ES2307400B1 - Sensor optico de glucosa basado en la deposicion de la enzima gdh (glucosa deshidrogenasa) y su coenzima nad+ (nicotinamida adenina dinucleotico) en un soporte de fibra optica estrechada. - Google Patents

Sensor optico de glucosa basado en la deposicion de la enzima gdh (glucosa deshidrogenasa) y su coenzima nad+ (nicotinamida adenina dinucleotico) en un soporte de fibra optica estrechada. Download PDF

Info

Publication number
ES2307400B1
ES2307400B1 ES200602514A ES200602514A ES2307400B1 ES 2307400 B1 ES2307400 B1 ES 2307400B1 ES 200602514 A ES200602514 A ES 200602514A ES 200602514 A ES200602514 A ES 200602514A ES 2307400 B1 ES2307400 B1 ES 2307400B1
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
glucose
optical
optical fiber
fiber
enzyme
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
ES200602514A
Other languages
English (en)
Other versions
ES2307400A1 (es
Inventor
Jesus Maria Corres Sanz
Ignacio Raul Matias Maestro
Francisco Javie Arregui San Martin
Anai Sanz Corres
Miren Edurne Baroja Fernandez
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Consejo Superior de Investigaciones Cientificas CSIC
Universidad Publica de Navarra
Original Assignee
Consejo Superior de Investigaciones Cientificas CSIC
Universidad Publica de Navarra
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Consejo Superior de Investigaciones Cientificas CSIC, Universidad Publica de Navarra filed Critical Consejo Superior de Investigaciones Cientificas CSIC
Priority to ES200602514A priority Critical patent/ES2307400B1/es
Publication of ES2307400A1 publication Critical patent/ES2307400A1/es
Application granted granted Critical
Publication of ES2307400B1 publication Critical patent/ES2307400B1/es
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/26Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving oxidoreductase
    • C12Q1/32Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving oxidoreductase involving dehydrogenase

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Measurement Of The Respiration, Hearing Ability, Form, And Blood Characteristics Of Living Organisms (AREA)
  • Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
  • Investigating Or Analysing Materials By Optical Means (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Sensor óptico de glucosa basado en la deposición de la enzima GDH (glucosa deshidrogenasa) y su coenzima NAD+ (nicotinamida adenina dinucleótido) en un soporte de fibra óptica estrechada. El sensor de glucosa presentado consiste en la deposición de la enzima GDH y NAD en el extremo de una fibra óptica estándar mediante el método ESA. El extremo de la fibra óptica puede estar estrechado para mejorar la sensibilidad del sensor.
Su funcionamiento se basa en la variación de la potencia óptica a la salida de la fibra óptica cuando se produce una reacción bioquímica originada por la presencia de glucosa en disolución. Dicha variación puede provocar un aumento de absorbancia o de fluorescencia según el rango de longitud de onda del detector.

