EA013519B1 - Antibacterial or pediculicidal preparation comprising allicin - Google Patents
Antibacterial or pediculicidal preparation comprising allicin Download PDFInfo
- Publication number
- EA013519B1 EA013519B1 EA200700663A EA200700663A EA013519B1 EA 013519 B1 EA013519 B1 EA 013519B1 EA 200700663 A EA200700663 A EA 200700663A EA 200700663 A EA200700663 A EA 200700663A EA 013519 B1 EA013519 B1 EA 013519B1
- Authority
- EA
- Eurasian Patent Office
- Prior art keywords
- allicin
- concentration
- ppm
- excipient
- strains
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/095—Sulfur, selenium, or tellurium compounds, e.g. thiols
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/04—Antibacterial agents
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P33/00—Antiparasitic agents
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Public Health (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Oncology (AREA)
- Communicable Diseases (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Abstract
Description
Настоящее изобретение относится к аллицину.
Считается, что аллицин, соединение серы, имеющее формулу
представляет собой основное активное соединение, характеризующееся многочисленными терапевтическими свойствами, которые описаны для чеснока (ЛШит κηΐίνίι.ιιη). В естественном состоянии чеснок содержит не аллицин, а его предшественник-аллиин [(+)8-аллил-Ь-цистеинсульфоксид]. Аллиин превращается в аллицин в результате действия фермента аллиназы или аллиинлиазы, также компонента чеснока. Аллиин и аллиназу получают вместе, когда разрезают или дробят чесночные зубки. Следующее уравнение представляет схему синтеза.
О
Ц | аллинааа/НоО
----—~ аллицин аллиин пировиноградная кисло га О + 2 .,,-1 + 2 ΝΗ.
=4
II О
Однако аллиназа быстро и необратимо инактивируется продуктом ее реакции, аллицином, а также инактивируется в кислых условиях, таких как в желудке. Поэтому на практике выход аллицина из зубков чеснока оказывается значительно ниже теоретического максимума. Действительно, выход обычно составляет порядка 0,3-0,5%.
В АО 97/39115 описан непрерывный способ синтеза аллицина, который включает приготовление колонки, содержащей аллиназу, иммобилизованную на твердом носителе, пропускание раствора аллиина через колонку и получение раствора аллицина в вытекающей жидкости.
Кроме того, авторы настоящей заявки получали аллицин в высушенной распылением форме и приобретали в капсулах от фирмы АШсш 1п1етаИопа1 Ытйеб οί На1Г Ноше, МПИагу Воаб, Вус. Бак! 8и88ех, ΤΝ31 7ΝΥ, ИпПеб Кшдбот, под товарным наименованием аллимакс (АББ1МАХ).
Настоящее изобретение основано на исследованиях новых терапевтических свойств аллицина.
В наиболее общем аспекте настоящее изобретение относится к противобактериальному или педикулоцидному препарату, содержащему аллицин или метаболит аллицина и фармацевтически приемлемый эксципиент.
Предпочтительно препарат содержит по меньшей мере одно другое противобактериальное или пе дикулоцидное средство.
Более предпочтительно другое средство выбирают из (1) пенициллинов, включая ампициллин, пиперациллин, карбенициллин, амоксициллин, метициллин и пенициллин С; (ίί) аминогликозидаз, включающих в себя гентамицин, тобрамицин, стрептомицин и амикацин; (ш) тетрациклинов; (ίν) макролидов, включая эритромицин; (ν) цефалоспоринов и цефамицинов, включающих в себя цефуроксим, цефамандол и моксалактам; и (νί) фузидиновой кислоты, рифампицина, новобиоцина, ванкомицина, ципрофлоксацина, хлорамфеникола и метронидазола.
Соответственно, метаболит аллицина представляет собой по меньшей мере одно вещество из числа ΌΑΌ8 (диаллилдисульфид), ΌΑΤ8 (диаллилтрисульфид), эдзоена, аллитридия или винилдитиина.
Предпочтительно для перорального введения или введения в виде суппозитория, вагинального суппозитория или назального препарата фармацевтически приемлемый эксципиент представляет собой твердую композицию, на которую присоединяют аллицин или его метаболит. Более предпочтительно, если требуется, твердая композиция содержит средство, увеличивающее объем, такое как лактоза, микрокристаллическая целлюлоза или дикальцийфосфат; загуститель, такой как смола или крахмал; дезинтегрирующий агент, такой как натрийгликолят крахмала или поперечно-сшитый повидон; способствующее высвобождению средство, такое как стеарат магния; эмульгатор; поверхностно-активное вещество и подсластители, ароматизаторы и красители. Наиболее предпочтительно аллицин связывают способом распылительной сушки, а твердая композиция содержит модифицированный крахмал, такой как мальтодекстрин, аравийская камедь, диоксид кремния и эмульгатор, такой как стеарат магния.
Соответственно, для местного применения фармацевтически приемлемый эксципиент входит в состав крема или мыла. Альтернативно, эксципиент может представлять собой лосьон, мазь, зубную пасту, жидкость для полоскания рта или препарат для волос, такой как шампунь, гель для укладки волос или кондиционер. Если уместно, такие препараты могут включать в себя комбинации следующих веществ: поверхностно-активных веществ, ароматизаторов, красителей, стабилизаторов, антиоксидантов, эмульгаторов, загустителей, восков, глицеринов, жиров, веществ, способствующих суспендированию, дефлокулирующих веществ и антиоксидантов, все из которых могут быть, а могут и не быть гипоаллергенами. Предпочтительно эксципиент-крем содержит белый полутвердый парафин, эмульгатор, такой как стеарат, предпочтительно стеарат магния, глицерин, воду, желтый полутвердый парафин и стабилизатор, такой как цитрат калия. Наиболее предпочтительно эксципиент-крем представляет собой водный крем, предпочтительно водный крем ВР. Соответственно, наполнитель-мыло содержит эфир серной кислоты, кокамид и кокобетаин. Возможно, эксципиент, кроме того, может включать в себя ароматизаторы и кра сители.
- 1 013519
Предпочтительно для перорального, парентерального или местного применения соотношение аллицина к наполнителю является таким соотношением, которое обеспечивает концентрацию аллицина между 1 и 2000 ч./млн, предпочтительно между 50 и 1000 ч./млн, более предпочтительно между 250 и 500 ч./млн.
На фиг. 1 представлены средние размеры зон к аллициновой жидкости относительно клинических изоляторов 81арйу1ососсик аитеик, проявивших резистентность, промежуточную резистентность и чувствительность к мупироцину;
на фиг. 2 - средние размеры зон к аллициновому крему относительно клинических изоляторов 81арйу1ососсик аитеик, проявивших резистентность, промежуточную резистентность и чувствительность к мупироцину;
на фиг. 3 - минимальные ингибиторные (М1С) и минимальные бактерицидные (МВС) концентрации для аллицина (мкг/мл) относительно клинических изоляторов 81арйу1ососсик аитеик;
на фиг. 4 - зоны ингибирования, образованные аллицином в отношении МК8Л103;
на фиг. 5 отражена реакция степени 1 с Оксфордским штаммом и стрептомицином;
на фиг. 6 - реакция степени 2 с Оксфордским штаммом и ванкомицином;
на фиг. 7 - реакция степени 3 МК8Л102.
Приведенные выше и другие аспекты данного изобретения в дальнейшем описывают более подробно со ссылкой на следующие примеры только как показательный пример.
1. Противомикробные свойства одного аллицина.
Определение минимальной ингибиторной концентрации (М1С) методом пробирочного разведения.
Используя асептический способ, 1 мл питательной среды двойной концентрации разливали в каждую из 11 пробирок Кана (Кйап). В первую пробирку, пробирка 1, (обозначенная контроль) добавляли 1 мл стерильной деионизованной воды. Во вторую пробирку, пробирка 2, добавляли 1 мл аллицина (2000 ч./млн в водном растворе), смешивали, используя механический смеситель, и 1 мл переносили из пробирки 2 в пробирку 3. Процесс повторяли последовательно до пробирки 11.
Следовательно, получали серию двойных разведений между 1/2 и 1/1024. 4 мкл культуры, выращенной в течение ночи на питательной среде, использовали для инокулирования каждой пробирки. Содержимое пробирок смешивали и инкубировали при 37°С в течение 24 ч. Наблюдали за помутнением в пробирках и самую низкую концентрацию без помутнения регистрировали как М1С.
