ES2213052T3 - Extractos de aceite de vetiver como agente repelente y toxico contra las termitas. - Google Patents
Extractos de aceite de vetiver como agente repelente y toxico contra las termitas.Info
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Abstract
Un método para proteger un material de la infestación de termitas, que comprende tratar el material con una composición que comprende una cantidad eficaz de un compuesto seleccionado a partir del grupo que consiste en nootkatona, zizanol y biciclovetivenol, en el que dicha composición está libre de aceite de vetiver y en el que el material tratado repele o mata termitas sustancialmente más que lo hace otro material idéntico que no se ha tratado con la composición.
Description
Extractos de aceite de vetiver como agente
repelente y tóxico contra las termitas.
El desarrollo de este invento se patrocinó
parcialmente por el Gobierno bajo la subvención núm.: USDA/ARS
58-6435-8-084 del
Departamento de Agricultura. El Gobierno tiene ciertos derechos en
este invento.
Este invento se refiere a un método para repeler
termitas subterráneas usando ciertos extractos de aceite de vetiver,
por ejemplo nootkatona, \alpha-cedreno, y una
combinación de zizanol, y biciclovetivenol.
La termita subterránea de Formosa, Coptotermes
formosanus Shiraki, es un insecto nocivo mundial principal que
ataca tanto a árboles vivos como a madera estructural. A diferencia
de otras termitas subterráneas, la termita de Formosa puede
establecer una colonia que no toca el suelo.
La Coptotermes formosanus es nativa del
sudeste de Asia, pero también se encuentra ahora en Hawai, a lo
largo de la costa atlántica suroriental de los Estados Unidos y en
el Golfo Sur de los Estados Unidos. Descubierta por primera vez en
los Estados Unidos por operadores de control de insectos nocivos en
1965, la C. formusanus ha expandido gradualmente su campo
geográfico. El mayor lugar individual de C. formosanus en los
Estados Unidos está en el sur de Louisiana, con fuertes
infestaciones en el Lago Charles y Nueva Orleáns. La C.
formosanus puede en algunos casos desplazar a la
Reticulitermes spp nativa.
Se han usado tres métodos principales en el
pasado para controlar las Coptotermes: (1) barreras químicas
y físicas para evitar que las termitas ataquen la madera, (2)
conservantes y termicidas de madera usados para proteger la madera
infestada o susceptible, y (3) destrucción de una colonia de
termitas mediante excavación del nido. Véase, por ejemplo, las
Patentes EE.UU. núms. 4.921.696; 5.303.523; 5.609.879; 5.802.779 y
5.874.097. El uso extensivo de barreras químicas y termicidas han
generado una preocupación pública por la seguridad
medioambiental.
La búsqueda de un nuevo repelente o termicida es
difícil porque estudios han mostrado que las termitas muestran una
sensibilidad inesperada a los productos químicos, sensibilidad que
se diferencia de la de otros insectos. Por ejemplo, se ha mostrado
que el fenoxietanol es una sustancia rastreadora; y el naftaleno, un
veneno para la mayoría de los insectos, se encontró que podían
usarse como un fumigante de termitas para sus nidos a
concentraciones que matarían hormigas rojas. Véase la Patente EE.UU.
núm. 5.874.097; J. Chen et al., "Isolation and
identification of 2-phenoxyethanol from a ballpoint
pen as a trail-following substance of
Coptotermes formosanus Shiraki and Reticulitermes
sp.", J. Entomol. Sci., volumen 33, pp. 97-105
(1998); y J. Chen et al., "Termites fumigate their nests
with naphthalene", Nature, volumen 392, pp. 558 (1998).
También se han descrito repelentes químicos
naturales de termitas. Se ha encontrado que las hojas maduras de
Cinnamomun osmophloeum Kaneh. y C. zeylanicum B1
proporcionan resistencia a las termitas. Los componentes principales
de aceite extraído de estas dos especies fueron aldehído cinnámico y
eugenol, respectivamente, exhibiendo el eugenol la mayor actividad
de resistencia a las termitas. Véase Tien-shu Lin
et al., "The effects of Cinnamomum spp. oils on the
control of the termite Coptotermes formosanus Shiraki",
Taiwan For. Res. Inst. New Series, volumen 10, pp.
459-464 (1995). Adicionalmente, se encontró que las
maderas de Cedro de Alaska, secuoya, y teca eran resistentes a las
termitas subterráneas de Formosa. Aunque las termitas se alimentaron
en las maderas, fue solo en una extensión muy limitada. Véase J.K.
Grace, "Natural resistance of Alaska-cedar,
redwood, and teak to Formosan subterranean termites", "Forest
Products Journal", volumen 44, pp. 41-45 (1994);
y R. P. Adams, "Cedar Wood Oil - Analyses and Properties", en
Modern Methods of Plant Analysis - Oils and Waxes, H.F. Linskens y
J.F. Jackon, eds., Springer Verlag, pp. 159-173
(1991).
El documento JP 06 016517 A describe un repelente
de termitas que contiene aceites esenciales de plantas,
particularmente aceites esenciales de vetiver y/o pachulí,
encerrados en microcápsulas.
T. Kinyanjui et al, Chemosphere, volumen
41, núm. 7.2000, páginas 1071-1074, describe los
componentes del Juniperus procera como compuestos antitermitas
potenciales.
