ES2311013T3 - Proteina tensioactiva d para la prevencion y el diagnostico del enfisema pulmonar. - Google Patents
Proteina tensioactiva d para la prevencion y el diagnostico del enfisema pulmonar. Download PDFInfo
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Abstract
Utilización de una formulación de aerosol que comprende una proteína SP-D de mamífero aislada en la preparación de un medicamento para incrementar la depuración de partículas víricas causadas por un adenovirus de pulmón.
Description
Proteína tensioactiva D para la prevención y el
diagnóstico del enfisema pulmonar.
Determinados aspectos de la presente invención
dados a conocer en la presente memoria se realizaron con el apoyo
del gobierno de los Estados Unidos con las becas de National
Institutes of Health HL41320, SCOR HL 56387, HL 28623, HL58795 y
HL03905. El gobierno de los Estados Unidos ostenta determinados
derechos sobre estos aspectos de la presente invención.
La presente invención se refiere de manera
general al campo de las proteínas biológicamente activas. Más
específicamente la presente invención se refiere a las proteínas
SP-D implicadas en la homeóstasis y en la estructura
del tensioactivo pulmonar y a la estructura alveolar en los
pulmones y de los ratones nulos SP-D (-/-).
El tensioactivo pulmonar es esencial para la
mecánica normal del pulmón y para el intercambio de gas en el
pulmón. El tensioactivo pulmonar se produce mediante las células
epiteliales de tipo II y está compuesto de un componente de
fosfolípido que confiere la capacidad al tensioactivo de disminuir
la tensión superficial en el pulmón. Además, existen proteínas
asociadas con el tensioactivo denominadas colectinas que son
polipéptidos de colágeno que contienen dominios de lectina. Dos de
éstas, designadas proteína tensioactiva A (SP-A) y
proteína tensioactiva D (SP-D), es probable que se
impliquen en la estructura y la función de tensioactivo y en la
defensa de huésped. Tanto las deficiencias cuantitativas como
cualitativas en el tensioactivo pulmonar se asocian con el síndrome
de distrés respiratorio neonatal, síndrome de distrés respiratorio
de adulto, deficiencias congénitas de la proteína B tensioactiva, y
asma alérgico. Además, la deficiencia en el tensioactivo pulmonar
puede contribuir a la propensión incrementada de algunos individuos
al reto microbial, especialmente en el establecimiento de una
inmunidad específica inadecuada o dañada. Estos trastornos así como
algunos trastornos asociados con el riesgo incrementado de neumonía
(fibrosis quística, asma, premadurez, bronquitis crónica, daño
alveolar difuso) se pueden asociar con defectos adquiridos o con la
deficiencia de la función de la colectina. Los reservorios de
tensioactivo alveolar se regulan a niveles múltiples incluyendo la
síntesis intracelular, la secreción, la reabsorción y la
degradación de estos componentes mediante macrófagos alveolares. La
síntesis y la depuración de los fosfolípidos de tensioactivo y las
proteínas resultan influidas además por los estímulos de
desarrollo, mecánicos y humorales que sirven para mantener
constantes las concentraciones de tensioactivo después del
nacimiento.
Se investigado mucho sobre el papel de las
colectinas en el tensioactivo y en la función de pulmón normal. La
familia de la colectina de las lectinas de tipo C incluye un número
de moléculas con funciones de defensa de huésped conocidas. Las
lectinas de tipo SP-A y la SP-D, así
como las de tipo C, unen los virus de la gripe y del herpes simple
además de las bacterias gram positivas y gram negativas y diversos
hongos. Mediante la unión ellas aumentan la absorción mediante los
macrófagos y neutrófilos alveolares. Se han identificado diversos
sitios de uniones celulares para SP-A y
SP-D en los macrófagos alveolares, en el caso de la
SP-A, en las células epiteliales del tipo II. El
papel crítico de la defensa de huésped de SP-A se
confirmó con la observación de que los ratones con deficiencia de
SP-A son propensos a las infecciones por el
estreptococus de grupo B, Pseudomonas aeruginosa, virus
sincitial respiratorio, adenovirus, y micoplasma in vivo. De
este modo, existe un papel claro para la SP-A y un
papel probable para la SP-D en el mecanismo de
defensa respiratorio. Las colectinas pueden participar asimismo en
el reconocimiento de la depuración de otros materiales orgánicos
complejos, tales como pólenes y alérgenos de ácaros del polvo. Sin
embargo, hasta la fecha, no se han asociados enfermedades humanas
con deficiencias específicas de SP-A o
SP-D.
La SP-D es una proteína de 43
kilodalton que se ha propuesto que desempeña un papel en la defensa
de huésped en el pulmón. Su ADNc y el gen se han secuenciado en
diversos mamíferos incluyendo humanos. La SP-D
comparte una homología estructural considerable con otras lectinas
de tipo C, incluyendo la proteína A tensioactiva
(SP-A), conglutinina, colectina 43 bovina y la
proteína de unión a manosa. Los estudios in vitro y su
relación estructural próxima a la familia de lectina dependiente de
Ca^{2+} de mamífero (comparten elementos estructurales
particularmente) apoyan su papel en la defensa de huésped. La
SP-D se sintetiza de forma primaria y a unas
concentraciones relativamente elevadas mediante las células
epiteliales de tipo II y en las células epiteliales bronquiolares
no ciliadas en el pulmón pero se pueden expresar asimismo en el
tracto gastrointestinal, corazón, riñón, páncreas, tracto
genitourinario y células mesentéricas. Los estudios in vitro
demostraron que la SP-D se une a la superficie de
organismos vía su dominio de lectina (o dominio de unión de azúcar)
que lleva a la unión, agregación, opsonización y, en algunos casos,
a la activación de la muerte mediante fagocitos in vitro. La
proteína SP-D se une a un lipopolisacárido, a
diversas bacterias, hongos y virus, incluyendo el virus de la
gripe. Se une asimismo a tanto los macrófagos alveolares como a
células polimorfonucleares. Puede desempeñar posiblemente un papel
en la homeóstasis de fosfolípido de tensioactivo, incluyendo los
efectos de SP-A en el metabolismo de fosfolípido de
células de tipo II in vitro, sin embargo, esto es
controvertido y el papel preciso de SP-D in
vitro todavía no está claro.
Los estudios in vitro apoyan el concepto
que las proteínas de tensioactivo pueden ser importantes en la
regulación de la homeóstasis de tensioactivo. Aunque las proteínas
de tensioactivo hidrofóbicas SP-B y
SP-C poseen roles en la producción de la monocapa
de tensioactivo, los estudios in vitro indican que la
proteína A de tensioactivo puede facilitar asimismo la absorción
y/o la secreción de tensioactivo mediante las células epiteliales
de tipo II. De hecho, fue una creencia extendida que la
SP-A tenía un papel mayor en la homeóstasis de
tensioactivo. Sin embargo, estudios recientes de ratones nulos
SP-A no han apoyado el papel primario de la
proteína A tensioactiva en la secreción o en la reabsorción de
tensioactivo. La ausencia de SP-A no lleva a
anormalidades estructurales fisiológicas o morfológicas del pulmón.
Los ratones mutantes nulos SP-A carecen de figuras
de mielina tubulares pero producen tensioactivo elevadamente
funcional que se absorbe rápidamente y produce monocapas. La
síntesis de lípido de tensioactivo, secreción y reabsorción fueron
esencialmente normales en los ratones nulos
SP-A.
Por lo tanto, no se ha identificado todavía la
proteína tensioactiva adicional que actúa en la regulación del
tensioactivo. Además, el papel preciso de SP-D en la
función pulmonar normal no se ha definido claramente en este punto
y su papel en la enfermedad o en la propensión a la enfermedad no
está claro.
El documento WO 00/023569 A, publicado después
de la fecha de prioridad de la presente solicitud, da a conocer un
ratón SP-D (-/-) que se puede utilizar como un
modelo para el enfisema.
Hickling et al., (Eur. J. Immunol., 1999
Nov; 29(11): 3478-84) da a conocer la
inhibición de la infección del virus sincitial respiratorio
mediante la SP-D trimérica recombinante.
El documento WO 00/12078 A da a conocer el
tratamiento de enfermedades pulmonares mediante la administración
de un inhibidor 4 fosfodiesterasa en combinación con
broncodilatadores beta adrenérgicos.
El documento WO 86/06959 A da a conocer un
sistema para la administración de fármacos mediante inhalación
basado en formulaciones de liposoma.
Hartshom et al., (J. Clin. Invest. 1994,
94(1): 311-319) investiga la hipótesis que
SP-A y SP-D contribuyan a los
mecanismos protectores iniciales contra la gripe.
El documento WO91/00871A da a conocer la
preparación de composiciones de tensioactivo pulmonares
estables.
La presente solicitud describe un ratón
SP-D (-/-) que se puede utilizar como modelo para el
enfisema. Anteriormente, no se conocía que la proteína
SP-D estuviese implicada en la homeóstasis lipídica
pulmonar. Ni se conocía un ratón nulo SP-D que
presentara los síntomas del enfisema.
La presente invención proporciona la utilización
de una formulación de aerosol que comprende una proteína
SP-D de mamífero aislada en la preparación de un
medicamento para aumentar la depuración de partículas víricas
causadas por un adenovirus pulmonar.
En una forma de realización dicho medicamento
puede reducir los síntomas o la enfermedad vírica.
En otra forma de realización dicho medicamento
puede reducir el título vírico.
En otra forma de realización dicha enfermedad
vírica es una enfermedad pulmonar vírica.
En otra forma de realización dicho medicamento
puede reducir la inflamación pulmonar.
En otra forma de realización dicho medicamento
puede reducir el título vírico pulmonar.
En otra forma de realización dicho medicamento
se suministra mediante administración pulmonar.
En otra forma de realización dicha
administración pulmonar es mediante inhalación.
En otra forma de realización dicho medicamento
comprende adicionalmente por lo menos un compuesto seleccionado de
entre el grupo constituido por: un broncodilatador, una
antihistamina, epinefrina, un antibiótico y pentamidina.
En otra forma de realización, dicho medicamento
se administra en una dosis única.
En otra forma de realización, dicho medicamento
se administra en dosis múltiples.
En otra forma de realización, dicho medicamento
se prepara en una formulación de liposoma.
En otra forma de realización, dicha
SP-D se expresa a partir de un vector.
En otro aspecto de la presente invención se
proporciona una formulación de aerosol que comprende una proteína
SP-D de mamífero aislada para aumentar la depuración
de partículas víricas causadas por un adenovirus pulmonar.
Figura 1: comparación de los cambios en las
áreas de fracción (% de Área Fx) de espacio aéreo (a) y parénquima
respiratorio (b) con la edad en ratones SP-D (-/-) y
en ratones de control que encajan por edad SP-D
(+/+). Análisis de cambios en estos parámetros con la edad para
cada genotipo individual (c y d). Los datos se expresan como % de
área de fracción y representan la media \pm SE.
Figura 2: desinflamiento de los segmentos de las
curvas presión-volumen de ratones
SP-D (+/+) y SP-D (-/-). Los datos
se expresan como ml/kg y representan la media \pm SE.
Figura 3: citocinas proinflamatorias en los
homogenizados de pulmón de ratones SP-D (-/-). Se
evaluaron las concentraciones de TNF-\alpha,
IL-1\beta, IL-6 y
MIP-2 en los homogeneizados de pulmón de ratones
SP-D (-/-) (barra sólida) y SP-D
(+/+) (barra sombreada). Los datos se expresan como pg/ml y
representan la media \pm SE con n=5 ratones por grupo; ''p<0,05
comparada con la de los ratones SP-D (+/+).
Figura 4: se evaluó la producción de peróxido de
hidrógeno en los macrófagos alveolares de SP-D (-/-)
(barra sólida) a partir de 1 x 10^{6} macrófagos aislados del
fluido de lavado broncoalveolar (BALF) según se comparó con ratones
SP-D (+/+) (barra sombreada) con y sin estimulación
de PMA. Los datos se expresan como M de H_{2}O_{2} y
representan la media \pm SE con n = 4 ratones por grupo;
''p<0,05 comparada con la de los ratones SP-D
(+/+)
Figura 5: contaje de colonias pulmonares en
ratones SP-D (-/-) y SP-D (+/+)
después de la infección con Streptococcus GpB (GBS).
Figura 6: contaje de colonias pulmonares en
ratones SP-D (-/-) y SP-D (+/+)
después de la infección con Haemophilus influenzae (H.
flu)
Figura 7: Contaje celular total en el fluido de
lavado broncoalveolar (BAL) después de la infección con GBS y H.
flu
Figura 8: niveles de citocina en los
homogenizados de pulmón después de la infección con GBS y H.
flu.
Figura 9: niveles de nitrito BAL después de la
infección con GBS y H. flu.
Figura 10: fagocitosis analizada mediante
microscopía óptica y análisis FACS después de la infección con GBS
y H. flu.
Figura 11: niveles de peróxido y superóxido de
hidrógeno en los macrófagos aislados de BAL después de la infección
con GBS y H. flu.
Figura 12: efectos del tratamiento de la
proteína SP-D en ratones SP-D
(-/-).
Figura 13: cinética de depuración de lavado
alveolar de la proteína SP-D y de todo el pulmón en
ratones.
Figura 14: vector adenovírico
Ad-rSPD que contiene ADNc de ratones
SP-D.
Figura 15: cuantificación de análisis de
transferencia de SP-A y SP-D en
lavados alveolares a partir de ratones
CCSP-IL-4 de tipo salvaje (ratones
IL-4). p<0,01.
Figura 16: se determinaron los títulos de RSV y
IAV mediante ensayos de placa cuantitativos de homogeneizados de
pulmón. Los títulos virales de RSV fueron significativamente
superiores 3 y 5 días después de la administración de 10^{7} pfu
de RSV (gráfico A) en ratones SP-D (-/-) (barra sin
relleno) comprados con los de los ratones de tipo salvaje (barra
sombreada). Los títulos de homogeneizado de pulmón de IAV fueron
significativamente superiores para ratones SP-D
(-/-) (barra sin relleno) comparadas con los de los ratones de tipo
salvaje (barra sombreada) 3 y 5 días después de la infección
(gráfico B). Los datos son media \pm SEM con n=15 ratones por
grupo (gráfico A) y n=10 ratones por grupo (gráfico B). *p<0,05
comparada con la de los ratones de tipo salvaje.
Figura 17: células pulmonares se recubrieron
mediante lavado broncoalveolar, se tiñeron de azul trípano y se
contaron con microscopía óptica. Los ratones SP-D
(-/-) (barra sin relleno) habían incrementado su contaje celular en
el fluido BAL 3 y 5 días después de la infección RSV (gráfico A)
comparado con el de los ratones de tipo salvaje (barra sombreada).
La SP-D (-/-) (barra abierta) había incrementado los
contajes celulares totales en el fluido BAL 3 y 5 días después de
la infección IAV (gráfico B). Los datos son la media \pm SEM con
n = 8 ratones por grupo, *p<0,05 comparada con la de los ratones
de tipo salvaje.
Figura 18: se tiñeron las preparaciones de
citospina de fluido de lavado broncoalveolar con
DIFF-QUIK para identificar macrófagos, linfocitos y
leucocitos polimorfonucleares. El porcentaje de neutrófilos en el
fluido BAL fue significativamente superior 3 y 5 días después de la
administración de 10^{7} pfu de RSV a ratones
SP-D (-/-) (barra sin relleno) comparado con el de
los ratones de tipo salvaje (barra sombreada) (gráfico A). De
manera similar, el porcentaje de neutrófilos en el fluido BAL fue
significativamente superior 3 y 5 días después de la administración
de 10^{5} pfu de IAV a ratones SP-D (-/-) (barra
sin relleno) comparado con el del tipo salvaje (gráfico B). Los
datos son la media \pm SEM con n=8 ratones por grupo, *p<0,05
comparada con la de los ratones de tipo salvaje.
La solicitud describe un modelo de ratón de
enfisema que es SP-D (-/-), un procedimiento para la
prevención y tratamiento del enfisema con la proteína
SP-D o ácido nucleico y procedimientos para la
identificación de productos farmacéuticos útiles para el
tratamiento del enfisema y de otras enfermedades pulmonares
utilizando el modelo de ratón SP-D (-/-).
