DE60317896T2

DE60317896T2 - Verfahren zur verbesserung der körpergewichtszunahme und futterumsetzungseffizienz bei tieren

Info

Publication number: DE60317896T2
Application number: DE60317896T
Authority: DE
Inventors: Julio Buford PIMENTEL
Original assignee: Anitox Corp
Current assignee: Anitox Corp
Priority date: 2002-06-06
Filing date: 2003-06-06
Publication date: 2008-11-06
Anticipated expiration: 2023-06-07
Also published as: MXPA04012213A; EP1509166A2; PE20040070A1; WO2003103532A2; EP1509166B1; AU2003248632A8; AU2003248632A1; EP1509166A4; BR0311815A; AR040150A1; TW200400796A; TWI321453B; US20030228313A1; WO2003103532A3; DE60317896D1; US7534433B2; ATE380035T1

Description

HINTERGRUND DER ERFINDUNG
Gebiet der Erfindung
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Verbesserung der Körpergewichtszunahme und zur Steigerung der Futterverwertungsseffizienz in Körpergewichtszunahme bei Tieren, durch das Füttern der Tiere mit einer wirksamen Antikörperdosis gegen antinutritive Faktoren, die häufig in Futtermitteln vorkommen oder von Mikroorganismen produziert werden, die im Magen-Darm-Trakt vorkommen.
Diskussion des Hintergrunds
In der Tierindustrie macht das Futter 50–70% der gesamten Produktionskosten aus. Somit kann jede Verbesserung der Fähigkeit des Tieres Futter in vermarktbare Produkte umzuwandeln, z. B. das Körpergewicht des Tieres, die Profitabilität für den Tierproduzenten deutlich erhöhen.
In der Tierindustrie sind verschiedene Verfahren zur Verbesserung der Futterverwertung bekannt. Eines der häufigsten Verfahren ist das Hinzufügen von subtherapeutischen Antibiotikamengen zum Futter, um die tierische Leistung zu steigern. Antibiotika verringern die Exposition des Tieres gegenüber einer bakteriellen Infektion und senken die Bakterienzahl im Magen-Darm-Trakt, was es dem Tier ermöglicht Nährstoffe wirksamer zu nutzen, da das Tier und die Mikroflora um dieselben Nährstoffe konkurrieren. Die Daueranwendung von Antibiotika als Wachstumförderer verursacht jedoch verschiedene Probleme, einschließlich des Einschleusens von Arzneimittelgruppen in tierische Erzeugnisse, der Wachstumsförderung von antibiotikaresistenten Bakterien und der Risikoerhöhung einer Umweltbelastung. Aufgrund der Schwere dieser Probleme ist es wahrscheinlich, dass die Verwendung von Antibiotika als Wachstumförderer in der Tierindustrie bald vollständig verboten sein wird. Die Europäische Union hat bereits die Verwendung von fünf verschiedenen wachstumsfördernden Antibiotika bei Tieren, die für den menschlichen Verzehr gezüchtet werden, verboten und weitere können folgen. In den Vereinigten Staaten wurden in den letzten Jahren drei wachstumsfördernde Antibiotika verboten.
Um die wachstumsfördernden Antibiotika zu ersetzen, wurden mehrere neue Produkte entwickelt. Es wurden Enzyme wie Phytase, Protease und andere verwendet, um die Verdauung von bestimmen Nährstoffen zu unterstützen, wodurch die Körpergewichtszunahme der Tieren verbessert wird. Diese Verbesserung kann eher der erhöhten Verdaulichkeit der Nährstoffe zugeschrieben werden, die diese Enzyme helfen zu verdauen, als einer Verringerung der Bakterienzahl im Magen-Darm-Trakt.
Andere Verfahren, wie Konkurrenzausschluss (CE, Competitive Exclusion) und Probiotika wurden verwendet, um das Auftreten von pathogenen Organismen bei Tieren zu verringern. Im Fall von CE, wurden die Tiere mit einer hohen Konzentration von „hilfreichen Bakterien" gefüttert, die fremde Bakterien daran hindern den Magen-Darm-Trankt zu besiedeln. Obwohl CE in Laborversuchen erfolgreich war, waren Feldversuche widersprüchlich.
Die Verwendung von Antikörpern zur Vermeidung von bestimmten Infektionen bei Tieren steigert die Wachstumsleistung. Es wurden zwei mögliche Mechanismen vorgeschlagen, worüber Antikörper Infektionen verhindern. Gemäß dem ersten Mechanismus verringern Antikörper durch das Binden an bestimmte Rezeptorstellen die Anzahl fremder Bakterien im Magen-Darm-Trakt, wodurch verhindert wird, dass Bakterien sich im Darm festsetzen. Gemäß dem zweiten Mechanismus können Antikörper die Bakterienanzahl durch das Binden an bestimmte Rezeptoren auf den Bakterien selbst verringern, so dass die bakterielle Vermehrung verhindert wird.