Yatagai et al, Mokuzia Gakkaishi (1991),
37(4), 345-51, investiga las actividades
termicidas de los aceites esenciales y compuestos extractivos
procedentes de la madera pantanosa de yakusugi, una variedad de
Cryptomeria japonica.
El pasto vetiver (Vetiveria zizanioides),
una planta de rápido crecimiento nativa de India, pertenece al mismo
grupo de la familia de pasto que incluye maíz, sorgo, caña de azúcar
y hierba limón. El vetiver se usa para prevenir la erosión del suelo
porque las raíces crecen extremadamente rápido. Véase Vetiver Grass:
A Thin Green Line Against Erosion, Board on Science and Technology
for International Development, National Research Council, National
Academy Press, Washington, D.C., 171 pp. (1993). En India, las
raíces de vetiver se tejen en esteras, cestas, abanicos, sacos y
adornos. Las esteras tejidas se cree que proporcionan protección de
los insectos nocivos, además de su agradable fragancia. Aunque las
raíces secas se han usado para repeler polillas, piojos y chinches,
las termitas se supone que comen pasto vetiver. La caña de azúcar,
un miembro de la misma familia de pasto, se conoce incluso por ser
un alimento preferido de la termita subterránea de Formosa. Véase
Vetiver Grass: A Thin Green Line Against Erosion, p. 63 y 81 (1993);
y J. Chen et al., "Determination of feeding preference of
Formosan subterranean termite (Coptotermes formosanus
Shiraki) for some amino acid additives", J. Chem. Ecol., volumen
23, pp. 2359-2369 (1996). A pesar de este
conocimiento de la alimentación de la termita, se ha especulado con
sólidas bandas de pasto vetiver para bloquear potencialmente a las
termitas, hormigas rojas, u otros insectos subterráneos insidiosos,
porque se conocen otros insectos que evitan el aceite de vetiver y
las raíces de vetiver. Véase Vetiver Grass: A Thin Green Line
Against Erosion, pp. 24, 28, 80 y 92 (1993).
El aceite extraído de las raíces se usa en la
industria del jabón y perfume por su agradable y persistente
fragancia. Véase la Patente EE.UU. núm. 4.937.073. El aceite de
vetiver se conoce por ser una mezcla compleja de más de 300
compuestos, más de 150 de los cuales son compuestos
sesquiterpenoides. Véase P. Weyerstahl et al., "New
sesquiterpene ethers from vetiver oil", Liebigs Ann., pp.
1195-1199 (1996); N.H. Andersen, "The structures
of zizanol and vetiselinenol", Tetrahedron Letters, volumen 21,
pp. 1755-58 (1970); R.M. Coates et al.,
"The crystal structure of khusimol
\rho-bromobenzoate", Chemical Communications,
pp. 999 1000 (1969). El aceite de vetiver se conoce por repeler
moscas y cucarachas. Los ingredientes en el aceite de
vetiverpresentados para repeler insectos son las cetonas -
\alpha-vetivona, \beta-vetivona,
cusimona; y los aldehídos - zizanal y epizizanal. Véase Vetiver
Grass: A Thin Green Line Against Erosion, p. 80 y 92 (1993); y Jain
et al., "Insect Repellents from Vetiver Oil: I. Zizanal and
Epizizanal", Tetrahedron Letters, volumen 23, pp.
4639-4642 (1982). Otros componentes del aceite de
vetiver son zizanol (o cusimol), biciclovetivenol y
\alpha-cedreno. Véase N. Andersen, "Biogenetic
implications of the antipodal sesquiterpenes of vetiver oil",
Phytochemistry, volumen 9, pp. 145-151 (1970); R.M.
Coates et al., "The crystal structure of khusimol
\rho-bromobenzoate", Chemical Communications,
Com. 1099, pp. 999-1000 (1969); y R. Kaiser et
al., "Biogenetically significant components in vetiver
oil", Tetrahedron Letters, volumen 20, pp.
2009-2012 (1972).
La nootkatona, o
4,4a,5,6,7,8-hexahidro-6-isopropenil-4,4a-dimetil-2(3H)-naftalenona,
es una cetona de sesquiterpeno ligeramente acre encontrada en el
aceite del cedro amarillo de Alaska (Chamaecyparis
nootkatensis) y en un gran número de aceites cítricos,
especialmente aceite de pomelo (Citrus pavadisi). La
nootkatona se usa ampliamente en las industrias de perfumería y
aromas, siendo esencialmente no tóxica para los seres humanos. Véase
las Patentes EE.UU. núms. 3.835.192 y 5.847.226; H. Erdtman et
al., "The Chemistry of the Natural Order Cupressales XVIII:
Nootkatone, a new sesquiterpene type hydrocarbon from the heartwood
of Chamaecyparis nootkatensis (Lamb.) Spach.", Acta Chem.
Scand., volumen 11, pp. 1157 (1957); y H. Erdtman et al.,
"The Chemistry of the Natural Order Cupressales 46. The structure
of nootkatone", Acta Chem. Scand., volumen 16, pp. 1311 (1962).
La nootkatona también se ha identificado como un componente
minoritario del aceite de vetiver. Véase la Patente EE.UU. núm.
4.937.073; y N.H. Andersen et al., "Prezizaene and the
biogenesis of zizaene", Chemistry and Industry, pp.