Определение минимальной бактерицидной концентрации (МВС).
Из каждой из пробирок М1С-серии, в которых не было обнаружено никакого помутнения, отбирали 100 мкл и рассеивали на поверхности чашки питательного агара, используя стерильный стеклянный шпатель. Чашки инкубировали при 37°С в течение 24 ч и следили за появлением бактериальных колоний. Самую низкую концентрацию, при которой не наблюдали никаких жизнеспособных бактерий, регистрировали как МВС.
Определение М1С с использованием многоточечного инокулятора.
Исходный раствор аллицина 1/4 об./об. готовили добавлением 5 мл аллицина (2000 ч./млн в водном растворе) к 15 мл стерильной воды. Отбирали 10 мл приготовленного раствора, добавляли к 10 мл расплавленного, охлажденного питательного агара двойной концентрации, смешивали и использовали для приготовления чашки с разведением 1/8 об./об. Оставшиеся 10 мл аллицина (1/4) разбавляли 10 мл стерильной воды, чтобы получить раствор с разведением 1/8 об./об. 10 мл 1/8-раствора использовали для приготовления 1 чашки с разведением 1/16 об./об. Серийное разведение продолжали до тех пор, пока не получали чашки с разведением аллицина 1/1024 об./об. Чашки оставляли для уравновешивания и высушивали при 44°С в течение 15 мин.
Тестируемые микроорганизмы (табл. 1) культивировали на питательном бульоне при 37°С в течение 18 ч. 0,3 мкл неразведенных культур засевали на поверхность приготовленных высушенных чашек, используя многоточечный инокулятор. Чашки инкубировали при 37°С в течение 24 ч и наблюдали за ростом. Общее количество жизнеспособных организмов определяли по способу Милеса-Мисра (М11екМ1кга).
- 2 013519
Таблица 1
Минимальные ингибиторные концентрации, установленные методом пробирочного разведения.
Из тестируемых микроорганизмов Ркеиботопак аегидтока оказался наименее чувствительным к аллицину, а СапФба а1Ысапк был наиболее чувствительным (табл. 3). Были рассчитаны величины М1С и МВС для аллицина и представлены в табл. 2. Полученный образец аллицина анализировали при концентрации 2000 ч.
Минимальные ингибиторные концентрации, установленные с помощью многоточечного инокулятора.
М1С определяли, используя многоточечный инокулятор (табл. 3). Величины М1С вычисляли, используя аллицин при концентрации 2000 ч./млн, и результаты хорошо согласовались с результатами, полученными способом пробирочного разведения.
Противомикробную активность аллицина продемонстрировали в отношении одиннадцати микробных видов. Относительные чувствительности микроорганизмов отличались, Ркеиботопак аегидшока оказался наименее чувствительным, а СапФба а1Ысапк был наиболее чувствительным.
Стафилококки являются одним из наиболее важных видов бактерий, вызывающих заболевание у человека. Они являются нормальными обитателями верхних дыхательных путей, кожи, вагины и кишечника. Они являются представителями группы, называемой пиогенными кокками (гноеродными). Стафилококк легко передается от бессимптомных носителей (без признаков заболевания) или от субъектов с заболеванием через кожный контакт, аэрозоли или от неживых объектов. Стафилококк может вызывать патологический процесс почти в каждом органе и ткани организма.
- 3 013519
Таблица 2
- 4 013519
- 5 013519
Таблица 3
М1С, определенная с помощью многоточечного инокулятора
- 6 013519
- 7 013519
Метициллин (или его родственные антибиотики) является одним из основных лекарственных средств, используемых для лечения инфекционных заболеваний, вызванных §1арйу1ососси5 аигеик. Метициллинрезистентные 81арйу1ососси5 аигеик (МКБА) являются основной нозокомиальной проблемой (инфекции, вызванные штаммами, приобретенными в больнице). Большинство из названных штаммов являются резистентными к большому разнообразию антибиотиков (включая некоторые из наиболее последних). Некоторые штаммы также являются резистентными к агентам, таким как мупироцин, используемый в настоящее время для борьбы с бессимптомным носительством и образованием колоний в больницах. В некоторых отделениях интенсивной терапии 10-20% пациентов может быть заражено МКБА.
С помощью диффузионных тестов определяют чувствительность изолятов к противомикробным средствам, измеряя зоны ингибирования вокруг совокупного показателя противомикробного средства. Однако названные тесты являются наиболее общими тестами, используемыми для обследования на противомикробную резистентность. Зоны ингибирования не менее 6 мм, которые меньше зон известного контрольного штамма, указывают на бактериальную чувствительность к противомикробному средству. Размеры зон 12 мм или меньше обычно указывают на резистентность, также между указанными уровнями существует промежуточная резистентная группа.
Используя приведенные выше критерии, в следующих примерах при сравнении размеров зон с размерами зон чувствительного к антибиотику контроля клинические изоляты классифицировали как (1) резистентные к мупироцину, (и) промежуточно резистентные и (ίίί) чувствительные к мупироцину.
Бактериальные штаммы.
клинических изолятов и один контрольный штамм 8(ар11 аигеик (Оксфордский штамм, ΝΟΤΟ 6571) тестировали в фазе 1 испытаний. Все штаммы были предоставлены Королевскими госпиталями (Роуа1 Ьоийои и 8ΐ Ваг11ю1оте\у'к) в Лондоне и были идентифицированы как имеющие множественную резистентность к антибиотикам. Впоследствии семнадцать из названных штаммов плюс контроль были отобраны для фазы 2 испытаний.
Фаза 1. Диффузионный анализ.
Первоначально упомянутые испытания проводили, чтобы тестировать эффективность кремов. Однако результаты исследования кремов сравнивали с результатами тестирования чесночной и аллициновой жидкости, используя способы стандартных агаровых лунок. Резистентность к мупироцину подтверждали, используя диффузионный тест со стандартным бумажным диском Штраф Б(й). Чашки с агаром Мюллера-Гинтона (Ми11ег-Нш1оп) засевали (газонный слой) стандартизированной концентрацией 8(ар11. аигеик. Чашки оставляли для высушивания на воздухе. Круглые лунки стандартного размера вырезали в агаровой культуральной среде и заполняли одинаковым количеством (100 мкл) крема или раствора. Противобактериальную активность определяли при измерении зон ингибирования, образовавшихся вокруг каждой лунки.
- 8 013519
Чувствительность к мупироцину.
Оксфордский 81арй. аигеик образовывал зону размером 35 мм. 5 штаммов идентифицировали как полностью чувствительные (размеры зон от 33 до 45 мм), 12 зон показали промежуточную чувствительность (размеры зон между 12 и 23 мм) и 13 штаммов оказались резистентными (никакой зоны ингибирования).
Активность раствора аллицина.
Показано, что водный раствор жидкости аллицина является высокоактивным в отношении всех штаммов 81арй. аигеик, тестированных вплоть до уровней 250 ч./млн, (фиг. 1).
Активность аллицинового крема.
Когда составляли обычный водный крем, обнаружили, что аллицин является высокоактивным в отношении всех штаммов при концентрациях 500 ч./млн. Указанные концентрации соответствуют подходящим уровням для применения как местного средства (фиг. 2).
Фаза 2. Минимальные ингибиторные концентрации (М1С) и минимальные бактерицидные концентрации (МВС) для аллицина в отношении §1арйу1ососси8 аигеик.
Тестировали семнадцать клинических изолятов (выбранных из группы штаммов фазы 1) и один контрольный штамм (Оксфордский штамм, ИСТС 6571) 81арй. аигеик. Каждый штамм культивировали в течение ночи при 37°С в бульоне Мюллера-Гинтона (Οχοίά Ь1й. СМ405). Культуры разводили названным бульоном, чтобы получить концентрацию Ьод 7 КОЕ/мл, использовали десятикратную конечную концентрацию.
