotídica" se refieren a una molécula de ácido nucleico usada para detectar un gen diana de ácido nucleico complementario.
Como se usa en este documento, el término "hibridación" se refiere al proceso por el que secuencias de ácido nucleico complementarias se unen para formar una molécula de ácido nucleico bicatenaria. Marcando la molécula de ácido nucleico diana con, por ejemplo, una marca radiactiva o fluorescente, pueden detectarse las interacciones entre la sonda y los genes diana.
Las sondas oligonucleotídicas y las sondas oligonucleotídicas de las colecciones de la presente invención se sintetizan usando métodos convencionales. Véase, por ejemplo, Methods in Molecular Biology, Vol 20: Protocols for Oligonucleotides and Analogs 165-89 (S. Agrawal, ed., 1993); Oligonucleotides and Analogues: A Practical Approach 87-108 (F. Eckstein, ed., 1991).
En una realización preferida de la presente invención, las sondas oligonucleotídicas tienen dos dominios distintos: un dominio 5' (o de marcaje) y un dominio 3' (o diana específico de gen) (Véase la Figura 1A). En realizaciones más preferidas de la presente invención, la sonda oligonucleotídica tiene un dominio de marcaje que consta de la secuencia (CTATTTT)n. También se muestran otras realizaciones en este documento, que incluyen una realización de triple dominio que tiene dos dominios de marcaje terminales, y un dominio diana específico de gen central. Específicamente, las SEC ID Nº 125 - 126 representan este esquema de marcaje. Las sondas oligonucleotídicas de la presente invención se marcan de tal manera que la hibridación entre dichas sondas y ácidos nucleicos diana en una célula o tejido particular pueda detectarse. Los marcadores que son aceptables para su uso en análisis de hibridación in situ (ISH) son conocidas para los especialistas en la técnica. Dichos marcadores permiten interacciones entre las sondas y los genes diana a detectar usando, por ejemplo, métodos de detección directa basados en radiactividad, métodos de detección directa basados en fluorescencia, sondas marcadas con digoxigenina o marcadas con biotina acopladas con métodos de detección basados en fluorescencia, o sondas marcadas con digoxigenina o marcadas con biotina acopladas con métodos de detección basados en anticuerpos-enzimas. En realizaciones preferidas de la presente invención, las sondas oligonucleotídicas se marcan con fluoresceína. En realizaciones más preferidas de la presente invención, la sonda oligonucleotídica tiene un dominio de marcaje que consta de la secuencia (CTATTTT)n, donde los nucleótidos de citosina pueden marcarse con un fluoróforo para detección directa, o un hapteno para detección indirecta. En cualquier caso, el conjugado de fluoresceína y nucleótido citosina, y la molécula de fluoresceína se unen en la posición N4 de la citosina a través de un enlace OBEA (Véase Mishra et al., Patente de Estados Unidos Nº 5.684.142). De acuerdo con la Patente de Estados Unidos Nº 5.684.142, un enlace OBEA se basa en 2,2'-oxi-bis(etilamina). En una realización preferida, la densidad de fluoróforo unido al dominio marcador es al menos el 7 por ciento en moles, preferiblemente al menos el 10 por ciento en moles, y mucho más preferiblemente al menos el 16 por ciento en moles, cuando se mide frente al dominio marcador solamente. Por ejemplo, si se considera que la sonda 401 (una sonda de 2 dominios) comprende un dominio marcador de 30 bases incluyendo una CT 3' terminal donde la C también está marcada, el porcentaje molar es 5/30 = 16,7 por ciento en moles de marcador. En la sonda global, el porcentaje molar es 8,3.
En algunas realizaciones de la presente invención, se analizan simultáneamente varios genes diana exponiendo una muestra celular o tisular a una pluralidad de sondas de ácido nucleico que se han marcado con una pluralidad de diferentes marcas de ácido nucleico. Por ejemplo, puede marcarse una pluralidad de sondas de ácido nucleico con una pluralidad de compuestos fluorescentes que tienen diferentes longitudes de onda de emisión, permitiendo de este modo realizar el análisis multicoloreado simultáneo en una única etapa sobre una única muestra celular o tisular diana.