62-63 (1971); N. Andersen et al.,
"Biogenetic implications of the antipodal sesquiterpenes of
vetiver oil", Phytochemistry, volumen 9, pp.
145-151 (1970); y R. Kaiser et al.,
"Biogenetically significant components in vetiver oil",
Tetrahedron Letters, volumen 20, pp. 2009-2012
(1972). La estructura de la nootkatona se muestra debajo:
Se ha descubierto que ciertos extractos de aceite
de vetiver son repelentes y venenos significativos de termitas. Se
han probado la nootkatona, el \alpha-cedreno, el
zizanol y el biciclovetivenol. Se ha mostrado que la nootkatona
disminuye significativamente el consumo de alimento, disminuye el
comportamiento tunelador, y aumenta la mortalidad en las termitas.
La nootkatona es un repelente y veneno eficaz de termitas, o bien
por si mismo o como un añadido a otros sustratos, incluyendo abonos
hechos de raíces de pasto vetiver o productos de madera. La
nootkatona puede usarse también para proteger la madera de
construcción del ataque de las termitas subterráneas de Formosa. La
nootkatona como un repelente no es tóxico para los seres humanos y
otros mamíferos y es medioambientalmente seguro. Además, se encontró
que el \alpha-cedreno es un repelente débil de
termitas; y se encontró que la combinación de zizanol y
biciclovetivenol es tanto un repelente como un veneno de
termitas.
La Figura 1 ilustra el consumo medio de papel de
filtro por las termitas a medida que se aumenta la concentración de
nootkatona en el sustrato.
La Figura 2 ilustra la mortalidad media de
termitas trabajadoras y soldados a medida que se aumenta la
concentración de nootkatona en el sustrato.
La Figura 3 ilustra la longitud media del túnel
cavado por las termitas a medida que se aumenta la concentración de
nootkatona en el sustrato.
Se ha descubierto que ciertos extractos de aceite
de vetiver son repelentes y venenos eficaces de termitas. Mientras
se probaba la repulsión de las termitas a las raíces de pasto
vetiver y al aceite de vetiver aislado de las raíces, se desarrolló
un bioensayo usando cámaras con arena tratada. Se probaron extractos
de aceite de vetiver que se habían separado usando una columna de
gel de sílice eluyendo con hexano y concentraciones en aumento de
cloruro de metileno. Cuatro de los cinco extractos mostraron tener
actividad repelente de termitas. Sobre análisis adicionales de estos
extractos usando cromatografía de gases/espectrometría de masas, se
encontró que la nootkatona era un componente de uno de los extractos
repelentes de termitas del aceite de vetiver. Se usó la nootkatona
disponible comercialmente para probar la repulsión contra las
termitas. Se descubrió que la nootkatona es un repelente y un veneno
eficaz de termitas a concentraciones tan bajas como 10 \mug/g. La
nootkatona redujo la actividad alimentaria y tuneladora, y provocó
un aumento de la mortalidad en las termitas subterráneas de Formosa.
Además, se encontró que las termitas eran repelidas por
\alpha-cedreno disponible comercialmente, un
componente del aceite de vetiver. También se aisló y probó para la
bioactividad extractos de aceite de vetiver que contenían ante todo
zizanol y biciclovetivenol; los extractos mostraron ser repelentes y
venenos eficaces de termitas.
Las raíces de vetiver procedentes de Vetiveria
zizanioides crecida en Louisiana (Donald O. Heumann Greenhouse
and Laboratory; Poydras, Louisiana) se lavaron, se secaron al aire,
y se molieron en un mezclador. Las raíces molidas se almacenaron a
-20ºC durante 3 a 6 meses. Después de descongelarse, se añadieron 5
g de raíz de vetiver molida a 300 ml de alcohol etílico, y la mezcla
se agitó durante 24 horas a temperatura ambiente. Aproximadamente
250 ml de extracto de alcohol se filtraron a través de papel de
filtro de 15 cm y se concentraron mediante un rotavapor de
aproximadamente 3 ml. El extracto concentrado se mezcló con 3 g de
gel de sílice (poro de 60 Ángstrom) y se secó en una campana. Se
empaquetó una columna de sílice (2 x 30 cm) con el gel de sílice que
contenía el extracto de vetiver empaquetado en el fondo de la
columna. Los compuestos del extracto se separaron mediante marcha
ascendente de cloroformo durante la noche en una cámara sellada. El
gel de sílice se recogió después en 2,54 cm cada vez durante siete
fracciones en total. Cada una de las siete fracciones se extrajo con
50 ml de alcohol etílico. Cada una de las siete fracciones se
centrifugó para eliminar el gel de sílice y luego se concentró a 3
ml.
Cada extracto se separó adicionalmente mediante
cromatografía de capa fina ("TLC"). Dos microlitros de cada
fracción se echaron en el fondo de una placa de sílice (Gel de
Sílice GF, Analtech, Newark, Nueva Jersey). Se usó cloroformo como
un disolvente para la cromatografía. Antes que el disolvente
alcanzara la parte superior, la placa se eliminó y se secó al aire.
Las bandas en la placa TLC se visualizaron carbonizando a 150ºC
después de pulverizar con ácido sulfúrico al 50%. Al menos de 1 a 5
bandas podían verse en cada una de las siete fracciones. (No se
muestran datos).