мл водного раствора аллицина (в концентрации 5000 ч./млн) добавляли к 8 мл бульона МюллераГинтона (бульон концентрировали, чтобы избежать эффекта разведения среды) и вдвое разводили, чтобы получить область концентраций между 1000 ч./млн (мкг/мл) и 1 ч./млн (мкг/мл) плюс 0 ч./млн (мкг/мл) в отрицательном контроле. 1 мл каждой смеси отбирали из каждой среды и добавляли 1 мл бактериального концентрата, достигая конечной концентрации приблизительно Ьод 6 КОЕ/мл.
Названные бульонные культуры инкубировали в течение ночи при 37°С. На следующий день бульоны исследовали относительно роста (мутные культуры). Наиболее низкую концентрацию, не показавшую никакого роста (прозрачную), рассматривали как М1С.
Культуру, содержащую М1С и все вышеприведенные концентрации, субкультивировали на чашках с питательным агаром (Охо1й Ь1й, СМ3), чтобы определить МВС. Отбирали 0,1 мл каждой культуры и культивировали. Культуру с наиболее высокой концентрацией, при которой наблюдали рост (мутность) при исследовании М1С, также субкультивировали как позитивный контроль. Чашки инкубировали в течение ночи при 37°С. Наиболее высокую концентрацию, при которой наблюдали рост (видимые бактериальные колонии), рассматривали как МВС.
Для приготовления крема или раствора для клинического применения против §1арйу1ососси8 аигеик важно установить оптимальные концентрации противомикробного средства, которое проявляет активность в отношении тестируемых штаммов. Результаты сопоставлены в табл. 4 ниже.
Исследованный контрольный штамм (Оксфордский 81арй. аигеик) показал М1С 32 мкг/мл и МВС 256 мкг/мл. М1С§ для 17 тестированных клинических изолятов составляли или 16, или 32 мкг/мл, МВС§ составляли или 128, или 256 мкг/мл. Большинство клинических изолятов имели М1С§ 16 мкг/мл и МВС§ 128 мкг/мл, см. табл. 5.
Таблица 5
88% клинических изолятов имели МКА 16 мкг/мл и 88% клинических изолятов имели МВС§ 128 мкг/мл, см. фиг. 3. Из 17 тестированных штаммов 3 оказались чувствительными к мупироцину (как показано дисковым диффузионным тестом), 8 проявили промежуточную чувствительность и 6 оказались резистентными. Все 6 резистентных к мупироцину штаммов имели МКА 16 мкг/мл, 4 штамма имели МВС§ 128 мкг/мл и 2 имели МВС§ 256 мкг/мл.
- 9 013519
Таблица 4
ЛПСз (АЛЛИМАКС)
Разведение (частей (ох) -оксфордский контроль
На основании полученных результатов оказалось очевидным, что активность аллицина в концентрации 500 и 1000 ч./млн соответствовала активности 1 к 10 и 1 к 5 разведениям грубого экстракта чеснока;
88% штаммов показали минимальные ингибиторные концентрации для аллицина 16 мкг/мл и 100% штаммов ингибировались аллицином при концентрации 32 мкг/мл;
88% штаммов показали минимальные бактерицидные концентрации для аллицина 128 мкг/мл и 100% штаммов уничтожались аллицином при концентрации 256 мкг/мл.
Аллицин оказался высокоэффективным в отношении как охарактеризованных, так и диких штаммов МК8А.
Кроме определения минимальной ингибиторной концентрации (М1С) проводили тестирование аллицина в отношении ряда грамположительных и грамотрицательных бактериальных видов относительно селекции девяти бактериальных изолятов при более близких разведениях водных растворов аллицина (аллимакс). Результаты представлены в табл. 6. Использовали изоляты:
грамположительные:
81арйу1ососсик аитеик: Оксфордский контрольный штамм (ОХ) и 2 лаб. изолята МК8А (102 & 103) (кокки)
81ар11у1ососси5 ер1бетт1б1к (кокки)
81арйу1ососсик ругодепек (кокки)
8еттаба тегсексепк (палочки) грамотрицательные:
8а1топе11а (урЫтипит (палочки)
Ркеиботопак аешдтока (палочки)
ЕксйебсЫа сой (палочки)
Оксфордскую изочувствительную агаровую среду стерилизовали и охлаждали приблизительно до 45-50°С перед применением. Получали серийные разведения водного аллицина (аллимакс) в концентрации 5000 ч./млн в изочувствительном бульоне.
- 10 013519
Таблица 6
Грамположительные 81арбу1ососси5 аигеик (ОХ, 102 и 103) и 81арбу1ососси5
- 11 013519
мл из каждого разведения аллицина добавляли в каждую стерильную чашку Петри (каждый тест проводили в двух копиях). 18 мл охлажденной среды добавляли к аллицину, смешивали и оставляли для охлаждения и затвердевания. Бактериальные образцы готовили как посевной материал 106 КОЕ/мл и 0,02 мл засевали на каждую чашку, используя многоточечный инокулятор. В каждую серию опытов включали отрицательные контроли.
Проведенные исследования выявили ряд М1Ск среди выбранных образцов грамположительных и грамотрицательных видов бактерий, наиболее чувствительными видами были стафилококки, характеризующиеся М1С между 15 и 41 ч./млн.
Наиболее резистентным грамотрицательным видом оказался Ркеиботопак аетидшока (М1С 378 ч./млн) и наиболее резистентным грамположительным видом оказалась палочка 8егга(1а тагсексепк (М1С 170 ч./млн).
Жидкие экстракты аллицина были высокоактивными в отношении клинических изолятов 81арйу1ососсик ашеик с множественной резистентностью к антибиотикам, включая те штаммы, которые были идентифицированы как резистентные к мупироцину.
Крем-препараты показали подходящие уровни активности при концентрации 500 мкг/мл, что подтверждает применение аллицинового крема как местного средства против мупироцинрезистентных и мупироцинчувствительных штаммов §1арйу1ососси8 аигеик с множественной резистентностью к антибиотикам.
Следуя аналогичной методике, подобные испытания проводили также для сравнения эффективности аллицина с эффективностью стрептомицина в отношении шести штаммов ΜΌΚ.ΤΒ (множественная лекарственная резистентность туберкулеза). Результаты представлены в табл. 7.
- 12 013519
Таблица 7
В присутствии противомикробного средства любой рост микобактерий туберкулеза оказывается очень важным. Из полученных результатов понятно, что, в то время как отмечали рост на всех скошенных агарах, на которых штаммы обрабатывали стрептомицином, не обнаруживали никакого роста ни на одном из скошенных агаров, обработанных аллицином (водный раствор при концентрации 500 ч./млн).
Кроме того, затем проводили исследования инсектицидных свойств аллицина, в частности его педикулоцидной активности в отношении головных вшей (Реб1си1и8 йитапик). Контроль заражения головными вшами по традиции осуществляли, используя обычные инсектициды с некоторым избытком. Однако в некоторых частях мира появились штаммы головных вшей, которые устойчивы к одному или более из названных инсектицидов.
В испытании взрослых самцов и самок вшей использовали приблизительно в равном количестве. Вшей кормили в начале испытания и оставляли минимально на четыре часа для акклиматизации, время, в течение которого они могли выделить избыток воды, поглощенной с насасываемой ими порцией крови. В экспериментальные серии включали по двадцать вшей и помещали их на квадраты открытой сетчатой нейлоновой ткани (тюль) как на субстрат. Каждую серию размещали на маркированной 30-мм пластиковой чашке Петри. Аликвоту приблизительно 5-10 мл аллицина в концентрации 5000 ч./млн в водном растворе наливали на основание чистой 30-мм пластиковой чашки Петри. Ткань, несущую вшей, погружали в жидкость на 10 с, во время которых ткань вращали по крайней мере дважды, чтобы обеспечить удаление пузырьков воздуха. После удаления из жидкости ткань и насекомых слегка промокали, чтобы устранить избыток жидкости, и возвращали в маркированную чашку Петри. Процедуру повторяли на других подобных квадратах ткани в той серии.