Las sondas oligonucleotídicas y colecciones de sondas oligonucleotídicas de la presente invención pueden usarse en análisis de ISH para detectar o localizar genes diana de ácido nucleico dentro de una muestra celular o tisular. La ISH puede realizarse como se describe, por ejemplo, en In Situ Hybridization: Medical Applications (G. R. Coulton y J. de Belleroche, eds., Kluwer Academic Publishers, 1992); In Situ Hybridization: In Neurobiology; Advances in Methodology (J. H. Eberwine, K. L Valentino, y J. D. Barchas, eds., Oxford University Press, 1994); o In Situ Hybridization: A Practical Approach (D. G. Wilkinson, ed., Oxford University Press, 1992)).
La realización preferida de las sondas y colecciones de sondas de la presente invención se entienden mejor por referencia a las Figuras 1-21 y los Ejemplos 1-2. Los siguientes Ejemplos son ilustrativos de realizaciones específicas de la invención, y diversos usos de las mismas. Se exponen solamente para propósitos explicatorios, y no deben adoptarse como limitantes de la invención.
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Ejemplo 1
Preparación de Colección de Sondas
Se diseñaron colecciones de sondas que constan de una pluralidad de sondas oligonucleotídicas de 55 a 60 bases de longitud del siguiente modo. En este Ejemplo, cada sonda oligonucleotídica tenía dos dominios distintos: un dominio 5' (o de marcaje) y un dominio 3' (o específico de gen diana) (Véase la Figura 1).
En esta realización, el dominio de marcaje consta de la secuencia (CTATTTT)n, donde el nucleótido citosina representa un conjugado fluoresceína-nucleótido citosina y la molécula fluoresceína se une en la posición N4 de citosina a través de un enlace OBEA.
El dominio específico de gen diana consta de una secuencia de 25-30 bases que es complementaria a un gen diana de ácido nucleico específico. Se diseñaron sondas oligonucleotídicas que tenían dominios específicos de gen diana correspondientes a la región variable de cadena ligera kappa de inmunoglobulina humana (Véase la Tabla 1; sondas oligonucleotídicas 401-416), la región variable de cadena ligera lambda de inmunoglobulina humana (sondas oligonucleotídicas 501-515), secuencias de citomegalovirus humano (CMV) (sondas oligonucleotídicas 221-241), secuencias de EBER (ARN temprano de Epstein-Barr) del virus Epstein-Barr (EBV) humano (sondas oligonucleotídicas 100A2, 100C2, 100A1, y 100B1), secuencias Alu repetitivas humanas (sondas oligonucleotídicas 301 y 302), y poli d(T) (sonda oligonucleotídica 320).
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Ejemplo 2
Diseño de dominio marcador: sonda de secuencia repetitiva Alu
Se usaron cuatro sondas todas frente a la secuencia repetitiva humana Alu para evaluar el diseño del dominio marcador. Las sondas numeradas 301 (SEC ID Nº 55), 301A (SEC ID Nº 116), 301A2/2 (SEC ID Nº 121), y 301A3/2 (SEC ID Nº 122) se muestran en la Tabla 1.
Las cuatro sondas se evaluaron a las concentraciones de 100, 75, 50, y 25 ng/ml por ml de sonda en la reacción, respectivamente. Este análisis de hibridación se hizo manualmente, usando protocolos convencionales. La diana, la línea celular embebida en parafina MBA MD 468 (Oncor INFORM^{TM} Portaobjetos de Control Her-2/neu, Nº Cat. S8100, Nivel 1, disponibles en Ventana Medical Systems, Inc., Tucson, AZ) era la muestra diana y se procesó retirando la parafina por métodos de xileno convencionales. El tejido se sometió a Proteasa 1 de Ventana durante 12 minutos a 50 grados C en forma de una dilución 1:2 con Tampón APK de Ventana. La reacción de hibridación se consiguió con la adición de diluyente de sonda en forma de 100 \mul de sonda (formamida al 25%, sulfato de dextrano al 5%, 2X SSC, Triton al 1%) a un volumen residual de 100 \mul de 2XSSC/Triton X-100. El portaobjetos se calentó a 85 grados C durante 5 minutos y después se incubó durante 1 h a 37 grados C. Siguieron lavados con SSC convencionales para retirar el exceso de sonda. Los híbridos se detectaron con un anticuerpo contra FITC. El anticuerpo de ratón se detectó de forma colorimétrica usando Detección Azul con Fosfatasa Alcalina Potenciada de Ventana (nº cat. 760-061). A menos que se indique otra cosa, todos los reactivos se obtuvieron de Ventana Medical Systems, Inc., Tucson, AZ. Los resultados se observaron por detección colorimétrica usando microscopía de campo claro.
