DE19714219A1 - Verfahren und Vorrichtung zur Aktivitätsbestimmung immobilisierter Mikroorganismen - Google Patents
Verfahren und Vorrichtung zur Aktivitätsbestimmung immobilisierter MikroorganismenInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren und eine Vorrichtung zur Bestimmung der
Abbauaktivität von immobilisierten Mikroorganismen.
Mit immobilisierten Mikroorganismen können Fremdstoffe aus Abluft, Abwasser und
Böden biologisch abgebaut werden. Zur biologischen Abluftreinigung sind verschiedene
Verfahren mit verschiedenen Trägermaterialien für Mikroorganismen im Einsatz.
Gängige Apparate sind Biofilter, Biowäscher und Rieselbettreaktoren. Bisher mangelt es
an Rahmendaten, die eine leistungsspezifische Auslegung der Apparate gestatten, um die
aus industrieller Produktion in die Abluft emittierten, umwelt- und geruchsbelastenden
Verbindungen mikrobiell zu eliminieren. Die Dimensionierung von Abluftreinigungs
anlagen erfolgt derzeit vorwiegend nach VDI-Richtlinie 3477 /1/. Die Effizienz von
Abluftreinigungsanlagen wird bestimmt durch die biologische Abbauaktivität und den
Reaktortyp. Bisher konnte der Anteil der biologischen Abbauleistung an der
Gesamtleistung bezüglich des Stoffüberganges vom Reaktortyp jedoch nicht differenziert
werden.
Einen Überblick über die Bestimmungsmethoden der mikrobiellen Aktivität gibt Alef /2/.
Die Aktivität von Biomasse kann bestimmt werden durch Methoden wie (i) meist der
Atmungsaktivität, (ii) seltener der Aktivität unspezifischer Dehydrogenasen und (iii) der
ATP-Konzentration oder (iv) vereinzelt der Wärmebildung mittels Mikrokalorimetrie. Die
Bestimmung der Atmungsaktivität ist generell bevorzugt aus physiologischen und
apparatetechnischen Gründen. Die Atmungsaktivität kann bestimmt werden mit
O2-Elektroden oder mit Respirometern (z. B. Warburg-Apparat, Sapromat).
Zur Messung der Atmungsaktivität von Biofiltermaterial und anderer mikrobiologischer
Untersuchungen, bei denen der Sauerstoffverbrauch interessiert, wird bisher meist der
Sapromat verwendet. Dieser ist für die Bestimmung des BSB5 von Abwasserproben
konzipiert. Die Bestimmung beruht auf der Messung des Sauerstoffverbrauchs während
der Inkubation einer Probe in einem geschlossenen System. Der Sauerstoff wird dem
System elektrochemisch nachgeliefert, so daß der Sauerstoff in dem über der Probe
befindlichen Gasraum nicht verarmt. Die Messung ist abhängig vom Stoffübergang des
Sauerstoffes von der Gasphase in die Flüssigkeitsphase. Der Sapromat besteht aus einem
temperaturgeregelten Wasserbad mit den Meßeinheiten, einem Steuergerät und einer
Auswerteeinheit, so daß die Messungen kontinuierlich registriert werden können. Der
Kaufpreis des Gerätes ist mit derzeit ca. DM 60.000 sehr hoch. Der Einsatz
dampfdruckverändernder Prüfsubstanzen ist problematisch, da scheinbare Sauerstoff
verbrauchsraten gemessen werden können /3/. Daher sind Kontrollen notwendig, die
materialaufwendig durch erhöhte Anzahl von Meßplätzen und zeitaufwendig durch
Meßvorbereitung sind. Der Prüfvorgang ist langwierig durch stundenlange Meßdauer.
Bisher wurden die mit dem Sapromat ermittelten mikrobiellen Atmungsaktivitäten nicht
mit der Abbauaktivität der Mikroorganismen korreliert.