Von der Wirksamkeit von aviären Antikörpern zur Vorbeugung von bakteriellen Infektionen bei Schweinen wurde in mehreren Publikationen berichtet. In vitro Studien von Jungling et al. (J. Vet. Med 38: 373–381, 1991) legen nahe, dass Eiweißantikörper wirksam zur Verringerung der Adhäsion von enterotoxigenen E. coli an isolierte Schweineenterozyten sind.
Yokohama et al. (Infect. Immuntity 60: 998–1007, 1992 und Am. J. Vet. Res. JY: 867–872, 1993) und Erhard et al. (Berl. Munich. Tierarztl. Wschr. 106: 383–387, 1993) offenbaren in vivo Tests, die zeigen, dass sprühgetrocknete Eiweißextrakte, die Antikörper gegen E.coli enthielten, eine Colibacillose in neugeborenen Ferkeln und Kälbern verhindern kann.
Kellner et al. (Jahrgang 49 Jan 94(1) 31–34, 1994) beschrieben die Ergebnisse von Studien, die zeigten, dass an Schweine verabreichte sprühgetrocknete Eiweißextrakte, die Antikörper gegen E.coli enthielten, die Anzahl der Tage, an denen die Schweine an Durchfall litten, verringerten.
Das U.S. Patent 5741489 von Pimentel offenbart ein Verfahren zur Steigerung der Futterverwertungsseffizienz bei Schweinen und Hühnern durch das Füttern der Tiere mit einer Antiurease-enthaltenden Diät. Die Referenz offenbart jedoch keine Antikörpermischung, die im Tierfutter mehrere antinutritive Faktoren hemmt.
Die vorliegende Erfindung stellt durch Füttern eines Antikörpers gegen antinutritive Faktoren, die im Magen-Darm-Trakt vorkommen, ein wirksames und unbedenkliches Verfahren zur Verbesserung von Körpergewichtszunahme, Futterverwertungsseffizienz oder beidem bei Tieren dar.
ZUSAMMENFASSUNG DER ERFINDUNG
Eine Aufgabe der vorliegenden Erfindung ist ein Verfahren zur Steigerung der Gewichtszunahme und Verbesserung der Futterverwertungsseffizienz bereitzustellen, umfassend das Füttern von Geflügel und Säugern mit einer wirksamen Antikörpermenge gegen Uresse, einem Trypsininhibitor und/oder Antikörpern gegen andere antinutritive Faktoren, die entweder in Futtermitteln vorhanden sind oder von Mikroorganismen im Magen-Darm-Trakt des Tieres gebildet werden. Die Erfindung kann bei Tieren, die für den menschlichen Verzehr geeignet sind, Versuchstieren, Begleittieren oder Heimtieren und anderen Arten von Tieren angewandt werden. Der an die Tiere verfütterte Antikörper kann in unfraktioniertem Vollei oder Eigelb vorhanden sein, und kann gefriergetrocknet, sprühgetrocknet oder in einer für den Verzehr geeigneten Lösung suspendiert sein.
Eine weitere Aufgabe der Erfindung ist ein Verfahren zur Steigerung der Körpergewichtszunahme, Futterverwertungseffizienz oder beidem in Tieren bereitzustellen, die unter Körpergewichtsverlust leiden, durch das Füttern der Tiere mit einer wirksamen Menge von Antiurease-Anitkörpern und Antikörpern gegen einen antinutritven Faktor während oder nach einer Zeitspanne in der das Tier das Körpergewicht verliert.
AUSFÜHRLICHE BESCHREIBUNG DER ERFINDUNG
Die vorliegende Erfindung umfasst Füttern von Tieren mit einer Diät, die unbedenkliche und wirksame Antikörpermengen gegen antinutritive Faktoren enthält. Es wurde herausgefunden, dass eine gesteigerte Gewichtszunahme und gesteigerte Futterverwertungseffizienz durch Füttern der Tiere mit Antikörpern gegen antinutritive Faktoren, die in gewöhnlichen Futtermitteln vorkommen oder von Mikroorganismen, die normalerweise im Magen-Darm-Trakt der Tiere vorkommen, produziert werden, erreicht werden kann.
In den bevorzugten Ausführungsformen, werden die Tiere mit unbedenklichen und wirksamen Mengen von Antikörpern gegen Uresse zusammen mit einem Antikörper gegen einen Trypsininhibitor gefüttert. Es werden Antikörper gegen Uresse der Jackbohnenpflanze oder Sojabohnentrypsinhibitoren bevorzugt. Diese Antikörper sind wirksam darin, die entgegengesetzten Wirkungen von Uresse und Trypsininhibitoren zu hemmen, die im Magen-Darm-Trakt von Tieren und in Futtermitteln vorkommen. Gleichzeitig sind Antikörperprodukte, die an die Tiere verfüttert werden, antibakterieller oder antiviraler Art.