Se produjo un ratón inactivación génica
SP-D (-/-) para identificar el papel de la
SP-D en la función y el desarrollo pulmonar normal
y para demostrar la progresión temporal del alargamiento del espacio
aéreo postnatal y de los cambios inflamatorios espontáneos en los
pulmones de estos ratones. Los ratones SP-D (-/-)
desarrollan enfisema pulmonar progresivo, asociado con la
inflamación crónica y una producción oxidante incrementada por los
macrófagos alveolares. Las anormalidades de pulmón hacen que este
ratón sea un modelo excelente para el enfisema. Debido a que
existen muy pocas terapias para el tratamiento del enfisema, siendo
la más común la cirugía de reducción de volumen de pulmón, el
modelo se necesita urgentemente. Basándose en el modelo de ratón
para el enfisema, se describen un número de maneras para ensayar la
proteína SP-D y los vectores de expresión, y los
fármacos potenciales en el modelo de ratón para la eficacia en el
tratamiento del enfisema o de otras formas de daño pulmonar
crónico. Se describen asimismo la utilización de la proteína
SP-D y los vectores de expresión para tratar
diversas enfermedades de producción de tensioactivo aberrante,
fibrosis pulmonar, sarcoidosis, daño pulmonar, exposición
tóxica/oxígeno, infección, exposición oxidante incrementada. Por
último, se describen los procedimientos para utilizar el ADNc de
SP-D, los anticuerpos SP-D, PCR y
las técnicas de hibridación diferenciales para identificar los
pacientes con riesgo de enfisema, síndromes de distrés pulmonar y
otros tipos de enfermedades respiratorias.
Aunque otros materiales y procedimientos
similares o equivalentes a los descritos en la presente memoria se
pueden utilizar en la práctica o en el ensayo de la presente
invención, se describen a continuación los procedimientos y
materiales preferidos.
Tal como se utiliza en la presente memoria, el
término "administración pulmonar" se refiere a la
administración de una formulación de la presente invención a través
de los pulmones mediante inhalación.
Tal como se utiliza en la presente memoria, el
término "inhalación" se refiere a la toma de aire en los
alvéolos. En los ejemplos específicos, la toma puede realizarse
mediante la autoadministración de una formulación de la presente
invención mientras se inhala, o mediante la administración vía un
respirador, por ejemplo, en un paciente en un respirador. El
término "inhalador" utilizado con respecto a la formulación de
la presente invención es sinónimo de "administración
pulmonar".
Tal como se utiliza en la presente memoria, el
término "parenteral" se refiere a la introducción de una
SP-D en el cuerpo mediante otra ruta que no sea por
el intestino y en particular, intravenosa (i.v.), intraarterial
(i.a.), intraperitoneal (i.p.), intramuscular (i.m.),
intraventricular y subcutánea (s.c.).
Tal como se utiliza en la presente memoria, el
término "aerosol" se refiere a una suspensión en el aire. En
particular, el aerosol se refiere a la particulización de una
formulación de la presente invención y a su suspensión en el aire.
Según la presente invención, una formulación de aerosol es una
formulación que comprende una SP-D que es adecuada
para la aerosolización, es decir, la particulización y suspensión en
el aire, para la inhalación o administración pulmonar.
Tal como se utiliza en la presente memoria, el
término "sistémico" se refiere a una enfermedad o trastorno, o
el sitio original del daño distante del pulmón o implica el cuerpo
entero del organismo. El término "local" por lo tanto se
utiliza en la presente memoria con respecto al pulmón.
Para mayor claridad, la presente invención se
describe en detalle en las secciones que se refieren a la
SP-D, a las formulaciones de aerosol y a
procedimientos para el tratamiento y profilaxis.
La presente invención considera las
formulaciones que comprenden la proteína SP-D o
ácido nucleico para su utilización en una amplia variedad de
dispositivos son concebidos para la administración de composiciones
farmacéuticas y formulaciones terapéuticas en el tracto
respiratorio. La ruta de administración de la presente invención
está en forma de aerosol o en forma inhalada. La
SP-D de la presente invención, combinada con un
agente dispersante, o dispersante, se puede administrar en una
formulación de aerosol como polvo seco o en una solución o
suspensión con un diluyente.
Tal como se utiliza en la presente invención, el
término "dispersante" se refiere a un agente que ayuda a la
aerosolización de la proteína o a la absorción de la proteína en el
tejido del pulmón, o a ambas. Preferentemente, el dispersante es
aceptable farmacéuticamente. Tal como se utiliza en la presente
memoria, el término "aceptable farmacéuticamente" significa
aprobado por una agencia reguladora del gobierno federal o del
estado como incluida en la US Pharmacopeia o en otra farmacopea
reconocida de manera general para utilizar en animales, y más
particularmente en humanos. Los agentes dispersantes adecuados son
bien conocidos en la técnica, e incluyen pero no se limitan a
tensioactivos y similares. Por ejemplo, se pueden utilizar por lo
general tensioactivos utilizados en la técnica para reducir la
agregación inducida superficial de la proteína causada por la
atomización de la solución que forma el aerosol líquido. Los
ejemplos no limitativos de tales tensioactivos son tensioactivos
tales como ésteres y alcoholes de ácidos grasos polioxietilenados y
ésteres de ácidos grasos de sorbitano polioxietilenados. Las
cantidades de tensioactivos utilizados variarán, estando por lo
general dentro del intervalo de 0,001 a 4% en peso de la
formulación. En un aspecto específico, el tensioactivo es monoleato
de sorbitano polioxietilenado o trioleato de sorbitano. Los
tensioactivos adecuados son bien conocidos en la materia y se pueden
seleccionar sobre la base de las propiedades deseadas, dependiendo
de la formulación específica, la concentración de
SP-D, diluyente (en una formulación líquida) o en
forma de polvo (en una formulación de polvo seca), etc.
Además, dependiendo de la elección de la
proteína SP-D, péptido, o ácido nucleico, el efecto
terapéutico deseado, la calidad del tejido del pulmón (por ejemplo,
pulmones enfermos o sanos) y numerosos otros factores, las
formulaciones líquidas o secas pueden comprender componentes
adicionales, según se describe a continuación.
Las formulaciones de aerosol líquidas contienen
la proteína SP-D o ácido nucleico y un agente
dispersante en un diluyente aceptable fisiológicamente. Las
formulaciones de aerosol en polvo seco de la presente invención
consisten en una forma sólida dividida finamente de la proteína
SP-D o ácido nucleico y un agente dispersante. Con
la formulación de aerosol en polvo seca o líquida, se debe
aerosolizar la formulación. Esto es, se debe romper en partículas
líquidas o sólidas para asegurar que la dosis aerosolizada alcanza
de hecho los alvéolos. En general el diámetro dinámico medio de
masa serán 5 micrómetros o menos para asegurar que las partículas
de fármaco alcanzan los alvéolos pulmonares (Wearley, L.L., 1991,
1991, Crit. Rev. in Ther. Drug Carrier Systems 8:333). El término
"partícula de aerosol" se utiliza en la presente memoria para
describir la partícula líquida o sólida adecuada para la
administración pulmonar, es decir, que alcanzará los alvéolos. Son
importantes otras consideraciones tales como la construcción del
dispositivo de administración, componentes adicionales en la
formulación y características de la partícula. Estos aspectos de la
administración pulmonar de un fármaco son bien conocidos en la
técnica, y en la manipulación de formulaciones, medios de
aerosolización y construcción de un dispositivo de administración
que requiere como mucho experimentación de rutina por un experto en
la materia.
Otros vehículos ventajosos incluyen partículas
ópticas aerodinámicas compuestas de un material biodegradable y que
poseen una densidad aparente inferior a 0,4 g/cm^{3} y un diámetro
medio de masa entre 5 y 30 \mum. Ejemplos de tales partículas se
presentan en Hanes, et al., patente US nº 6.136.295,
publicada el 24 de octubre de 2.000. Típicamente, las partículas
están formadas por polímeros biodegradables, por ejemplo, las
partículas se pueden formar a partir de un copolímero de injerto de
poliéster funcionalizado que consiste en una esqueleto de poliéster
alfahidroxiácido lineal que posee por lo menos un grupo aminoácido
incorporado en él mismo y por lo menos, una cadena secundaria de
poli(aminoácido) que se extiende a partir de un grupo
aminoácido en el esqueleto de poliéster.
Con respecto a la construcción de un dispositivo
de administración, cualquier forma de aerosolización conocida en la
técnica, se puede utilizar en la práctica de la presente invención
incluyendo pero no limitándose a la nebulización, la atomización,
la aerosolización por bomba de una formulación líquida, y la
aerosolización de una formulación en polvo seco. Está previsto un
dispositivo de administración concebido únicamente para la
administración de formulaciones sólidas. A menudo, la aerosolización
de una formulación líquida o en polvo seca requerirá un propelente.
El propelente puede ser cualquier propelente por lo general
utilizado en la técnica. Los ejemplos no limitativos específicos de
tales propelentes útiles son clorofluorocarbono, un
hidrofluorocarbono, un hidroclorofluorocarbono, o un hidrocarburo,
incluyendo trifluorometano, diclorodifluorometano,
diclorotetrafluoroetanol y 1,1,1,2-tetrafluoroetano
o combinaciones de las mismas.
En una forma de realización preferida, el
dispositivo para la aerosolización es un inhalador de dosificación
medidor. Un inhalador de dosificación medidor proporciona una
dosificación específica cuando se administra, más que una dosis
variable dependiendo de la administración. Tal inhalador de
dosificación medidor se puede utilizar con una formulación de
aerosol líquida o en polvo seca. Los inhaladores de dosificación
medidores son bien conocidos en la técnica.
Una vez que la proteína SP-D o
ácido nucleico alcanza el pulmón, un número de factores dependientes
de la formulación efectúan la absorción del fármaco. Se apreciará
que en el tratamiento de una enfermedad o trastorno relacionado con
SP-D que requiere niveles circulatorios de
SP-D, tales factores como tamaño de partícula del
aerosol, forma de la partícula del aerosol, presencia o ausencia de
infección, enfermedad o embolia pulmonar pueden afectar la
absorción de la proteína. Para cada una de las formulaciones
descritas en la presente memoria, pueden ser adecuados ciertos
lubricantes, incrementadores de absorción, estabilizadores de
proteína o agentes de suspensión. La elección de estos agentes
adicionales variará dependiendo del objetivo. Se apreciará que en
casos en los que se desea o se busca la administración local de la
proteína SP-D o ácido nucleico, tales variables
como aumentador de absorción serán menos críticas.
En una forma de realización específica, una
formulación de aerosol puede incluir otros ingredientes activos
además de la proteína SP-D o ácido nucleico.
Preferentemente, tales ingredientes activos son los que se utilizan
para el tratamiento de trastornos de pulmón. Por ejemplo, tales
ingredientes activos adicionales incluyen, pero no se limitan a,
broncodilatatores, antihistaminas, epinefrina y similares, que son
útiles en el tratamiento de asma. En otra forma de realización, el
ingrediente activo adicional puede ser un antibiótico, por ejemplo,
para el tratamiento de la neumonía. En una forma de realización
preferida, el antibiótico es pentamidina.
Por lo general, la proteína SP-D
o ácido nucleico, o el fragmento, análogo o derivado del mismo se
introduce en el sujeto en forma de aerosol en una cantidad entre
0,01 mg por kg de peso corporal del mamífero hasta aproximadamente
100 mg por kg de peso corporal de dicho mamífero. En una forma de
realización específica, la dosificación es dosificación por día. Un
experto en la materia puede determinar fácilmente un volumen o peso
de aerosol que corresponde a esta dosificación basándose en la
concentración de la proteína SP-D o ácido nucleico
de una formulación de aerosol de la presente invención; de forma
alternativa, uno puede preparar una formulación de aerosol con la
dosificación adecuada de proteína SP-D o ácido
nucleico en el volumen que se va a administrar, ya que es
fácilmente apreciado por un experto en la materia. Está claro
asimismo que la dosificación será más elevada en el caso de terapia
de inhalación para una enfermedad o trastorno sistémicos que
impliquen la SP-D y una disminución de la enfermedad
o trastorno pulmonar que implica la SP-D, ya que la
concentración local de la proteína SP-D o ácido
nucleico en el pulmón será mayor si la proteína se administra al
pulmón. Es una ventaja que la administración de la proteína
SP-D o ácido nucleico directamente al pulmón
permita la utilización de menos proteína SP-D o
ácido nucleico, limitando de este modo tanto el coste como los
efectos secundarios no deseados.
La formulación se puede administrar en una
dosificación única o en dosificaciones múltiples dependiendo de la
indicación de la enfermedad. Un experto en la materia apreciará que
la cantidad exacta de formulación profiláctica o terapéutica que se
va a utilizar dependerá del estado y gravedad de la enfermedad, la
condición física del sujeto y un número de otros factores.
Los sistemas de administración de aerosol, tales
como el inhalador de dosificación medidor presurizado y el
inhalador de polvo seco se describen en Newman, S.P., Aerosols and
the Lung, Clarke, S. W. and Davia, D. editores, págs.
197-22 y se puede utilizar en conexión con la
presente invención.
Se contempla particularmente que una formulación
de liposoma puede ser especialmente eficaz para la administración
de la proteína SP-D o ácido nucleico mediante
inhalación. Esto es particularmente así cuando se desea la
administración a largo plazo (ver Wearley, 1991, Crit. Rev. In
Ther. Drug Carrier Systems 8:333).
La presente solicitud describe formulaciones de
aerosol y formas de dosificación para utilizar en el tratamiento de
sujetos que padecen una enfermedad o trastorno relacionado con la
SP-D. Por lo general, tales formas de dosificación
contienen uno o más proteínas SP-D o ácidos
nucleicos, fragmentos, derivados o análogos de los mismos en un
diluyente aceptable farmacéuticamente. Los diluyentes aceptables
farmacéuticamente incluyen pero no se limitan a agua estéril,
salino, salino regulado, solución de dextrosa y similares. En una
forma de realización específica, un diluyente que se puede utilizar
en la presente invención o en una formulación farmacéutica de la
presente invención es salino regulado de fosfato o una solución
salina regulada por lo general entre el intervalo de pH
7,0-8,0 o agua.
La formulación de aerosol líquida puede incluir,
como ingredientes opcionales, vehículos aceptables
farmacéuticamente, diluyentes, agentes solubilizadores o
emulsionantes, tensioactivos y excipientes. Tales vehículos pueden
servir simplemente como agentes de carga cuando se desea reducir la
concentración de proteína SP-D o de ácido nucleico
en el polvo o líquido que se va a administrar a un paciente, pero
puede servir asimismo para aumentar la estabilidad de la
composición de proteína SP-D o de ácido nucleico y
para mejorar la dispersibilidad del polvo o líquido dentro un
dispositivo de dispersión para proporcionar una administración más
eficaz y reproducible de la proteína SP-D o ácido
nucleico y para mejorar las características de manipulación de la
proteína o ácido nucleico tales como la fluidez y consistencia para
facilitar la preparación y el relleno de polvo o líquido.
Los materiales vehículos adecuados pueden estar
en forma de un polvo amorfo, un polvo cristalino, una combinación
de polvos amorfo y cristalino o un líquido. Tales materiales
incluyen carbohidratos, por ejemplo, monosacáridos tales como
fructosa, galactosa, glucosa, D-manosa, sorbosa y
similares; disacáridos, tales como lactosa, trehalosa, celobiosa y
similares; ciclodextrinas, tales como
2-hidroxipropil-\beta-ciclodextrina;
y polisacáridos, tales como rafinosa, maltodextrina, dextranos y
similares; (b) aminoácidos tales como glicina, arginina, ácido
aspártico, ácido glutámico, cisteína, lisina y similares; (c) sales
orgánicas preparadas a partir de ácidos y bases orgánicos, tales
como citrato de sodio, ascorbato de sodio, gluconato de magnesio,
gluconato de sodio, hidrocloruro de trometamina y similares; (d)
péptidos y proteínas, tales como aspartamo, albúmina de suero
humana, gelatina y similares; (e) alditoles, tales como manitol,
xilitol y similares. Un grupo preferido de vehículos incluye
lactosa, trehalosa, rafinosa, maltodextrinas, glicina, citrato de
sodio, hidrocloruro de trometamina, albúmina de suero humana y
manitol.