Description

Sensor óptico de glucosa basado en la deposición de la enzima GDH (glucosa deshidrogenasa) y su coenzima NAD+ (nicotinamida adenina dinucleótido) en un soporte de fibra óptica estrechada.
Campo de la invención
La presente invención se puede incluir en el sector de los sensores ópticos para la medida de glucosa, tanto para su detección como para su cuantificación en disoluciones o fluidos.
Estado de la técnica
La fabricación y el desarrollo de sensores de fibra óptica ha sido objeto de especial atención en los últimos veinte años ["Optical Fiber Sensor Technology", K.T.V. Grattan and B.T. Meggitt, Chapman & Hall Ed. 1-9, 1995; "Optical Fiber Sensor Technology. Vol. 2: Devices and Technology", K.T.V. Grattan and B.T. Meggitt, Chapman & Hall Ed. 1-35, 1998; "Optical Fiber Sensor Technology. Vol. 3: Applications and Systems", K.T.V. Grattan and B.T. Meggitt, Kluwer Academic Publishers Ed. Pp 257-305, 1999; "Optical Fiber Sensor Technology. Vol. 4: Chemical and Environmental Sensing", K.T.V. Grattan and B.T. Meggitt].
Los sensores basados en fibra óptica tienen la ventaja de un pequeño tamaño, incluso por debajo de una micra cuando se usa fibra estrechada, lo que permite realizar medidas usando un volumen de muestra muy pequeño. Esto abre la posibilidad de la medida de glucosa intracelular. ["Optochemical Glucose Sensing in Volume Limited Samples", IEEE-LEOS Vol. 12 Nr. 2 April 1998, Kerry P. McNamara and Zeev Rosenzweig]. También pueden ser aptos para la medida continua de glucosa en el desarrollo de un páncreas artificial ["Continuous Subcutaneous Glucose Monitoring in Diabetic Patients: A multicenter analysis" Diabetes Care, Vol. 25, Nr. 2, Feb. 2002, 347-52, Alberto Maran et al.].
Los sensores de glucosa construidos con fibra óptica suelen estar basados en la deposición de una enzima sobre la superficie de dicha fibra. Dicha enzima produce una reacción bioquímica únicamente en presencia de glucosa y los cambios en la absorbancia o fluorescencia generados por los productos de dicha reacción sirven para medir la concentración de glucosa. [Fluorescence-based glucose sensors, Biosensors and Bioelectronics Volume 20, Issue 12, John C. Pickupa, Faeiza Hussaina, Nicholas D. Evansa, Olaf J. Rolinskib and David J.S. Birchb]. Generalmente se ha empleado la enzima glucosa oxidasa (GOD) debido a sus buenas características en cuanto a estabilidad. ["Optochemical Glucose Sensing in Volume Limited Samples", IEEE-LEOS Vol. 12 Nr. 2 April 1998, Kerry P. McNamara and Zeev Rosenzweig]. Sin embargo, los sensores basados en GOD pueden presentar sensibilidad cruzada con la concentración de Oxígeno. ["A fast responding fibre optic glucose biosensor based on an oxygen optrode". Biosens. Bioelectron. 1990;5(2):137-48. Schaffar BP, Wolfbeis OS].
Mediante el uso de la enzima Glucosa Deshidrogenasa se minimiza la sensibilidad cruzada con el oxígeno, lo que da sensores más específicos. Varios sensores de fibra óptica se han fabricado usando esta enzima ["Fiber-optic biosensors - an overview" Anal. Bioanal. Chem. (2002) 372:664-682, María Dolores Marazuela, María Cruz Moreno-Bondi; "A thermophilic apoglucose dehydrogenase as a nonconsuming glucose sensor". Biochem. Biophys. Res. Commun. 274, 727-731 D'Auria, S., Di Cesare, N., Gryczynski, Z., Rossi, M., Lakowicz, J.R., 2000; "Optical chemo- and biosensors for use in clinical applications" Sensors and Actuators B 40 (1997) 71-77, C. Müller, B. Hitzmann, F. Schubert, T. Scheper].
Los biosensores de segunda generación ["Second generation biosensors", "Biosensors and Bioelectronics" Volume 6, Issue 3, 1991, Pages 245-253. Frieder W. Scheller, Florian Schubert, Barbara Neumann, Dorothea Pfeiffer, Rainer Hintsche, Ina Dransfeld, Ulla Wollenberger, Reinhard Renneberg and Axel Warsinke] consisten en dispositivos en los cuales dentro de la capa sensible se depositan coenzimas y otros reactivos junto a las propias enzimas. En este sentido, se han construido sensores de segunda generación basados en tecnología electrónica (sensores amperométricos) mediante la deposición de capas finas sobre láminas de silicio o de otros metales ["Amperometric thin film biosensors based on glucose dehydrogenase and Toluidine Blue O as catalyst for NADH electrooxidation". Biosensors & Bioelectronics 10 (1995) 693-704 L.I. Boguslavsky, L. Geng, I.P. Kovalev, S.K. Salmi, Z. Xu & T.A. Skotheim; "Amperometric biosensors based on dehydrogenase/NAD and heterocyclic quinones", Biosensors & Bioelectronics Vol. 11, No. 12, pp. 1267-1275, 1996, L. Geng, L. I. Boguslavskytt, I. P. Kovalevt, S. K. Sahni, H. Kalash & T.A. Skotheimt; "Polymeric biosensors based on oxidation of NADH" Biomedical Engineering, Applications Basis Communications, vol. 4, n. 4, 25 Aug. 1992, p 384-8 Lan, H.L. Okamoto, Y.; Karan, H.I.; Skotheim, T.A.].
Descripción de la invención Breve descripción de la invención
La presente invención se refiere a sensores de segunda generación, útiles para la detección y/o cuantificación del nivel de glucosa en diversas disoluciones o fluidos, incluido sangre, que consisten en dispositivos cuya composición está comprendida por fibra óptica estrechada y una capa sensible donde se depositan coenzimas (NAD^{+}) y otros reactivos junto a las propias enzimas (GDH). Por lo tanto, los sensores de glucosa referidos en la presente invención son sensores ópticos de segunda generación a diferencia de los sensores de segunda generación conocidos los cuales están basados en tecnología electrónica, es decir, son sensores amperométricos.