Se usaron cuarenta y ocho envases de plástico
claro de tres cámaras para probar los siete extractos del Ejemplo 1.
Cada cámara rectangular (17,5 x 8 x 4 cm; Pioneer Packaging Co.,
North Dixon, Kentucky) se dividió en tres compartimentos con dos
paredes internas. Se fundió un pequeño agujero (0,5 cm de diámetro)
al fondo de cada una de las paredes internas para permitir el acceso
de la termita a todas las cámaras. La cámara más a la izquierda se
designó el "compartimento natal" y se llenó con 115 g de arena
fina de voladura nº 4 (Easy Crete, Inc., Greenwell Springs,
Louisiana) a la que se añadió 10 ml de agua destilada desionizada
("ddH_{2}O"). Como fuente de alimentación, se pesó un círculo
de papel de filtro Whatman nº 2 de 55 mm (Whatman International,
Maidstone, Inglaterra) y se colocó en el compartimento más a la
derecha. El compartimento del centro se llenó con arena que se había
tratado con uno de los extractos de alcohol del Ejemplo 1 o sólo con
alcohol (el control). Cada uno de los siete extractos se mezcló con
alcohol etílico a un volumen total de 25 ml y luego se añadió a 115
g de arena de voladura nº 4 en una cazuela poco profunda. La cazuela
se agitó para evaporar el alcohol antes de añadir 575 g de arena
adicionales y mezclarlos. La arena (ahora 690 g) se dejó descubierta
toda la noche y se mezcló de nuevo a la mañana siguiente. Después de
mezclar, se colocaron 115 g de arena tratada y 10 ml de ddH_{2}O
en el compartimento del centro. Se prepararon seis cámaras usando
extracto de cada una de las siete fracciones durante un total de 42
cámaras experimentales. Seis cámaras adicionales para controles
recibieron arena tratada sólo con 25 ml de alcohol etílico.
Cincuenta y cinco termitas de Formosa
(Coptotermes formosanus) (50 trabajadoras y 5 soldados) de
una colonia recogida dos meses antes en Nueva Orleáns, Louisiana, se
añadieron al compartimento natal de cada uno de los cuarenta y ocho
envases. Los envases se cubrieron entonces y se colocaron en una
incubadora oscura a 25ºC. Los envases se examinaron diariamente en
busca de termitas vivas. Cada dos o tres días se añadieron 200
\mul de ddH_{2}O a los círculos de papel de filtro. Después de
dos semanas, se escaneó e imprimió a color el fondo de cada envase
al tamaño real usando un Equipo de Escaneo 4c y un Desk Jet 890C de
Hewlett Packard. El papel de filtro se eliminó, se cepillo hasta su
limpieza y se secó al aire antes de pesar.
Usando las imágenes impresas, se midió la
longitud total del túnel en cada compartimento con arena. Un envase
con extracto 7 se excluyó de las comparaciones de longitud del túnel
porque el envase se cayó inadvertidamente antes de escanear el
fondo, lo que rompió los túneles de las termitas.
Las diferencias entre tratamientos en el peso del
papel de filtro y la longitud del túnel en los compartimentos
natales o del centro se compararon por análisis de varianza (ANOVA)
y la Prueba de Intervalo Studentizado de Tukey. Los resultados se
presentan en las Tablas 1, 2 y 3.
Como se midió por el consumo de papel de filtro,
ninguno de los tratamientos difirió significativamente del control
(extracto 8). (Tabla 1) La única diferencia significativa vista
entre los extractos en el consumo de papel de filtro fue que el
tratamiento con extracto 7 mostró significativamente menos consumo
de papel de filtro que los tratamientos con extractos 2, 3 ó 4.
Como se muestra en la Tabla 2, no hubo una
diferencia significativa entre los tratamientos en la longitud de
los túneles en los compartimentos natales.
Como se muestra en la Tabla 3, hubo una fuerte
diferencia entre los tratamientos en la longitud del túnel en el
compartimento del centro o tratado. La longitud del túnel fue
significativamente menor en los compartimentos del centro tratados
con o bien el extracto 6 o el extracto 7. Estos resultados indican
que las termitas fueron inhibidas del tunelado por los compuestos
encontrados en los extractos 6 y 7. Así, las raíces de vetiver
contienen al menos un compuesto que inhibe la tunelación de las
termitas. En las técnicas de separación descritas en el Experimento
1, este(os) compuesto(s) se separó(aron) con los
extractos de 6 ó 7.
Así, en los extractos de aceite de vetiver, el
extracto 7 disminuyó significativamente tanto el consumo del papel
de filtro como el tunelado de las termitas. El extracto 6 disminuyó
significativamente el tunelado de las termitas. Los resultados de
todos los demás extractos no fueron significativamente diferentes
del control.
Las raíces de vetiver procedentes de Vetiveria
zizanioides crecida en Louisiana se limpiaron, se secaron al
aire, se molieron en un mezclador y se almacenaron a -20ºC. Se
añadió un litro de éter de petróleo a 20 g de raíces secas de
vetiver y se agitaron durante 24 horas a temperatura ambiente. El
extracto se filtró a través de papel de filtro y se concentró
mediante un rotavapor. El extracto de aceite se redisolvió después
en 5 ml de hexano.