Die Atmungsaktivität von suspendierten Mikroorganismen kann in einer Meßkammer
(Rank Bros. Ltd., Cambridge, UK) mit integrierter Sauerstoffelektrode nach dem
Clark-Prinzip (US patent 2913386) /4/ submers bestimmt werden. Die Bestimmung der
substratabhängigen Atmungsaktivität von immobilisierten Mikroorganismen mit
Sauerstoffelektroden ist bisher nicht beschrieben.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, die Atmungsaktivität von immobilisierten
Mikroorganismen unabhängig vom Stoffübergang von der Gas- in die Flüssigphase
einfach, quantitativ, reproduzierbar, und kostengünstig zu bestimmen. Die Meßapparatur
soll für den Einsatz dampfdruckverändernder, als auch schwer wasserlöslicher
Verbindungen geeignet und transportabel sein. Die Atmungsaktivität soll mit der
Abbauaktivität der Mikroorganismen korrelierbar sein. Bei unbekannten Substraten sollen
prinzipielle Leistungen der Mikroorganismen erfaßt werden können.
Diese Aufgabe wird erfindungsgemäß dadurch gelöst, daß die Atmungsaktivität von
immobilisierten Mikroorganismen in einer temperierten Meßzelle mit integrierter
Sauerstoffelektrode submers gemessen wird. Die Immobilisate werden in einem
Trägermaterialbehälter aufgenommen. Der gelöste Sauerstoff wie das Substrat werden
homogen durchmischt, indem die Flüssigkeit mit einem Magnetrührkern gerührt und der
Trägermaterialbehälter vertikal bewegt wird. Optimal ist eine Hubfrequenz des Behälters
von 0.35 s-1 und eine Rührerdrehzahl von 700 rpm. Für die Messung sind eine
Polarisationsspannung der Sauerstoffelektrode von 0.78 V und eine Gesamtmeßdauer von
2-10 min geeignet. Die Temperatur der Meßflüssigkeit sollte 30°C betragen. Bei
unbekannten Substraten werden prinzipielle Leistungen von Mikroorganismen mit einem
Mischsubstrat erfaßt.
/1/ VDI 3477. 1991. Biologische Abgas/Abluftreinigung - Biofilter. 12/91. In Verein
Deutscher Ingenieure (ed.), VDI-Handbuch Reinhaltung der Luft, VDI-Verlag,
Düsseldorf.
/2/ Alef, K. 1991. Bestimmung der mikrobiellen Aktivitäten. In Alef K. (ed), Methodenhandbuch Bodenmikrobiologie, ecomed-Verlag, Landsberg/Lech, pp. 61-148.
/3/ Riis, V., D. Miethe und W. Babel (1996) Störungen durch flüchtige Substanzen bei der Messung des biologischen Sauerstoffverbrauches mit dem Sapromat. Acta hydrochim. hydrobiol. 24: 31-35.
/4/ Clark, L.C. 1956. Electrochemical device for chemical analysis. US patent 2913 386.
/2/ Alef, K. 1991. Bestimmung der mikrobiellen Aktivitäten. In Alef K. (ed), Methodenhandbuch Bodenmikrobiologie, ecomed-Verlag, Landsberg/Lech, pp. 61-148.
/3/ Riis, V., D. Miethe und W. Babel (1996) Störungen durch flüchtige Substanzen bei der Messung des biologischen Sauerstoffverbrauches mit dem Sapromat. Acta hydrochim. hydrobiol. 24: 31-35.
/4/ Clark, L.C. 1956. Electrochemical device for chemical analysis. US patent 2913 386.
Nachfolgend wird die Erfindung anhand des Ausführungsbeispiels, wie es in der Fig. 1
dargestellt ist, näher erläutert.