El sensor de glucosa de la invención es un sensor óptico en reflexión de segunda generación, no amperométrico, basado en la disminución que experimenta la potencia óptica a la salida de la fibra óptica cuando la coenzima depositada NAD+ se reduce y se convierte en NADH. El NADH presenta alta absorbancia en la parte ultravioleta del espectro, presentando un máximo a 340 nm y fluorescencia con un máximo a 450 nm.
El sensor consiste en una fibra óptica, recubierta de una capa sensible, la cual ofrece ventajas respecto a los sensores amperométricos existentes en el estado de la técnica ya que son inmunes a interferencias electromagnéticas, son seguros en su uso "in vivo" porque son de naturaleza pasiva (no conduce corriente eléctrica), la señal puede recorrer largas distancias con muy bajas pérdidas, permite analizar volúmenes de muestra extremadamente pequeños y muy localizados (se mide en la punta de la fibra con un diámetro de micras). Sobre el extremo de la fibra óptica se deposita mediante la técnica de auto-ensamblado electrostático (ESA) [Multilayer Thin Films, Wiley-VCH, 2003, G. Decher, J. B. Schlenoff] una combinación de polianiones, policationes, enzima (GDH) y coenzima (NAD+) (figura 1). El método ESA permite depositar múltiples capas de espesores nanométricos optimizando el sensado (sensibilidad o tiempo en respuestas), a diferencia de los métodos utilizados en el estado de la técnica para el mismo propósito donde solo se deposita una capa y, por lo tanto, no son tan sensibles.
\vskip1.000000\baselineskip
Descripción de las figuras
Figura 1
Representa el esquema de la cabeza sensora utilizando fibra óptica estrechada con los parámetros de interés.
(1)
Longitud del estrechamiento de la fibra óptica.
(2)
Capa sensible con GDH y NAD.
(3)
Fibra óptica.
(4)
Diámetro de la cintura de la fibra óptica estrechada.
(5)
Ampliación de la capa sensible.
(6)
Superficie de la fibra tratada.
(7)
PEI (Polietilenimina)
(8)
PSS (Poliestireno sulfonato)
(9)
GDH.
(10)
NAD+.
(11)
Espesor de la capa sensible.
\vskip1.000000\baselineskip
Figura 2
Representa la estructura del sensor de glucosa diseñado.
(1)
Zona estrechada de la fibra óptica.
(2)
Fibra óptica.
(3)
Acoplador UV 2x1.
(4)
Fuente de luz ultravioleta.
(5)
Detector óptico.
(6)
Procesador de señal.
(7)
Cubeta con solución de Glucosa.
\newpage
Figura 3
Representa la variación de la potencia óptica recibida en el detector cuando se introduce en una cubeta con glucosa en disolución 5 mM de un sensor típico: [PEI/PSS]5 + [PEI/GDH+PEIINAD] 15.
(1)
Potencia óptica recibida (cuentas).
(2)
Tiempo (segundos).
(3)
Instante en que se produce la inyección de glucosa.
Puede observarse el cambio que experimenta la potencia óptica a la salida de la fibra óptica cuando se inyecta glucosa en una cubeta con una concentración de 5 mM.
Descripción detallada de la invención
El sensor de glucosa de la invención es un sensor óptico en reflexión de segunda generación, no amperométrico, basado en la disminución que experimenta la potencia óptica a la salida de la fibra óptica cuando la coenzima depositada NAD+ se reduce y se convierte en NADH. El NADH presenta alta absorbancia en la parte ultravioleta del espectro, presentando un máximo a 340 nm y fluorescencia con un máximo a 450 nm.
El sensor consiste en una fibra óptica, recubierta de una capa sensible, la cual ofrece ventajas respecto a los sensores amperométricos existentes en el estado de la técnica ya que son inmunes a interferencias electromagnéticas, son seguros en su uso "in vivo" porque son de naturaleza pasiva (no conduce corriente eléctrica), la señal puede recorrer largas distancias con muy bajas pérdidas, permite analizar volúmenes de muestra extremadamente pequeños y muy localizados (se mide en la punta de la fibra con un diámetro de micras). Sobre el extremo de la fibra óptica se deposita mediante la técnica de auto-ensamblado electrostático (ESA) [Multilayer Thin Films, Wiley-VCH, 2003, G. Decher, J. B. Schlenoff] una combinación de polianiones, policationes, enzima (GDH) y coenzima (NAD+) (figura 1). El método ESA permite depositar múltiples capas de espesores nanométricos optimizando el sensado (sensibilidad o tiempo en respuestas), a diferencia de los métodos utilizados en el estado de la técnica para el mismo propósito donde solo se deposita una capa y, por lo tanto, no son tan sensibles.
El espesor de la capa sensible, figura 1 (11), y por tanto de la cantidad de NAD+ y GDH depositadas, depende del número de iteraciones del proceso de deposición. Dicho espesor está en el rango de magnitud de nanómetros (10 nm-1000 nm) y éste depende de distintos parámetros fácilmente controlables como la temperatura, PH, tiempos de inmersión, etc.
En la figura 2 se muestra el montaje experimental en reflexión necesario para la medida de glucosa en disolución, figura 2 (7), en la punta de fibra óptica, figura 2 (1). La luz ultravioleta en el rango de 300-400 nm necesaria para excitar el sensor se lanza desde una fuente UV acoplada a fibra óptica, figura 2 (4). Esta fibra se conecta a uno de los brazos de un acoplador UV 2x1 figura 2 (3). Dicha luz sale por otro de los brazos del acoplador y llega a la cabeza sensora figura 2 (1). Cuando tiene lugar la reacción enzimática se produce un cambio en la potencia que retorna por la fibra figura 2 (2) y que se puede medir con un detector óptico figura 2 (5). El detector transforma la potencia óptica en una magnitud eléctrica que es procesada mediante un computador, figura 2 (6).
La ecuación de Lambert-Beer se emplea para cuantificar la concentración de glucosa ya que la absorbancia que se produce en un determinado medio es proporcional a la concentración. Tanto el rango como la sensibilidad pueden modificarse estrechando el extremo de la fibra óptica así como variando el número de capas de material sensible depositado.