Uresse wandelt im Magen-Darm-Trakt Harnstoff in Ammoniak um. Tritt eine derartige Reaktion auf, muss das Tier den Ammoniak in nichtessentielle Aminosäuren umwandeln oder der überschüssige Ammoniak muss entgiftet werden. Der Entgiftungsvorgang benötigt Energie, die besser zur Steigerung des Körpergewichts verwendet werden könnte. Uresse kann auch in zahlreichen Leguminosen wie Sojabohnen, unabhängig davon ob rohe Sojabohnen oder verarbeitetes Sojabohnenmehl, vorhanden sein.
Rohe Sojabohnen werden normalerweise nicht an Tiere verfüttert, da sie mehrere antinutritive Faktoren, einschließlich Uresse und Proteasen (z. B. Trypsininhibitor), enthalten. Trypsininhibitoren hemmen die Proteinabsorption durch eine Reduktion der enzymatischen Aktivität von Trypsin, die notwendig ist, um Protein zu Aminosäuren abzubauen. Eine weitere Schwierigkeit, die mit Trypsininhibitoren verbunden ist, dass sie eine Freisetzung von Cholecystokinin (CCK) induzieren, was Übersättigung und pankreatische Hyperplasie verursacht.
Bevor sie an die Tiere verfüttert werden ist eine Wärmebehandlung wie Rösten und andere Behandlungen der rohen Sojabohnen notwendig, um die antinutritiven Faktoren zu zerstören. Sojabohnenmehl, das Abfallprodukt der Sojaölextraktion, erfordert ebenfalls eine Wärmebehandlung, um die antinutritiven Faktoren zu zerstören. Das Füttern von Tieren mit Antikörpern gegen Uresse und Trypsininhibitoren verbessert die Leistung der Tiere, die mit rohen Sojabohnen oder nicht ausreichend verarbeitetem Sojabohnenmehl gefüttert werden.
Durch Deaktivieren oder Senken der Aktivität antinutritiver Faktoren, die in Futtermitteln vorhanden sind oder von Mikororganismen im Magen-Darm-Trakt produziert werden, kann ein wirksamerer Prozess der Futterverdauung, -absorption und -verwertung erreicht werden.
Antikörper gegen antinutritive Faktoren, wie z. B. Antiproteasen, Gossypol in Baumwollsamen, Tannine in Hirse und andere antinutritive Faktoren, die in Futtermitteln vorhanden sind oder von Mikroorganismen im Magen-Darm-Trakt gebildet werden, befinden sich auch innerhalb des Schutzumfangs der vorliegenden Erfindung und erhöhen die Leistung, wenn sie von dem Tier gefressen werden. Geeignete Antiproteasen schließen Antitrypsin, Antichymotrypsin und Anticarboxypeptidase mit ein, wobei die Erfindung nicht nur auf diese drei Proteasen beschränkt ist, da in der Zukunft noch weitere gefunden werden können. Antikörper, die für die vorliegende Erfindung geeignet sind, sind nicht auf die Antikörper gegen antinutritive Faktoren in herkömmlichen Futtermitteln beschränkt, und schließen Antikörper zur Hemmung von schädlichen Verbindungen in Yuccapflanzen und anderen mit ein. Während der Herstellung von Yuccaextrakten zur kommerziellen Verwendung können proteinvernetzende Verbindungen und Tanninverbindungen gebildet werden. Diese Verbindungen können Magen-Darm-Enyzme inaktivieren.
Eine weitere Ausführungsform der Erfindung betrifft ein Verfahren zur Steigerung der Gewichtszunahme bei Tieren, insbesondere domestizierte Begleittiere wie z. B. Katzen, Hunde, Schweine und andere Begleittiere, die aufgrund von Krankheit oder Fehlernährung unter Gewichtsverlust leiden können. Dieses Verfahren umfasst das Füttern des Tieres, das an Gewichtsverlust leidet, mit einer wirksamen Menge eines Antiureaseantikörpers, nachdem der Gewichtsverlust aufgetreten ist. Alternativ kann das Füttern eines Antiureaseantikörpers in einer bestimmten Zeitspanne durchgeführt werden, im der erwartet wird, dass das Tier einen Gewichtsverlust erleidet, wie z. B. während der Dauer einer Krankheit, von der bekannt ist, dass sie Gewichtsverlust verursacht. Die Behandlung kann nachdem die Krankheit geheilt wurde weitergeführt werden, bis das Wunschgewicht erreicht wird.