Los componentes del extracto de aceite se
separaron usando una columna de gel de sílice de 2,5 x 20 cm, usando
una extracción más eficaz que en el Ejemplo 1. Se disolvieron cinco
gramos de aceite de vetiver en 50 ml de hexano y se colocaron en una
columna de sílice que se había lavado con 200 ml de hexano. El
extracto se eluyó con hexano y una concentración en aumento de
cloruro de metileno. Se aislaron cinco fracciones: la fracción 1
eluida con una relación de 20:80 CH_{2}Cl_{2}:hexano; la
fracción 2, con una relación de 30:70; la fracción 3, con una
relación de 40:60; la fracción 4, con una relación de 60:40; y la
fracción 5, con una relación de 80:20. Se visualizaron muestras de
las fracciones 1 a 5 para su autofluorescencia bajo una luz UV para
indicar la presencia de cetonas de sesquiterpeno. Las fracciones que
indicaron autofluorescencia se separaron después adicionalmente por
TLC usando el método descrito anteriormente en el Ejemplo 1, junto
con nootkatona disponible comercialmente.
Usando el bioensayo como se describe en el
Ejemplo 2, se probaron las fracciones 1 a 5 para la actividad
repelente de termitas. Para cada fracción se añadieron 100 \mug/g
de extracto a la arena y se establecieron cuatro cámaras replicadas.
Después de una incubación de dos semanas, cada cámara se analizó
para la actividad tuneladora. La fracción 1 no mostró bioactividad
en termitas, mientras que las fracciones 2 a 5 mostraron fuerte
actividad repelente de termitas (baja actividad tuneladora). (No se
muestran datos).
Las bandas TLC 1 y 2 de la Fracción 4 se
caracterizaron además mediante Cromatografía de
Gases-Espectrometría de Masas
(GC-MS), usando un HP5890 GC/HP 5791 MSD (Hewlett
Packard Co., Palo Alto, California). Las separaciones del
cromatógrafo de gases se realizaron en una columna capilar
DB-5MS (30 m x 0,25 mm di x 0,25 \mum, J & W,
Folsom, California), usando helio (0,8 ml/min) como un gas de
transporte. La temperatura del puerto de inyección fue de 250ºC en
un modo dividido con una inyección de 1 \mul. La temperatura
inicial del GC se mantuvo a 60ºC durante 1 minuto, se aumento a
150ºC a 2,5ºC/min durante 15 minutos y 260ºC a 5ºC/min, donde se
mantuvo durante 10 minutos. El detector espectral de masas (MSD) se
puso en modo de escaneo total (M/Z 41 a 400). Se encontró que la
nootkatona era un constituyente principal de la banda 2 comparando
el espectro de masas con el de un patrón de nootkatona sintética
(cristalina, 97%) comprado a Lancaster Shyntesis Inc. (Windham, New
Hampshire), y comparando el espectro de masas con un espectro de
masas conocido disponible a partir de una base de datos (Wiley
Database, Versión 7; Thermoquest-Finnigan, Austin,
Texas).
La cantidad de nootkatona aislada del aceite de
vetiver fue insuficiente para probar la actividad repelente en
termitas. La nootkatona se compró por lo tanto de una fuente
comercial (Lancaster Shyntesis Inc., Windham, New Hampshire). Se usó
un envase de plástico de tres cámaras como se describe anteriormente
en el Ejemplo 2. Se fundió un pequeño agujero al fondo de cada una
de las dos paredes internas para conectar las cámaras. Se usaron
cuatro cámaras replicadas para cada concentración de nootkatona
(\mug/g de arena) probada: 0, 10 \mug/g, 20 \mug/g, 100
\mug/g, y 200 \mug/g. Para cada concentración, se mezcló la
nootkatona en 25 ml de alcohol etílico con 500 g de arena de
voladura nº 4 como se describe en el Ejemplo 2. La arena se secó
toda la noche. Al día siguiente se añadieron 115 g de arena tratada
a la cámara intermedia; se añadieron 115 g de arena no tratada a una
cámara de un extremo, y se colocó un papel de filtro pesado (Whatman
nº 1, 55 mm) en la cámara del extremo contrario. El papel de filtro
se había secado a 70ºC durante 3 horas y se enfrió a temperatura
ambiente antes de pesar. Luego se añadieron 10 ml de ddH_{2}O a
cada cámara con arena y se añadieron 200 \mul de ddH_{2}O al
papel de filtro. Cuatro envases sin nootkatona sirvieron como
controles negativos. Cincuenta termitas trabajadoras y 5 soldados de
una sola colonia recogida en Algiers, Louisiana, se colocaron en
cada cámara de arena no tratada. Las cámaras se cubrieron y dejaron
en una incubadora oscura a 29ºC.
En el día 16, el número de termitas vivas se
contó, y el fondo de cada envase se escaneó para determinar la
longitud de tunelado como se describe en el Ejemplo 2. El papel de
filtro de cada envase se eliminó, se limpió, se seco a 70ºC durante
3 horas, se enfrió, y finalmente se pesó.
Se compararon las diferencias entre tratamientos
en el peso de papel de filtro, mortalidad, y longitud del túnel en
los compartimentos tratados mediante análisis de varianza (ANOVA) y
la Prueba de Intervalo Studentizado de Tukey. Los resultados se
presentan en las Tablas 4, 5 y 6 y en las Figuras 1 a 3.