Тканевые квадраты, несущие вшей, инкубировали при нормальных условиях содержания (30°±2°, Саиб 50%±15% повышенная влажность) в течение ночи. В конце периода экспозиции, насекомых и ткань промывали, используя мягкий косметический шампунь (Воой® Егес.|иеп1 \Уаз11 8йатроо), разведенный одна часть шампуня к четырнадцать частям воды, после чего их три раза промывали, используя 250 мл теплой водопроводной воды (34°С), которую наливали через или на тканевые квадраты. Затем тканевые квадраты промокали досуха, используя медицинскую ткань для вытирания, и инкубировали при нормальных условиях содержания в чистой пластиковой чашке Петри соответствующего размера в течение одного часа. Обеспечивали порцией крови. Вшей оставляли на четыре часа для восстановления, прежде чем еще раз обрабатывали, как описано выше. Результаты трех испытаний представлены в табл. 8 в сравнении с контрольными сериями, которые обрабатывали 60% изопропиловым спиртом через 24 ч и 48 ч.
Таблица 8
Как можно видеть, аллицин показывает приемлемую эффективность в течение ночи при общей смертности 57,8% по сравнению со смертностью контроля 11%. Однако после порции насасываемой крови и второй обработки эффективность аллицина становится 98,4% против контроля 28,6%.
2. Синергическое действие аллицина в комбинации с другими противомикробными средствами.
Для оценки активности аллицина в отношении контрольных штаммов и клинических изолятов 8!арйу1ососси8 аигеик и ЕзсйепсЫа сой обследовали большое разнообразие антибиотиков, используя способы диффузии в чашках, относительно резистентности к антибиотикам и чувствительности к антибио
- 13 013519 тикам бактерий.
Использовали оксфордскую изочувствительную среду (Ι8Α, СМ471, Θχοίά, Ва81ид81оке, ИК). Названная среда рекомендована для тестирования противомикробной чувствительности Британским обществом противомикробной химиотерапии (В8АС). Использовали способы, предписанные В8АС (В8АС, 2001). Для каждой серии опытов проводили предварительные тесты, чтобы оптимизировать посевной материал, концентрацию аллицина и расстояние на чашке между тестируемыми агентами.
Бактериальные штаммы: один чувствительный к антибиотику контроль (81ар11. аитеиз, ЫСТС 6571), 2 метициллинрезистентных 81арй. аитеиз (МК.8А) и Е. сой, К12.
Антибиотики: тестировали 22 антибиотика; см. табл. 9.
Процедура.
Для каждого теста (проводили в трех копиях).
1. Приготовить культуру, выращенную в течение ночи.
2. Приготовить посевной материал, чтобы получить плотный, но не сплошной рост на стандартизированных 25-мл чашках агара. Высушить поверхность чашки.
3. Применение 6-мм стерильного пробкового бура, чтобы вырезать лунки в чашке, добавить 150 мкл аллицина.
4. Добавить антибиотический диск.
5. Инокулировать в течение ночи при 37°С.
6. Оценить синергизм (слияние зон), антагонизм (снижение в зоне ингибирования) или отсутствие эффекта. Получить большое количество результатов, чтобы выбрать те комбинации, которые следует тестировать в фазе 2 испытаний.
Результаты.
Первую серию экспериментов проводили, чтобы определить, оказывает ли изменение концентрации аллицина какое-либо влияние на возможный синергизм. В табл. 10 показано взаимодействие 8 антибиотиков с аллицином при двух концентрациях (500 250 ч./млн). Размеры зон даны в миллиметрах.
81арй. аитеиз: размеры зон для концентрации аллицина 250 ч./млн были между 5 и 9 мм и были меньше, чем размеры зон для 500 ч./млн аллицина.
Е. сой: размеры зон для концентрации аллицина 250 ч./млн составляли между 1 и 12 мм и были меньше, чем размеры зон для 500 ч./млн аллицина. Вообще размеры зон были меньше, чем размеры, полученные с 81арй. аитеиз.
Концентрацию 500 ч./млн выбрали для дальнейших испытаний, чтобы область взаимодействия между аллицином и антибиотиком была больше. Также не выявили никаких неубедительных результатов при использовании концентрации 500 ч./млн, но которые получали при использовании концентрации 250 ч./млн (табл. 10 - результаты отмечены ?).
Результаты, представленные в табл. 9, демонстрируют комбинации антибиотиков, выбранные для дальнейших исследований. Выбрали двенадцать комбинаций, все из которых имели оценку степени реакции больше 5. Комбинации с оценками выше 5, которые не были выбраны, содержали антибиотики, относящиеся к уже исследованной группе (например, группе аминогликозидаз). Гентамицин и тобрамицин, оба, были выбраны вследствие их обычного употребления при лечении пациентов и их высоких оценок степени.
В табл. 9 представлены результаты исследования сравнительной синергической активности 22 антибиотиков с аллицином в концентрации 500 ч./млн. Оценки степени реакции связывали с возможной степенью синергизма, который определяли, используя тесты диффузии в агаре.
Таблица 9
- 14 013519
Хотя чувствительный к антибиотикам контрольный штамм (Оксфорд) показал наибольшее число высоких оценок степени реакции, штаммы МК8А также показали хороший потенциал и отмечен возможный синергизм тетрациклина с Е. сой. На фиг. 5-9 продемонстрировано, как различные синергические взаимодействия распределились по степени.
Данные испытания четко продемонстрировали потенциал противомикробного синергического действия аллицина и большого разнообразия антибиотиков в отношении 81арйу1ососси8 аитеик, включая МК8А.
СЫогагпр-С
Егу1Ь-Е
Рцб ас]8РА
Таблица 10
МеНьМе
Реп ©-Р©
Τβΐт
МоуоЬНо '
СЫоташр - хлорамфеникол; Егу111 - эритромицин; Еик асИ - фузидиновая кислота; Ме111 - метициллин; Νονοό - новобиоцин; Реп О - пенициллин О; 8(гер - стрептомицин; Те! - тетрациклин.
К = результат, А1 = размер зоны аллицина.
Результаты - 8 = синергизм, N = нет синергизма, ? = неубедительные данные, А = возможный антагонизм.
The present invention relates to allicin.
Allicin, a sulfur compound having the formula
It is a major active compound characterized by numerous therapeutic properties, which are described for garlic (LSHit κηΐίνίι.ιιη). In its natural state, garlic does not contain allicin, but its precursor, alliin [(+) 8-allyl-L-cysteine sulfoxide]. Alliin is converted to allicin as a result of the action of the enzyme allinase or alli-lyase, also a component of garlic. Alliin and allinase get together when chopped garlic cloves. The following equation represents the synthesis scheme.
ABOUT
C | allinaaa / noo
----— ~ allicin alliin pyruvic acid O + 2. ,, - 1 + 2.
= 4
II Oh
However, allinase is rapidly and irreversibly inactivated by the product of its reaction, allicin, and is also inactivated under acidic conditions, such as in the stomach. Therefore, in practice, the output of allicin from chives is significantly lower than the theoretical maximum. Indeed, the output is usually about 0.3-0.5%.
AO 97/39115 describes a continuous method for the synthesis of allicin, which involves preparing a column containing allinase immobilized on a solid carrier, passing the solution of alliin through the column and obtaining a solution of allicin in the effluent.
In addition, the authors of this application received allicin in a spray-dried form and purchased it in capsules from Achscht 1n1Atyopa1 Ytyyeb οί Na1G Noshe, MPIagu Voab, Vous. Tank! 8i88eh, ΝΥ31 7п, IpPeb Kshdbot, under the trade name allimaks (ABB1MAX).
The present invention is based on studies of the new therapeutic properties of allicin.
In the most general aspect, the present invention relates to an antibacterial or pediculicidal preparation containing allicin or allicin metabolite and a pharmaceutically acceptable excipient.
Preferably, the preparation contains at least one other antibacterial or pediculidal agent.
More preferably, another agent is selected from (1) penicillins, including ampicillin, piperacillin, carbenicillin, amoxicillin, methicillin and penicillin C; () aminoglycosidases, including gentamicin, tobramycin, streptomycin and amikacin; (w) tetracyclines; (ίν) macrolides, including erythromycin; (ν) cephalosporins and cefamycins, including cefuroxime, cefamandole and moxalactam; and (νί) fusidic acid, rifampicin, novobiocin, vancomycin, ciprofloxacin, chloramphenicol and metronidazole.
Accordingly, the allicin metabolite is at least one of the number ΌΑΌ8 (diallyl disulfide), ΌΑΤ8 (diallyl trisulfide), adzoena, allitridium, or vinyldithiine.