Nichtinvasive und kostengünstige Verfahren zur Herstellung von Antikörpern gehören zum Stand der Technik. Es wurde berichtet, dass Tiere Antikörper produzieren, die spezifisch für Salmonella, E. coli und andere Bakterienarten sind, wenn diese ihnen oral verabreicht wurden. (Ricke et al, Appl. Environ. Microb. 54: 596–599, 1988; Neighbor et al, Avian Dis. 35: 315–320, 1991).
Ein weiteres wirtschaftlich sinnvolles Verfahren zur Herstellung von Antikörpern ist das Impfen von. Hühnern mit Antikörpern. Es wurde beispielsweise gezeigt, dass Hühner, denen ein fremdes Antigen injiziert wurde, spezifische Antikörper entwickeln und diese Antikörper im Eigelb anreichern. Es wurde festgestellt, dass Eier 50–200 mg Antikörper enthalten. Wenn eine Henne mit einem bestimmten Antigen geimpft wird, so ist 10–20% des Antikörpers, des aus dem Ei isoliert wird, spezifisch für dieses Antigen.
Antikörper, die in Eiern produziert werden, können von sämtlichen Tierarten verwendet werden. Eigelbantikörper werden von Ferkeln auf eine ähnliche Art und Weise absorbiert wie homologe Schweineantikörper. Es wurde berichtet, dass aktive Antikörper im gesamten distalen Leerdarm von 8 Wochen alten Ferkeln gefunden wurden, die mit antikörperenthaltendem lyophilisiertem Eigelb gefüttert wurden. Es wurde auch festgestellt, dass verglichen mit gereinigten sprühgetrockneten Antikörpern, diese stabiler gegenüber dem Abbau durch die Magensäure sind, wenn sie als sprühgetrocknetes Eigelb zubereitet werden.
In den erfindunggemäßen bevorzugten Ausführungsformen sind an die Tiere verfütterte Antikörper gegen antinutrive Faktoren in unfraktionierten Volleiern oder bevorzugt in Eigelb enthalten. Das Vollei oder das Eigelb, die die gewünschten Antikörper enthalten, können bevor man sie dem Tierfutter hinzugefügt, weiter verarbeitet werden. Das Vollei oder Eigelb können mit einem Lösungsmittel vermischt oder verdünnt werden, um eine Lösung zu bilden, welche anschließend sprühgetrocknet oder gefriergetrocknet werden kann. Vollei- oder Eigelblösungen, die Antikörper enthalten, können gelagert werden und dem Futter zu einem späteren Zeitpunkt, bevor den Tieren das Futter verabreicht wird, hinzugefügt werden. Flüssigeier können oxidiert werden oder von mikrobiellem Wachstum betroffen sein. Es kann notwendig werden ein Antioxidanz oder Konservierungsmittel hinzuzufügen. Flüssigeier werden normalerweise bei Kühltemperaturen von 40–50°F für normalerweise weniger als eine Woche gelagert.
Gereinigte Antikörper oder Antikörper, die in anderen für den tierischen Verbrauch geeigneten Medien enthalten sind, können in dem erfindungsgemäßen Verfahren verwendet werden. Antikörper können aus dem Kolostrum oder Serum der Tiere geerntet werden. Antikörper können durch genetische Manipulation auch in Pflanzen, Pilzen und Bakterien hergestellt werden. Diese Antikörper können monoklonal oder polyklonal sein.
Die Abschätzungen in Gewichtsprozent von Antikörper in Vollein, Eigelb, getrocknetem Vollein, getrocknetem Eigelb und Suspensionskonzentration in Bezug auf das Antikörpergewicht sind wie folgt:
Vollei (flüssige Form) – 0,2 bis 0,6%
Vollei (getrocknete Form) – 0,8 bis 2,4%
Eigelb (flüssige Form) – 0,6 bis 1,8%
Eigelb (getrocknete Form) – 2 bis 4%
Die Suspensionskonzentration hängt von der Menge des Antikörpers ab, die dem Tier verabreicht werden soll und kann von 0,1 bis 99 Gew.-% reichen, bevorzugt von 10 bis 50 Gew.-%.
Das Verfahren gemäß der vorliegenden Erfindung kann mit nahezu allen bekannten wilden oder domestizierten Tieren durchgeführt werden, wie z. B. Tiere die für den menschlichen Verzehr geeignet sind, Labor- und Heimtieren oder Begleittieren. Bestimmte Tierbeispiele schließen Rinder, Schafe, Schweine, Hühner, Truthähnen, Enten, Fasane, Tauben, Wachteln, Perlhühner, Gänse und Laufvögel, Hunde, Katzen, Pferde und Nager mit ein.
Die Antikörper können zu jedem Teil der tierischen Diät hinzugefügt werden und können mit festen Futtermitteln und flüssigen Futtermitteln vermischt werden, dem Trinkwasser hinzugefügt werden oder unmittelbar an die Tiere verfüttert werden. In den bevorzugten Ausführungsformen werden die Antikörper mit Trinkwasser oder festem Tierfutter vermischt.