Tales materiales de vehículo se pueden combinar
con la proteína SP-D o ácido nucleico antes de la
administración, es decir, añadiendo el material de vehículo a la
solución reguladora. De esa forma, el material de vehículo se
formará simultáneamente con y como parte de las partículas
SP-D. De manera alternativa, los vehículos se
pueden preparar de forma separada en una forma de polvo seco o
líquida y se combinan con la proteína SP-D o ácido
nucleico mediante mezcla. El tamaño de las partículas del vehículo
se puede seleccionar para mejorar la fluidez del polvo o líquido,
estando comprendida típicamente en el intervalo de 25 \mum a 100
\mum. Las partículas de vehículo en este intervalo de tamaño no
penetrarán por lo general en la región alveolar del pulmón y a
menudo se separarán de la proteína SP-D o ácido
nucleico en el dispositivo de administración antes de la
inhalación. De este modo, las partículas que penetran en la región
alveolar del pulmón consistirán esencialmente en proteína
SP-D o ácido nucleico y regulador. Un material de
vehículo preferido es manitol cristalino que posee un tamaño en el
intervalo mencionado anteriormente.
Las formulaciones de aerosol líquidas o secas se
aerosolizan preferentemente mediante dispersión en un flujo de aire
o en otra corriente de gas aceptable fisiológicamente de una manera
convencional. Las formulaciones de aerosol líquidas se utilizarán
típicamente con un nebulizador. El nebulizador se puede accionar por
aire comprimido o ser ultrasónico. Cualquier nebulizador conocido
en la técnica se puede utilizar junto con la presente invención
como tal pero no está limitada a: Ultravent, Mallinckrodt, Inc. (St.
Louis, Mo); el nebulizador Acorn II (Marquest Medical Products,
Engelwood Colo.). Otros nebulizadores útiles junto con la presente
invención se describen en la patente US nº 4.624.251 publicada el
25 de noviembre de 1986; 3.703.173 publicada el 21 de noviembre de
1972; 3.561.444 publicada el 9 de febrero de 1971 y 4.635.627
publicada el 13 de enero de 1971.
La formulación puede incluir un vehículo. El
vehículo es una macromolécula que es soluble en el sistema
circulatorio y que es fisiológicamente aceptable en el que la
aceptación fisiológica significa que los expertos en la materia
aceptarían la inyección de dicho vehículo en el paciente como parte
de un régimen terapéutico. El vehículo preferentemente es
relativamente estable en el sistema circulatorio con una vida media
de plasma aceptable para la depuración. Tales macromoléculas
incluyen pero no se limitan a la lecitina de soja, ácido oleico y
trioleato de sorbitano con el trioleato de sorbitano preferido.
Las formulaciones pueden incluir asimismo otros
agentes útiles para la estabilización de la proteína o para la
regulación de la presión osmótica. Los ejemplos de los agentes
incluyen pero no se limitan a sales, tales como cloruro de sodio, o
cloruro de potasio y carbohidratos, tales como glucosa, galactosa o
manosa y similares.
Se contempla asimismo que la formulación
farmacéutica presente se utilizará como una formulación de inhalador
en polvo seco que comprende una forma de polvo dividida finamente
de la proteína SP-D o ácido nucleico y un
dispersante. La forma de la SP-D por lo general será
un polvo liofilizado. Las formas liofilizadas de la proteína
SP-D o ácido nucleico se pueden obtener a través de
técnicas estándares.
En otra forma de realización, la formulación de
polvo seca comprenderá un polvo seco finamente dividido que
contiene la proteína SP-D o ácido nucleico, un
agente dispersante y un agente de carga también. Los agentes de
carga útiles junto con la presente formulación incluyen agentes
tales como lactosa, sorbitol, sacarosa o manitol en cantidades que
facilitan la dispersión del polvo a partir del dispositivo.
La proteína SP-D o ácido
nucleico de la presente invención es útil en el tratamiento
profiláctico o terapéutico mediados por la SP-D o
de enfermedades o trastornos o relacionados con la
SP-D en los que la administración pulmonar se desea
o en la que están implicados los pulmones. La presente invención
contempla la administración pulmonar de tales cantidades de la
proteína que son suficientes para conseguir la administración
sistémica de una cantidad de proteína terapéutica o biológica, o
tales cantidades que consiguen solo la administración local de una
cantidad terapéutica o biológica de la proteína en el pulmón. La
presente invención contempla además la administración parenteral o
la administración pulmonar de la proteína SP-D o
ácido nucleico para el tratamiento del enfisema. Un experto en la
materia apreciará que el objetivo de la administración sistémica o
local dependerá de la indicación que se va a
tratar.
tratar.
Lo que constituye una cantidad eficaz
terapéuticamente en un caso particular dependerá de una variedad de
factores que resultarán evidentes para el experto en la materia.
Dichos factores incluyen la condición física del sujeto que se va a
tratar, la gravedad de la condición que se va a tratar, el trastorno
o enfermedad que se va a tratar y así sucesivamente. En general,
cualquier atenuación significativa estadísticamente de uno o más
síntomas asociados con la actividad o la expresión de
SP-D inadecuadas constituye el tratamiento dentro
del alcance de la presente invención.
Se contempla que la proteína
SP-D o ácido nucleico, o más preferentemente las
formulaciones de la presente invención, se pueden administrar a un
sujeto en la necesidad de un tratamiento profiláctico o terapéutico.
Tal como se utiliza en la presente memoria, el término
"sujeto" se refiere a un animal, más preferentemente a un
mamífero y más preferentemente a un ser humano.
La administración pulmonar de la proteína
SP-D o ácido nucleico se puede utilizar para obtener
en efectos sistémicos o locales. Se prevé que la proteína
SP-D o ácido nucleico se administrará para conseguir
la elevación de los niveles de plasma de la proteína para tratar
las enfermedades o trastornos que implican la actividad o expresión
de la SP-D inadecuada, es decir, indicaciones
extrapulmonares. En otra forma de realización de la presente
invención la SP-D se administra vía las vías aéreas
para el tratamiento de enfermedades o trastornos que impliquen la
SP-D cuando tales enfermedades o trastornos se
manifiestan mediante daño local al pulmón. Tal como se ha indicado
anteriormente, la administración pulmonar de la SP-D
se prefiere para el tratamiento de los trastornos o enfermedades de
pulmón a causa de la concentración local elevada de la
SP-D que se puede administrar, la localización de
cantidades significativas de la SP-D en el espacio
extravascular y la capacidad de limitar o minimizar los efectos
sistémicos de la
SP-D.
SP-D.
La presente solicitud describe el ácido nucleico
SP-D, que se administra a una célula huésped vía
cualquiera de los protocolos de aerosolización mencionados
anteriormente. Sin embargo, el ácido nucleico se puede administrar
en un número de formas diferentes. Los ácidos nucleicos se pueden
administrar como ADN solo o dentro de vectores, incluyendo los
vectores, pero no limitándose a vírico, plásmido, cósmido, liposoma
y micropartículas.
Una molécula de ácido nucleico que codifica un
polipéptido SP-D se puede identificar y aislar
utilizando procedimientos estándares, según ha descrito Sambrook
et al., (1989). Por ejemplo, la reacción de cadena de
polimerasa se puede utilizar para aislar y clonar los genes de la
SP-D según se ha descrito en la patente US nº
4.683.195. Por lo general, la información de la secuencia del final
de la región de interés o más allá se utiliza para diseñar los
cebadores de oligonucleótidos. Estos cebadores serán idénticos o
similares en la secuencia a cintas opuestas o complementarias de la
plantilla que se va a amplificar. El PCR se puede utilizar para
amplificar las secuencias de ARN específicos, secuencias de ADN
específicas del ADN genómico total y ADNc transcrito a partir del
ARN celular total, secuencias de bacteriófago o plásmido y
similares, para proporcionar un producto de amplificación. Ver
asimismo, Mullis et al., Cold Harbor Symp. Quant. Biol.,
51:263 (1987); Erlich. ed., PCR Technology (Stockton Press, N.Y.,
1989). De forma alternativa, el gen SP-D se puede
aislar a partir de una biblioteca de un humano o mamífero
adecuados, utilizando una sonda SP-D.
Las moléculas de ácido nucleico que codifican
las variantes de secuencia de aminoácido de un polipéptido
SP-D activo se pueden preparar mediante una
variedad de procedimientos conocidos en la técnica. Estos
procedimientos incluyen, pero no se limitan a, aislamiento a partir
de una fuente natural (en el caso de las variantes de secuencia de
aminoácido que existen de forma natural) o la preparación mediante
mutagénesis mediada por oligonucleótidos (o dirigidos al sitio),
mutagénesis de PCR, y mutagénesis de casete de una variante
preparada anteriormente o una versión no variante de un polipéptido
SP-D.
Para preparar los casetes de expresión y
vectores para la transformación de la presente memoria, la secuencia
o segmento de ácido nucleico recombinante o seleccionado
previamente puede ser circular o lineal, doble hélice o de hélice
única. Tal como se utiliza en la presente memoria, un "vector",
"vector de expresión" o "casete de expresión" es una
replicón o un elemento genético que funciona como una unidad
autónoma de la replicación de ADN in vivo y adecuado para la
replicación bajo su propio control, tal como un plásmido, un
cromosoma, un virus, fago o cósmido. Otro segmento de ADN se puede
fijar al replicón o al elemento genético de forma que provoca la
replicación del segmento fijado.
Los casetes de expresión o los vectores de
expresión para las células huésped incluyen ordinariamente un origen
de replicación, un promotor localizado corriente arriba a partir de
la secuencia de codificación SP-D, junto con un
sitio de unión de ribosoma, un sitio de poliadenilación y una
secuencia de terminación transcripcional. Los expertos en la
materia apreciarán que algunas de las secuencias mencionadas
anteriormente no se requieren para la expresión en ciertos
huéspedes. Por ejemplo, un vector de expresión para utilizar con
microbios necesita contener solo un origen de replicación
reconocido por el huésped, un promotor que funcionará en el huésped
y un gen de selección.
Un casete de expresión se construye según la
presente invención de forma que una secuencia de codificación de
SP-D humana (u otra SP-D adecuada)
se localiza en el casete con las secuencias reguladoras adecuadas,
el posicionamiento y la orientación de la secuencia de codificación
con respecto a las secuencias de control siendo tales que la
secuencia de codificación se transcribe bajo el "control" de
las secuencias de control (por ejemplo, la polimerasa ARN que se
une a la molécula de ADN como las secuencias de control transcriben
el código de secuencia). Tal como se utiliza en la presente memoria,
una "secuencia de codificación" de ADN es la porción de una
secuencia de ADN, cuya transcripción se traduce en un polipéptido
in vivo cuando se coloca bajo el control de las secuencias
reguladoras adecuadas. Los límites de la secuencia de codificación
se determinan mediante un codon de inicio en 5' (extremo amino) y un
codon de paro de la traducción en 3' (extremo carboxi). Un código
de secuencia puede incluir, pero no se limita a, secuencias
procariotas, secuencias de ADN genómico a partir de ADN eucariota,
ADNc a partir de ARNm eucariota e incluso secuencias de ADN
sintético. Se localizará en 3' por lo general una señal de
poliadenilación y una secuencia de terminación de transcripción para
la secuencia de codificación.
Las secuencias de control se pueden ligar a la
secuencia de codificación antes de la inserción en un casete. Tal
como se utiliza en la presente memoria, una secuencia de
codificación está "bajo control" de la secuencia promotora en
una célula cuando la polimerasa ARN que une la secuencia de promotor
transcribe la secuencia de codificación a ARNm que es a
continuación traducida a su vez a la proteína codificada por la
secuencia de codificación. De manera alternativa, la secuencia de
codificación se puede clonar directamente en un casete de expresión
que contiene ya las secuencias de control y un sitio de restricción
adecuado. La transformación puede ser mediante cualquier
procedimiento conocido para la introducción de polinucleótidos en
una célula huésped, incluyendo, por ejemplo, empaquetar el
polinucleótido en un virus y transducir una célula huésped con el
virus y mediante absorción directa del polinucleótido. Los términos
"transformado" o "transformación" o "transformados de
forma estable", tal como se utilizan en la presente memoria, se
refieren a la inserción de un polinucleótido exógeno en una célula
huésped, independientemente del procedimiento utilizado para la
inserción, por ejemplo, absorción directa, transducción,
f-acoplamiento o electroporación. El polinucleótido
exógeno se puede mantener como un vector no integrado, por ejemplo,
un plásmido, o de forma alternativa se puede integrar en un genoma
de huésped. Una célula se ha "transformado" mediante ADN
exógeno cuando tal ADN exógeno se ha introducido en la membrana
celular. El ADN exógeno puede o no integrarse (unido covalentemente)
al ADN cromosómico completando el genoma celular. En los
procariotas y en la levadura, por ejemplo, el ADN exógeno se puede
mantener en un elemento episomal tal como un plásmido. Con respecto
a las células eucariotas, una célula transformada estable es una en
la que el ADN exógeno se ha integrado en un cromosoma de forma que
se hereda por las células hijas mediante la replicación cromosomial.
Esta estabilidad se demuestra por la capacidad de la célula
eucariota para establecer las líneas celulares o clones que
comprenden una población de células hijas que contienen el ADN
exógeno. El procedimiento de transformación utilizado depende del
huésped que se va a transformar. La transformación bacteriana
mediante la absorción directa utiliza por lo general el tratamiento
con cloruro de calcio o de rubidio (Cohen Proc. Natl. Acad. Sci.
USA, 69:2110 (1972)). La transformación de la levadura mediante
absorción directa se puede llevar a cabo utilizando el procedimiento
de Hinnen et al. Proc. Natl. Acad. Sci., 75:1929 (1978). Las
transformaciones de mamífero mediante la absorción directa se
pueden llevar a cabo utilizando el procedimiento de precipitación de
fosfato de calcio de Graham y Van der Eb Virology, 52:546 (1978) o
las diversas modificaciones conocidas de las mismas. Otros
procedimientos para la introducción de polinucleótidos
recombinantes en células, particularmente en las células de
mamífero, que se conocen en la materia incluyen la transfección
mediada por dextrano, la transfección mediada por fosfato de
calcio, la transfección mediada por polybrene, la fusión de
protoplasto, electroporación, encapsulación del
polinucleótido(s) en liposomas y la microinyección directa de
los polinucleótidos en los núcleos.
Tal como se utiliza en la presente memoria, el
término "ácido nucleico recombinante", se refiere a un ácido
nucleico que se ha derivado o aislado a partir de una fuente
adecuada, que se puede alterar químicamente posteriormente in
vitro, e introducir posteriormente en las células huésped
objetivo. Un ejemplo del ADN recombinante "derivado" de una
fuente, sería una secuencia de ADN que se identifica como un
fragmento útil que codifica SP-D o un fragmento o
una variante de la misma, y que se sintetiza químicamente a
continuación en una forma pura esencialmente. Un ejemplo de tal ADN
"aislado" a partir de una fuente sería una secuencia de ADN
útil que se extirpase o se eliminase a partir de dicha fuente
mediante medios químicos, por ejemplo, mediante la utilización de
las endonucleasas de restricción. La secuencia aislada se puede
manipular a continuación, tal como, amplificarse mediante la
utilización de la presente invención, mediante la metodología de la
ingeniería genética.
Tal como se utiliza en la presente memoria, el
adenovirus es particularmente adecuado como vector para la
transformación de las células pulmonares para expresar la
SP-D. El adenovirus infecta de forma natural las
células del tracto respiratorio y el adenovirus se puede aerosolizar
eficazmente para ser administrado en los pulmones.
Las formas de realización preferidas de la
presente invención se describirán ahora asimismo con referencia a
los ejemplos siguientes. El ejemplo 1 describe las etapas que
resultaron en la producción de la SP-D (-/-) de
ratón.
Los ratones SP-D (-/-) se
generaron mediante la inactivación de gen objetivo. La integración
de un vector objetivo pGKneo que contiene las secuencias de exon 2
del gen SP-D generó una deleción del segundo exón
del gen SP-D, que incluye la eliminación de la
metionina iniciadora y las secuencias de iniciación de traducción.
La secuencia de gen SP-D de ratón de exones 1 y 2 se
puede encontrar bajo el número de registro de Genbank nº AF047741.