Los resultados de estos experimentos fueron que la intensidad de señal era una función de la cantidad total de hapteno fluoresceína conjugado con la sonda y la señal era del diseño de dominio marcador específico. Cuando mayor es la cantidad de fluoresceína por molécula sonda, mayor es la señal observada. La comparación del diseño y la colocación de los haptenos en la sonda mostró que esto no era un factor en la intensidad de señal. Las dos sondas que contenían cinco fluoresceínas (301A3/2 (SEC ID Nº 122) y 301 (SEC ID Nº 55)) produjeron ambas una señal equivalente. Estas dos sondas produjeron mayor señal que la observada para 301A2/2, una sonda con un diseño de dominio marcador dividido con cuatro fluoresceínas. La sonda 301A2/2 produjo una señal mayor que la sonda 301A, una sonda con un diseño de dominio marcador único en el extremo 5' y con tres fluoresceínas.
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Ejemplo 3
Diseño de Dominio Marcador: sondas de EBER
Este experimento comparó dos diseños y secuencias de dominio marcador para determinar si el mayor espaciado entre los haptenos fluoresceína mejora la producción de señal durante las etapas de detección de sondas durante el análisis de hibridación in situ.
El tejido usado era un tejido esplénico humano infectado con EBV fijado en sección embebida en parafina tamponada con formalina neutra de 4 micrómetros de grosor colocada en portaobjetos de microscopio de vidrio más silano. Las secciones tisulares se desparafinaron en una máquina Ventana DISCOVER^{TM}, seguido de una digestión de 6 min. con Proteasa 1 de Ventana, a una temperatura de 37ºC. La sonda se disolvió en diluyente de tampón de hibridación a una concentración de 50 ng/ml en forma de 100 \mul aplicados a un volumen igual de 2 X SSC/Triton X-100 de volumen residual dejado sobre el portaobjetos después de prepararlo por el sistema de tinción por ISH automatizado de Ventana Medical Systems, Inc., Discovery. El diluyente de sonda se mezcló con el volumen residual sobre el portaobjetos durante 6 min. a 37ºC, después la solución se calentó a 85ºC y se mantuvo durante un total de 10 min. El portaobjetos después se llevó a una temperatura de 37ºC y se mantuvo a esa temperatura durante 1 hora. Todas estas reacciones acuosas sobre el portaobjetos se hicieron sobre una película de LIQUID COVERSLIP^{TM}, para evitar las pérdidas por evaporación de agua durante el procesamiento. Cada portaobjetos después de la hibridación se lavó 3 veces con 2X SSC/solución Triton, con una incubación de 6 min. entre cada lavado, siendo el volumen del portaobjetos aproximadamente 300 \mul (+/- 10% vol). Los híbridos se detectaron con un anticuerpo contra FITC. El anticuerpo de ratón se detectó colorimétricamente usando Detección Azul con Fosfatasa Alcalina Potenciada de Ventana (nº cat.
760-061).