Die Meßanordnung besteht aus einer temperierbaren Glasmeßzelle (A) mit einer
integrierten polarographischen Sauerstoffelektrode (B), die mit einen Spannungsgeber (C)
und einem Schreiber (D) verbunden ist. Trägermaterial mit den daran immobilisierten
Mikroorganimen wird in dem Trägermaterialbehälter (E) aus rostfreiem Chromnickelstahl
(1.4571) aufgenommen. Der Behälter (E) besteht aus einem Zylinder mit einem Boden
und einem anschraubbaren Deckel aus Quadratmaschengewebe. Das Volumen des
Trägermaterialbehälters kann durch Einschrauben von Zwischenringen vergrößert
werden. Die Flüssigphase mit dem darin gelösten Sauerstoff wird homogen verteilt durch
Rühren mit einem Magnetrührkern (F) und durch kontinuierliche Hubbewegung des
Trägermaterialbehälters. Das Meßsignal ist proportional zum O2-Partialdruck in der
Meßlösung. Der Behälter wird durch eine Kolbenstange (G), die an eine rotierende
Scheibe (H) gekoppelt ist, vertikal bewegt. Der Antrieb erfolgt durch einen Motor (I),
dessen Drehzahl über einen Motorregler (K) eingestellt werden kann. Die Hubamplitude
und die Hubfrequenz sind stufenlos verstellbar. Die luftblasenfrei gefüllte Meßkammer
wird über einen Stempel (L) mit kapillarem Steigrohr einschließlich einer
Injektionsöffnung (M) nach außen hin abgeschlossen. Das Meßvolumen ist durch
Veränderung der Stempelhöhe variierbar.
Der Meßansatz beeinhaltet sauerstoffgesättigten, geeigneten Puffer, z. B. 50 mM
Kaliumphosphatpuffer, pH 7.2 und an Trägermaterial immobilisierte Mikroorganismen.
Gemessen wird die Atmungsaktivität bei 30°C. Das Substrat wird in geeigneter (mM)
Konzentration eingesetzt. Die substratabhängige Sauerstoffverbrauchsrate (v) wird aus
dem Volumen des Puffers (Pv), dessen Sauerstoffkonzentration und der linearen
pO2-Abnahme über die Zeit bestimmt (Gleichung 1).
Die spezifische Aktivität wird ausgedrückt als verbrauchter Sauerstoff pro Gewichteinheit
Protein, die volumetrische Aktivität wird auf das Schüttvolumen des verwendeten
Trägermaterials bezogen.
Mit der beschriebenen Apparatur wurden die Atmungsraten von Mischkulturen zum
Abbau von n-Butanol, Toluol und Dichlormethan, die auf Tongranulat, Polyamid-Kugeln,
gesintertem Styropor oder Aktivkohle immobilisiert waren, vermessen. Dazu wurden bis
zu 10 cm3 bewachsenes Trägermaterial und 8 mM n-Butanol oder 5 mM Toluol oder 5
mM Dichlormethan eingesetzt. Ebenfalls wurden die Atmungsaktivitäten von bis zu 150
cm3 Biofiltermaterial aus industriellen Abluftreinigungsanlagen mit einem Mischsubstrat
aus je 2 mM Glukose, Succinat, Pyruvat, Laktat und Acetat bestimmt. Spezifische
Atmungsraten bis zu 1.2 µmol O2 min-1 mg Protein-1 wurden gemessen. Die
volumetrischen Atmungsraten der Mikroorganismen korrelierten mit den spezifischen
Abbauraten gemäß der Beladung des Trägermaterials mit den immobilisierten
Mikroorganismen.
Die erzielten Vorteile der Erfindung sind:
- - Mit dem entwickelten Meßverfahren kann über die Atmungsaktivität von immobilisierten Mikroorganismen deren Abbauaktivität bestimmt werden.
- - Die Immobilisate werden in einem Trägermaterialbehälter aufgenommen und werden durch dessen Bewegung sowie durch Rühren der Meßlösung mit einem Magnetrührkern homogen mit dem in der Meßlösung gelösten Sauerstoff und dem Substrat durchmischt.
- - Der Stoffübergang gas-flüssig/flüssig-gas entfällt, da das Substrat der Flüssigphase zugegeben wird, in der der Sauerstoff gelöst vorliegt.