Die Antikörpermengen, die dem Futter gemäß der vorliegenden Erfindung hinzugefügt werden, variieren abhängig von der Tierart und der Behandlungsdauer des Tieres mit dem Antikörper. Im Allgemeinen ist der Antikörper in getrocknetem Vollei oder Eigelb enthalten und wird der tierischen Diät in einer Menge von ungefähr 1 g bis 50000 g pro Tonne Futter hinzugefügt. Dies bezieht sich auf sprühgetrocknetes Vollei mit einem oben beschriebenen Antikörpergehalt von 0,8 bis 2,4%.
Der Antikörper kann dem Trinkwasser als antikörperenthaltendes sprühgetrocknetes Vollei, sprühgetrocknetes Eigelb, gefriergetrocknetes Vollei, gefriergetrocknetes Eigelb, Volleisuspension oder Eigelbsuspension hinzugefügt werden. Die Menge der sprühgetrockneten/gefriergetrockneten Volleisuspension, die normalerweise dem Trinkwasser hinzugefügt werden, variiert von ungefähr 0,5 g bis 5000 g pro 1000 Liter Trinkwasser abhängig von der Tierart und der Suspensionskonzentration. Sprühgetrocknetes oder gefriergetrocknetes Vollei liegen in einem Bereich von 0,004% bis 12%.
Die Diät, die Antikörper gegen antinutritive Faktoren, die in Futtermitteln vorhanden sind oder von Mikroorganismen im Magen-Darm-Trakt der Tiere gebildet werden, kann an die Tiere jederzeit von Geburt an verfüttert werden und kann für eine beliebigen Zeitspanne während der Lebensdauer des Tieres fortgesetzt werden. Bei einem Tier, das für den menschlichen Verzehr geeignet ist, wie z. B. Hühnern, Schweinen etc. ist es bevorzugt, dass das Füttern der Antikörper angefangen mit der Geburt des Tieres während seine gesamten Lebensdauer bis zur Schlachtzeit fortgesetzt wird. Die Antikörper können, bis der gewünschte Gesundheitszustand erreicht ist, auch an kranke oder erkrankte Tiere verfüttert werden.
Die Erfindung wird durch die folgenden Beispiele, die nicht einschränkend sind, weiter veranschaulicht.
Beispiel 1
Zubereitung eines Antiureaseantikörpers
Hühnern wurden 0,2 mg Uresse Typ II-C (erhältlich von Sigma Chemical Company) injiziert. Das Inoculum wurde durch das Lösen des Enzyms in 0,2 ml phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS; pH 7,3) und 0,2 ml komplettem Freund-Adjuvans hergestellt. Die Antigenzubereitung wurde intramuskulär an zwei Stellen injiziert, wobei in jeden pektoralen Muskel (links und rechts) 0,2 ml injiziert wurden. Insgesamt wurden pro Henne 0,4 ml Antigenzubereitung verabreicht. Eine zweite Injektion wurde zwei Wochen nach der ersten Injektion verabreicht. Für die zweite Antigenpräparation wurde statt komplettem Freund-Adjuvans inkomplettes Freund-Adjuvans verwendet. Hennen wurde die Antigenzubereitung alle zwei bis vier Wochen oder wenn der Antikörpertiter zu niedrig war erneut injiziert. Der Antikörpertiter wurde alle 4 Wochen mit einem ELISA bestimmt. Eier, die die spezifischen Antikörper enthielten, wurden eine Woche nach der zweiten Injektion gesammelt.
Beispiel 2
Das Antikörperprodukt, das für die folgenden Tierstudien verwendet wurde, bestand aus Eigelb, dass 21 Tage nach der ersten Inokulation geerntet wurde und durch Sprühtrocken (Eintrittstemperatur 210 F und Austrittstemperatur 150 F), Gefriertrocknen (–60°C und ein Vakuum von 60 bis 180 Millitorr) getrocknet wurde oder verdünnt wurde, um eine wässrige Lösung zu bilden (Wasser bei einer Verdünnung von einer Volumeneinheit Eigelb und neun Volumeneinheiten Wasser). Die geernteten Eidotter enthielten Antikörper gegen Jackbohnenurease.
Beispiel 3
Die erste Hühnerstudie bestand aus einer Gruppe von einer Woche alten Küken, die mit einer Standardkontrolldiät gefüttert wurden und einer Gruppe, die mit der gleichen Diät einschließlich einer getrockneten Eigelbpräparation, die wie in Beispiel 2 beschrieben Antiureaseantikörper enthielt, gefüttert wurden. Die Antikörperkonzentration im Futter betrug 200 mg gefriergetrocknetes Vollei mit einer Antikörperkonzentration von 0,8 bis 2,4%. Futterverbrauch und Körpergewichtszunahme wurden eng überwacht. Nach einer Woche wurde für jede Gruppe die Futterverwertung bestimmt. Die Ergebnisse sind in Tabelle 1 zusammengefasst: Tabelle 1