Preferably, for oral administration or administration in the form of a suppository, vaginal suppository, or nasal preparation, a pharmaceutically acceptable excipient is a solid composition to which allicin or its metabolite is added. More preferably, if desired, the solid composition contains a volume-enhancing agent such as lactose, microcrystalline cellulose or dicalcium phosphate; a thickener such as gum or starch; a disintegrating agent such as starch sodium glycolate or cross-linked povidone; release agent, such as magnesium stearate; emulsifier; surfactant and sweeteners, flavors and colorants. Most preferably, allicin is bound by a spray-drying method, and the solid composition contains modified starch, such as maltodextrin, gum arabic, silicon dioxide, and an emulsifier, such as magnesium stearate.
Accordingly, for topical administration, a pharmaceutically acceptable excipient is included in a cream or soap. Alternatively, the excipient may be a lotion, ointment, toothpaste, mouthwash or a hair preparation such as shampoo, styling gel or conditioner. If appropriate, such preparations may include combinations of the following substances: surfactants, flavoring agents, dyes, stabilizers, antioxidants, emulsifiers, thickeners, waxes, glycerols, fats, suspending agents, defloculatory substances and antioxidants, all of which can may or may not be hypoallergenic. Preferably, the cream excipient contains white semi-solid paraffin, an emulsifier, such as stearate, preferably magnesium stearate, glycerin, water, yellow semi-solid paraffin, and a stabilizer, such as potassium citrate. Most preferably, the excipient cream is an aqueous cream, preferably an aqueous cream BP. Accordingly, the filler-soap contains sulfuric acid ester, cocamide and cocobetaine. Possibly, the excipient, in addition, may include flavors and colors.
- 1 013519
Preferably, for oral, parenteral or topical use, the ratio of allicin to excipient is one that provides allicin concentrations between 1 and 2000 ppm, preferably between 50 and 1000 ppm, more preferably between 250 and 500 ppm.
FIG. Figure 1 shows the average sizes of the zones for allicin fluid relative to clinical isolators 81a1yosossik aiteik, which showed resistance, intermediate resistance and sensitivity to mupirocin;
in fig. 2 - the average size of the zones for allicin cream relative to clinical isolators 81aryuososik aiteik, which showed resistance, intermediate resistance and sensitivity to mupirocin;
in fig. 3 — minimal inhibitory (M1C) and minimal bactericidal (MBC) concentrations for allicin (μg / ml) relative to clinical isolators 81131103;
in fig. 4 - inhibition zones formed by allicin against MK8L103;
in fig. 5 shows the reaction of degree 1 with the Oxford strain and streptomycin;
in fig. 6 - reaction of degree 2 with the Oxford strain and vancomycin;
in fig. 7 - reaction of degree 3 MK8L102.
The above and other aspects of the present invention are further described in more detail with reference to the following examples only as illustrative example.
1. The antimicrobial properties of single allicin.
Determination of the minimum inhibitory concentration (M1C) by the method of tube dilution.
Using an aseptic method, 1 ml of double concentration nutrient medium was poured into each of the 11 Kahn tubes (Kyap). To the first tube, tube 1, (labeled control) was added 1 ml of sterile deionized water. To the second tube, tube 2, 1 ml of allicin (2000 ppm in aqueous solution) was added, mixed using a mechanical mixer, and 1 ml was transferred from tube 2 to tube 3. The process was repeated sequentially until tube 11.
Therefore, a series of double dilutions between 1/2 and 1/1024 was obtained. 4 μl of culture grown overnight in a nutrient medium was used to inoculate each tube. The contents of the tubes were mixed and incubated at 37 ° C for 24 hours. Observed for turbidity in tubes and the lowest concentration without turbidity was recorded as M1C.
Determination of the minimum bactericidal concentration (MBC).
From each of the M1C-series tubes, in which no turbidity was detected, 100 μl were taken and scattered on the surface of the nutrient agar plate using a sterile glass spatula. The plates were incubated at 37 ° C for 24 hours and the appearance of bacterial colonies was monitored. The lowest concentration at which no viable bacteria was observed was recorded as MBC.
Determination of M1C using multipoint inoculum.
Allicin stock solution 1/4 v / v prepared by adding 5 ml of allicin (2000 ppm in an aqueous solution) to 15 ml of sterile water. 10 ml of the prepared solution was taken, added to 10 ml of double-molten, cooled nutrient agar, mixed, and used to prepare a 1/8 v / v dilution cup. The remaining 10 ml of allicin (1/4) was diluted with 10 ml of sterile water to obtain a solution with a dilution of 1/8 v / v. 10 ml of a 1/8 solution was used to prepare 1 cup diluted 1/16 v / v. Serial dilution was continued until no 1/1024 v / v dilution of allicin cups was obtained. The plates were allowed to equilibrate and dried at 44 ° C for 15 minutes.
The tested microorganisms (Table 1) were cultivated in nutrient broth at 37 ° C for 18 hours. 0.3 μl of undiluted cultures were seeded onto the surface of the prepared dried cups using a multipoint inoкулятор liter. The plates were incubated at 37 ° C for 24 hours and monitored for growth. The total number of viable organisms was determined according to the Miles-Misra method (M11ecM1kga).
- 2 013519
Table 1
The minimum inhibitory concentrations established by the method of tube dilution.
Of the microorganisms tested, Rkeibotopak aegidtock was the least sensitive to allicin, and SapFba a1Sapk was the most sensitive (Table 3). The values of M1C and MBC for allicin were calculated and are presented in Table. 2. The obtained sample of allicin was analyzed at a concentration of 2000 hours.
Minimum inhibitory concentrations established using a multi-point inoculant.
M1C was determined using a multipoint inoculator (Table 3). M1C values were calculated using allicin at a concentration of 2000 ppm, and the results were in good agreement with the results obtained by an in vitro dilution method.
The antimicrobial activity of allicin was demonstrated against eleven microbial species. The relative sensitivities of the microorganisms differed, the Rkeibotopak aegidschock was the least sensitive, and SapFba a1Sapk was the most sensitive.
Staphylococcus is one of the most important types of bacteria that cause disease in humans. They are normal inhabitants of the upper respiratory tract, skin, vagina and intestines. They are representatives of a group called pyogenic cocci (pyogenic). Staphylococcus is easily transmitted from asymptomatic carriers (without signs of disease) or from subjects with the disease through skin contact, aerosols, or from inanimate objects. Staphylococcus can cause a pathological process in almost every organ and tissue of the body.
- 3 013519
table 2
- 4 013519
- 5 013519
Table 3
M1C, determined using a multipoint inoculator
- 6 013519
- 7 013519
Methicillin (or its related antibiotics) is one of the main drugs used for the treatment of infectious diseases caused by paralysis. Methicillin-resistant 81yearusssi5ageic (ICBA) is a major nosocomial problem (infections caused by strains acquired in the hospital). Most of these strains are resistant to a wide variety of antibiotics (including some of the most recent). Some strains are also resistant to agents, such as mupirocin, currently used to combat asymptomatic carriage and colony formation in hospitals. In some intensive care units, 10–20% of patients may be infected with ICBA.
Using diffusion tests determine the sensitivity of isolates to antimicrobial agents, measuring the zone of inhibition around the cumulative indicator of antimicrobial agents. However, these tests are the most common tests used for testing for antimicrobial resistance. Inhibition zones of at least 6 mm, which are smaller than those of a known control strain, indicate bacterial sensitivity to the antimicrobial agent. The dimensions of the zones of 12 mm or less usually indicate resistance, there is also an intermediate resistant group between the indicated levels.
Using the above criteria, in the following examples, when comparing the sizes of zones with dimensions of antibiotic-sensitive control zones, clinical isolates were classified as (1) resistant to mupirocin, (and) intermediately resistant, and () sensitive to mupirocin.
Bacterial strains.
clinical isolates and one control strain 8 (ar11 aigeik (Oxford strain, ΝΟΤΟ 6571) were tested in test phase 1. All strains were provided by the royal hospitals (Roua1 Loioui and 8ΐ Va111151) in London and were identified as having multiple resistance to antibiotics.Subsequently, seventeen of these strains plus control were selected for phase 2 tests.
Phase 1. Diffusion analysis.