Por lo tanto la presente invención se refiere, en un primer aspecto, a un sensor óptico de glucosa cuya estructura comprende fibra óptica y una capa sensible donde se deposita la enzima GHD y la coenzima NAD+ mediante el método ESA.
En una realización preferida de la presente invención se refiere a un sensor óptico de glucosa cuya estructura comprende fibra óptica estrechada y una capa sensible donde de deposita la enzima GHD y la coenzima NAD+ mediante el método ESA donde el estrechamiento conseguido en la cintura de la fibra óptica es menor a 200 micras.
Otro modo de realización de la presente invención se refiere a un sensor óptico de glucosa cuya estructura comprende fibra óptica estrechada y una capa sensible donde de deposita la enzima GHD y la coenzima NAD+ mediante el método ESA donde el estrechamiento conseguido en la cintura de la fibra óptica está dentro del rango de 10-20 micras.
Un segundo aspecto de la presente invención se refiere al uso del sensor óptico de glucosa cuya estructura comprende fibra óptica y una capa sensible donde se deposita la enzima GHD y la coenzima NAD+ mediante el método ESA, para la detección y/o cuantificación de los niveles de glucosa en una disolución o fluido.
\newpage
Una forma preferida de realización de la presente invención se refiere a un sensor óptico de glucosa, cuya estructura comprende fibra óptica estrechada y una capa sensible donde se deposita la enzima GHD y la coenzima NAD+ mediante el método ESA para la detección y/o cuantificación de los niveles de glucosa en una disolución o fluido donde el estrechamiento conseguido en la cintura de la fibra óptica es menor a 200 micras.
Otro modo preferido de realización de la presente invención se refiere al uso del sensor óptico de glucosa cuya estructura comprende fibra óptica estrechada y una capa sensible donde se deposita la enzima GHD y la coenzima NAD+ mediante el método ESA para la detección y/o cuantificación de los niveles de glucosa en una disolución o fluido donde el estrechamiento conseguido en la cintura de la fibra óptica está dentro del rango de 10-20 micras.
Un tercer aspecto de la presente invención se refiere a un método de detección y/o cuantificación de los niveles de glucosa que comprende la aplicación de la fibra óptica, correspondiente a un sensor óptico cuya estructura comprende fibra óptica y una capa sensible donde se deposita la enzima GHD y la coenzima NAD+ mediante el método ESA, en una disolución o fluido.
Una forma preferida de realización de la presente invención se refiere a un método de detección y/o cuantificación de los niveles de glucosa que comprende la aplicación de la fibra óptica, correspondiente a un sensor óptico cuya estructura comprende fibra óptica estrechada en un rango inferior a 200 micras y una capa sensible donde se deposita la enzima GHD y la coenzima NAD+ mediante el método ESA, en una disolución o fluido.
El cuarto y último aspecto preferido de la presente invención se refiere a un método de detección y/o cuantificación de los niveles de glucosa que comprende la aplicación de la fibra óptica, correspondiente a un sensor óptico cuya estructura comprende fibra óptica estrechada donde el estrechamiento conseguido en la cintura de la fibra óptica está dentro del rango de 10-20 micras y una capa sensible donde se deposita la enzima GHD y la coenzima NAD+ mediante el método ESA, en una disolución o fluido.
En una realización preferida de la presente invención el fluido en el que se realiza la detección y/o cuantificación de los niveles de glucosa es un fluido biológico, particularmente sangre.
Los ejemplos siguientes ilustran y apoyan la invención y no deben ser considerados limitativos del alcance de la misma.
Ejemplos de realización de la invención Ejemplo 1 Construcción del sensor de presión de fibra óptica
La construcción del sensor de presión de fibra óptica se lleva a cabo en cuatro etapas. Primero se realiza el estrechamiento o adelgazamiento de una fibra óptica multimodo de 200 micras, figura 1 (1) y figura 2 (3). Para ello, se utiliza una máquina empalmadora de fibra óptica Ericsson FSU 900 programada de manera que las corrientes de fusión sean lentas y los tiempos de fusión largos. Con ello se consigue que la fibra sea maleable y que no se degrade por el calor. En este punto se procede al estiramiento mecánico de la fibra para conseguir un adelgazamiento figura 1 (3). La fibra óptica se estrecha desde su estado normal (200 micras) hasta un diámetro en el rango de 10 - 20 micras. con un diámetro de cintura entre 10 mm y 20 mm figura 1 (4). En segundo lugar se limpia usando una solución de Acido sulfúrico y peroxido de hidrógeno (70%/30%). En tercer lugar se deposita la capa de material sensible usando la técnica de auto-ensamblado electrostático (ESA). El número de iteraciones del proceso y los parámetros característicos de las disoluciones (concentración, pH, temperatura) determinan la cantidad de enzima y coenzima depositadas y por lo tanto la sensibilidad y velocidad de respuesta del sensor. Por último, la fibra se conecta a un espectrómetro comercial en el rango espectral adecuado (figura 2).
Ejemplo 2 Medición del nivel del glucosa
En el presente ejemplo se procedió a la medición en una cubeta, mediante un sensor típico: [PEI/PSS]5 + [PEI/
GDH+PEI/NAD]15, de la variación de la potencia óptica recibida en el detector cuando se introduce en una cubeta glucosa en disolución 5 mM. La figura 3 ilustra este ejemplo y en ella se puede observar el cambio que experimenta la potencia óptica a la salida de la fibra óptica cuando se inyecta glucosa en una cubeta con una concentración de 5 mM.