El vector objetivo se diseñó utilizando en primer lugar la
subclonación de un fragmento genómico HindIII con KpnI agregado de
extremo romo de 5,1-kb que codifica el intrón 2 a
través del exón 6 en un sitio KpnI entre el casete resistente a la
neomicina y el casete de cinasa timidina. Posteriormente, se agregó
un fragmento PstI genómico 1,5-kb que contiene una
porción de intrón I con ligadores Xhol y se clonó en un sitio 5'
Xhol a partir del casete resistente a la neomicina. Ocho de cada 104
clones ES sobrevivientes al procedimiento de selección doble fueron
objetivos correctos según se determina mediante análisis PCR tanto
en 5' como en 3'. El clon 93, un clon proliferativo y elevadamente
no diferenciado, se expandió y se inyectó en blastocistos C57/BI6
generando los machos quiméricos. Los machos quiméricos se
reprodujeron con hembras negras suizas NIH. Se obtuvo una hembra
portadora del gen objetivo y se reprodujo con machos negros suizos
NIH para generar ratones SP-D (-/-) y
SP-D (\pm). La distribución de genotipos de
acoplamientos heterocigóticos siguió un modelo mendeliano con 30
(+/+), 45 (+/-) y 25% (-/-) de 115 descendientes indicando que no
existían anormalidades obvias en la supervivencia relacionada con
los alelos SP-D.
Los ratones SP-D (-/-)
sobreviven y se reproducen normalmente en el vivario bajo unos
servicios de contención de barrera en el Children's Hospital
Medical Center, Cincinnati, Ohio. Los ratones han estado libres de
virus según se ha evaluado mediante serología. No se detectó
ninguna evidencia serológica de infección vírica en los ratones
SP-D (-/-) en la necropsia.
Para determinar el genotipo, el ADN de los clips
de la cola se digirió con BamHI y se sondó con un derivado
del producto de PCR de ADN de ratón genómico que contenía exón 2 y
parte de intrón 2 y con el clon de ADNc resistente al G418. Esto
demostró una pérdida simultánea de exón 2 con la aparición de las
secuencias que codifican G418 resistente en los ratones
SP-D (\pm) y SP-D (-/-).
Para demostrar que el SP-D no se
expresó en animales nulos, el análisis de transferencia de ARN se
llevó a cabo con el ARN pulmonar total de animales nulos, normales
y heterocigotos. Los resultados mostraron que aproximadamente el
50% de la reducción en la intensidad de la banda de hibridización
SP-D en animales heterocigotos con una ausencia
total de ARNm SP-D de tamaño normal en animales
nulos. Después de una exposición prolongada, se detectó una banda
de ARNm difusa de aproximadamente 150 nucleótidos más pequeña que el
ARNm SP-D normal. Mediante la densitometría por
barrido, esta banda representa menos del 5% de la intensidad de la
transcripción SP-D normal de animales
heterocigotos.
Los análisis de transferencia Western de
homogeneizados pulmonares utilizando un antisuero
SP-D antirrata de conejo reveló que la
SP-D se reducía aproximadamente 50% en ratones
SP-D (+/-) heterocigotos y estaba ausente en los
ratones SP-D (-/-).
Tanto la SP-D (-/-) como la
SP-D (+/-) sobrevivieron normalmente en los periodos
perinatales y postnatales. En las edades seleccionadas, se
obtuvieron los pesos corporales, pulmón y corazón se obtuvieron
mediante medición directa; y los volúmenes de pulmón y corazón
mediante desplazamiento de fluido. La proteína de pulmón y el
contenido de ADN se evaluaron utilizando albúmina de suero bovino y
ADN de esperma de salmón, respectivamente, como estándares. Los
pesos corporales de los ratones SP-D (-/-) fueron
ligeramente inferiores antes del destete, pero no fueron
significativamente diferentes de los ratones SP-D
(+/+) después de 3 semanas de edad, tabla 1. Mientras los volúmenes
pulmonares no fueron significativamente diferentes, se incrementaron
las proporciones volumen de pulmón a peso corporal en los ratones
SP-D (-/-) a 3 y 6 semanas de edad, tabla 1. No se
observaron diferencias significativas en los volúmenes de corazón o
en las proporciones de volumen de corazón a peso corporal. En la
madurez (5 meses) no se observaron cambios en el peso pulmonar
húmedo, ADN o proteína pulmonar total.
*Se observaron diferencias estadísticas
significativas en los pesos corporales en el día 2, p = 0,00001; día
7, p = 0,0002; 2 sem, p = 0,007 y 3 sem, p = 0,04. ** Se observaron
diferencias estadísticas significativas en las proporciones LV:BW
a la sem 3 (p = 0,02), debido a diferencias en el peso corporal y a
la sem 6 (p = 0,03), aunque los pesos corporales y los volúmenes
pulmonares no fueron diferentes estadísticamente en este último
punto de tiempo. N = 3-71 animales por grupo. LV:BW,
proporción de volumen pulmonar a peso corporal; ND, no
determinado.
Sin embargo, mientras no se observaron
anormalidades en el peso corporal; los ejemplos 2 a 5 describen las
otras anormalidades o cambios encontrados en ratones
SP-D (-/-).
El ejemplo 2 demuestra el efecto en los niveles
de fosfolípidos. Los niveles de fosfolípidos alveolares y de
tejido, específicamente los niveles de reserva de fosfatidilcolina,
aumentaron notablemente mientras los niveles de proteína de lavado
broncoalveolar total (BAL) permanecieron invariables.
La fosfatidilcolina alveolar, de tejido y
saturada total (Sat-PC) (p<0,001) aumentó
aproximadamente 3 veces en los ratones SP-D (-/-).
Los niveles de Sat-PC no se alteraron en los ratones
SP-D (+/-). Para los análisis de composición de
fosfolípido de lavado alveolar, se evaluaron dos de las cuatro
muestras que consistían en el lavado de reserva de dos a tres
ratones para la abundancia relativa de fosfatidilcolina,
fosfatidiletanolamina, fosfatidilglicerol, fosfatidilinositol,
esfingomielina y ácido
liso-bis-fosfatídico. La composición
de fosfolípido no difirió entre genotipos. La incorporación de
(^{3}H)colina en la Sat-PC pulmonar total
aumentó ligeramente 8 h después de la inyección, siendo la
incorporación aproximadamente 20% mayor que en los ratones
SP-D (-/-) (p<0,05).
Este resultado fue completamente inesperado en
ese trabajo anterior sugiriendo un papel definido para la
SP-A y un papel limitado para la
SP-D en la homeóstasis de fosfolípido pulmonar. Las
enfermedades anteriores asociadas con la homeóstasis de
tensioactivo implicaron acumulaciones de tanto proteínas como
lípidos de tensioactivos, de este modo el ratón nulo
SP-D (-/-) demuestra por primera vez que la
SP-D es un factor importante en la homeóstasis de
lípido de tensioactivo y que la homeóstasis de lípido y proteína de
tensioactivo se puede disociar in vivo, ya que la
concentración de proteína total en el tensioactivo no cambió. Sin
embargo, se produjo un modesto decremento en la concentración total
de la SP-A según se explica en el ejemplo 3.
No se observaron diferencias en ARNsm de
proteínas SP-B y SP-C en ratones
SP-D (-/-). En contraste, la hibridización de
trasferencia Northern del ARN pulmonar total de ratones
SP-D (+/+), SP-D (+/-),
SP-D (-/-) y la hibridización con la sonda
SP-A mostró que el ARNm de SP-A se
redujo en los ratones SP-D (-/-). Consistente con la
reducción en el ARNm de SP-A, la proteína
SP-A de BAL se redujo aparentemente mediante
aproximadamente 25% en los ratones SP-D (-/-)según
se evaluó mediante un análisis de transferencia Western del lavado
alveolar de tres ratones.
Por lo tanto, la SP-D posee un
papel en la regulación de la producción de SP-A. Ya
que está implicada en la defensa de huésped en los pulmones, la
SP-D puede afectar la defensa del huésped de dos
maneras. Mediante el aumento de la regulación de la producción de
SP-A y mediante la interacción directa con células
microbianas e inmunes.
Se evaluó la ultraestructura del material rico
en fosfolípido aislado del BAL de los ratones SP-D
(-/-) tal como se explica en el ejemplo 4.
El tensioactivo agregado grande se aisló a
partir de un lavado alveolar de reserva de ratones
SP-D (-/-) y SP-D (+/+) y se
examinó mediante EM utilizando la técnica descrita anteriormente.
Los agregados lipídicos en los ratones SP-D (-/-)
se agrandaron y se organizaron en disposiciones de fosfolípidos
densas electrónicas y contenían menos mielina tubular comparada con
las de los ratones SP-D (+/+). La ultraestructura
demostró ser notablemente anormal, conteniendo cantidades reducidas
de mielina tubular y formando estructuras lipídicas únicas
empaquetadas densamente. Claramente, a continuación, la
SP-D posee un papel en la organización estructural
de los lípidos alveolares.
El tensioactivo en el alvéolo se puede separara
en fracciones de agregados grandes (pesados, densos) y en agregados
pequeños (ligeros, vesiculares) mediante centrifugación. Los lavados
alveolares se centrifugaron a 40.000 x g durante n un regulador de
sacarosa 0,8 M durante 15 min. El tensioactivo agregado grande se
recogió a continuación a partir de la interfase, se diluyó con
salino normal y se centrifugó otra vez a 40.000 x g durante 15 min.
El sobrenadante de la primera centrifugación a 40.000 x g que
contiene tensioactivo de agregado pequeño se concentra a 4ºC
mediante ultrafiltración utilizando un filtro de retención de peso
molecular de 300.000 (Minitan, Millipore Corp., Bedford, MA) o
concentradores centrífugos (Amicon Corp., Danvers, MA). El
tensioactivo de agregado pequeño se diluye con 50 ml de salino
normal y se ultrafiltra 3 veces para eliminar las proteínas
solubles.
Por último, se analizó la estructura del pulmón.
Aunque, normal en los ratones SP-D (+/-), se
observaron en ratones SP-D (-/-) números
incrementados de macrófagos alveolares espumosos grandes y alvéolos
alargados. En el ejemplo 5 se indica el procedimiento y los
resultados para la identificación de anormalidades pulmonares.
Para determinar si la ausencia de la expresión
SP-D llevó a anormalidades estructurales, los
pulmones de ratones nulos, normales y heterocigotos se fijaron
inflados y se llevaron a cabo los análisis de morfología e
histoquímicos en secciones mediante microscopía óptica. No hubo
evidencia de infección ni de alteraciones obvias en células
epiteliales de las vías aéreas en el nivel de la microscopía óptica.
Sin embargo, las anormalidades heterogéneas en el parénquima
pulmonar, con alvéolos engrandecidos, se observaron consistentemente
en SP-D (-/-) pero no en los controles
SP-D (+/-) o SP-D (+/+).
Se sacrificó el tejido pulmonar de ratones
SP-D (+/+) y SP-D (-/-) a 2 semanas,
3 semanas y 6 semanas. Los animales se pesaron, se anestesiaron con
una mezcla de cetamina, acepromazina y xilazina 4:1:1 y se
exsanguinaron cortando la vena cava inferior y la aorta
descendente. Se canuló la tráquea y los pulmones se colapsaron
desgarrando el diafragma. Los pulmones se inflaron fijados a 25 cm
de presión de agua con 4% de paraformaldehído en salino regulado de
fosfato (PBS) durante 1 minuto. La tráquea se ató ya que la cánula
se había eliminado para mantener el fijador en el pulmón inflado.
Los pulmones y el corazón extirpados se dejaron equilibrar en
fijador frío hasta que se hundieron en el fondo del recipiente. Los
volúmenes de pulmón y de corazón se determinaron a continuación
mediante el desplazamiento de fluido. Cada lóbulo se midió junto con
su eje más largo, se biseccionó perpendicularmente a lo largo del
eje y se procesó en bloques de parafina. Se cortaron cinco secciones
micrométricas en series en toda la longitud de cada lóbulo, se
colocaron en portaobjetos recubiertos de polisina y se tiñeron con
hematoxilina y eosina, con tinción tricrómica de Masson para el
colágeno u oceína para la elastina.
Con mayor detalle, el examen dentro de las 2
primeras semanas de vida demostró anormalidades no detectables en
la morfología pulmonar, aunque se observaron en los alvéolos de
ratones SP-D (-/-) a los 14 días de edad números
incrementados de macrófagos alveolares de aspecto normal. En
contraste, las anormalidades de la histología pulmonar se
observaron en los ratones SP-D (-/-) a 3 y a 6
semanas de edad consistiendo en espacios aéreos alargados e
infiltración con macrófagos alveolares, espumosos, atípicos. Los
espacios aéreos asociados con la acumulación de macrófagos
alveolares, espumosos, hipertróficos e infiltrados monocíticos
perivasculares/peribronquiales se observaron alrededor de los 6 a 7
meses de edad, aunque la extensión del engrandecimiento del espacio
aéreo en los ratones individuales SP-D (-/-) varió
de moderado a grave en este grupo de edad.
En ratones SP-D (-/-) de 7 meses
de edad, se observaron lesiones fibróticas subpleurales que se
tiñeron intensamente para el colágeno. Se observaron asimismo las
anormalidades en la deposición de elastina en el parénquima de los
pulmones de ratones SP-D (-/-) en este punto de
tiempo. Éstas consistieron en regiones de parénquima de pulmón con
un espesor delgado y más fibras elásticas elevadamente enrolladas,
además de regiones de inflamación en las que la elastina teñida
disminuyó en los tabiques alveolares adyacentes (adyacentes a la
acumulación y fibrosis macrófaga).
Se observó tejido linfocítico asociado a los
bronquios aumentado (BALT) en los ratones SP-D
(-/-). La intensidad de la inmunotinción SP-B en
las células de tipo II fue similar entre los tres genotipos. Las
células de tipo II se purificaron según se indica a continuación.
Sin embargo, existieron áreas focales de números aumentados de
células intraalveolares espumosas, grandes, que parecían ser
macrófagos alveolares que contenían vesículas citoplásmicas
abundantes. Estas células aumentaron en tamaño como resultado de
aumentar el número y volumen de vesículas citoplasmáticas. Las
vesículas teñidas con rojo Nilo y que presentaron fluorescencia
cuando se excitaron con luz verde a 520-550 nm
después de la tinción con azul Nilo y contuvo de este modo el lípido
o fosfolípido. Estos macrófagos se tiñeron asimismo con antisuero
SP-B. En el lavado alveolar, se observaron
aproximadamente 4 veces más de macrófagos (1,2 X 10^{6} por ratón)
en SP-D (-/-) comparados con los de los ratones
normales (0,36 X 10^{6}/ratón, pero no hubo cambios en los
contajes celulares relativos de neutrófilos o linfocitos). El
tamaño de macrófago se estimó a partir del diámetro de macrófagos
fijados y teñidos de las preparaciones de citospina sedimentadas en
portaobjetos de vidrio a 1500 X g durante 2 min. El diámetro medio
de macrófagos de (+/+) fue 11,75 \pm 1,75 \mum comparado con el
de los ratones (-/-) de 18,75 \pm 7,25 \mum. Los macrófagos
grandes anormalmente, definidos como los de un diámetro dos veces
normal, comprendían 22,4 \pm 0,6% de los macrófagos de ratones
(-/-) comparados con 18 \pm 1,0% de ratones (+/+). Los números y
la morfología de macrófagos alveolares no eran diferentes de los
ratones SP-D (+/-). Las características
ultraestructurales de las células de tipo II fueron similares en
SP-D (-/-) comparadas con las de los ratones
SP-D (+/+). La morfología de los macrófagos
alveolares es consistente con la de las células "espumadas"
activas, conocidas por asociarse con la inflamación.
Las células de tipo II se aislaron de forma
rutinaria en este laboratorio utilizando el procedimiento siguiente.