Initially mentioned tests were carried out to test the effectiveness of creams. However, the results of the study of creams were compared with the results of testing garlic and allicin liquid using standard agar well methods. Resistance to mupirocin was confirmed using a diffusion test with a standard paper disk. Penalty B (d). Müller-Ginton agar plates (MIELEG-Nash1op) were seeded (lawn layer) at a standardized concentration of 8 (ap11 aigeic. The cups were left to air dry. Round holes of standard size were cut out in an agar culture medium and filled with the same amount (100 μl) of cream or The antibacterial activity was determined by measuring the zones of inhibition formed around each well.
- 8 013519
Sensitivity to mupirocin.
Oxford 81ary. Aigeik formed a zone of 35 mm. 5 strains were identified as fully sensitive (zone sizes from 33 to 45 mm), 12 zones showed intermediate sensitivity (zone sizes between 12 and 23 mm) and 13 strains were resistant (no zone of inhibition).
Allicin solution activity.
An aqueous solution of allicin liquid has been shown to be highly active against all 81ary strains. Aigeik tested up to levels of 250 ppm, (Fig. 1).
Allicin cream activity.
When a conventional water cream was formulated, it was found that allicin was highly active against all strains at concentrations of 500 ppm. The indicated concentrations correspond to suitable levels for use as a topical agent (Fig. 2).
Phase 2. Minimum inhibitory concentrations (M1C) and minimum bactericidal concentrations (MBC) for allicin in relation to §1aryy1osossi8 aigeik.
Seventeen clinical isolates (selected from the group of phase 1 strains) and one control strain (Oxford strain, ICTS 6571) 81ary were tested. aigeik. Each strain was cultivated overnight at 37 ° C in Muller-Ginton broth (χοίά Ü1. CM405). The cultures were diluted with the mentioned broth to obtain a concentration of BT 7 CFU / ml, and a tenfold final concentration was used.
ml of aqueous solution of allicin (at a concentration of 5000 ppm) was added to 8 ml of MullerGinton broth (the broth was concentrated to avoid the effect of dilution of the medium) and diluted twice to obtain a concentration range between 1000 ppm (μg / ml) and hours / million (µg / ml) plus 0 hours / million (µg / ml) in the negative control. 1 ml of each mixture was taken from each medium and 1 ml of bacterial concentrate was added, reaching a final concentration of approximately 65 CFU / ml.
These broth cultures were incubated overnight at 37 ° C. The next day, the broths were examined for growth (turbid cultures). The lowest concentration that did not show any growth (transparent) was considered as M1C.
The culture containing M1C and all the above concentrations were subcultured on nutrient agar plates (Oxo bieniu, CM3) to determine the MFR. 0.1 ml of each culture was collected and cultured. The culture with the highest concentration at which growth was observed (turbidity) in the M1C study was also subcultured as a positive control. The plates were incubated overnight at 37 ° C. The highest concentration at which growth was observed (visible bacterial colonies) was considered as MBC.
In order to prepare a cream or solution for clinical use against §1aryupport, it is important to establish optimal concentrations of the antimicrobial agent that is active against the tested strains. The results are compared in Table. 4 below.
The studied control strain (Oxford 81ary. Aigeik) showed M1C 32 µg / ml and MBC 256 µg / ml. M1C§ for 17 tested clinical isolates were either 16 or 32 µg / ml, MBC§ were either 128 or 256 µg / ml. Most clinical isolates had M1C § 16 µg / ml and MBC § 128 µg / ml, see table. five.
Table 5
88% of clinical isolates had a µA 16 µg / ml and 88% of clinical isolates had an MBC С 128 µg / ml, see FIG. 3. Of the 17 strains tested, 3 were sensitive to mupirocin (as indicated by a disk diffusion test), 8 showed intermediate sensitivity and 6 were resistant. All 6 strains resistant to mupirocin had a µA 16 µg / ml, 4 strains had a MBC 128 128 µg / ml and 2 had a MBC 256 256 µg / ml.
- 9 013519
Table 4
LPSZ (ALLIMAKS)
Breeding (parts (oh) -Oxford control
On the basis of the results obtained, it was obvious that the activity of allicin at a concentration of 500 and 1000 ppm corresponded to the activity of 1 to 10 and 1 to 5 dilutions of coarse garlic extract;
88% of the strains showed minimal inhibitory concentrations for allicin 16 µg / ml and 100% of the strains were inhibited by allicin at a concentration of 32 µg / ml;
88% of the strains showed minimal bactericidal concentrations for allicin 128 μg / ml and 100% of the strains were destroyed by allicin at a concentration of 256 μg / ml.
Allicin has proven to be highly effective against both characterized and wild MK8A strains.
In addition to determining the minimum inhibitory concentration (M1C), allicin was tested for a number of gram-positive and gram-negative bacterial species in relation to the selection of nine bacterial isolates at closer dilutions of aqueous solutions of allicin (allimax). The results are presented in table. 6. Used isolates:
Gram-positive:
81yrossaic aiteic: Oxford control strain (OH) and 2 lab. isolate MK8A (102 & 103) (cocci)
81ar11u1osossi5 inter1bett1b1k (cocci)
81aryuososik rugodepek (cocci)
8ettaba teksseksepk (sticks) gram-negative:
8a1tope11a (orypit (sticks)
Rykeibopak aeshdtok (sticks)
Soybeans (sticks)
Oxford isosensitive agar medium was sterilized and cooled to approximately 45-50 ° C before use. Serial dilutions of aqueous allicin (allimax) were obtained at a concentration of 5000 ppm in isosensitive broth.
- 10 013519
Table 6
Gram-positive 81Arbu1osossi5 aigeik (OH, 102 and 103) and 81ArbuSaussi5
- 11 013519
ml from each dilution of allicin was added to each sterile Petri dish (each test was performed in two copies). 18 ml of the cooled medium was added to allicin, mixed and left to cool and solidify. Bacterial samples were prepared as inoculum of 10 6 CFU / ml and 0.02 ml were sown on each dish using a multipoint inocuator. Negative controls were included in each series of experiments.
Studies have identified a number of M1SK among selected samples of gram-positive and gram-negative bacterial species, the most sensitive species were staphylococci, characterized by M1C between 15 and 41 ppm.
The most resistant Gram-negative species turned out to be Rkeikotopak Aetidshock (M1C 378 ppm) and the most resistant Gram-positive species was the bacterium (13a tagseksepk (M1C 170 ppm).
Allicin liquid extracts were highly active against clinical isolates of antibiotic resistance, including those strains that were identified as resistant to mupirocin.
Cream preparations showed suitable levels of activity at a concentration of 500 µg / ml, which confirms the use of allicin cream as a local remedy for mupirocin-resistant and mupirocin-sensitive strains of parasiticus with multiple resistance to antibiotics.
Following a similar procedure, similar tests were also carried out to compare the effectiveness of allicin with the effectiveness of streptomycin against six strains of ΜΌΚ.ΤΒ (multidrug resistance of tuberculosis). The results are presented in table. 7
- 12 013519
Table 7
In the presence of antimicrobial agents, any growth of Mycobacterium tuberculosis is very important. From the results, it is clear that while growth was observed on all the canted agars on which the strains were treated with streptomycin, no growth was detected on any of the allicine canned agars (aqueous solution at a concentration of 500 ppm).
In addition, then, studies have been conducted on the insecticidal properties of allicin, in particular its pediculocidal activity against head lice (Reb1ci1i8 yitapik). Control of infection with head lice, according to tradition, was carried out using ordinary insecticides with some excess. However, head lice strains have emerged in some parts of the world that are resistant to one or more of these insecticides.
In testing adult males and female lice were used in approximately equal amounts. The lice were fed at the beginning of the test and left for at least four hours to acclimatize, the time during which they could excrete the excess water absorbed with the portion of blood they sucked. The experimental series included twenty lice and placed them on the squares of the open mesh nylon fabric (tulle) as on the substrate. Each batch was placed on a labeled 30 mm plastic Petri dish. An aliquot of approximately 5-10 ml of allicin at a concentration of 5000 ppm in an aqueous solution was poured onto the base of a clean 30 mm plastic Petri dish. The lice-carrying tissue was immersed in the liquid for 10 s, during which the tissue was rotated at least twice to ensure the removal of air bubbles. After the tissue and insects were removed from the liquid, they were slightly blotted to eliminate excess liquid and returned to the marked Petri dish. The procedure was repeated on other similar squares of fabric in that series.