Claims (10)

1. Sensor óptico de glucosa cuya estructura comprende fibra óptica y una capa sensible donde se deposita la enzima GHD y la coenzima NAD^{+}.
2. Sensor óptico de glucosa cuya estructura comprende fibra óptica y una capa sensible donde se deposita la enzima GHD y la coenzima NAD^{+}, según la reivindicación 1, donde el depósito de la enzima GHD y la coenzima NAD^{+} se realiza mediante el método ESA.
3. Sensor óptico de glucosa, según la reivindicación 1 ó 2, cuya estructura comprende fibra óptica estrechada donde el estrechamiento de la fibra óptica es menor a 200 micras.
4. Sensor óptico de glucosa, según la reivindicación 3, cuya estructura comprende fibra óptica estrechada donde el estrechamiento de la fibra óptica está dentro del rango de 10-20 micras.
5. Uso de un sensor óptico de glucosa cuya estructura comprende fibra óptica y una capa sensible donde se deposita la enzima GHD y la coenzima NAD^{+} para la detección y/o cuantificación de los niveles de glucosa en una disolución o fluido.
6. Uso de un sensor óptico de glucosa, según la reivindicación 5, cuya estructura comprende fibra óptica estrechada donde el estrechamiento de la fibra óptica es menor a 200 micras.
7. Uso de un sensor óptico de glucosa, según la reivindicación 6, cuya estructura comprende fibra óptica estrechada donde el estrechamiento de la fibra óptica está dentro del rango de 10-20 micras.
8. Método de detección y/o cuantificación de los niveles de glucosa que comprende la aplicación de un sensor óptico cuya estructura comprende fibra óptica y una capa sensible donde se deposita la enzima GHD y la coenzima NAD^{+}, en una disolución o fluido.
9. Método de detección y/o cuantificación de los niveles de glucosa, según la reivindicación 8, que comprende la aplicación de un sensor óptico cuya estructura comprende fibra óptica estrechada donde el estrechamiento de la fibra óptica es inferior a 200 micras.
10. Método de detección y/o cuantificación de los niveles de glucosa, según la reivindicación 9, que comprende la aplicación de un sensor óptico cuya estructura comprende fibra óptica estrechada donde el estrechamiento de la fibra óptica está dentro del rango de 10-20 micras.
ES200602514A 2006-10-03 2006-10-03 Sensor optico de glucosa basado en la deposicion de la enzima gdh (glucosa deshidrogenasa) y su coenzima nad+ (nicotinamida adenina dinucleotico) en un soporte de fibra optica estrechada. Expired - Fee Related ES2307400B1 (es)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ES200602514A ES2307400B1 (es) 2006-10-03 2006-10-03 Sensor optico de glucosa basado en la deposicion de la enzima gdh (glucosa deshidrogenasa) y su coenzima nad+ (nicotinamida adenina dinucleotico) en un soporte de fibra optica estrechada.