Los ratones se anestesiaron mediante inyección intraperitoneal y
pentobarbital (50 mg/ml 3,25 ml/kg de peso corporal). Después de la
apertura de la cavidad abdominal, los ratones se desangran cortando
la vena cava inferior. La tráquea se expuso, se cánula con un
adaptador de boquilla leer de calibre 20 y se cierra con una
sutura. Se elimina la placa del pecho y los pulmones se per fusionan
con 10-20 ml de salino estéril vía la arteria
pulmonar hasta que visualmente está libre de sangre. Se instila la
despasa (Colaborativa Resecar, Inc., Bedford, MA) en los pulmones
vía el catéter traqueal, seguida de agarosa de baja fusión al 1% y
calentada a 45ºC. Los pulmones se cubren inmediatamente con hielo y
se incuban durante 2 minutos para fijar la agarosa. Se diseccionan
los pulmones, se ponen en un tubo de cultivo que contiene 1 ml de
despasa adicional y se incuban durante 45 minutos a temperatura
ambiente. A continuación los pulmones se transfirieren a un disco de
cultivo de 60 mm que contenía 100 U/ml de Adnata 1 (Sigma, St.
Louis, MO) en 7 ml de DMEM (Gibo BRL, Gaithersburgh, MD). El tejido
se separa suavemente de las vías aéreas y se hace turbulencia
durante 5 minutos. Las células se colocan a continuación sobre
hielo hasta que se filtran. La suspensión celular se filtra
sucesivamente a través de coladores celulares de 100 m y 40 m y a
continuación a través de 25 m de gasa de nilón (Tetko, Briarcliff
Manor, NY). Las células se granulan durante 7 minutos a 130 x g a
4ºC y se resuspenden en 10 ml de DMEM con 10% de FBS (Intergen Co.,
Purchase, NY). Las suspensiones de célula cruda se añaden a discos
de cultivo de 100 mm que se recubrieron previamente con anticuerpos
CD-45 y CD-32 (Pharmigen, San Diego,
CA) y se incubaron durante 102 horas a 37ºC en presencia de
CO_{2} al 5%. Se sacan las placas del incubador y se
"criban" suavemente para liberar las células de tipo II
fijadas. La suspensión celular se centrifuga a 130 x g a 4ºC y se
resuspenden en 10 ml de DMEM con 10% de FBS (Intergen Co., Purchase,
NY). Las suspensiones de células crudas se añaden a discos de
cultivo de 100 mm que se habían recubierto previamente con
anticuerpos CD-45 y CD-32
(Pharmigen, San Diego, CA) y se incubaron durante 102 horas a 37ºC
en presencia de CO_{2} al 5%. Se sacan las placas del incubador y
se "criban" suavemente para liberar las células de tipo II
fijadas. La suspensión celular se centrifuga a 130 x g durante 7
minutos y las células se resuspenden en DMEM que contiene 10% de
FBS.
Las mediciones morfométricas se llevaron a cabo
en ratones de 5 días (0,5 semanas), 14 días (2 semanas) y 17 días
(2,5 semanas), de 3 y 6 semanas y de 6 a 7 meses de edad. Se
determinó la proporción total (% de área fraccionada) del
parénquima respiratorio y del espacio aéreo utilizando un
procedimiento de contaje de punto. Las mediciones se llevaron a
cabo en secciones tomadas a intervalos completos de lóbulos
izquierdo, superior derecho o inferior derecho. Los portaobjetos se
visualizaron utilizando un objetivo de 20 x y las imágenes (campos)
se transfirieron mediante videocámara a una pantalla de ordenador
utilizando el programa informático MetaMorph Imaging (Universal
Imaging Corp., West Chester, PA). Una parrilla de malla de 121
puntos, generada por ordenador, se superpuso en cada campo y se
contó el número de intersecciones (puntos) que cayeron fuera del
parénquima respiratorio (alvéolos y conductos alveolares) o del
espacio de aire. Se excluyeron del estudio los puntos que caen
sobre los bronquiolos, venas grandes y arteriolas y vénulas más
pequeñas. Las áreas fraccionales (% Fx Area) se calcularon
dividiendo el número de puntos para cada componente (n) por el
número total de puntos que contenía dentro del campo (N) y a
continuación multiplicar por 100.
% \ Fx \ Area
= n/N \ x \
100
Se analizaron diez campos por sección para
recoger datos. Se seleccionaron las coordenadas x e y para cada
campo utilizando el medidor el generador de número aleatorio.
Mientras, tal como se muestra en la figura 1, no
se observaron diferencias en la proporción relativa (% de área
fraccional) de espacio aéreo (a) y parénquima respiratorio (b) a 5
días (0,5 semanas), 14 días (2 semanas) o 17 días (2,5 semanas) de
edad, el % de área fraccional del espacio aéreo se incrementó
significativamente (p-0,013) en ratones
SP-D (-/-) de aproximadamente 3 semanas de edad. Más
específicamente, las áreas fraccionales dedicadas a tanto el
espacio aéreo (a) como al parénquima (b) divergían
significativamente entre los dos genotipos diferentes a 3 semanas
(*p = 0,013), 6 semanas (*p= 0,0007) y 28 semanas (*p=0,004) de
edad. Probablemente, el % de área fraccional del parénquima
respiratorio disminuyó en ratones SP-D (-/-)
comparados con los de los controles de SP-D (+/+)
que encajaban por edad (34% del parénquima/66% de espacio aéreo
comparado con 42,5% de parénquima/57,5% de espacio aéreo,
respectivamente), figura 1. Las proporciones relativas de espacio
aéreo y de parénquima respiratorio continuó divergiendo
significativamente de los controles en los puntos de tiempo más
tardíos, el % de áreas fraccionales que está en el intervalo de 27%
de parénquima/73% de espacio aéreo a 37% de parénquima/63% de
espacio aéreo en ratones SP-D (-/-) de 7 meses de
edad (n=5). Los controles de SP-D (+/+) que
encajaban en la edad mostraron menos variabilidad, estando en el
intervalo de 45% de parénquima/55% de espacio aéreo a 47% de
parénquima/53% de espacio aéreo, en este punto de tiemplo (n=4). La
reducción del porcentaje total en el parénquima en los ratones
SP-D (-/-) de 7 meses de edad fue 32% de los valores
de control, mientras el incremento de porcentaje en el espacio
aéreo en los ratones SP-D (-/-) fue 27% de los
valores de control.
Los animales se preinyectaron con BrdU 4 horas
antes del sacrificio para evaluar las alteraciones en la
proliferación celular. Se llevó a cabo la detección
inmunohistoquímica del BrdU incorporado se llevó a cabo utilizando
un kit disponible comercialmente (Zymed Laboratories, Inc., San
Francisco, CA). Las secciones de intestino delgado de cada animal
se inmunotiñeron en paralelo con las secciones de pulmón como un
control positivo para la incorporación de BrdU.
Los índices de marcado de BrdU fueron
relativamente bajos y no se observaron cambios en el marcado de BrdU
de células parenquimales respiratorias o macrófagos alveolares en
los pulmones de ratones SP-D (-/-) comparados con
los controles.
La determinación de los volúmenes de pulmón
utilizando curvas de presión-volumen fue como sigue.
Los ratones de doce semanas de edad se inyectaron con pentobarbital
de sodio y se colocaron en una cámara que contenía el 100% de
oxígeno para asegurar el colapso completo de los alvéolos mediante
la absorción de oxígeno. Los ratones se sacrificaron mediante
desangrado, la tráquea se canuló y se conectó a una jeringa unida a
un sensor de presión vía un conector de tres vías (Mouse Pulmonary
Testing System, TSS Incorporated, Cincinnati, OH). Después de abrir
el diafragma, se inflaron los pulmones en incrementos de 75 \mul
cada 10 segundos hasta una presión máxima de 28 cm de agua y a
continuación se desinflaron. Se generaron para cada animal curvas
de volumen-presión, determinando los volúmenes
pulmonares (divididos por el peso corporal) a 10, 5 y 0 cm de agua
durante la curva de deflación. En la figura 2, las curvas de
presión-volumen se generaron en 5-6
ratones de 12 semanas de edad. Los volúmenes pulmonares asociados
con los limbos de deflación fueron significativamente mayores para
ratones SP-D (-/-) de 12 meses de edad comparados
con los de los ratones que encajaban en edad a 10 cm de H_{2}O y
a la presión máxima de 28 cm de H_{2}O (*p <
0,05).
Las diferencias significativas estadísticamente
se determinaron utilizando análisis de varianza para las áreas
fraccionales y curvas de presión-volumen, seguidas
del procedimiento
Student-Newman-Keuls o el ensayo de
la T de Student para la comparación de los pesos corporales,
volúmenes de pulmón y corazón, proporciones de volumen: peso
corporal, proteína total y contenido de ADN. Las diferencias de
p<0,5 fueron consideradas significativamente. Los valores se dan
como la media \pm SE.
Los volúmenes pulmonares resultaron evidentes
directamente en los ratones SP-D (-/-) en las 12
semanas de edad, en concordancia con los estudios histológicos y
morfométricos que demostraban el enfisema, ver figura 2.
Se observaron consistentemente los alvéolos
engrandecidos en los ratones SP-D (-/-). Esto
proporciona la evidencia para la implicación de la
SP-D en la regulación de la remodelación alveolar en
los pulmones. Ya que las anormalidades y la remodelación del
espacio aéreo es una característica definitoria del enfisema, el
ratón SP-D (-/-) es un modelo ideal para el
enfisema.
Se centrifugaron a 2.000 RPM los homogeneizados
de pulmón de ratones de 6 a 9 semanas y se almacenaron a -20ºC. Se
cuantificaron el factor alfa de necrosis tumoral
(TNF-\alpha), interleucina
(IL)-1\beta, IL-6 y proteína
inflamatoria macrófaga (MIP)-2 utilizando los kits
ELISA de sándwich de murina (R&D Systems, Minneapolis, MN)
según las indicaciones del fabricante. Todas las placas se leyeron
en un lector de microplaca (Molecular Devices, Menlo Park, CA) y se
analizaron con la utilización de un programa de análisis asistido
por ordenador (Softmax, Molecular Devices). Sólo se aceptaron para
el análisis ensayos que poseen curvas estándars con un valor de
línea de regresión calculado de >0,95.
Los macrófagos alveolares se recogieron mediante
lavado broncoalveolar con 1 ml de medio RPMI libre de colorante
(Gibco, Gran Island, NY) tres veces. El fluido de lavado
broncoalveolar (BALF) de 8 - 10 ratones se guardó para proporcionar
números suficientes de macrófagos para el análisis. El lavado se
centrifugó a 1200 PRM durante 10 minutos y se resuspendieron en PBS
un millón de macrófagos. La producción de peróxido de hidrógeno
mediante los macrófagos se midió utilizando un ensayo disponible
comercialmente (ensayo Bioxytech H_{2}O_{2}-560,
OXIS International, Portland, OR), basado en la oxidación de iones
ferrosos (Fe^{2+}) a iones férricos (Fe^{3+}) mediante peróxido
de hidrógeno bajo condiciones ácidas. Los procedimientos siguieron
las recomendaciones del fabricante. La producción de peróxido de
hidrógeno se determinó después de la activación con 10 ng/ml de
acetato de forbol de miristato (PMA) o sin estimulación.
Se centrifugaron las muestras de lavado de ratón
(100.000 x g, 1 hora) en un rotor SW-28 (Beckman,
Palo Alto, CA). Los sobrenadantes se concentraron utilizando
unidades de filtración Centricon-30 (Amicon, Inc.,
Beverly, MA). Se realizó la electroforesis a las muestras (200
\mug de proteína) bajo condiciones no reductoras (laemmli) en 10%
de Zymogram, gelatina y geles de caseína (Novex, San Diego, CA).
Después de la electroforesis, los geles se lavaron dos veces con
2,5% de Tritón X-100 (37ºC, 15 min) y se incubaron
durante 16 horas con Tris-HCl 40 mM, pH 7,5,
CaCl_{2} 10 mM, ZnCl_{2} 1 \muM. Los geles se tiñeron con 0,5
(peso/volumen) de azul Coomassie en 50% de metanol, 10% de ácido
acético durante 1 hora y a continuación se destiñó. Las
metaloproteinasas se detectaron como bandas claras sobre el fondo
azul. Los ARNm de metaloproteinasas 2 y 9 se cuantificaron mediante
análisis de transferencia Northern del total de ARNm del pulmón a
partir del tipo salvaje y de ratones de SP-D (-/-)
utilizando sondas de ADNc [^{32}P]-marcadas
(Chemicon International, Inc., Temecula, CA).
Los homogenizados de pulmón de ratones
SP-D (-/-) de 6 a 9 semanas de edad no contenían
niveles inflamatorios de la citocinas proinflamatorias
TNF-\alpha, IL-1\beta,
IL-6 o MIP-2, aunque los niveles
basales de IL-1\beta se incrementaron
significativamente, figura 3. En contraste, la producción oxidante,
según se evaluó mediante la medición de la producción de peróxido
de hidrógeno mediante los macrófagos alveolares aislados de ratones
SP-D (-/-), se incrementó 10 veces, figura 4. La
producción de peróxido de hidrógeno y de superóxido es una medida
de la activación de macrófago, particularmente la activación
microbicida. Ya que la producción de oxidante se ha asociado con la
activación de un número de metaloproteinasas y con el enfisema tanto
en los estudios de humanos como de animales, se estimaron las
actividades de metaloproteinasas mediante la degradación de los
sustratos de gelatina después de SDS-PAGE de los
sobrenadantes BALF aislados de ratones SP-D (-/-) y
SP-D (+/+). Las bandas de actividad en concordancia
con las metaloproteinas 2 y -9 se detectaron directamente en tantos
genotipos, pero no se alteraron en BALF de los ratones
SP-D (-/-). Probablemente, la abundancia de las
metaloproteinasa-2 y -9 de ARNm fueron similares en
las muestras de ARN de pulmón entero de ratones SP-D
(-/-) y SP-D (+/+) según se evaluó mediante
análisis de transferencia Northern. Sin embargo, la producción de
MMP-2 y 9 mediante macrófagos alveolares aislados de
ratones SP-D (-/-) se incrementó notablemente. Sin
embargo, se incrementó notablemente la producción de
MMP-2 y -9 mediante macrófaos alveolares aislados de
los ratones SP-D (-/-). Probablemente, la
inmunotinción para la MME (metaloelastasa de macrófago) y
MMP-9 aumentó en los pulmones de los ratones
SP-D (-/-).
Los resultados de los ejemplos
1-6 fueron completamente inesperados. No existe nada
en la literatura que sugiera que un ratón nulo SP-D
es un modelo para el enfisema.
En resumen, el ratón SP-D (-/-)
demuestra de forma concluyente un papel notable y sorprendente para
la SP-D en la regulación de la homeóstasis de
tensioactivo, la estructura del tensioactivo alveolar en el pulmón,
en la regulación de la expresión SP-A o que juega un
papel inhibidor crítico de oxidante, en la producción de peróxido
de hidrógeno en el pulmón. Los niveles SP-D son
importantes para la supresión de la producción de oxidante en
desarrollo y en el daño y en la regulación de la remodelación
alveolar y en la supresión de proteasas que causan el enfisema.
Esto hace que el ratón SP-D (-/-) sea un modelo
excelente para el enfisema. El ejemplo 7 resumirá los resultados
del modelo de ratón del enfisema.
La deficiencia SP-D causó
inflamación, producción oxidante aumentada mediante los macrófagos
alveolares aislados, enfisema y fibrosis localizada en los ratones
SP-D (-/-) inactivados en los genes. El tiempo y la
naturaleza progresiva de estas anormalidades pulmonares apoya la
conclusión que el engrandecimiento alveolar de los ratones
SP-D (-/-) está causado por la remodelación alveolar
asociada con la inflamación crónica, más que con las anormalidades
de desarrollo que aparecen durante la alveologénesis. Los presentes
descubrimientos concuerdan con un papel importante y no anticipado
de la SP-D en la modulación de la inflamación
pulmonar y en la producción de oxidante y sugiere que los cambios
en la regulación o función de la SP-D puedan
desempeñar un papel en los procedimientos patológicos que llevan a
un enfisema seguido de un daño pulmonar crónico.