Tissue squares bearing lice were incubated under normal conditions of containment (30 ° ± 2 °, Saib 50% ± 15% increased humidity) overnight. At the end of the exposure period, the insects and tissue were washed using a soft cosmetic shampoo (Vooy® Ehes. | Iep1 \ uaz11 8yatroo), diluted one part of the shampoo to fourteen parts of water, after which they were washed three times using 250 ml of warm tap water (34 ° C), which was poured through or on tissue squares. Then the tissue squares were blotted dry using medical wiping cloth and incubated under normal conditions in a clean plastic Petri dish of the appropriate size for one hour. Provided a portion of blood. The lice were left for four hours to recover, before being processed again, as described above. The results of the three tests are presented in Table. 8 in comparison with the control series, which were treated with 60% isopropyl alcohol after 24 h and 48 h.
Table 8
As can be seen, allicin shows acceptable efficacy overnight with a total mortality rate of 57.8% compared with a control mortality rate of 11%. However, after a portion of the absorbed blood and the second treatment, the effectiveness of allicin becomes 98.4% against the control of 28.6%.
2. Synergistic action of allicin in combination with other antimicrobial agents.
To assess the activity of allicin with respect to the control strains and clinical isolates, 8 aryu1osossi8 aigeik and Ezsiepsoy was examined for a wide variety of antibiotics using the methods of diffusion in the cups, relative to antibiotic resistance and sensitivity to antibiotics.
- 13 013519 tikam bacteria.
They used the Oxford isosensitive medium (Ι8Α, СМ471, χοίά, Va81id81oke, IR). The named medium is recommended for antimicrobial susceptibility testing by the British Society of Antimicrobial Chemotherapy (B8AC). Used the methods prescribed by B8AC (B8AC, 2001). For each series of experiments, preliminary tests were carried out to optimize the seed, the concentration of allicin and the distance on the plate between the tested agents.
Bacterial strains: one antibiotic-sensitive control (81ap11. Aitez, YSTS 6571), 2 methicillin-resistant 81ary. Aitez (MK.8A) and E. Soi, K12.
Antibiotics: tested 22 antibiotics; see tab. 9.
Procedure.
For each test (carried out in three copies).
1. Prepare a culture grown overnight.
2. Prepare inoculum to obtain dense, but not continuous growth on standardized 25-ml agar plates. Dry the surface of the cup.
3. Use a 6 mm sterile cork drill to cut the wells in the cup, add 150 µl of allicin.
4. Add an antibiotic disk.
5. Inoculate overnight at 37 ° C.
6. Assess synergism (zone fusion), antagonism (decrease in the zone of inhibition) or no effect. Get a large number of results to select those combinations that should be tested in phase 2 of the test.
Results.
The first series of experiments was carried out to determine if the change in the concentration of allicin had any effect on possible synergism. In tab. 10 shows the interaction of 8 antibiotics with allicin at two concentrations (500– 250 ppm). Zone sizes are in millimeters.
81ary. Notes: The sizes of the zones for the allicin concentration of 250 ppm were between 5 and 9 mm and were smaller than those of the 500 ppm of allicin zones.
E. soi: the sizes of the zones for the allicin concentration of 250 ppm were between 1 and 12 mm and were smaller than the sizes of the zones for the 500 ppm of allicin. In general, the sizes of the zones were smaller than those obtained with 81are. aitez.
A concentration of 500 ppm was chosen for further testing, so that the area of interaction between allicin and the antibiotic was larger. Also, no inconclusive results were found when using a concentration of 500 ppm, but which were obtained using a concentration of 250 ppm (Table 10 - are the results marked?).
The results presented in table. 9 show antibiotic combinations selected for further research. Twelve combinations were selected, all of which had an assessment of the degree of reaction greater than 5. Combinations with ratings above 5 that were not selected contained antibiotics belonging to the group already studied (for example, the group of aminoglycosidases). Gentamicin and tobramycin, both, were chosen because of their usual use in treating patients and their high grade scores.
In tab. 9 shows the results of a study of the comparative synergistic activity of 22 antibiotics with allicin at a concentration of 500 ppm. Evaluation of the degree of reaction was associated with a possible degree of synergism, which was determined using diffusion tests in agar.
Table 9
- 14 013519
Although a control strain sensitive to antibiotics (Oxford) showed the highest number of high grades for the degree of reaction, MK8A strains also showed good potential and possible synergism of tetracycline with E. soi was noted. FIG. Figures 5–9 demonstrate how the various synergistic interactions are distributed across a degree.
These trials clearly demonstrated the potential antimicrobial synergistic effect of allicin and a wide variety of antibiotics against arrhythmia, including MK8A.
Syograpr-c
EGU-E
RCB as] 8PA
Table 10
MEnME
Rep © -P ©
Ϊ́βΐt
MouoNo '
Sytoshr - chloramphenicol; EGU111 - erythromycin; EIC asI is fuzidinic acid; Me111 - methicillin; Νονοό - novobiocin; Rep O - penicillin O; 8 (ger - streptomycin; Te! - tetracycline.
K = result, A1 = size of allicin zone.
Results - 8 = synergism, N = no synergism,? = inconclusive data, A = possible antagonism.
Claims (10)
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GBGB0122793.3A GB0122793D0 (en) | 2001-09-21 | 2001-09-21 | Allicin |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
EA200700663A1 EA200700663A1 (en) | 2007-12-28 |
EA013519B1 true EA013519B1 (en) | 2010-06-30 |
Family
ID=9922476
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
EA200700663A EA013519B1 (en) | 2001-09-21 | 2002-09-23 | Antibacterial or pediculicidal preparation comprising allicin |
EA200400451A EA009169B1 (en) | 2001-09-21 | 2002-09-23 | Preparation containing allicin for the treatment of multiply drug resistant bacteria |
Family Applications After (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
EA200400451A EA009169B1 (en) | 2001-09-21 | 2002-09-23 | Preparation containing allicin for the treatment of multiply drug resistant bacteria |
Country Status (6)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP1435928A1 (en) |
AU (1) | AU2002334074B2 (en) |
EA (2) | EA013519B1 (en) |
GB (1) | GB0122793D0 (en) |
WO (1) | WO2003024437A1 (en) |
ZA (1) | ZA200403002B (en) |
Families Citing this family (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
AU2003226613A1 (en) * | 2002-04-25 | 2003-11-10 | Yeda Research And Development Co. Ltd | Use of allicin as insect repellent and insecticide in agricultural crops |
EP1398034A1 (en) * | 2002-09-13 | 2004-03-17 | Vicente Teofilo Roldan | Topical application composition for preventing and treating pediculosis, method of elaboration and uses thereof |
GB0307079D0 (en) * | 2003-03-27 | 2003-04-30 | Stone Island Holdings Ltd | Allicin |
EP3020397B1 (en) * | 2010-12-08 | 2019-04-17 | Danmarks Tekniske Universitet | Ajoene for use in the treatment of bacterial infections |
US9145506B2 (en) * | 2013-07-01 | 2015-09-29 | Jr Co., Ltd. | Natural adhesive |
FR3023716A1 (en) * | 2014-07-18 | 2016-01-22 | Univ Aix Marseille | COMPOUND AND ASSOCIATION OF COMPOUNDS FOR THE TREATMENT OF LICE |
CN104434781A (en) * | 2014-11-08 | 2015-03-25 | 新疆埃乐欣药业有限公司 | Application of allicin injection in preparation of medicines for treating infectious diseases caused by fungi/bacteria |
