CZ671290A3 - Příprava hydrolyzátu vaječného bílku a separace peptidové a glykopeptidové frakce a kyseliny síalové - Google Patents

Příprava hydrolyzátu vaječného bílku a separace peptidové a glykopeptidové frakce a kyseliny síalové Download PDF

Info

Publication number
CZ671290A3
CZ671290A3 CS906712A CS671290A CZ671290A3 CZ 671290 A3 CZ671290 A3 CZ 671290A3 CS 906712 A CS906712 A CS 906712A CS 671290 A CS671290 A CS 671290A CZ 671290 A3 CZ671290 A3 CZ 671290A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
peptide
preparation
egg white
fraction
fractions
Prior art date
Application number
CS906712A
Other languages
English (en)
Inventor
Marie Rndr Csc Ticha
Gustav Doc Rndr Csc Entlicher
Hana Rndr Karaskova
Tomislav Rndr Drsc Barth
Ladislav Ing Csc Klima
Miloslav Rndr Drsc Pospisil
Otto Rndr Csc Taborsky
Original Assignee
Marie Rndr Csc Ticha
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Marie Rndr Csc Ticha filed Critical Marie Rndr Csc Ticha
Priority to CS906712A priority Critical patent/CZ671290A3/cs
Publication of CZ671290A3 publication Critical patent/CZ671290A3/cs

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

K hydrolýze bílku probíhající při teplotě 37 ° C po dobu max. 72 hod. při pH 1,5-2,0 se používá kuřecí pepsin. Vzniklý hydrolysát je frakcionován pomocí dvojnásobné ultrafiltrace na frakce s rel.mol. hmotností větší než 10 000, v rozmezí 10 000- 2 000. Řešení umožůje připravit peptidové a glykopeptidové frakce jako zdroj nutričních látek a dále zdroj biologicky aktivních látek s imunomodulačními účinky; vedle toho je možné z těchto frakcí separovat kyseliny sialové.