Las dos sondas oligonucleotídicas usadas para este estudio eran las sondas 100A1 (SEC ID Nº 53) y 1002A32 (SEC ID Nº 120). Las dos diferencias entre estas sondas eran la secuencia y estructura del dominio marcador. En la sonda 100A1 el dominio marcador estaba 5' del dominio de gen diana, contenía 5 fluoresceínas unidas a restos de citosina mediante un enlazador OBEA, con la fórmula de secuencia de (CTATTTT)_{4}CT (SEC ID Nº 58). El dominio marcador de la oligosonda 1002A32, era similar (SEC ID Nº 125). Más allá de la diferente secuencia, la diferencia principal era que las citosinas marcadas con fluoresceína estaban espaciadas por 10 bases en comparación con el oligo 100A1 donde el espaciado de citosina estaba más cerca a 7 bases. El resultado de esta comparación deducido por análisis de valores H era que estos oligonucleótidos eran equivalentes en cuanto a la cantidad de señal generada sobre el portaobjetos. Los datos fueron que para 100A2, para las 368 células analizadas en un total de 3 campos, el valor H era 106, y para la sonda 1002A32 para las 345 células analizadas en tres campos, el valor H era 109. El valor H es un análisis espectro-gráfico hecho con microscopio que toma en consideración el valor de fondo a una proporción de señal sobre la sección tisular para producir una comparación relativa de señal específica de diana total sobre el portaobjetos. (Véase la referencia Giroud, F. Perrin C, y Simony Lafontaine, J.; Quantitative Immunocytochemistry and Immunohistochemistry. Third Conference of the European Society for Analytical Cellular Pathology, 1994; y AutoCyte Quic Immuno User's Manual, 1998, número de documento PA-029, Co AutoCyte Inc. Burlington NC 2721). Los histogramas y la hoja de valores indicaron que cada oligo era igual de eficaz para producir una señal colorimétrica. Esto indica que la posición del dominio marcador puede ser 3 prima o 5 prima a la secuencia de diana génica o la secuencia de diana génica puede posicionarse entre dos dominios marcadores.
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Ejemplo 4
Hibridación In Situ
Las colecciones de sondas preparadas en el Ejemplo 1 se diluyeron primero en una solución compuesta por sulfato de dextrano al 20% (p/vol), formamida al 50% (vol/vol), 2X SSC, Tris-HCl 10 mM, EDTA 5 mM, y Brij-35 al 0,05%, a un pH final de 7,3. Las colecciones de sondas después se mezclaron con un volumen igual de una solución compuesta por 2X SSC y Triton X-100 al 0,05%.
Las muestras para el análisis de ISH se prepararon cortando muestras celulares o tisulares embebidas en parafina y fijadas en formalina en secciones de 4 \mum y colocando las secciones sobre un portaobjetos de vidrio. El posterior procesamiento e ISH de las muestras se realizó en un dispositivo automatizado, tal como el Instrumento de Tinción ISH/IHC Automatizado DISCOVERY^{TM} (Ventana Medical Systems, Inc., Tucson, AZ) descrito en las Solicitudes de Patente de Estados Unidos del mismo propietario que la presente y pendientes junto con la presente Nº de Serie 60/076.198 y 09/259.240, ambas incorporadas en este documento por referencia. Para retirar la parafina de las muestras, los portaobjetos se sumergieron en una solución acuosa, se calentaron durante aproximadamente 20 minutos, y después se aclararon. El procedimiento de desparafinación automatizado se describe más completamente en los documentos de Estados Unidos Nº de Serie 60/099.018, 09/259.240 ambos incorporados en este documento por referencia. Las muestras después se trataron con proteasa y los portaobjetos se calentaron a 85ºC (para hibridación con genes diana de ARN) o 90-95ºC (para hibridación con genes diana de ADN) durante 4 a 10 minutos.
Las reacciones de hibridación se realizaron típicamente en un tampón de hibridación compuesto por sulfato de dextrano al 10% (p/vol), formamida al 25% (vol/vol), 2X SSC, Tris 5 mM, EDTA 2,5 mM, Brij-35 al 0,025%, Triton X-100 al 0,25%, y entre 25 y 125 ng/ml de cada molécula sonda individual. Las reacciones de ISH se realizaron a entre 37ºC y 54ºC. Para ISH usando las colecciones de sondas descritas en el Ejemplo 1, las reacciones de hibridación se realizaron de forma óptima durante 1 h a 47ºC (excepto para la sonda poli d(T), donde la reacción de hibridación se realizó de forma óptima a 37ºC durante 1 h).