- - Die Meßergebnisse sind quantitativ und reproduzierbar innerhalb von 2-10 min zu ermitteln.
- - Dampfdruckverändernde, als auch schwer wasserlösliche Verbindungen können als Substrate eingesetzt werden.
- - Die gesamte Meßeinheit ist transportabel und kostengünstig in der Anschaffung.
Mit dem vorgestellten Meßsystem zur Bestimmung der mikrobiellen Atmungsaktivität
erzielte Ergebnisse sind im Anlagenbau für die Dimensionierung von
Abluftreinigungsanlagen bedeutungsvoll. Ebenfalls kann das Meßverfahren zur
Überwachung von Anlagen zur biologischen Abluftreinigung eingesetzt werden. Im
Rahmen mikrobiologischer Verfahren zur Sanierung von Böden ist die Abbauaktivität
neben der chemischen Analyse des Schadstoffes direkt nachprüfbar. Die mikrobiologische
Atmungsaktivität aus Bodenproben ist bestimmbar.
Claims (9)
1. Verfahren und Vorrichtung zur Aktivitätsbestimmung immobilisierter Mikroorganis
men, dadurch gekennzeichnet, daß die mikrobielle Atmungsaktivität submers be
stimmt wird in einer temperierbaren, luftblasenfrei verschließbaren Meßzelle mit inte
grierter Sauerstoffelektrode und mit homogener Durchmischung der in einem Trägerma
terialbehälter aufgenommenen Immobilisate mit dem in der Meßlösung gelösten
Sauerstoff und dem Substrat mittels Bewegung der fixierten Biomasse.
2. Verfahren und Vorrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die mi
krobielle Atmungsaktivität unter Substratsättigung (nach Michaelis-Menten) gemessen
wird.
3. Verfahren und Vorrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß flüchtige,
schwer wasserlösliche und leicht wasserlösliche Verbindungen beziehungsweise Misch
substrate eingesetzt werden.
4. Verfahren und Vorrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Meß
zelle aus Glas gefertigt ist.
5. Verfahren und Vorrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Bewe
gung des Trägermaterialbehälters eine Auf- und Abwärtsbewegung ist.
6. Verfahren und Vorrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Hub
frequenz und die Hubamplitude des Trägermaterialbehälters stufenlos verstellbar sind.
7. Verfahren und Vorrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Im
mobilisate zusätzlich durch Rühren mit einem Magnetrührkern mit Meßlösung durch
mischt werden.
8. Verfahren und Vorrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Meß
volumen variiert werden kann.
9. Verfahren und Vorrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß der Trä
germaterialbehälter modular aufgebaut ist und das Volumen verändert werden kann.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE1997114219 DE19714219A1 (de) | 1997-04-07 | 1997-04-07 | Verfahren und Vorrichtung zur Aktivitätsbestimmung immobilisierter Mikroorganismen |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE1997114219 DE19714219A1 (de) | 1997-04-07 | 1997-04-07 | Verfahren und Vorrichtung zur Aktivitätsbestimmung immobilisierter Mikroorganismen |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE19714219A1 true DE19714219A1 (de) | 1998-10-08 |
Family
ID=7825631
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE1997114219 Ceased DE19714219A1 (de) | 1997-04-07 | 1997-04-07 | Verfahren und Vorrichtung zur Aktivitätsbestimmung immobilisierter Mikroorganismen |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE19714219A1 (de) |
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WO2003012447A2 (de) * | 2001-07-23 | 2003-02-13 | Institut Für Chemo-Und Biosensorik Münster E.V. | Nachweis lebender mikroorganismen, eukaryotischer zellen oder organellen |
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- 1997-04-07 DE DE1997114219 patent/DE19714219A1/de not_active Ceased
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Datenbank WPIDS bei STN: AN 89-147770/20 zu JP 01-091050 A * |
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JP4528939B2 (ja) * | 2003-11-19 | 2010-08-25 | 株式会社サカタのタネ | 土壌微生物を格納したバイオセンサーおよびその利用 |
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