El consumo se calculó como la diferencia entre el
peso del papel de filtro antes y después de la incubación. La Figura
1 y la Tabla 4 muestran que el consumo medio de papel de filtro
disminuyó significativamente con la concentración de nootkatona. En
los experimentos de control, las termitas tunelaron a través del
compartimento del medio al papel de filtro en el compartimento del
final. Incluso a la menor concentración, la nootkatona disminuyó
significativamente la alimentación como se midió por la pérdida de
peso de papel de filtro del control. Casi no se vio consumo de papel
de filtro a concentraciones mayores que 20 \mug/g. Como se muestra
debajo, esta disminución en la alimentación se debió tanto a la
disminución en la tunelación a través de la cámara del medio como a
un aumento en la mortalidad de las termitas.
La Figura 2 y la Tabla 5 muestran la mortalidad
sólo de las trabajadoras. Por el bajo número de soldados añadidos a
los envases, el dato de soldados se excluyó. La mortalidad entre los
tratamientos y el control fue significativamente diferente. El
noventa por ciento de la mortalidad o más se vio en todas las
cámaras donde la concentración de nootkatona fue \geq 100 \mug/g
de arena.
La Figura 3 y la Tabla 6 muestran la longitud de
todos los túneles vistos en la cámara del medio o tratada al final
del día 16. La presencia de nootkatona disminuyó sustancialmente la
actividad tuneladora a la menor concentración de 10 \mug/g. A
mayores concentraciones de nootkatona, no fue visible la tunelación
en la cámara del medio.
Estos resultados muestran que la nootkatona a
concentraciones tan bajas como 10 \mug/g, disminuye la tunelación
y alimentación de las termitas y aumenta la mortalidad. Así, se
muestra que la nootkatona es un potente repelente y veneno de
termitas. Se cree que concentraciones entre 10 \mug/g y 1000
\mug/g, más preferiblemente entre 10 \mug/g y 200 \mug/g,
serán útiles repeliendo y matando termitas.
La bioactividad en termitas del
\alpha-cedreno, un componente del aceite de
vetiver, se probó usando un producto disponible comercialmente
(Fluka, una división de Sigma-Aldrich, Inc., St.
Louis, Missouri). Se desarrolló un nuevo método para investigar
compuestos para la bioactividad en termitas que era más rápido que
el bioensayo descrito en el Ejemplo 2. Se usaron placas petri de
cinco cm de diámetro con tapas. Se extendieron dos ml de disolución
caliente de agar (1,5 g/100 ml ddH_{2}O) de modo uniforme en el
fondo de cada placa y se dejó enfriar. La disolución de agar
proporcionó humedad a las termitas y dejó la arena en el sitio. La
arena se puso en un autoclave durante 30 minutos, se añadió el
alcohol con la muestra, y se secó en un horno. Para tres placas, se
cubrió una mitad del fondo de cada placa con 1,5 g de arena tratada
mezclada con un total de 100 \mug de
\alpha-cedreno por placa, disuelto en 250 \mul
de etanol, y la otra mitad con 1,5 g de arena no tratada (sólo
etanol). La arena cubrió completamente el agar, pero no era lo
suficiente gruesa para ocultar la tunelación de las termitas. Se
prepararon tres placas como un control sólo con arena no tratada en
cada lado. Finalmente, se añadieron diez termitas a cada placa, y
las placas se cubrieron para eliminar la luz.
La distribución de termitas en cada placa, medida
contando el número de termitas en la mitad no tratada de la placa,
se examinó cada hora durante hasta 8 horas. Una prueba
Chi-cuadrado indicó que cuando 23 o más de las 30
termitas (valor medio de todas las réplicas) o al menos el 76,7% se
observaron en la arena no tratada, había una diferencia
significativa de la distribución de termitas entre el grupo tratado
y el grupo de control (X^{2} = 4,59, df = 1; p = 0,032; Instituto
SAS, 1998). Por lo tanto, el extracto se consideró un repelente. El
extracto se consideró tóxico si algunas o todas las termitas que se
comportaron de manera perezosa, estuvieron moribundas o muertas.
Los resultados para el
\alpha-cedreno se muestran debajo en la Tabla 7.
El \alpha-cedreno era un repelente débil para las
termitas a una concentración de 100 \mug/placa, al menos en el
marco de tiempo de 2-3 h. Ninguna de las termitas
murió en ninguna de las placas.
Se prepararon extractos de aceite de vetiver
crecido en Louisiana como se describe en el Ejemplo 3, usando una
columna de gel de sílice y TLC. Se analizaron fracciones con alta
bioactividad con GC-MS. Las fracciones con alta
bioactividad se analizaron con GC-MS y se encontró
que tenían altas concentraciones de zizanol y biciclovetivenol como
se describe en el Ejemplo 3. Las fracciones que tienen altas
concentraciones de zizanol y biciclovetivenol se identificaron
comparando el espectro de masas con una gráfica conocida disponible
a partir de una base de datos. De esta información, se prepararon
extractos con mayores concentraciones de zizanol y biciclovetivenol
y se analizaron para la bioactividad en termitas usando el rápido
método de placa petri como se describe en el Ejemplo 5.
En un experimento se compararon dos diferentes
extracciones con un control usando cuatro réplicas de cada proceso
experimental. En el Extracto A se encontró que el pico de
biciclovetivenol por GC-MS era dos veces la altura
del pico de zizanol. En el Extracto B fue correcto lo contrario.