La hibridación de las moléculas de sonda marcadas con fluoresceína con un gen diana particular en la muestra se detectó usando una serie secuencial de proteínas de unión, es decir, detección de anticuerpo secundario. Sin embargo, es igualmente posible usar detección directa cuando se visualizan sondas unidas. En detección secundaria, primero, se añadió un anticuerpo monoclonal de ratón anti-fluoresceína dirigido contra la molécula de sonda marcada con fluoresceína a la muestra. Después, se añadió un anticuerpo de cabra policlonal marcado con biotina dirigido contra el anticuerpo de ratón a la muestra. Finalmente, las reacciones de hibridación se detectaron colorimétricamente usando un sustrato de 5-bromo-4-cloro-3-indolil fosfato/nitroazul de tetrazolio (BCIP/NBT). Esta técnica, llamada "detección de anticuerpo secundario" es rutinaria para los especialistas en la técnica. Los anticuerpos primarios y secundarios están disponibles en numerosos proveedores, incluyendo Ventana Medical Systems, Tucson, AZ, que están optimizados para su uso en los sistemas de auto-tinción de Ventana (ES®, NexES®, DISCOVERY^{TM}, y BENCHMARK^{TM}).
Las Figuras 2-21 ilustran los resultados obtenidos para análisis de hibridación in situ de diversas líneas celulares o muestras tisulares usando las sondas descritas y reivindicadas en este documento que tienen el motivo estructural ilustrado en la Figura 1 o las colecciones de sondas compuestas por dichas sondas.
La Figura 1 ilustra una estructura de sonda genérica del diseño de sonda de dos dominios. Éste es el diseño de oligonucleótido usado para las sondas en los cócteles específicos de gen descritos en los siguientes ejemplos. Cada sonda está compuesta por dos dominios: un dominio de marcaje 5' y un dominio específico de gen diana 3'. El dominio de marcaje consta de esta secuencia específica (CTATTTT)n, donde el nucleótido citosina es un conjugado citosina-hapteno, siendo el hapteno fluoresceína en esta realización. Esta ilustración muestra específicamente secuencias de ácido nucleico para las sondas 301 (SEC ID Nº 55) y 302 (SEC ID Nº 56), cada una de las cuales tiene dominios específicos de gen diana correspondientes a las secuencias Alu repetitivas humanas y dominios de marcaje que tienen un hapteno de fluoresceína.
La Figura 2 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de hibridación in situ (ISH) de tejido cutáneo humano usando una sonda que comprende el dominio de marcaje (sonda 330; SEC ID Nº 58). La ausencia de una señal detectable indica que la fórmula de secuencia, (CTATTTT)n, del dominio de marcaje común a los oligonucleótidos usados en estos ejemplos de ISH es no específico, y no reactivo en su capacidad de formar apareamiento de bases de Watson-Crick con secuencias de ácido nucleico humanas porque no hibridan.
La Figura 3 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido cutáneo humano usando una sonda que comprende el dominio de marcaje y un dominio específico de gen diana poli d(T) (sonda 320; SEC ID Nº 57). La presencia de una señal detectable localizada en el citoplasma indica que esta sonda es capaz de hibridar específicamente con la región poliadenilada del ARN mensajero.
Las Figuras 4A-4B ilustran los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido cutáneo humano usando la sonda 320, donde la muestra tisular no se trataba con ribonucleasa A antes de la hibridación in situ (A), o se trataba con ribonucleasa A antes de la hibridación in situ (B). La disminución en la señal detectable en (B) indica que esta sonda hibrida específicamente con una región poliadenilada común al ARN mensajero.
Las Figuras 5A-5B ilustran los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido esplénico humano usando la sonda 320, donde la hibridación y el lavado riguroso se realizaron a temperatura ambiente (A), o a 37ºC (B). Este resultado ilustra que la intensidad de color está relacionada con la rigurosidad de las condiciones de hibridación, indicando el color más intenso condiciones menos rigurosas.