Los análisis histológicos y morfométricos de
pulmones a partir de SP-D (-/-) no revelaron
anormalidades en la estructura de pulmón hasta las 3 semanas de la
edad postnatal, una semana después que la alveologénesis se
completa en el ratón. Esto fue concordó con la observación de que
las proporciones relativas del parénquima respiratorio y del
espacio aéreo fueron similares tanto en ratones SP-D
(-/-) como en SP-D (+/+), entre los días
postnatales 5 y 17. Después de las 2 semanas de edad, se observaron
las proporciones incrementadas parénquima- espacio aéreo en ratones
SP-D (-/-), en concordancia con la remodelación en
desarrollo del parénquima y los espacios alveolares. Los espacios
engrandecidos aéreos se asociaron por lo general con la acumulación
focal de macrófagos alveolares, espumosos, grandes, aunque hubo
alguna heterogenicidad tanto en la localización como en la
extensión de los infiltrados inflamatorios y en la remodelación de
ratones más viejos. Mientras se observó la acumulación focal de
macrófagos alveolares en los pulmones de ratones
SP-D (-/-) tan pronto como a las 2 semanas de edad,
la morfología de macrófago permaneció normal en este tiempo. La
morfología de macrófago alveolar anormal, que consiste en células
espumosas engrandecidas, se observó a las 3 semanas de edad y a
continuación coincidió con el engrandecimiento de estructuras
alveolares. Los estudios anteriores demostraron números
incrementados de macrófagos alveolares engrandecidos en ratones
SP-D (-/-) a las 8 semanas de edad. De este modo,
el desarrollo de enfisema en los ratones SP-D (-/-)
concuerda con la acumulación temporal y espacial de los macrófagos
activados y con la producción aumentada de proteasas
MMP-2, 9 y MME sugiriendo su papel en el
procedimiento de remodelación. Los presentes descubrimientos no
apoyan un papel para la SP-D en la morfogénesis y
alveologénesis de pulmón normal, un procedimiento por lo general
completado aproximadamente a las 2 semanas de la edad postnatal en
ratones.
Los presentes descubrimientos no apoyan un papel
importante para la SP-D en la modulación de la
activación de macrófago alveolar y en la producción de oxidante,
llevando a la activación de proteasa, enfisema y fibrosis. La
infiltración de macrófago y la remodelación pulmonar en ratones
SP-D (-/-) se asoció con diferencias modestas pero
significativas en niveles inflamatorios de diversos mediadores
proinflamatorios, incluyendo la IL-1b,
MIP-2, pero no la TNF-\alpha ni la
IL-6, sino más bien con una producción de peróxido
de hidrógeno notablemente aumentada por macrófagos alveolares
aislados. Aunque los niveles basales de IL-\beta1
se incrementaron significativamente en ratones SP-D
(-/-), la IL-\beta1 no incremento a niveles
típicamente detectados en la inflamación grave. Mientras se
observaba un incremento de IL-1\beta y de la
producción de peróxido de hidrógeno en ratones SP-D
(-/-), sigue sin estar claro si las anormalidades pulmonares vistas
en estos ratones mediaron directamente mediante citocina o daño
inducido oxidante. Aunque se ha propuesto que la
SP-D juega un papel importante en la defensa del
huésped, no hubo evidencia histológica o serológica de infección en
la colonia SP-D (-/-).
La producción de peróxido de hidrógeno
incrementada y los números incrementados de macrófagos alveolares
encontrados en los pulmones de ratones SP-D (-/-)
apoyan el concepto que la SP-D juega un papel
anti-inflamatorio crítico en el pulmón y regula la
producción de peróxido de hidrógeno mediante los macrófagos
alveolares in vivo. Las relaciones entre el daño oxidante y
el desarrollo del enfisema y la fibrosis pulmonar están bien
establecidas en numerosos modelos animales y genéticos. Por
ejemplo, la exposición neonatal a la hiperoxia causó la remodelación
alveolar y la fibrosis en ratones recién nacidos. Ya que la
activación de las metaloproteinasas se ha asociado con el daño
oxidante y el enfisema, las actividades de metaloproteinasa se
evaluaron en BALF a partir de ratones SP-D (-/-).
Mientras la actividad de la proteasa consistente con las
metaloproteinasa-2 y -9 se detectaron fácilmente
mediante zimografía en homogeneizados de pulmón, pero, no se
detectaron cambios consistentes en ratones SP-D
(-/-) las actividades de estas proteinasas o en sus ARNm. Sin
embargo, se demostró la producción incrementada notablemente de
MMP-2 y MMP-9 en los macrófagos
alveolares aislados de ratones SP-D (-/-) in
vitro y en la inmunotinción de MME y de MMP-2 se
incrementó en los pulmones de ratones SP-D (-/-)
in vivo. De este modo, las concentraciones incrementadas
localizadas de metaloproteinasas y/o alteraciones en otras
proteasas o antiproteasas se asocian con la deficiencia de
SP-D. Las deficiencias en antiproteasas, además del
tabaco y del daño oxidante de tóxicos oxidantes (por ejemplo,
bleomicina o paraquat), se han asociado todas con el enfisema o la
fibrosis pulmonar en el pulmón humano.
Mientras el contenido de fosfolípido de
tensioactivo se incrementó en ratones SP-D (-/-) y
se asoció con números incrementados de macrófagos alveolares,
espumosos, grandes, el contenido de fosfolípido incrementado solo
no es probable que sea suficiente para causar la remodelación
alveolar observada en ratones SP-D (-/-). De hecho,
el efecto total de fosfolípidos de tensioactivo parece que sea
anti-inflamatorio, alterador de la fagocitosis,
producción oxidante y liberación de citocina e inhibidor de la
proliferación de linfocito, producción de inmunoglobulina y
expresión de moléculas de adhesión. Por otro lado, los ratones
transgénicos en los que se sobreexpresó GM-CSF en
el epitelio respiratorio tuvieron números notablemente incrementados
de macrófagos alveolares de aspecto normal, pero no desarrollaron
proteinosis/lipoidosis alveolar pulmonar, enfisema, o fibrosis. En
contraste, los fosfolípidos de tensioactivo y proteínas
incrementaron notablemente en pulmones de tanto ratones deficientes
en GM-CSF (-/-) como en la subunidad beta común de
receptor GM (\betac) en asociación con la acumulación de
macrófago alveolar e infiltrados de monocito
perivascular/peribronquial; sin embargo, ni el modelo de
proteinosis/lipoidosis alveolar pulmonar se asoció con el enfisema
o la fibrosis. Probablemente, los ratones transgénicos que
sobreexpresan IL-4 en el pulmón mostraron asimismo
cantidades incrementadas de proteínas y lípidos de tensioactivo,
además de números incrementados de células inflamatorias, pero no
desarrollaron enfisema.
Aunque las concentraciones de
SP-D en el pulmón cambien durante el desarrollo,
incrementándose con la edad, los niveles de SP-D se
influenciaron asimismo mediante condiciones clínicas diversas.
Estudios recientes demostraron una reducción notable de las
concentraciones SP-D en BALF obtenida de pacientes
con fibrosis quística (FC), apoyando el papel potencial para la
SP-D en la patogénesis de la inflamación crónica
asociada con la enfermedad pulmonar FC. Los niveles de
SP-D se redujeron asimismo en BALF de fumadores, lo
que sugiere que niveles reducidos de SP-D pueden
contribuir al desarrollo posterior de la enfermedad pulmonar
obstructiva crónica (CDPD) y enfisema en estos pacientes. Aunque
las concentraciones de SP-D en BALF se incrementaron
en pacientes con proteinosis alveolar pulmonar (PAP), los pacientes
con fibrosis pulmonar idiopática (IPF) y neumonía intestinal
asociada con la enfermedad vascular de colágeno (IPCD) tenían
niveles BALF de SP-D disminuidos. Por otro lado, las
concentraciones de SP-D aumentaron en pacientes con
PAP, IPF e IPCD; aunque los niveles de suero de tanto
SP-a como SP-D variaron con la
gravedad de IPF y durante el curso de las terapias
anti-inflamatorias. Estos descubrimientos clínicos,
además del presente estudio, demuestran que la SP-D
se requiere para el mantenimiento de la arquitectura de pulmón
normal y la supresión de la producción de oxidante, apoyando el
concepto que los cambios en las concentraciones de
SP-D se pueden implicar en la patogénesis del daño
pulmonar asociado con condiciones clínicas diversas, incluyendo
daño oxidante, abscesos pulmonares, enfermedades secundarias,
fibrosis quística, fibrosis pulmonar intersticial (IPF), enfermedad
pulmonar obstructiva crónica (COPD), diversas infecciones
pulmonares, síndrome de distrés respiratorio (RDS), displasia
broncopulmonar (BPD), daño pulmonar inducido por quimioterapia,
fibrosis pulmonar secundaria a abscesos primarios (es decir,
sarcoide) y asma.
En nuestros estudios anteriores, no se
observaron anormalidades en los macrófagos alveolares o morfología
de pulmón en los ratones heterocigotos SP-D (+/-),
demostrando que una reducción del 50% en la concentración de
SP-D en BALF no es suficiente para causar
anormalidades pulmonares. Las concentraciones precisas de
SP-D que se requieren para la inhibición del daño
inducido por oxidante y la remodelación del pulmón no están claras
actualmente. Si el daño o estrés oxidante adicional a los pulmones
de ratones SP-D (+/-) o SPD (-/-) excacerbará el
enfisema y la fibrosis, en este modelo de animal permanece sin
determinar.
La modesta reducción de la concentración de
SP-A de pulmón detectado en ratones
SP-D (-/-) no es probable que contribuya a los
cambios en la morfología de pulmón observados en estos ratones, ya
que ni los ratones SP-A (+/-) ni
SP-A (-/-) desarrollaron el enfisema. Además, la
morfología de pulmón de los ratones deficientes
SP-A fue normal, y, en contraste con los ratones
SP-D (-/-), la deficiencia de SP-A
se asoció con la producción de peróxido de hidrógeno disminuida
mediante macrófagos alveolares aislados.
Los ratones SP-D (-/-)
desarrollaron un enfisema grave y progresivo. Las anormalidades de
remodelación alveolar y macrófagos fueron evidentes tan pronto como
a las 3 semanas de edad, mientras la fibrosis pulmonar, focal,
suave se observó a los 6 a 7 meses de edad, demostrando un papel
para la SP-D en la regulación de la inflamación y
remodelación alveolar. El presente estudio demostró asimismo un
papel inesperado para la SP-D en la regulación de
la producción de peróxido de hidrógeno mediante los macrófagos in
vivo, que puede contribuir al desarrollo del enfisema en
pulmones de ratones SP-D (-/-). Si la deficiencia
de SP-D contribuye a la inflamación en desarrollo o
al desarrollo de enfisema y fibrosis encontrada en diversas
enfermedades pulmonares crónicas humanas, incluyendo las causadas
por el tabaco y otros oxidantes, permanece sin determinar.
A causa de la falta de terapias farmacéuticas
para el tratamiento del enfisema, es imperativo un modelo para
ensayar posibles terapias. El ratón SP-D (-/-)
proporciona este modelo. El ejemplo 8 proporciona una estructura de
muestra para ensayar productos farmacéuticos, preparaciones de
proteína o manipulaciones genéticas para el tratamiento del
enfisema.
Se administraron a ratones SP-D
(-/-) intratraquealmente un número de dosis o concentraciones de
proteína o de producto farmacéutico diluido en un regulador
adecuado. La proteína y el producto farmacéutico se purifican como
adecuado para su utilización in vivo. El adenovirus
recombinante u otros vectores genéticos que contiene el gen de
interés se administran como sigue. Los ratones SP-D
(-/-) se inmunosuprimen para bloquear específicamente las
respuestas inmunes mediadas por las células T y se tratan con una
construcción adenoviral diseñada para expresar el gen de interés en
células transducidas. Los ratones se inyectan intraperitonealmente
con anticuerpo H57 3 días antes de recibir la construcción
adenoviral. H57 altera el reconocimiento inmune en el receptor de
célula T y disminuye los linfocitos T y B de bazo y pulmón. Se
instila una dosis intratraquealmente y se trata otro grupo
intraperitonealmente con H57 seguido de la administración
intratraqueal del vehículo solo. Los niveles de la proteína de
interés se miden 1 semana después de la administración para detectar
la absorción y expresión del vector. Se ensayan cuatro ratones y se
utilizan como control ratones SP-D (-/-) sin tratar.
La inoculación intratraqueal implica la anestesia con isofluorano y
se realiza una incisión en la línea de la mitad anterior para
exponer la tráquea. Se inserta en la tráquea una jeringa tuberculina
con una aguja de calibre 30 y se dispersan en los pulmones 100
\mul de inoculación de proteína o de producto farmacéutico. Se
cierra la incisión con una gota de Nexaband Nonpyogenic. Se inyecta
intratraquealmente PBS como control.
Para ensayar la eficacia de la proteína, el
producto farmacéutico o la manipulación genética en la disminución
de los efectos de enfisema, se llevan a cabo un número de
ensayos.
Para determinar los efectos de la proteína o del
producto farmacéutico en la estructura del pulmón, se fijan
inflados los pulmones y se analizan las secciones con microscopía
electrónica. Los pulmones de ratones tratados y sin tratar se
inflan vía una cánula traqueal a 20 cm de presión con 4% de
paraformaldehído y se elimina en bloque del tórax. Los pulmones se
deshidratan y se incrustan en parafina. Las secciones de tejido (5
\mum) se tiñen con hematoxilina y eosina.
Para ensayar el número y la morfología de
macrófagos: la tinción con rojo Nilo detecta vesículas y la tinción
con azul Nilo y la excitación con luz verde de
520-550 nm es un procedimiento adicional para
detectar lípidos o fosfolípidos. El número de macrófago se
determina por la tinción con
anti-MAC-1 u otro antisuero
específico de macrófago. El tamaño de macrófago se estima a partir
del diámetro de macrófagos teñidos y fijados a partir de
preparaciones de citospina sedimentadas en portaobjetos de vidrio a
1.500 x g durante 2 minutos.
La composición de tensioactivo y la
ultraestructura se analiza como sigue: la estructura de tensioactivo
se analiza mediante el aislamiento de los agregados grandes a
partir de un lavado alveolar de reserva de ratones tratados y sin
tratar SP-D (-/-) y se examinan mediante EM (ver
protocolo a continuación). Para el análisis de la composición de
fosfolípidos de lavado alveolar, dos de las cuatro muestras que
consisten en el lavado de reserva de dos a tres ratones se evalúan
para la abundancia relativa de fosfatidilcolina,
fosfatidiletanolamina, fosfatidilglicerol, fosfatidilinositol,
esfingomielina, y ácido
liso-bis-fosfatídico. La
incorporación de (^{3}H)colina en el
Sat-PC del pulmón total se evalúa para determinar la
concentración de fosfolípido total.
El tensioactivo en el alveolar se puede separar
en fracciones de agregados grandes (pesados, densos) y agregados
pequeños (ligeros, vesiculares) mediante centrifugación. Los lavados
alveolares se centrifugaron a 40.000 x g en un regulador de
sacarosa de 0,8 M durante 15 minutos. El tensioactivo agregado
grande se recogió a continuación a partir de la interfase, se
diluyó con salino normal y se centrifugó otra vez a 40.000 x g
durante 15 min. El sobrenadante de los primeros 40.000 x g
centrifugados que contiene tensioactivo agregado pequeño se
concentra a 4ºC mediante ultracentrifugación utilizando un filtro de
retención de peso molecular de 300.000 (Minitan, Millipore Corp.,
Bedford, MA) o concentradores de centrífuga (Amicon Corp., Danveres,
MA). El tensioactivo agregado pequeño se diluye con 50 ml de salino
normal y se ultrafiltra 3 veces para eliminar las proteínas
solubles.
A causa de la deleción de la
SP-D producida por el modelo de ratón para el
enfisema, la SP-D es una elección obvia como un
tratamiento para la prevención del enfisema. Es asimismo un
tratamiento obvio para otros tipos de enfermedades pulmonares ya
que muchas de estas enfermedades se caracterizan por una producción
de tensioactivo aberrante. Además, su influencia sobre
SP-A y su posible papel en la defensa del huésped la
hace una herramienta útil para aumentar la función inmune en los
pulmones. La viabilidad de la transferencia de gen al epitelio
respiratorio es muy prometedora como un tratamiento para
enfermedades pulmonares diversas. Se han desarrollado una variedad
de vectores basados en virus y en no virus para transferir los
genes a las células de las vías aéreas, incluyendo vectores
adenovirales recombinantes. Estos vectores son particularmente
prometedores para la utilización en el tratamiento respiratorio
porque poseen el potencial de aerosolizarse. El ejemplo 9 es un
experimento utilizando proteína SP-D de ratón
purificada para el tratamiento del enfisema en ratones
SP-D (-/-). El ejemplo 10 es un experimento
utilizando el adenovirus para expresar la SP-D de
rata para el tratamiento de enfisema en ratones
SP-D (-/-). El ejemplo 11 proporciona una estructura
de muestra para la utilización de péptidos SP-D o
vectores que expresan la SP-D para la prevención y
tratamiento de estas enfermedades. El enfisema se utiliza como una
enfermedad pulmonar ejemplo. El adenovirus se utiliza como un vector
ejemplo.