Cada extracto se probó a dos concentraciones, 100 \mug/placa y 500
\mug/placa. A estas dos concentraciones, ambos extractos mostraron
actividad en termitas como repelentes y venenos suaves como se
muestra en la Tabla 8. No hubo diferencia entre la eficacia de los
dos extractos anotados en este experimento, incluso aunque las
cantidades relativas de zizanol y biciclovetivenol eran inversas
entre los dos extractos. Esto es una evidencia de que el zizanol y
el biciclovetivenol tienen bioactividad en termitas
individualmente.
Otro experimento se llevó a cabo para probar una
mayor concentración. El Extracto C era similar al Extracto B, con el
pico de zizanol aproximadamente dos veces el tamaño del pico de
biciclovetivenol en el GS. Se hicieron seis réplicas para tanto los
controles como las muestras tratadas (0,86 mg de extracto/placa).
Los resultados se muestran en la Tabla 9. Las termitas estuvieron
moribundas a las 24 horas, y empezaron a morir a las 48 horas. A los
7 días, el 80% de las termitas en las placas tratadas habían muerto,
mientras sólo dos termitas de control habían muerto.
Este experimento indicó que a una mayor
concentración, los extractos de aceite de vetiver que comprenden
ante todo zizanol y biciclovetivenol eran tanto repelentes como
venenos de termitas.
Para determinar adicionalmente el nivel de
toxicidad de la nootkatona en las termitas subterráneas de Formosa,
se llevará a cabo un experimento de toxicidad. Las termitas se
colocarán en envases sellados que contienen un sustrato de arena. En
tres conjuntos de envases la arena se tratará con nootkatona a
niveles de 10 \mug/g, 100 \mug/g y 200 \mug/g de arena,
respectivamente. El cuarto envase será un control sin nootkatona. Se
harán conteos diarios de termitas muertas en un periodo de una
semana para determinar la mortalidad para cada tratamiento. Las
termitas generalmente viven siete días sin comida. Se espera que la
mortalidad aumente cuando la concentración de nootkatona
aumente.
Para demostrar la eficacia de la nootkatona en la
repulsión de las termitas subterráneas de Formosa de la madera de
construcción, se llevó a cabo un experimento de alimentación y
tunelación de termitas para comparar la madera tratada con
nootkatona, aceite de vetiver y octaborato disódico tetrahidratado
(TIM-BOR®, U.S. Borax, Inc., Valencia, California).
Una balsa de madera (5 cm x 5 cm x 0,5 mm) se empapó durante 1 hora
en una disolución de etanol al 1% de o bien aceite de vetiver,
nootkatona, TIM-BOR®, o un control de etanol. La
madera tratada se secó entonces y se dejó al aire hasta su uso en
los experimentos. Los experimentos se hicieron a uno, tres, y seis
meses después de que la madera fuera tratada. El procedimiento
experimental de alimentación y tunelado fue como se describe en el
Ejemplo 2, excepto que en lugar del papel de filtro como alimento
para las termitas, se colocó la balsa de madera tratada en cada
compartimento final; y arena no tratada se colocó en las tres
cámaras. En la cámara del centro se añadieron 225 trabajadoras y 25
soldados recogidas de dos grandes colonias de termitas de Formosa en
Nueva Orleáns, Louisiana. Se monitorizaron tres envases réplica para
cada una de las dos colonias y para cada tratamiento de madera de
balsa durante 8 días. La actividad tuneladora se comprobó
periódicamente en los días 3, 5 y 7, escaneando los fondos de los
envases. En el día 8, la madera de balsa se eliminó y pesó para
determinar el consumo de madera. En los tres periodos, las termitas
en los tres grupos experimentales consumieron menos madera que el
grupo de control, teniendo con la nootkatona el mayor efecto en la
disminución de consumo de madera en el intervalo de los meses 1 a 3.
Incluso a los seis meses, la nootkatona y el aceite de vetiver
fueron tan eficaces como la disolución de borato en la reducción del
consumo de madera. (No se muestran datos). La actividad tuneladora
de las termitas se redujo sustancialmente con el aceite de vetiver y
especialmente con la nootkatona, incluso después de tres meses. El
TIM-BOR® no mostró efecto en el comportamiento
tunelador. (No se muestran datos). Tanto la nootkatona como el
aceite de vetiver mantuvieron sus eficacias como un repelente de
termitas seis meses después del tratamiento inicial de la muestra de
madera. (No se muestran datos).
Estos compuestos, es decir, nootkatona,
\alpha-cedreno, zizanol y biciclovetivenol, que
son eficaces como repelentes o venenos de termitas podrían añadirse
a cualquier sustrato o material para proteger el material de la
infestación o daño de termitas, incluyendo, pero no limitado a,
cualquier material que contiene celulosa, tierra, tierras de
diatomeas, e incluso incorporados en plásticos.
En la memoria descriptiva y las reivindicaciones,
una "cantidad eficaz" de un compuesto, por ejemplo, nootkatona,
\alpha-cedreno, zizanol y biciclovetivenol, es una
cantidad que, cuando se aplica a un sustrato u otro material,
provoca una repulsión o toxicidad significativa, o que disminuye la
actividad o viabilidad de las termitas en comparación con otro
medioambiente idéntico sin el extracto añadido.