La Figura 6 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de la línea celular Raji humana usando la sonda 320. Esto muestra que este diseño de sonda también es funcional con líneas celulares embebidas así como tejido embebido.
La Figura 7 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de la línea celular Raji humana usando una colección de sondas compuesta por las sondas 301 y 302.
La Figura 8 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de la línea celular HT humana usando una colección de sondas compuesta por las sondas 301 y 302.
La Figura 9 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de una línea celular de rata usando una colección de sondas compuesta por las sondas 301 y 302. La ausencia de una señal detectable indica que esta colección de sondas es específica para secuencias de ácido nucleico humanas.
La Figura 10 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de una línea celular HT humana negativa al virus Epstein-Barr (EBV) usando una sonda que tiene un dominio específico de gen diana correspondiente al ARN nuclear de EBER de EBV [SEC ID Nº 51 a SEC ID Nº 54].
La Figura 11 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido esplénico humano usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARN nuclear de EBER 1 y 2 de EBV [SEC ID Nº 51 a SEC ID Nº 54].
La Figura 12 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido de amígdala humano usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARN nuclear de EBER 1 y 2 de EBV [SEC ID Nº 51 a SEC ID Nº 54].
Las Figuras 13A-13B ilustran los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido esplénico humano usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARN nuclear de EBER 1 y 2 de EBV [SEC ID Nº 51 a SEC ID Nº 54], donde la muestra tisular no se trató con ribonucleasa A antes de la hibridación in situ (A), o se trató con ribonucleasa A antes de la hibridación in situ (B). La disminución en la señal detectable en (B) indica que esta sonda hibrida específicamente con el ARN nuclear de EBER 1 y EBER 2 humano.
La Figura 14 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido de amígdala humano positivo a la cadena ligera kappa usando una sonda que tiene un dominio específico de gen diana correspondiente al ARNm de cadena ligera lambda de inmunoglobulina humana [SEC ID Nº 15].
La Figura 15 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejidos de linfoma usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARNm de cadena ligera kappa de inmunoglobulina humana [SEC ID Nº 2 - 4, SEC ID Nº 7 - 12, SEC ID Nº 14, 15]. El tejido de linfoma en (A) sobre-expresa la cadena ligera kappa y el tejido en (B) sobre-expresa la cadena ligera lambda. La ausencia de una señal detectable en (B) indica que la colección de sondas de cadena ligera kappa es específica para el ARNm de cadena ligera kappa.
La Figura 16 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido de amígdala humano positivo a la cadena ligera lambda usando una sonda que tiene un dominio específico de gen diana correspondiente al ARNm de la región variable de la cadena ligera lambda de inmunoglobulina humana [SEC ID Nº 19 a 29].
La Figura 17 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de una línea celular RPMI 8226 humana positiva a la cadena ligera lambda usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARNm de cadena ligera lambda de inmunoglobulina humana [SEC ID Nº 19 a 29].
Las Figuras 18A-18B ilustran los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido esplénico humano usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARNm de cadena ligera lambda de inmunoglobulina humana [SEC ID Nº 19 a 29]. El tejido en (A) sobre-expresa la cadena ligera lambda y el tejido en (B) sobre-expresa la cadena ligera kappa. La ausencia de una señal detectable en (B) indica que la colección de sondas de cadena ligera lambda es específica para el ARNm de cadena ligera lambda humana.
La Figura 19 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de tejido pulmonar humano positivo a citomegalovirus (CMV) usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARN temprano inmediato de CMV [SEC ID Nº 30 - 32, SEC ID Nº 34 - 35, SEC ID Nº 38, SEC ID Nº 50]. La flecha indica la célula infectada por CMV.
La Figura 20 ilustra los resultados obtenidos para el análisis de ISH de una línea celular 9G de rata en que la expresión del ARN temprano inmediato de CMV no se ha inducido por ciclohexamida usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARN temprano inmediato de CMV [SEC ID Nº 30 - 32, SEC ID Nº 34 - 35, SEC ID Nº 38, SEC ID Nº 50].