Behandlung Futteraufnahme Futterverwertung

Kontrolle 420 1,50

Antiurease 428 1,37
Beispiel 4
Die zweite Hühnerstudie bestand aus einer Gruppe frisch geschlüpfter Kücken, die für drei Wochen mit einer Standardkontrolldiät gefüttert wurden und einer Gruppe die für drei Wochen mit der gleichen Diät einschließlich einer getrockneten Eigelbpräparation, die wie in Beispiel 2 beschrieben Antiureaseantikörper enthielt, gefüttert wurden. Die Antikörperkonzentration im Futter betrug 200 mg gefriergetrocknetes Vollei mit einer Antikörperkonzentration von 0,8 bis 2,4%.
Futterverbrauch und Körpergewichtszunahme sind in Tabelle 2 zusammengefasst: Tabelle 2

Behandlung Körpergewicht innerhalb von 3 Wochen Futteraufnahme innerhalb von 3 Wochen Futterverwertung innerhalb von 3 Wochen

Kontrolle 348 672 1,93

Antiurease 377 644 1,71
Die Daten zeigen dass ein kontinuierliches Füttern mit Antikörper zur höchsten Körpergewichtszunahme und besten Futterverwertung führt.
Beispiel 5
Dieses Beispiel bestand aus zwei Hühnerstudien, die durchgeführt wurden, um die optimale Konzentration (mg Antikörper/kg Futter) zu bestimmen, die notwendig ist um die maximale Wirkung auf Körpergewichtszunahme und Futterverwertung zu erzielen. Drei Gruppen von einen Tag alten Hühnern wurden für 4 Wochen mit unterschiedlichen Mengen Antikörperextrakt gefüttert, der 0,32 oder 63 mg Protein/kg Futter enthielt. Futterverbrauch und Körpergewicht wurden wöchentlich bestimmt; die Futterverwertung wurde wöchentlich berechnet und als Futteraufnahme/Körpergewichtszunahme angegeben. Die Ergebnisse des ersten Versuchs sind in Tabelle 3 zusammengefasst und die Ergebnisse des zweiten Versuchs sind in Tabelle 4 zusammengefasst. Tabelle 3

Körpergewicht (g) Futterverwertung

Antikörperkonzentration (mg/kg Futter) Woche 3 Woche 4 Woche 3 Woche 4

0 573 782 1,73 1,93

32 614 816 1,67 1,88

63 599 790 1,68 1,89

Tabelle 4

Körpergewicht (g) Futterverwertung

Antikörperkonzentration (mg/kg Futter) Woche 3 Woche 4 Woche 3 Woche 4

0 550 722 1,70 2,01

32 582 743 1,62 2,00

63 583 787 1,65 1,92
Beispiel 6
Das Verfahren war mit dem Verfahren des Beispiels 5 identisch, mit der Ausnahme, dass die Hühner mit unterschiedlichen Antikörperextraktmengen von 0,25 and 50 mg Antikörper pro Kilogramm Futter gefüttert wurden. Die Ergebnisse sind in den Tabellen 5, 6 und 7 zusammengefasst. Tabelle 5

Antikörperkonzentration (mg/kg Futter) Körpergewicht nach 3 Wochen Futterverwertung innerhalb von drei Wochen

0 567 1,70

50 567 1,62

Tabelle 6

Körpergewicht (g) Futterverwertung

Antikörperkonzentration (mg/kg Futter) Woche 3 Woche 4 Woche 3 Woche 4

0 545 715 1,68 1,88

50 565 770 1,59 1,75

Tabelle 7

Körpergewicht (g) Futterverwertung

Antikörperkonzentration (mg/kg Futter) Woche 3 Woche 4 Woche 3 Woche 4

0 494 741 1,85 2,01

25 506 730 1,78 1,95

50 522 763 1,77 1,91
Schlussfolgerung: Es gibt eine optimal wirksame Antikörperdosis. Nimmt die Konzentration des an ein Tier verfütterten Antikörpers zu, so nehmen auch Körpergewichtszunahme und Futterverwertung zu. Die optimale Konzentration wird erhalten, wenn höhere Mengen nicht mehr zu zusätzlichen Verbesserungen der Leistung führen.
Es ist für den Fachmann offensichtlich, dass eine Vielzahl von Veränderungen und Variationen vorgenommen werden können, ohne sich von dem Schutzumfang der vorliegenden Erfindung zu entfernen, der durch die Ansprüche festgelegt wird.
ZITATE