Los siguientes documentos se citan como
referencia: B. Zhu et al., "Nootkatone is a repellent for
Formosan subterranean termites (Coptotermes formosanus)";
aceptado y sometido de nuevo al Journal of Chemical Ecology en
Octubre de 2000; L. Maistrello et al., "Effects of
nootkatone and a borate compound on Formosan subterranean termite
and its symbiont protozoa", sometido al Journal of Entomological
Science en Mayo de 2000; y B. Zhu et al., "Evaluation of
vetiver oil and seven insect-active essential oils
against Formosan Subterranean Termites", sometido al Journal of
Chemical Ecology en Septiembre de 2000; L. Maistrello et al.,
"Effects of vetiver oil and its constitutents on Coptotermes
formosanus and its symbiotic fauna", presentación en póster
en el XXI International Congress of Entomology, Cataratas de Iguazú,
Brasil, 20-26 de Agosto de 2000; y el texto completo
de la Serie de Solicitudes provisionales de Estados Unidos núm.
60.160.251, presentada el 19 de Octubre de 1999.
Claims (27)
1. Un método para proteger un material de la
infestación de termitas, que comprende tratar el material con una
composición que comprende una cantidad eficaz de un compuesto
seleccionado a partir del grupo que consiste en nootkatona, zizanol
y biciclovetivenol, en el que dicha composición está libre de aceite
de vetiver y en el que el material tratado repele o mata termitas
sustancialmente más que lo hace otro material idéntico que no se ha
tratado con la composición.
2. Un método según la reivindicación 1, en el que
el material tratado repele termitas.
3. Un método según la reivindicación 1, en el que
el material tratado mata termitas.
4. Un método según la reivindicación 1, en el que
el material a tratar se selecciona a partir de una lista que
comprende tierra, sustrato, plásticos, tierra de diatomeas, y
cualquier material que contiene celulosa.
5. Un método según la reivindicación 1, en el que
el compuesto es nootkatona.
6. Un método según la reivindicación 1, en el que
el compuesto es zizanol.
7. Un método según la reivindicación 1, en el que
el compuesto es biciclovetivenol.
8. Un método según la reivindicación 1, que
comprende adicionalmente tratar el material con uno o más compuestos
diferentes seleccionados a partir del grupo que comprende
nootkatona, \alpha-cedreno, zizanol y
biciclovetivenol.
9. Una composición para una barrera protectora
contra la infestación de termitas, comprendiendo la composición de
dicha barrera una cantidad eficaz de un compuesto seleccionado a
partir del grupo que consiste en nootkatona, zizanol y
biciclovetivenol, y un material sustrato, en la que dicha
composición está libre de aceite de vetiver y en la que dicha
barrera tratada repele o mata termitas sustancialmente más que lo
hace otra barrera idéntica que no se ha tratado con el
compuesto.
10. Una composición según la reivindicación 9, en
la que el material sustrato es un abono.
11. Una composición según la reivindicación 10,
en la que el abono es pasto vetiver seco.
12. Una composición según la reivindicación 10,
en la que el abono es otro material que contiene celulosa.
13. Una composición según la reivindicación 9, en
la que el material sustrato es tierra.
14. Una composición según la reivindicación 9, en
la que el material sustrato es tierra de diatomeas.
15. Una composición según la reivindicación 9, en
la que el compuesto es nootkatona.
16. Una composición según la reivindicación 15,
en la que la concentración de nootkatona en dicha barrera está entre
10 \mug/g y 1000 \mug/g.
17. Una composición según la reivindicación 15,
en la que la concentración de nootkatona en dicha barrera está entre
10 \mug/g y 200 \mug/g.
18. Una composición según la reivindicación 9, en
la que el compuesto es zizanol.
19. Una composición según la reivindicación 9, en
la que el compuesto es biciclovetivenol.
20. Una composición según la reivindicación 9,
que comprende adicionalmente tratar el material con uno o más
compuestos diferentes seleccionados a partir del grupo que comprende
nootkatona, \alpha-cedreno, zizanol y
biciclovetivenol.
21. Una composición para una barrera protectora
contra la infestación de termitas, comprendiendo la composición de
dicha barrera una cantidad eficaz de un compuesto seleccionado a
partir del grupo que consiste en nootkatona, zizanol y
biciclovetivenol, y un material de construcción de madera, en la que
dicha composición está libre de aceite de vetiver y en la que el
material de construcción tratado repele o mata termitas
sustancialmente más que lo hace otro material idéntico que no se ha
tratado con el compuesto.
22. Una composición según la reivindicación 21,
en la que el compuesto es nootkatona.
23. Una composición según la reivindicación 22,
en la que la concentración de nootkatona en dicha barrera está entre
10 \mug/g y 1000 \mug/g.
24. Una composición según la reivindicación 22,
en la que la concentración de nootkatona en dicha barrera está entre
10 \mug/g y 200 \mug/g.
25. Una composición según la reivindicación 21,
en la que el compuesto es zizanol.
26. Una composición según la reivindicación 21,
en la que el compuesto es biciclovetivenol.
27. Una composición según la reivindicación 21,
que comprende adicionalmente tratar el material con uno o más
compuestos diferentes seleccionados a partir del grupo que comprende
nootkatona, \alpha-cedreno, zizanol y
biciclovetivenol.
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