Description

Předmětem vynálezu je způsob přípravy peptidové a 31 ykopeptidové frakce hydrolyzátu vaječného bíiku .
ř ?*' t?
·.>
*
v.
V současné době je vaječný- bílek používán především v potravinářském průmyslu a k přípravě jednotlivých bílkovin jako lysozym, ovalbumin, ovotransferin, avidin. Jako zdroje aminokyselin a nízkomolekulárních oligopeptidů se používá autolyzát pankreasu, hydrolyzát jater, kvasinek a masa. Tyto hydrolyzáty se od sebe liší aminokyselinovým složením, především zastoupením esenciálních aminokyselin a jejich biologickou dostupností, případně obsahem dalších nutričních komponent, jako jsou sacharidy, lipidy, vitaminy, atd. Jako zdroj oligosacharidů, 1ipopolysacharidů, glykoproteinů a glykopeptidů s imunomodulačními vlastnostmi se používá kvasinek a různých .nepatogenních a patogenních mikroorganismů. Jako
zdrojů nutričních ' a biologicky i munomodu1ačn í m i účinky, aktivních látek vyznačující se použitím kuřecího ··· - : . .. -.i - * .....v- « : ?· · ty-r· veV' ·’ '-· -·--jÁ ' :s>'j;’ pepsinu v procesu hydrolysy. Z peptidové frakce lze různými podle relativní aminokyselin, Z aktivní látky s separačními postupy dále získávat subfrakce molekulové hmotnosti nebo podle zastoupení glykopeptidové frakce lze získat biologicky imunomodlučními vlastnostmi .béžnými separačními postupy bez dalších úprav nebo po odštěpení peptidové části glykopeptidů, nebo ji použít jako zdroj kyseliny sialové.
Novost popsaného způsobu glykopeptidové frakce hydrolyzátu přípravy peptidové a vaječného bil ku dokládají rešerše, uvedené v příloze přihlášky, příklady ilustrují předmět vynálezu, ale nikterak jej neomezují:
V jedné šarži při teplotě 37°C bylo hydrolysováno 70-75 1 -bí Iku ,- -spotřeba-pepsin u-- by-La -..-1-33-150·-g-,--enzy-m —by-1 p-řidávándo inkubační směsi ve dvou stejně velkých dávkách. Použitý pepsin byl isolován z autolysátu žlaznatých žaludků srážením chloridem sodným. Hodnota pH inkubační směsi se v průběhu štěpení pohybovala od 1.5 do 2.0 a hodnota pH, na kterou byl hydrolysát nastaven po skončení inkubace byla 5,0 nebo 7, 0. Doba inkubace byla 72 hod.
Inkubační směs byla ultrafiltrována na ultrafiltru pňi použití tabulárních membrán. Pňi použití membrány propouštějící peptidy do rel. mol. hmotnosti 2000 byly získány dvě frakce frakjce peptidft a glykopeptidů s rel. mol. hmotností větší než 2000 a frakce peptidů s rel. mol. hmotností do 2000.
Aminokyselinová analysa frakce I (do 2000) je uvedena v Tab. 1.
Tabulka 1,
Aminokyselinová analysa frakce I (viz obr, 1) po dělení frakce peptidů (rel. mol. hmotnost do 2000) na Bio-Gelu P2.
·.
<
r-i V*,- * Aminokýselina '’Τ-'Τ5 -τ»·Τ vAr 0 /1-·Poměrné zastoupení 1
*. Ji*'. -í -T *·, «b V ' *·”·***ζ·* J J v i. « ; v ~
Jí- ..«v, ΐ'> ,&^-ίϊ,ΐ-Άί? ’*« fi.'., „ΑΛ Kyselina asparagová
Serxn .··,·(« ·,.
Kyselina glutamová Prolin ,
Glycin 1 Alalnin Valin v Methionin Isoleucin Leucin Tyrosin Fenylalanin Histidin Lysán Arginin
Průběh gelové chromátografie frakce peptidů do 2000 na Bio-Gelu P2 (Obr. 1.) znázorňuje rozložení jednotlivých peptidú v této frakci podle rel. mol. hmotností, frakcionační oblast Bio-Gelu P2 je 1900-100.
-r-
·<
τ
r—4 P in -P u X c i r>- x
0 m m XJ >> X
^.r<rý ε t—í . L. 3 D . • 'D- •:X':
- 43 -P X Ή '1* ·
- ...’ > 0 r~4 01 L X
. c 0) •P 4- yí «.· f* „ m r jV· ·'»« ► · ; ’ ;í v
*,*· ”v iVí*Vt.~ \L vt .(JJ ε : u
Wff WTTf j v -C- L. ,u ni X %· <« * -p. *y -·'·>·- ^áí‘
sAZ *&>- e 4 >J 4, m XJ fS Z-P ‘o . Ul m 1 ΐ'ή’-τΣί ..ι.ύ·^ »—
C „ 3 0,4 ’:Ο.·^ íjx .»·. 0 Vr£gR 2 CM >0· •SLbť^biž.·· b.ct +* ‘01 « -si lil ** -» s v «Λ Si
/feiž^ť · 07 yP ~r* □»; » *· * ** * «6 ·-:□ a ’CM -c •P 0 -j ,· « - ν-< Λ .4·
·. .'. w . ,.,Λ........ . α • L ·„ •P fk 43 V * ‘'l.
... οι 4- U 1 3
* ?. a 4^' a c Ό
>2 3 . -i •p ,' :·’ λ
(M P 0 ε
a cm •<0 i—4 Qi
u Cl 01 iff «**« —1
ε K< Π
« L m
k. 3 Qi c 0 <a
4- l“4 Q. a . i_
as •'c
a •fli r—i 3
01 1 > ε U
• .' P 0 Λ ř- 0
4— •P L Ό £. u
<0 ca g -P u
2 L »—4 .01 •f) ns
σ Ή U c u
tb. i—4 4-
p (0 flj 40
ni c I* U U JZ
e CM Ή P u
0 43 3 .X
i. o 1* 0i c
ť- «**< iX c XJ
u ,~l «· 3 u 3
či ns 3 f—4
Si X z X OJ
•Si i. X íO
> rs w 0 rt z Ϊ X
O ΤΓ N ř“
> —» ifj s
& * P X •n
Φ X —* 40 »>
ui /*» u
»Λ» lii in
T-í τ-4 i—f _v >
C 1 rt bt —t u 1
s Λ -P L 4-’ c
L_ =O «**« 3 N « *-4
J2 L c s Π P X
L ií! x
dvou různých membrán za sebou ultrafiltrací frakce peptidů s rel. mol. hmotnostmi 10 000 - 2 000.
Průběh chromatografie na získána dvojnásobnou v rosíTiezí
Bio-Gelu znázorňuje hmotností, 000.
rpzložení jednotlivých peptidů frakcionaění oblast Bio-Gelu P10
P10 (obr. 2) podle rel. mol. je 20 000 - 5
I.
IT.
III.
Průběh gelové chromatografie frakce.peptidů s rel. mol. hmotností v rozmezí 2 000-10 000 na Bio-Gelu P10 (frakcionaění oblast 20 000-5 000). Vzorek 2,5 ml permeátu po dvojnásobné ultrafiltraci. Sloupec 2,2x63 cm, eluč.ní roztok 0,15 M NaCl, frakce ά ml po 30 min., I, I
I, III spojení elučních frakcí γ-.Ύ*·
Způsob přípravy hydrolysátu vaječné čímže vaječný bílek se pí* i r- 1 Π T
-tíH sinem (vý ·= 1«dna koncen trate ho bílku vyznačuje se é 3/Pí hydrolysuje kuře— ρ e ρ 3 i n u O. 2 í v / v) po d o fa u maximálně 72 hod. při pH 1.5-2.0.
Způsob přípravy frakcí pepsinového hydrolysátu vaječného bílku dle bodu i, vyznačený tím, že se peptidy,resp. glykopeptidy a rel. mol. váze menší než 2000, získané po hydrolyse pepsinem, oddělí ultrafiltrací na zařízení s tabulárními membránami propustnými pro peptidy s rel. mol. hmotností menší než 2000.
$,