1. Bartz, C. R., R. H. Conklin, C. B. Tunstall and J. H. Steele (1980). Prevention of murine rotavirus infection with chicken egg yolk immunoglobulins. J. Infect. Dis. 142: 439–441.
2. Burdsall, H. H., M. Banik, M. E. Cook (1990). Serological differentiation of three species of Armillaria and Lentinula by enzyme-linked immunosorbent assay using immunized chickens as a source of antibodies. Mycologia 84: 415–423.
3. Cook M. E., C. C. Miller and J. L. Pimentel (1998). CCK antibodies used to improved feed effciency US Pat #5,827,517 .
4. Cook M. E., C. C. Miller and J. L. Pimentel (1998). Novel compound to mimic a naturally occurring peptide's effect. US Pat #5,814,316 .
5. Cook M. E., C. C. Miller and J. L. Pimentel (1999). CCK antibodies used to improved feed efficiency, US Pat #5,989,584 .
6. Erhard, M. H., J. Kellner, J. Eichelberger and U. Losch (1993). New aspects in oral immunoprophylaxis for the prevention of infectious diarrhea of newborn calves-a field study with specific egg antibodies. Berl. Munch. Tierarztl. Wschr. 106: 383–387.
7. Gassmann, M., P. Thommes, T. Weiser and U. Hubscher (1990). Efficient production of chicken egg antibodies against a conserved mammalian protein. Faseb J. 4: 2528–2532.
8. Hatta, H; K. Tsuda, S. Akachi, M. Kim and T. Yamamoto (1993a). Productivity and some properties of egg yolk antibody (IgY) against human rotavirus compared with rabbit IgG. Biosci. Biotech. Biochem. 57: 450–454.
9. Hatta, H., K. Tsuda, S. Akachi, M. Kim, T. Yamamoto and T. Ebina (1993b).
Oral passive immunization effect of anti-human rotavirus IgY and its behavior against proteolytic enzymes. Biosci. Biotech. Biochem. 57: 1077–1081.
10. Ishida, A, Y. Yoshikai, S. Murosaki, C. Kubo, Y. Hidaka, and K. Nomoto (1992). Consumption of milk from cows immunized with intestinal bacteria influences age-related changes in immune competence in mice. J. Nutrition 122: 1875–1883.
11. Jungling, A., V. Wiedemann, R. Kuhlmann, M. Erhard, P. Schmidt and U. Losch (1991). Chicken egg antibodies for prophylaxis and therapy of infectious intestinal diseases. J. Vet. Med 38: 373–381.
12. Kellner, J. M. H. Erhard, .M. Renner and U Losch (1993). a field trial of the treatment of diarrhea in piglets with specific egg antibodies. Jahrgang (49) Jan 94(1) 31–34.
13. Kuhlmann, R., V. Wiedemann, P. Schmidt, R. Wanke, E. Linckh and U. Losch (1988). Chicken egg antibodies for prophylaxis and therapy of infectious intestinal diseases. I.-Immunization and antibody determination. J. Vet. Med. B. 35: 610–616.
14. Kuroki, M., Y. Ikemori, H. Yokoyama, R. Peralta, F. Icatlo and Y. Kodama (1993). Passive protection against bovine rotavirus-induced diarrhea in murine model by specific immunoglobulins from chicken egg yolk. Vet. Micro. 37: 135–146.
15. Losch, U., I. Strainer, R. Wanke and L. Jargons (1986). The chicken egg, an antibody source. J. Vet. Med. B. 33: 609–619.
16. Neighbor, N. K., J. K. Skeeles, J. N. Beasley and D. L. Kreider (1991). Use of an enzyme-linked immunosorbent assay to measure antibody levels in turkey breeders hens, eggs, and progeny following natural infection or immunization with a commercial Bordetella avium bacterin. Avian Dis. 35: 315–320.
17. Pimentel J. L. (1998). Passively administered antibody that enhanced feed conversion efficiency Pat # 5,741,489.
18. Ricke, S. C., D. M. Schaefer and M. E. Cook (1988). Differentiation of ruminal bacterial species by enzyme-linked immunosorbent assay using egg yolk antibodies from immunized hens. Appl. Environ. Microb. 54: 596–599.
19. Schmidt, P., V. Wiedemann, R. Kuhlmann, R. Wanke, E. Linckh and U. Losch (1989). Chicken egg antibodies for prophylaxis and therapy of infectious diseases. II.- In vitro studies on gastric and enteric digestion of egg yolk antibodies specific against pathogenic Escherichia coli strains. J. Vet. Med. B. 36: 619–628.
20. Sherman, D. M., S. D. Acres, P. L. Sadowski, J. A. Springer, B. Bau,. T. J. G. Raybould and C. C. Muscoplat (1983). Protection of calves against fatal enteric colibacillosis by orally administered Escherichia coli K99-specific monoclonal antibody. Infect. Immun. 42: 653–658.
21. Wiedemann, V., R. Kuhlmann, P. Schmidt, W. Erhardt and U. Losch (1990). Chicken egg antibodies for prophylaxis and therapy of infectious intestinal diseases. III.- In vivo tenacity test in piglets with artificial jejunal fistula. J. Vet. Med. B. 37: 163–172.
22. Yokoyama. H., R. Peralta, R. Diaz, S. Sendo, Y. Ikemori and Y. Kodana (1992). Passive protective effect of chicken egg yolk immunoglobulins against experimental enterotoxigenic Escherichia coli infection in neonatal piglets. Infect. Immunity 60: 998–1007.
23. Yokoyama, H., R. Peralta, S. Serdo, Y. Ikemori (1993). Detection of passage and absorption of chicken egg yolk immunoglobulins in the gastrointestinal tract of pigs by the use of enzyme-linked immunosorbent assay and fluorescent antibody testing. Am. J. Vet. Res. JY: 867–872.
24. Yolker, R. H., F. Leister, S. B. Wee, R. Miskuffand V. Vonderfecth (1988) Antibodies to rotaviruses in chicken's eggs: a potential source of antiviral immunoglobulin suitable for human consumption. Pediatrics 81: 291–295.