Los ratones SP-D (-/-) se
trataron con SP-D de ratón purificada, purificada
según se describe a continuación. Los niveles de PC saturados se
analizaron en el lavado alveolar y en el lavado de pulmonar total.
Las dosis repetidas intratraquealmente a intervalos de 24 horas
resultaron en la corrección parcial de la acumulación de lípido
después de 3 a 7 dosis, ver figura 12.
La vida media de la SP-D en la
vía respiratoria se determinó como 13 horas en ratón (ver figura 13)
(la técnica se describe a continuación); por lo tanto, la
deficiencia en SP-D se puede tratar mediante la
sustitución de la proteína SP-D a un intervalo
razonable mediante aerosol o un inhalador particulado o mezclas de
tensioactivo.
Se recogió el fluido de lavado broncoalveolar de
ratón (BAL) de ratones mutantes nulo GMCSF y SP-A
doble, se congeló y se guardó para una purificación posterior de
SP-D. La maltosil-agarosa (Sigma) se
empaquetó en una columna de flujo de gravedad (10 x 80 mm) y se
equilibró con regulador que contenía Tris-HCl 20 mM,
pH 7,4, cloruro de calcio 10 mM, azida de sodio 0,02%
(peso/volumen) (TCB). El BAL se preparó 20 mM con respecto a
Tris-HCl y a 10 mM con respecto a EDTA, pH 7,4 y se
agitó una hora a temperatura ambiente. La solución turbia se
centrifugó a 10.000 x g durante 40 minutos a 4 grados C. El
sobrenadante se preparó a 20 mM con respecto al cloruro de calcio y
se reajustó a pH 7,4 antes de cargarse sobre la columna de
maltosil-agarosa. La columna se lavó hasta la
absorbancia de base con TCB seguido del lavado con TCB que contenía
cloruro de sodio 1,0 M. La SP-D, que posee un
requisito específico para el calcio en la unión a la maltosa se
eluyó con cloruro de manganeso 50 mM, Tris-HCl 20
mM, azida de sodio 0,02% (peso/volumen), pH 7,4. Las fracciones que
contenían SP-D se determinaron mediante
electroforesis de gel de poliacrilamida SDS o mediante un ELISA
directo, se reservaron y se dializaron contra los tres cambios de
Tris-HCl 20 mM, cloruro de sodio 100 mM y EDTA 5 mM,
pH 7,4. Este protocolo se adaptó de Strong, Peter, Kishore, Uday;
Morgan, Cliff; Bernal, Andres Lopez; Singh, Mamta y Reid, Kenneth
B.M.; Journal of Immunological Methods 220 (1998)
139-149.
Se ha utilizado con éxito una técnica para la
intubación ciega oral utilizando tubos de alimentación de 26 g en
ratones bajo anestesia con isofluorano para el tratamiento
repetitivo de ratones con SP-D diariamente hasta 7
días sin problemas. Esta aproximación evita la cirugía y permite el
tipo de experimentos propuestos para la sustitución de
SP-D y el tratamiento con las proteínas
SP-D mutantes.
Inicialmente los ratones SP-D
(-/-) se trataron con ratón SP-D purificada mediante
instilación traqueal. Tres o más dosis de 2,9 g de
SP-D proporcionadas a intervalos de 24 horas
disminuyeron tanto las reservas de PC alveolares como las saturadas
(ver figura 14). Esta dosis de SP-D proporcionada es
aproximadamente la cantidad presente en la reserva endógena en
ratones SP-D (+/+). Dada la clara asociación de
pulmón y cinética de depuración, esta es una dosis baja. De este
modo la administración exógena de SP-D influencia
directamente el metabolismo de lípido de tensioactivo y proporciona
un modelo experimental en el que se puede ensayar la función de las
moléculas de SP-D modificadas in vivo.
Se ha medido la vida media biológica de la
SP-D en ratones para diseñar experimentos para el
tratamiento con SP-D. Se yodaron con ^{125}I la
SP-D de ratón purificada utilizando el reactivo
Bolton-Hunter como se ha llevado a cabo
anteriormente para la SP-A y las otras proteínas de
tensioactivo. La depuración de SP-D de los lavados
alveolares de ratones SP-D (+/+) y la
SP-D (-/-) fue similar con una vida media de
aproximadamente 13 horas (ver figura 13). El t^{1/2} de 17 h para
la SP-D en los pulmones de ratones
SP-D (-/-) fue algo más largo que el t^{1/2} de
13 horas para los ratones SP-D (+/+).
La deficiencia GM-CSF causa un
incremento en la SP-D de 48 veces y el cruce
GM-CSF (-/-) x SP-A (-/-) posee un
SP-D elevado de forma similar pero no
SP-A. Se ha aislado la SP-D de
lavados alveolares de ratones GM-CSF (-/-) x
SP-A (-/-) en una pureza elevada y en grandes
cantidades mediante procedimientos descritos por Persson et
al. utilizando una columna de afinidad de
manosa-Sepharose 6B en presencia de Ca^{2+}.
Se construyó un adenovirus nuevo que expresa la
SP-D de rata. El virus produjo SP-D
en las células y en los pulmones de ratones normales o deficientes
de SP-D. Los análisis de transferencia Western
mostraron que la SP-D de rata se produjo en 293
células además de en ratones.
El tipo salvaje de ADNc de SPD de rata se liberó
del plásmido WT-rSPD/pG3Z con digestión de EcoR I y
el extremo 3' rellenado con Klenow. Se insertó el ADNc rSPD de 1,3
kB en el sitio EcoR V del plásmido pAvS6a para producir un plásmido
pAvS6a-rSPD. El plásmido pAvS6a-rSPD
posee un promotor RSV, un ADNc rSPC, una señal SV40 poliA y una
secuencia Ad5 (9,24-17,34 mu). El
pAvS6a-rSPD no linealizado se cotransfectó en 293
células con Cla I, se digirió un fragmento grande de ADN Ad dl/327
adenovírico, que posee la región E3 (78,5-84,7 mu).
Después de la recombinación homóloga, las placas individuales se
analizaron mediante el análisis de transferencia de Western para
determinar la expresión de la proteína rSPD. Un clon positivo de
rSPD se sometió a una ronda de purificación de placa. El adenovirus
Ad-rSPD posee deleciones en regiones E1 y E3 y su
replicación es deficiente. Después de la amplificación en 293
células, el adenovirus Ad-rSPD se produjo a través
de dos rondas de ultracentrifugación por gradiente de CsCl. El
adenovirus expresó SP-D y por lo tanto se podría
utilizar para restaurar las anormalidades pulmonares mediante
administración intratraqueal. Por lo tanto, esto permanece como una
posibilidad muy positiva para el tratamiento del enfisema y de
muchas otras enfermedades por deficiencia de SP-D
además de diversas otras formas de daño y deficiencia pulmonar.
Los requisitos temporales, espaciales y
estequiométricos para la SP-D en la restauración de
la homeóstasis de fosfolípidos se determinaron en el ejemplo 9. Los
estudios iniciales para determinar la cinética de depuración de la
SP-D se llevaron a cabo con SP-D
marcada con ^{125}I administrada intratraquealmente; se calculó la
vida media y la información se utilizó en el diseño de los
experimentos de sustitución de la SP-D. Se aclaró
la dosis de la SP-D requerida para conseguir las
concentraciones de SP-Dfisiológicas normales de la
SP-D después de la administración.
La administración de la proteína
SP-D purificada se utilizó para tratar diversas
enfermedades pulmonares en el ejemplo 9. Sin embargo, las
anormalidades fisiológicas en la enfermedad pulmonar pueden requerir
la corrección a largo plazo de la SP-D en los
pulmones. Por lo tanto, se utilizarán el adenovirus recombinante u
otros vectores genéticos que contienen el gen SP-D
mamífero (ver ejemplo 10 y 11). Los vectores de adenovirus
recombinantes utilizaron proteína secretoria celular Clara (CCSP) y
promotores SP-C para expresar selectivamente la
SP-D en compartimientos bronquiolares (célula
Clara) y alveolares (célula de tipo II) (ver ejemplo 10). Tres días
antes del tratamiento con el vector adenoviral los ratones se
inmunosuprimen mediante inyección intraperitoneal con 200 \mug de
anticuerpo receptor de célula anti-T monoclonal H57.
El adenovirus se administró mediante inyección intratraqueal de 5 X
10^{8} PFU de virus. Los niveles de la proteína
SP-D se midieron 1 semana después de la
administración para detectar la absorción y la expresión del vector.
Se ensayaron cuatro ratones y se utilizaron como control los
ratones SP-D (-/-) que no recibieron tratamiento.
Para ensayar la eficacia de la SP-D en la
disminución de los efectos del enfisema, se llevan a cabo un número
de ensayos como sigue.
Para determinar los efectos de una proteína o un
producto farmacéutico en la estructura de pulmón (ejemplo 11), los
pulmones se inflaron fijados y se evaluaron las secciones mediante
microscopía electrónica. Los pulmones se inflaron vía una cánula
traqueal de 20 cm de presión con 4% de paraformaldehído y se sacaron
en bloque del tórax. Los pulmones se deshidrataron y se incrustaron
en parafina. Las secciones de tejido (5 \mum) se tiñen con
hematoxilina y eosina.
Se analizaron el número y la morfología de los
macrófagos. La tinción con rojo Nilo detecta vesículas y la tinción
con azul Nilo y la excitación con luz verde de
520-550 nm es un procedimiento adicional para
detectar lípido o fosfolípido. El número de macrófago se determina
mediante marcadores de contaje directo o de superficie celular de
macrófago. El tamaño de macrófago se estima a partir del diámetro de
macrófagos fijos y teñidos de las preparaciones de citospina
sedimentadas sobre portaobjetos de vidrio a 1500 x g durante 2
minutos.
La composición de tensioactivo y la
ultraestructura se analizan como sigue: la estructura del
tensioactivo se analiza mediante el aislamiento de agregados
grandes del lavado alveolar de reserva de ratones tratados y no
tratados SP-D (-/-)
y se examinaron mediante EM. Para el análisis de la composición de fosfolípido de lavado alveolar, se evalúan para la abundancia relativa de fosfatidilcolina, fosfatidiletanolamina, fosfatidilglicerol, fosfatidilinositol, esfingomielina y ácido liso-bis-fosfatídico dos de las cuatro muestras que consisten en el lavado de reserva de dos a tres ratones. Se evalúa
la incorporación de (^{3}H)colina en el Sat-PC del pulmón total para determinar la concentración de fosfolípido total.
y se examinaron mediante EM. Para el análisis de la composición de fosfolípido de lavado alveolar, se evalúan para la abundancia relativa de fosfatidilcolina, fosfatidiletanolamina, fosfatidilglicerol, fosfatidilinositol, esfingomielina y ácido liso-bis-fosfatídico dos de las cuatro muestras que consisten en el lavado de reserva de dos a tres ratones. Se evalúa
la incorporación de (^{3}H)colina en el Sat-PC del pulmón total para determinar la concentración de fosfolípido total.
Una vez que se ha determinado la eficacia del
tratamiento, se puede ensayar el tratamiento en otros mamíferos
adecuados.
El papel de SP-D y
SP-A en la defensa de huésped en los pulmones se ha
demostrado de forma repetida. La SP-A y la
SP-D poseen interacciones específicas con
microorganismos diversos in vitro, modificando la inflamación
pulmonar in vitro mediante la alteración de la producción de
citocina y de radicales libres. Se evaluó in vivo el papel
de la SP-D en la depuración de bacterias y en la
respuesta inflamatoria del pulmón utilizando un modelo de ratón de
la deficiencia SP-D. Los ratones deficientes
SP-A se conocen que son más propensos a las
infecciones. Un número de estudios in vitro ha mostrado un
papel posible para la SP-D en la defensa del
huésped además de su papel en el aumento de laregulación de la
SP-A. Los ejemplos 8-11 describen
los protocoles de muestra para el ensayo de la SP-D
como una terapia en los ratones SP-D (-/-) bacterial
o fúngicamente infectados además de en los ratones
SP-A (-/-). Los ejemplos 12-14 son
experimentos que muestran el papel de la SP-D en la
respuesta a la infección bactericida, fúngica y vírica. El ejemplo
13 es un experimento que muestra el efecto de infectar los ratones
SP-D (-/-) con el virus sincitial respiratorio.
Los ratones deficientes en SP-D
(SP-D -/-) se infectaron de forma intratraqueal con
el estreptococus del grupo B (GBS) o el Hemophilus
influenzae (Hflu) para evaluar la depuración comparada con los
ratones de tipo salvaje. Se administró el estreptococus del grupo A
a 10^{4} CPU. La inflamación pulmonar se evaluó asimismo mediante
el análisis del fluido BAL del total de las células (figuras 5, 6 y
7), niveles de citocina en los homogeneizados de pulmón (figura 8),
producción de radicales de oxígeno mediante los macrófagos
alveolares (figura 11) y los niveles de nitrito en BAL (figura
9).
Los ratones SP-D (-/-) depuraron
las bacterias de forma similar al ratón de tipo salvaje (ver figuras
5 y 6). La infección con GBS y Hflu resultó en células totales
significativamente mayores en el fluido BAL de los ratones
SP-D (-/-) comparados con los ratones de tipo
salvaje (figura 7). Las alteraciones selectivas de los niveles de
citocina se detectaron en ratones SP-D (-/-). Los
niveles del factor de necrosis tumoral (TNF-) y de interleucina
(IL)-6 fueron superiores en los homogenizados de
pulmón de los ratones SP-D (-/-) más pronto después
de la infección con GBS o Hflu (figura 8). La
proteína-2 inflamatoria de macrófago
(MIP-2), un quimioatrayente neutrófilo, fue
significativamente mayor en los homogeneizados pulmonares de los
ratones SP-A (-/-) después de la infección con Hflu
pero no con GBS (figura 8). Los macrófagos de los ratones
SP-D (-/-) generaron superóxido y peróxido de
hidrógeno significativamente mayor que el comparado con los ratones
de tipo salvaje (figura 11).
Los niveles de nitrito BAL se incrementaron en
los ratones SP-D (-/-) según se compara con los
ratones de tipo salvaje. La producción de óxido nítrico se midió
como nitrito en BALF. El óxido nítrico juega un papel en la defensa
del huésped mediante la contribución a la muerte bactericida. El
óxido nítrico reacciona con el superóxido para formar peroxinitrito
que es un potente agente bactericida.
En la figura 10 la fagocitosis se evaluó
utilizando la microscopía óptica y la citometría de flujo. Los
ratones SP-D (-/-) mostraron una fagocitosis de
bacterias significativamente reducida según se compara con los de
tipo salvaje.
Por lo tanto, en la ausencia de la
SP-D se observaron las respuestas inflamatorias
aumentadas siguiendo la infección del pulmón con GBS o Hflu. La
producción de especies de oxígeno reactivas mediante macrófagos
alveolares se incrementó en los ratones SP-D (-/-).
Estos resultados apoyan un papel de la SP-D crítico
y distinto en las respuestas pulmonares inmunes e inflamatorias a
la infección bactericida, in vivo.
En el ejemplo 13, los ratones
SP-D (-/-) se infectaron con el virus sincitial
respiratorio.
Los mecanismos de defensa de huésped han
evolucionado para mantener el pulmón limpio de patógenos microbianos
incluyendo los mediadores innatos de la limpieza bactericida y
vírica y las respuestas inmunes adquiridas.