CN113209072A (en) * | 2021-04-29 | 2021-08-06 | 广东省科学院微生物研究所(广东省微生物分析检测中心) | Application of diallyl trisulfide in preparation of preparation for inhibiting secretion system of pseudomonas aeruginosa |
Citations (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB2061987A (en) * | 1978-12-12 | 1981-05-20 | Chinoin Gyogyszer Es Vegyeszet | Cyclodextrin complexes, their preparation, and pharmaceutical compositions containing them |
JPS57149226A (en) * | 1981-03-10 | 1982-09-14 | Riken Kagaku Kogyo Kk | Prevention of leucocytozoonosis |
EP0305968A2 (en) * | 1987-08-31 | 1989-03-08 | Yeda Research And Development Company Limited | Compositions against protozoal diseases |
DE4012884A1 (en) * | 1990-04-23 | 1991-10-24 | Lichtwer Pharma Gmbh | Garlic extracts contg. alliinase - have improved therapeutic activity for treating hypertension, arteriosclerosis, diarrhoea, intestinal worms etc. |
DE4024155A1 (en) * | 1990-07-30 | 1992-02-06 | Marcela Dipl Ing Holzhey | Internal use of allicin-urotropin product - to treat bacterial, viral and fungal infections including meningitis, rabies, AIDs, tuberculosis, leprosy, plague and cancer |
FR2706307A1 (en) * | 1993-06-18 | 1994-12-23 | Pelletier Jacques | Formula for the treatment of AIDS |
DE19633444A1 (en) * | 1996-08-20 | 1997-05-22 | Holzhey Marcela Dipl Ing | Use of allicin-urotropin product at high dilution |
WO1997039115A1 (en) * | 1996-04-16 | 1997-10-23 | Yeda Research And Development Co. Ltd. | Immobilized alliinase and continuous production of allicin |
US5705152A (en) * | 1990-10-26 | 1998-01-06 | Interprise Limited | Antimicrobial composition |
WO1999066798A1 (en) * | 1998-06-25 | 1999-12-29 | John Stephen Middleton | Garlic pour-on cattle and sheep anthelmintic |
-
2001
- 2001-09-21 GB GBGB0122793.3A patent/GB0122793D0/en not_active Ceased
-
2002
- 2002-09-23 EA EA200700663A patent/EA013519B1/en not_active IP Right Cessation
- 2002-09-23 WO PCT/GB2002/004309 patent/WO2003024437A1/en active IP Right Grant
- 2002-09-23 EP EP02798782A patent/EP1435928A1/en not_active Ceased
- 2002-09-23 AU AU2002334074A patent/AU2002334074B2/en not_active Ceased
- 2002-09-23 EA EA200400451A patent/EA009169B1/en not_active IP Right Cessation
-
2004
- 2004-04-20 ZA ZA2004/03002A patent/ZA200403002B/en unknown
Patent Citations (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB2061987A (en) * | 1978-12-12 | 1981-05-20 | Chinoin Gyogyszer Es Vegyeszet | Cyclodextrin complexes, their preparation, and pharmaceutical compositions containing them |
JPS57149226A (en) * | 1981-03-10 | 1982-09-14 | Riken Kagaku Kogyo Kk | Prevention of leucocytozoonosis |
EP0305968A2 (en) * | 1987-08-31 | 1989-03-08 | Yeda Research And Development Company Limited | Compositions against protozoal diseases |
DE4012884A1 (en) * | 1990-04-23 | 1991-10-24 | Lichtwer Pharma Gmbh | Garlic extracts contg. alliinase - have improved therapeutic activity for treating hypertension, arteriosclerosis, diarrhoea, intestinal worms etc. |
DE4024155A1 (en) * | 1990-07-30 | 1992-02-06 | Marcela Dipl Ing Holzhey | Internal use of allicin-urotropin product - to treat bacterial, viral and fungal infections including meningitis, rabies, AIDs, tuberculosis, leprosy, plague and cancer |
US5705152A (en) * | 1990-10-26 | 1998-01-06 | Interprise Limited | Antimicrobial composition |
FR2706307A1 (en) * | 1993-06-18 | 1994-12-23 | Pelletier Jacques | Formula for the treatment of AIDS |
WO1997039115A1 (en) * | 1996-04-16 | 1997-10-23 | Yeda Research And Development Co. Ltd. | Immobilized alliinase and continuous production of allicin |
DE19633444A1 (en) * | 1996-08-20 | 1997-05-22 | Holzhey Marcela Dipl Ing | Use of allicin-urotropin product at high dilution |
WO1999066798A1 (en) * | 1998-06-25 | 1999-12-29 | John Stephen Middleton | Garlic pour-on cattle and sheep anthelmintic |
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
DATABASE WPI, Section Ch, Week 198242, Derwent Publications Ltd., London, GB; Class B04, AN 1982-89553E, XP002223376 & JP 57149226 A (RIKA KAGAKU KOGYO K), 14 September 1982 (1982-09-14), abstract * |
FARBMAN K.S. ANTIBACTERIAL ACTIVITY OF GARLIC AND ONIONS: A HISTORICAL PERSPECTIVE, PEDIATRIC INFECTIOUS DISEASE JOURNAL, WILLIAMS & WILKINS, BALTIMORE, MD, US, vol. 12, no. 7, 1 July 1993 (1993-07-01), pages 613-614, XP002051069, ISSN: 0891-3668, the whole document * |
MIRON T. ET AL. The mode of action of allicin: its ready permeability through phospholipid membranes may contribute to its biological activity, BIOCHIMICA ET BIOPHYSICA ACTA. BIOMEMBRANES, AMSTERDAM, NL, vol. 1463, no. 1, 15 January 2000 (2000-01-15), pages 20-30, XP004273122, ISSN: 0005-2736 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EA009169B1 (en) | 2007-10-26 |
ZA200403002B (en) | 2005-06-29 |
GB0122793D0 (en) | 2001-11-14 |
EA200700663A1 (en) | 2007-12-28 |
EA200400451A1 (en) | 2004-12-30 |
EP1435928A1 (en) | 2004-07-14 |
AU2002334074B2 (en) | 2006-11-09 |
WO2003024437A1 (en) | 2003-03-27 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US11839208B2 (en) | Cannabidiol compositions and uses thereof | |
US9370476B2 (en) | Compositions and methods for altering human cutaneous microbiome to increase growth of Staphylococcus epidermidis and reduce Staphylococcus aureus proliferation | |
Juel-Jensen et al. | Treatment of zoster with idoxuridine in dimethyl sulphoxide. Results of two double-blind controlled trials | |
CN106470548A (en) | Antimicrobial compositions | |
Rubinstein et al. | Tissue penetration of amphotericin B in Candida endocarditis | |
JP2008535814A (en) | Antimicrobial agent | |
EA013519B1 (en) | Antibacterial or pediculicidal preparation comprising allicin | |
EA011631B1 (en) | Allicin | |
Wise | Principles of management of staphylococcic infections | |
JPH07108857B2 (en) | Bacterial preparations for the prevention and treatment of inflammatory processes and allergic diseases | |
AU2002334074A1 (en) | Allicin | |
RU2613708C2 (en) | Ways of acne treatment | |
Lind et al. | A carrier method for the assessment of the effectiveness of disinfectants against Mycobacterium tuberculosis | |
KR20150141385A (en) | Bacteriophage that kills Propionibacterium acnes | |
US10398664B2 (en) | Methods of diagnosing and treating infected implants | |
Younis et al. | Determination of Inhibition Activity for Arak and Cloves Against Aerobic Bacterial Isolates from Patients of Dental Caries and Gingivitis | |
Al-Fatlawy | Recognition of Antibiotic Resistance Patterns of Staphylococcus aureus Isolated from skin Infection | |
JP2002528064A (en) | Use of antifungal agents in the treatment of sclerosis | |
BR102021022320A2 (en) | SURGICAL SUTURE THREAD WITH ANTIMICROBIAL ACTION BY COMBINED INCORPORATION OF AMPICILLIN ANTIBIOTICS AND PEPPER-ROSEMARY ESSENTIAL OIL | |
CA3106105A1 (en) | Methods of diagnosing and treating infected implants | |
Dill | Pernicious anaemia treated by lactobacillin | |
RU2214281C1 (en) | Preparation for control of intrahospital infection, treatment of medicinal tools and agents of personal hygiene | |
OA19650A (en) | Cannabidiol compositions and uses thereof. | |
Ogu et al. | Efficacy of Metabolites from Saccharum officinarum Linn. Endophytic Fungi against some Uropathogenic Bacteria | |
CN1861623A (en) | Asparagic acid azithromycin and preparation thereof |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s) |
Designated state(s): AM AZ BY KG MD TJ TM |
|
MM4A | Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s) |
Designated state(s): KZ RU |