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ES200602514A ES2307400B1 (es) 2006-10-03 2006-10-03 Sensor optico de glucosa basado en la deposicion de la enzima gdh (glucosa deshidrogenasa) y su coenzima nad+ (nicotinamida adenina dinucleotico) en un soporte de fibra optica estrechada.

Publications (2)

Publication Number Publication Date
ES2307400A1 ES2307400A1 (es) 2008-11-16
ES2307400B1 true ES2307400B1 (es) 2009-09-30

Family

ID=39926839

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES200602514A Expired - Fee Related ES2307400B1 (es) 2006-10-03 2006-10-03 Sensor optico de glucosa basado en la deposicion de la enzima gdh (glucosa deshidrogenasa) y su coenzima nad+ (nicotinamida adenina dinucleotico) en un soporte de fibra optica estrechada.

Country Status (1)

Country Link
ES (1) ES2307400B1 (es)

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CO5040209A1 (es) * 1997-10-16 2001-05-29 Abbott Lab Electrodos biosensores mediadores de la regeneracion de cofactores
US6736957B1 (en) * 1997-10-16 2004-05-18 Abbott Laboratories Biosensor electrode mediators for regeneration of cofactors and process for using
RU2413002C2 (ru) * 2004-12-13 2011-02-27 Байер Хелткэр Ллк Самостоятельно ограничивающие размер композиции и тестирующие устройства для измерения содержания анализируемых веществ в биологических жидкостях