Los ratones SP-D (-/-) se
infectaron intratraquealmente con el virus sincitial respiratorio
(RSV), un patógeno respiratorio común en niños. Se evaluaron los
títulos víricos y la inflamación pulmonar en los ratones
SP-D (-/-) y en los ratones de tipo salvaje. Los
títulos de RSV en los homogeneizados de pulmón se incrementaron
significativamente en SP-D (-/-) comparados con los
de los ratones de tipo salvaje 3 y 5 días después de la
administración. Sin embargo, se encontraron números incrementados
significativamente de las células inflamatorias en el fluido BAL de
ratones SP-D (-/-) con un porcentaje superior de
PMNs comparados con el de los ratones de tipo salvaje, 3 y 5 días
después de la infección de RSV. Además, la inflamación de pulmón
evaluada mediante histología, 5 días después de la infección de RSV
fue superior en SP-D (-/-) comparada con la de los
de tipo salvaje. Las citocinas proinflamatorias, incluyendo
TNF-\alpha, IL-1,
IL-6 y MIP-2 fue superior en los
homogeneizados de pulmón de ratones SP-D (-/-) 3 y
5 días después de la infección de RSV. Los ratones
SP-D (-/-) tuvieron menos depuración vírica eficaz
del pulmón y se demostraron respuestas inflamatorias mayores después
de la infección de RSV que la de los ratones de tipo salvaje. Estos
descubrimientos demuestran que la SP-D juega un
papel importante en la defensa innata y en la regulación de la
inflamación del pulmón después de la infección RSV in vivo.
Se observaron descubrimientos similares después de que la gripe y el
adenovirus infectasen el pulmón.
El ratón se infecta como expone a continuación:
se utiliza un prototipo adecuado de un patógeno fúngico. El agente
infeccioso se purifica como adecuado y se suspende en un regulador
adecuado y se administra intratraquealmente con o sin
SP-D en el ratón SP-D (-/-) (como en
los ejemplos 12 y 13). El prototipo fúngico se administra a una
dosis adecuada. Los ratones SP-D (-/-) y
SP-D (+/+) se utilizaron para ensayar el efecto de
la SP-D en la propensión de los ratones a la
infección. Los ratones SP-D (-/-) con o sin proteína
SP-D se utilizaron para ensayar la
SP-D como una terapia para la infección. La
depuración para la infección se evalúa como en los ejemplos 12 y 13
y como sigue.
La depuración fúngica se determina mediante la
purificación de los homogeneizados del pulmón y del bazo a 6, 24 y
48 horas después de la inoculación en los animales con el agente el
infeccioso o el agente infeccioso con SP-D. La
depuración bactericida del pulmón se determina después de variar las
concentraciones SP-D de forma adecuada. Los
cultivos cuantitativos se determinan asimismo para los ratones
SP-D (+/-) para determinar si el 50% de la
reducción de SP-D proporciona suficiente
SP-D endógeno para la limpieza bactericida o
vírica.
Las concentraciones adecuadas de
SP-D mamífero se utilizan en otros mamíferos para el
tratamiento de infecciones pulmonares.
La importancia de la SP-D en la
función normal y en el desarrollo del pulmón se demuestra claramente
mediante el ratón nulo SP-D (-/-). Por lo tanto,
los agentes que regulan la producción, expresión, o la acción de la
SP-D son importantes productos farmacéuticos futuros
y ayudas experimentales para la identificación adicional de tales
productos farmacéuticos. Un experto ordinario en la materia
sugeriría muchas técnicas para la identificación de tales agentes.
Los ejemplos 15 y 16 describen un protocolo de muestra para dos de
estas técnicas. El ejemplo 17 muestra que la IL-4
aumenta notablemente los niveles de SP-D in
vivo y podría de este modo utilizarse para tratar enfermedades
pulmonares con o sin la adición de SP-D.
Se establece una técnica de un híbrido
utilizando el promotor SP-D para identificar
proteínas que aumentan la regulación de la expresión de la
SP-D. Estas proteínas se ensayan a continuación
sobre el ratón SP-D (-/-) para la eficacia en el
tratamiento del enfisema y de otras enfermedades e infecciones
pulmonares como en el ejemplo 8.
La técnica de dos híbridos se establece para
identificar las proteínas que interactúan directamente con la
proteína SP-D. Estas proteínas se ensayan a
continuación en el ratón SP-D (-/-) para la eficacia
en el tratamiento del enfisema y de otras enfermedades e
infecciones pulmonares como en el ejemplo 8.
Los ratones que expresan IL-4 en
células Clara (CCSP-IL-4)
desarrollan inflamación crónica de las vías aéreas y un síndrome
tipo proteinosis alveolar. Para identificar el papel de la
IL-4 en la homeóstasis de tensioactivo, se midió el
metabolismo del lípido y la proteína en los pulmones de ratones
CCSP-IL-4 in vivo. Las
reservas de fosfatidilcolina saturada alveolar (Sat PC) se
incrementaron 6,5 veces y las reservas del Sat PC del tejido del
pulmón se incrementaron 4,8 veces en los ratones transgénicos
IL-4 (ver figura 15). La SP-D se
incrementó aproximadamente 90 veces en los ratones
IL-4 comparada con la de los ratones de tipo salvaje
y se asoció con 2,8 veces de incremento de ARNm
SP-D (figura 15). La incorporación del palmitato y
colina en el Sat PC se incrementó aproximadamente 2 veces en
ratones CCSP-IL-4. La depuración
neta de Sat PC de los pulmones de ratones CCSP-IL4
fue 6 veces mayor (60 mol/kg) en los ratones IL-4
que en los ratones de tipo salvaje (10,3 mol/kg). La expresión de
IL-4 en las células Clara incrementó la síntesis y
la depuración de lípido de tensioactivo, estableciendo un
equilibrio nuevo con reservas de tensioactivo incrementado y una
proteinosis alveolar asociada con un incremento selectivo en la
proteína SP-D, demostrando un efecto inesperado
anteriormente de IL-4 en la homeóstasis de
tensioactivo pulmonar y en la regulación de los niveles de
SP-D mediante IL-4.
La SP-D es importante en la
función y desarrollo normal de pulmón. Los ratones
SP-D (-/-) son un modelo para el enfisema. Esto
sugiere a continuación que las mutaciones en el gen o alelos del gen
para SP-D poseen un efecto profundo sobre la
propensión a la enfermedad pulmonar. Por lo tanto, un procedimiento
para identificar las mutaciones o alelos, y una proteína mutante
identifican individuos en riesgo de enfisema, infecciones
pulmonares y un número de otras enfermedades respiratorias. El
ejemplo 18 y el 19 son los mismos protocolos para estas técnicas de
diagnóstico.
Las mutaciones en el gen SP-D es
probable que estén implicadas en los síntomas y en la etiología del
enfisema. Por lo tanto, las mutaciones se identifican mediante
análisis de secuencia de un número de pacientes estadísticamente
significativo. Estas mutaciones se utilizan para producir un ensayo
de diagnóstico. Las mutaciones en el gen SP-D se
detectan de las maneras siguientes: se lleva a cabo un análisis PCR
del gen SP-D utilizando cebadores adecuados. Los
fragmentos de PCR que resultan se analizan mediante SSCP y se
secuencian para determinar la mutación o alelo. De manera
alternativa, la hibridización diferencial de ADN genómico o de ADNc
se utiliza para detectar mutaciones.
Se producen anticuerpos monoclonales o
policlonales que reconocen específicamente la proteína mutante
SP-D o un alelo de la SP-D asociado
con el enfisema u otras enfermedades pulmonares. Estos anticuerpos
se utilizan a continuación para establecer un análisis de
transferencia unido al enzima para la propensión a estas
enfermedades pulmonares. Los anticuerpos del ejemplo 20 se pueden
utilizar para este ensayo.
El ejemplo 20 presenta un protocolo para la
purificación de anticuerpos policlonales o una purificación
adicional de anticuerpos monoclonales utilizando la tecnología
transgénica.
La producción de anticuerpos policlonales
específicos con unos requisitos de reactividad elevados requiere la
purificación extensa del antígeno de interés. Se han desarrollado
anticuerpos policlonales diversos utilizando antígenos purificados
parcialmente para la inyección que han resultado en anticuerpos que
poseen un título elevado con respecto al antígeno de interés y son
además reactivos a las impurezas. El tejido de fase sólida de
ratones transgénicos se han utilizado para eliminar los anticuerpos
no específicos de estos antisueros. La proteína D de tensioactivo
(SP-D) se purificó utilizando una columna de maltosa
con elución de manganeso. La SP-D purificada se
inyectó en conejos de Nueva Zelanda en el adyuvante Freund
incompleto. Los antisueros que resultaron se ensayaron contra el
lavado de pulmón completo en un análisis de transferencia Western,
revelando la unión al SP-D y a otras proteínas.
Estos antisueros se hicieron reaccionar toda la noche con un
homogeneizado de pulmón de fase sólida a partir de un ratón mutante
nulo que no produce ninguna proteína SP-D. El
antisuero se hizo reaccionar contra el lavado de pulmón completo
después de la absorción mostrando reactividades solo contra la
SP-D. Estos antisueros se evaluaron asimismo en
experimentos de inmunohistoquímica que demostraron muy bajas
reactividades a las secciones pulmonares de ratones mutantes nulos
SP-D y reactividades celulares de tipo II muy
específicas en los ratones de control normales. Esta técnica
incrementa grandemente la capacidad de preparar anticuerpos
elevadamente específicos con títulos elevados y elimina la necesidad
de utilizar agentes bloqueadores cuando se utilizan anticuerpos
absorbidos.
Estos anticuerpos se podrían utilizar para el
diagnóstico, purificación e investigación adicional de la proteína
\hbox{SP-D.}
Los resultados anteriores (ejemplo 13) mostraron
que la SP-D posee un papel en la depuración de RSV
de pulmones de ratones. Por lo tanto, fue de interés ver si la
SP-D poseía un papel similar en la depuración de
otros virus.
Los ratones SP-D (-/-) se
infectaron intratraquealmente con el virus de la gripe A y de forma
separada con adenovirus. Se evaluaron los títulos víricos y la
inflamación del pulmón en ratones SP-D (-/-) y en
ratones de tipo salvaje. Los títulos de la gripe A en los
homogeneizados de pulmón incrementaron significativamente en
SP-D (-/-)comparados con los de los ratones de tipo
salvaje a 3 y 5 días después de la administración. Los números
incrementados significativamente de células inflamatorias se
encontraron en el fluido BAL de ratones SP-D (-/-)
con un mayor porcentaje de PMNs comparada con los ratones de tipo
salvaje, después de la infección de la gripe A.
Por lo tanto, los ratones deficientes en
SP-D son propensos a la infección vírica de la gripe
A in vivo y desarrollan respuestas inflamatorias de pulmón
notablemente incrementadas al virus y la SP-D se une
al adenovirus in vitro y jugará probablemente un papel en la
depuración de adenovirus in vivo también.
El tensioactivo deficiente en
SP-D ha incrementado los intermedios de
oxígeno-lípido (reactantes lipídicos tóxicos). De
este modo, la SP-D inhibe las especies lipídicas
reactivas en el espacio aéreo y puede poseer beneficios potenciales
para la mejora de la enfermedad mediada por oxígeno reactivo, daño
pulmonar inducido químicamente, oxígeno, ozono, agentes
quimioterapéuticos y enfermedades inflamatorias, daño de
reperfusión, ahogo, transplante y rechazo.
Las especies de oxígeno reactivas se midieron
mediante el kit para el ensayo de hidroperóxido lipídico (LPD)
(Caymen chemicals, cat. nº 705002). El tensioactivo se aisló de
ratones SP-D con inactivación génica y de tipo
salvaje de mediante lavado pulmonar y se midieron los productos de
peroxidación de lípido utilizando reacciones redox con iones
ferrosos. No se detectaron peróxidos lipídicos en el tensioactivo de
ratones de tipo salvaje (n=4) pero se detectaron fácilmente en el
fluido de lavado de ratones SP-D (-/-) 0,896 \pm
0,305 ng del producto de peroxidación lipídico/mg de fosfolípido
(n=4).
Los resultados anteriores (ejemplo 13) mostraron
que la SP-D posee un papel en la depuración de RSV
de los pulmones de ratones. Por lo tanto, fue de interés ver si la
SP-D posee un papel similar en la depuración de
otros virus.
Los ratones SP-D (-/-) se
infectaron intratraquealmente con el virus de la gripe A y de forma
separada con adenovirus. Se evaluaron los títulos víricos y la
inflamación del pulmón en ratones SP-D (-/-) y en
ratones de tipo salvaje. Los títulos de la gripe A en los
homogeneizados de pulmón se incrementaron significativamente en los
ratones SP-D (-/-) comparados con los de los ratones
de tipo salvaje a los 3 y 5 días después de la administración. Los
números incrementados significativamente de las células
inflamatorias se encontraron en el fluido BAL de ratones
SP-D (-/-) con un porcentaje superior de los PMNs
comparado con el de los ratones de tipo salvaje, después de la
infección con la gripe A.
Por lo tanto, los ratones deficientes en
SP-D son propensos a la infección vírica de la gripe
A in vivo y desarrollan respuestas inflamatorias de pulmón
notablemente incrementadas al virus y la SP-D se une
al adenovirus in vitro y desempeñará probablemente un papel
en la depuración de adenovirus in vivo también.
Claims (26)
1. Utilización de una formulación de aerosol que
comprende una proteína SP-D de mamífero aislada en
la preparación de un medicamento para incrementar la depuración de
partículas víricas causadas por un adenovirus de pulmón.
2. Utilización según la reivindicación 1, en la
que dicho medicamento puede reducir los síntomas de la enfermedad
vírica.
3. Utilización según la reivindicación 1, en la
que dicho medicamento puede reducir el título vírico.
4. Utilización según la reivindicación 3, en la
que dicha enfermedad vírica es una enfermedad vírica pulmonar.
5. Utilización según la reivindicación 4, en la
que dicho medicamento puede reducir la inflamación pulmonar.
6. Utilización según la reivindicación 4, en la
que dicho medicamento puede reducir el título vírico pulmonar.
7. Utilización según la reivindicación 4, en la
que dicho medicamento es adecuado para ser administrado mediante
administración pulmonar.
8. Utilización según la reivindicación 7, en la
que dicha administración pulmonar es por inhalación.
9. Utilización según la reivindicación 7, en la
que dicho medicamento comprende además por lo menos un compuesto
seleccionado de entre el grupo constituido por: un broncodilatador,
una antihistamina, epinefrina, un antibiótico y pentamidina.
10. Utilización según la reivindicación 7, en la
que dicho medicamento es adecuado para administrarse en una dosis
única.
11. Utilización según la reivindicación 7, en la
que dicho medicamento es adecuado para administrarse en dosis
múltiples.
12. Utilización según la reivindicación 7, en la
que dicho medicamento se prepara en una formulación de liposoma.
13. Utilización según la reivindicación 1, en la
que dicha SP-D se expresa a partir de un vector.
14. Formulación de aerosol que comprende una
proteína SP-D de mamífero aislada para el incremento
de la depuración de partículas víricas causadas por un adenovirus
de pulmón.
15. Formulación de aerosol según la
reivindicación 14, en la que dicha formulación puede reducir los
síntomas de la enfermedad vírica.
16. Formulación de aerosol según la
reivindicación 14, en la que dicha formulación puede reducir el
título vírico.
17. Formulación de aerosol según la
reivindicación 16, en la que dicha enfermedad vírica es una
enfermedad vírica pulmonar.
18. Formulación de aerosol según la
reivindicación 17, en la que dicha formulación puede reducir la
inflamación pulmonar.
19. Formulación de aerosol según la
reivindicación 17, en la que dicha formulación puede reducir el
título vírico pulmonar.
20. Formulación de aerosol según la
reivindicación 17, en la que dicha formulación es adecuada para ser
suministrada mediante administración pulmonar.
21. Formulación de aerosol según la
reivindicación 20, en la que dicha administración pulmonar es por
inhalación.
22. Formulación de aerosol según la
reivindicación 20, en la que dicha formulación comprende además por
lo menos un compuesto seleccionado de entre el grupo constituido
por: un broncodilatador, una antihistamina, epinefrina, un
antibiótico y pentamidina.
23. Formulación de aerosol según la
reivindicación 20, en la que dicha formulación es adecuada para
administrarse en una dosis única.
24. Formulación de aerosol según la
reivindicación 20, en la que dicha formulación es adecuada para
administrarse en dosis múltiples.
25. Formulación de aerosol según la
reivindicación 20, en la que dicha formulación preparada en una
formulación de liposoma.
26. Formulación de aerosol según la
reivindicación 14, en la que dicha SP-D se expresa a
partir de un vector.
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