Las Figuras 21A-21B ilustran los resultados obtenidos para el análisis de ISH de una línea celular 9G de rata en que la expresión del ARN temprano inmediato de CMV se ha inducido por ciclohexamida usando una colección de sondas compuesta por sondas que tienen dominios específicos de gen diana correspondientes al ARN temprano inmediato de CMV [SEC ID Nº 30 - 32, SEC ID Nº 34 - 35, SEC ID Nº 38, SEC ID Nº 50]. El tejido en (A) se muestra a un aumento de 40X y el tejido en (B) se muestra a un aumento de 20X.
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(Tabla pasa a página siguiente)
1
2
3
TABLA 2
4
Las Tablas 1 y 2, las Figuras y la Lista de Secuencias contienen ejemplos de acuerdo con la presente invención así como ejemplos de referencia.
<110> Utermohlen, Joseph
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<110> Connaughton, John
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<120> Fórmula de secuencia oligonucleotídica para marcar Sondas Oligonucleotídicas y Proteínas para Análisis In Situ
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<130> 355/001/PCT
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<140>
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<141> 06-09-2001
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<150> 60/233.177
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<151> 15-09-2000
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<160> 126
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<170> PatentIn Ver. 2.0
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<210> 1
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<211> 60
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<212> ADN
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
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<400> 1
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
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<212> ADN
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<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\hskip1cm
47
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\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
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<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\hskip1cm
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<211> 55
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<212> ADN
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<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
\vskip1.000000\baselineskip
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\hskip1cm
49
\vskip0.400000\baselineskip
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<211> 55
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
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\hskip1cm
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<211> 55
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<212> ADN
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
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\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
\vskip1.000000\baselineskip
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<211>
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
\vskip1.000000\baselineskip
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\hskip1cm
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<211>
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<212> ADN
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<213> Secuencia Artificial
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
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<211>
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<212> ADN
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
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<211>
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
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124
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<211>
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<220>
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<223> Descripción de Secuencia Artificial: Sonda oligonucleotídica
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<213> Secuencia Artificial
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126
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<212> ADN
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<213> Secuencia Artificial
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Claims (8)

1. Una sonda oligonucleotídica sintética que comprende un primer dominio que tiene un dominio marcador compuesto por una secuencia no específica de gen de un polímero de la secuencia repetitiva (CTATTTT)_{n}, y un segundo dominio que comprende un dominio diana que tiene una secuencia diana específica de gen, donde el dominio marcador está marcado de forma detectable.
2. La sonda oligonucleotídica de acuerdo con la reivindicación 1, donde el marcador es fluoresceína, unido al nitrógeno N4 de la(s) citosina(s) del dominio marcador a través de un enlazador OBEA.
3. La sonda oligonucleotídica de acuerdo con la reivindicación 1, donde el marcador es un fluoróforo.
4. La sonda oligonucleotídica de acuerdo con la reivindicación 3, donde el fluoróforo está presente a una densidad de más del 7 por ciento en moles del dominio marcador.
5. La sonda oligonucleotídica de acuerdo con la reivindicación 1, donde al menos el 7 por ciento en moles de la(s) citosina(s) del dominio marcador están unidas a un resto detectable por un enlazador OBEA.
6. La sonda oligonucleotídica de acuerdo con la reivindicación 1, donde el dominio marcador está localizado en el extremo 5' de la sonda oligonucleotídica, y la secuencia diana específica de gen está 3' al dominio marcador.
7. La sonda oligonucleotídica de acuerdo con la reivindicación 1, donde el dominio marcador está localizado en el extremo 3' de la sonda oligonucleotídica, y la secuencia diana específica de gen está 5' al dominio marcador.
8. Una serie de sondas sintéticas para detectar el ARNm de cadena ligera de inmunoglobulina Kappa o el ARN heteronuclear correspondiente, donde las sondas se seleccionan entre el grupo compuesto por la SEC ID Nº 1 a 16 inclusive.
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