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CHUDOVOBA, I. et al.. "{}Basic Principles of Optical Fiber Biosensors and Their Application in Determination of D-Glucose"{}, Chemicke Listy (1996), vol. 90 (5), pp.: 295-306, (resumen) Recuperado de Internet (resumen) CA [en línea] Chemical Abstracts Service, Columbus, Ohio [recuperado el 24.09.2008]. Recuperado de Internet Recuperado de: EPO PAJ Recuperado de STN International, Columbus, Ohio (EE.UU.). N$^{o}$ de acceso de CA 1996:325380. *
LEE, P.J. et al.: "{}Optical Kinetic Biosensor to Measure Glutamate Concentration In Vivo and In Vitro"{} Society for Neuroscience Abstract Viewer and Itinerary Planner (2003), vol. 2003, Abstract No. 326.5, (resumen), BIOSIS [en línea], Thomson Scientific, Philadelphia, PA, USA. Recuperado de: EPOQUENET, E.P.O., [recuperado el 24.09.2008], n$^{o}$ de acceso de BIOSIS PREV200400198126. *
RICKUS, J.L. et al.: "{}Fiber Optic Biosensors for Real Time In Vivo and In Vitro Measurements of Glutamate"{}, Society for Neuroscience Abstract Viewer and Itinerary Planner (2002), vol. 2002, Abstract No. 239.10, (resumen), BIOSIS [en línea], Thomson Scientific, Philadelphia, PA, USA. Recuperado de: EPOQUENET, E.P.O., [recuperado el 24.09.2008], n$^{o}$ de acceso de BIOSIS PREV200300283270. *

Also Published As

Publication number Publication date
ES2307400A1 (es) 2008-11-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Yu et al. A novel optical fiber glucose biosensor based on carbon quantum dots-glucose oxidase/cellulose acetate complex sensitive film
Kumar et al. Recent optical sensing technologies for the detection of various biomolecules
He et al. Fluorescence‐amplifying detection of hydrogen peroxide with cationic conjugated polymers, and its application to glucose sensing
Cordek et al. Direct immobilization of glutamate dehydrogenase on optical fiber probes for ultrasensitive glutamate detection
Cox et al. Fluorescent DNA hybridization probe preparation using amine modification and reactive dye coupling
Ge et al. Dual-labeled glucose binding protein for ratiometric measurements of glucose
Yotter et al. Sensor technologies for monitoring metabolic activity in single cells-part I: optical methods
Pilevar et al. Tapered optical fiber sensor using near-infrared fluorophores to assay hybridization
EP3004385A2 (en) Nanopore-based nucleic acid analysis with mixed fret detection
US20150232913A1 (en) Biosensing systems and methods for assessing analyte concentrations
Liyanage et al. Label-free tapered optical fiber plasmonic biosensor
Li et al. All-fiber all-optical quantitative polymerase chain reaction (qPCR)
Wang et al. A complementary-DNA-enhanced fiber-optic sensor based on microfiber-assisted Mach-Zehnder interferometry for biocompatible pH sensing
CN109557051B (zh) 增敏型microRNA光纤传感装置及制作、测量方法
US10024797B2 (en) Biosensing systems for measurement of lactose
Bhaiyya et al. Miniaturized electrochemiluminescence platform with laser-induced graphene-based single electrode for interference-free sensing of dopamine, xanthine, and glucose
Amin et al. DNA thin film coated optical fiber biosensor
ES2307400B1 (es) Sensor optico de glucosa basado en la deposicion de la enzima gdh (glucosa deshidrogenasa) y su coenzima nad+ (nicotinamida adenina dinucleotico) en un soporte de fibra optica estrechada.
Rickelt et al. Etching of multimode optical glass fibers: A new method for shaping the measuring tip and immobilization of indicator dyes in recessed fiber-optic microprobes
Corres et al. Fiber optic glucose sensor based on bionanofilms
JPH0695955B2 (ja) 酵素基質濃度の測定方法とその方法に用いる光学センサ
Anders et al. Biotechnological applications of fiber-optic sensing: multiple uses of a fiber-optic fluorimeter
Jia et al. A localized surface plasmon resonance DNA biosensor based on gold nanospheres coated on the tip of the fiber
Kuswandi et al. Recent advances in optical DNA biosensors technology
Ahmad et al. A compact fibre-based fluorescence sensor

Legal Events

Date Code Title Description
EC2A Search report published

Date of ref document: 20081116

Kind code of ref document: A1

FD2A Announcement of lapse in spain

Effective date: 20180912