Claims

Futterzusammensetzung zur Verbesserung der Körpergewichtszunahme oder der Futterverwertungseffizienz bei Tieren, dadurch gekennzeichnet, dass die Zusammensetzung einen Antikörper gegen Uresse und einen Antikörper gegen einen antinutritiven Faktor, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus Trypsininhibitor, Protease, Gossypol und Kombinationen daraus, enthält.
Futterzusammensetzung nach Anspruch 1, wobei die Tiere ausgewählt sind aus der Gruppe bestehend aus Rindern, Schafen, Schweinen, Hühnern, Truthähnen, Enten, Fasanen, Tauben, Wachteln, Perlhühnern und Laufvögeln.
Futterzusammensetzung nach Anspruch 1, wobei die Tiere aus Hunden, Katzen, Pferden und Nagern ausgewählt sind.
Futterzusammensetzung nach den Ansprüchen 1 bis 3, wobei der Antikörper gegen Uresse in unfraktioniertem Vollei oder Eigelb vorhanden ist.
Futterzusammensetzung nach dem Anspruch 4, wobei das Vollein oder das Eigelb verdünnt werden, um eine Suspension zu erhalten, die trocken versprüht, gefriergetrocknet oder flüssig aufbewahrt wird.
Futterzusammensetzung nach Anspruch 4, wobei die Antikörper in einem Vollei oder in einer Eigelbsuspension verwendet werden.
Futterzusammensetzung nach den Ansprüchen 1 bis 6, wobei der Antikörper gegen einen antinutritiven Faktor in getrocknetem Vollei oder in Eigelb enthalten ist.
Futterzusammensetzung nach den Ansprüchen 1 bis 7, wobei getrocknetes Vollei oder Eigelbsuspension, die die Antikörper enthalten, dem Tierfutter in Mengen von 1 bis 50000 g pro Tonne Futter hinzugefügt werden.
Futterzusammensetzung nach den Ansprüchen 1 bis 7, wobei getrocknetes Volllei oder Eigelbsuspension, die die Antikörper enthalten, dem Tierfutter in Mengen von 1 bis 1000 g pro Tonne Futter hinzugefügt werden.
Futterzusammensetzung nach den Ansprüchen 1 bis 7, wobei das Vollei oder die Eigelbsuspension dem Trinkwasser in einem Verhältnis von 0,5 g bis 5000 g pro 1000 Liter Wasser hinzugefügt werden, was einer Konzentration von 0,004 bis 12 Gew.-% entspricht.
Futterzusammensetzung nach den Ansprüchen 1 bis 10, wobei das Futter zur Verbesserung der Körpergewichtszunahme oder der Futterverwertungseffizienz bei Tieren, die als Viehbestand für den menschlichen Verzehr verwendet werden, verwendet wird und die Fütterung von Geburt bis zur Schlachtung durchgeführt wird.
Futterzusammensetzung nach den Ansprüchen 1 bis 11, wobei die Antikörper polyklonale Antikörper sind.
Verwendung einer Futterzusammensetzung einschließend einen Antikörper gegen Uresse und einen Antikörper gegen einen antinutritiven Faktor, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus Trypsininhibitor, Protease, Gossypol und Kombinationen daraus, zur Herstellung einer pharmazeutischen Zusammensetzung zur Verbesserung der Köpergewichtszunahme oder der Futterverwertungseffizienz bei Tieren.