Claims (1)

  1. i* .·’>
    &
    í
    Způsob přípravy hydrolysátu vaječného bílku, připraveného dle způsobu 1, v.t., Se se peptidové frakce separují kombinovanou následnou ultrafiltrací využívající membránu propustnou pro peptidy a glykopeptidy menší než 10 000 a spřaSenou s membránou propustnou pro peptidy a glykopeptidy menší
CS906712A 1990-12-27 1990-12-27 Příprava hydrolyzátu vaječného bílku a separace peptidové a glykopeptidové frakce a kyseliny síalové CZ671290A3 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS906712A CZ671290A3 (cs) 1990-12-27 1990-12-27 Příprava hydrolyzátu vaječného bílku a separace peptidové a glykopeptidové frakce a kyseliny síalové

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS906712A CZ671290A3 (cs) 1990-12-27 1990-12-27 Příprava hydrolyzátu vaječného bílku a separace peptidové a glykopeptidové frakce a kyseliny síalové

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ671290A3 true CZ671290A3 (cs) 1994-01-19

Family

ID=5414801

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS906712A CZ671290A3 (cs) 1990-12-27 1990-12-27 Příprava hydrolyzátu vaječného bílku a separace peptidové a glykopeptidové frakce a kyseliny síalové

Country Status (1)

Country Link
CZ (1) CZ671290A3 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR101331777B1 (ko) Dpp-iv를 억제하는 펩타이드가 풍부한 단백질가수분해물 및 이의 용도
Zhang et al. Isolation and identification of peptides from simulated gastrointestinal digestion of preserved egg white and their anti-inflammatory activity in TNF-α-induced Caco-2 cells
Fletcher et al. Tamm–Horsfall urinary glycoprotein. The subunit structure
PT82070B (pt) Metodo para a preparacao de proteinas biologicamente activas
CA2358423A1 (en) A hypoallergenic composition containing tolerogenic peptides inducing oral tolerance
Osawa et al. Absorption and metabolism of orally administered collagen hydrolysates evaluated by the vascularly perfused rat intestine and liver in situ
Jeevithan et al. Purification, characterization and antioxidant properties of low molecular weight collagenous polypeptide (37 kDa) prepared from whale shark cartilage (Rhincodon typus)
Choi et al. Isolation of a calcium-binding peptide from bovine serum protein hydrolysates
Hou et al. Preparation of immunomodulatory hydrolysates from Alaska pollock frame
Gildberg et al. Angiotensin I-converting enzyme inhibitory activity in a hydrolysate of proteins from Northern shrimp (Pandalus borealis) and identification of two novel inhibitory tri-peptides
CN105331661A (zh) 一种水酶法制备丝胶蛋白多肽的方法
Azuma et al. DNA-synthesis stimulating peptides from human β-casein
EP0791601A2 (en) An agent promoting bone formation and inhibiting bone resorption
Lemieux et al. High-performance liquid chromatography of casein hydrolysates phosphorylated and dephosphorylated: I. Peptide mapping
Kanno Characterization of multiple forms of lactophorin isolated from bovine milk whey
Ghanbari et al. Separation and identification of bromelain-generated antibacterial peptides from Actinopyga lecanora
CZ671290A3 (cs) Příprava hydrolyzátu vaječného bílku a separace peptidové a glykopeptidové frakce a kyseliny síalové
EP0357776A4 (en) Egg white hydrolyzate
Mustafa et al. Bioactive peptides and their natural sources
Cao et al. Continuous preparation and characterization of immunomodulatory peptides from type II collagen by a novel immobilized enzyme membrane reactor with improved performance
Mulvihill et al. Isolation and characterization of porcine β-casein
JPH11515022A (ja) 成長促進物質
Tanigawa et al. Biochemical characterization of bovine lactoferrin as a glycyrrhizin-binding protein in vitro
Xing et al. The research progress of immunomodulatory peptides
Nakano et al. Production of sialic acid rich glycopeptide from bovine κ-casein glycomacropeptide by hydrolyzing with papain