CZ309849B6 - Použití derivátů akridinu jako sloučenin interkalujících se do DNA - Google Patents

Použití derivátů akridinu jako sloučenin interkalujících se do DNA Download PDF

Info

Publication number
CZ309849B6
CZ309849B6 CZ2020-154A CZ2020154A CZ309849B6 CZ 309849 B6 CZ309849 B6 CZ 309849B6 CZ 2020154 A CZ2020154 A CZ 2020154A CZ 309849 B6 CZ309849 B6 CZ 309849B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
dna
mixture
bound
compounds
bond
Prior art date
Application number
CZ2020-154A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ2020154A3 (cs
Inventor
Filip Kostelanský
Filip Mgr. Kostelanský
Veronika Nováková
Nováková Veronika doc. PharmDr., Ph.D.
Petr ZimÄŤĂ­k
Zimčík Petr prof. PharmDr., Ph.D.
Miroslav MiletĂ­n
Miletín Miroslav doc. PharmDr., Ph.D.
Zuzana Havlínová
Havlínová Zuzana Ing., Ph.D.
AntonĂ­n Libra
Libra Antonín PharmDr., Ph.D.
Pavel FlĂ­dr
Pavel Mgr. Flídr
Original Assignee
Univerzita Karlova
Generi Biotech S.R.O.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univerzita Karlova, Generi Biotech S.R.O. filed Critical Univerzita Karlova
Priority to CZ2020-154A priority Critical patent/CZ309849B6/cs
Publication of CZ2020154A3 publication Critical patent/CZ2020154A3/cs
Publication of CZ309849B6 publication Critical patent/CZ309849B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D219/00Heterocyclic compounds containing acridine or hydrogenated acridine ring systems
    • C07D219/04Heterocyclic compounds containing acridine or hydrogenated acridine ring systems with hetero atoms or with carbon atoms having three bonds to hetero atoms with at the most one bond to halogen, e.g. ester or nitrile radicals, directly attached to carbon atoms of the ring system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K49/00Preparations for testing in vivo
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D219/00Heterocyclic compounds containing acridine or hydrogenated acridine ring systems
    • C07D219/04Heterocyclic compounds containing acridine or hydrogenated acridine ring systems with hetero atoms or with carbon atoms having three bonds to hetero atoms with at the most one bond to halogen, e.g. ester or nitrile radicals, directly attached to carbon atoms of the ring system
    • C07D219/06Oxygen atoms
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D219/00Heterocyclic compounds containing acridine or hydrogenated acridine ring systems
    • C07D219/04Heterocyclic compounds containing acridine or hydrogenated acridine ring systems with hetero atoms or with carbon atoms having three bonds to hetero atoms with at the most one bond to halogen, e.g. ester or nitrile radicals, directly attached to carbon atoms of the ring system
    • C07D219/08Nitrogen atoms
    • C07D219/10Nitrogen atoms attached in position 9
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D219/00Heterocyclic compounds containing acridine or hydrogenated acridine ring systems
    • C07D219/04Heterocyclic compounds containing acridine or hydrogenated acridine ring systems with hetero atoms or with carbon atoms having three bonds to hetero atoms with at the most one bond to halogen, e.g. ester or nitrile radicals, directly attached to carbon atoms of the ring system
    • C07D219/08Nitrogen atoms
    • C07D219/10Nitrogen atoms attached in position 9
    • C07D219/12Amino-alkylamino radicals attached in position 9
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Abstract

Použití derivátů akridinu nesoucích substituent vázaný k aromatickému jádru prostřednictvím karboxamidové skupiny obsahující uhlíkatý řetězec zakončený azidoskupinou sloužící k azido-alkynové cykloadici jako meziproduktů k přípravě interkalátorů zvyšujících pevnost vazby komplementárních řetězců DNA a ovlivňujících její teplotu tání. Tento substituent je navázaný v kterékoli volné poloze tricyklického jádra, přičemž modifikace jádra slouží k upevnění vazby na dvoušroubovici DNA pomocí vodíkových vazeb s dusíkem a kyslíkem guaninu, dále pak pomocí vodíkové vazby amidického vodíku přes molekulu vody na fosfátovou skupinu mezi příslušným guanosinem a sousedním nukleosidem.

Description

Použití derivátů akridinu jako sloučenin interkalujících se do DNA
Oblast techniky
Předkládaný vynález náleží do oblasti organické chemie, biochemie a molekulární genetiky. Týká se látek schopných interkalovat se do dvoušroubovice DNA, a zvýšit tak její teplotu tání.
Dosavadní stav techniky
Za účelem stabilizace duplexu dvoušroubovice DNA je v současné době zkoumáno nebo již existuje několik typů chemických modifikací nukleových kyselin.
Patří sem tzv. Locked nucleic acids (LNA, O2'-C4'-methylenenovou skupinou přemostěný cyklus ribosy), resp. Bridged Nucleic Acids (BNA, O2'-C4'-methylenaminoskupinou přemostěný cyklus ribosy).
O dosažení vyšší stability duplexu DNA usilují i další technologie, např. využití organických polyaminů (NOIR R., KOTERA M., PONS B., REMY J.S., BEHR J.P. J. Am. Chem. Soc. 2008, vol. 130, p. 13500-13505; US 8465921).
Velký potenciál má pak využití molekul vázajících se do malého žlábku DNA (MGB, Minor Groove Binders) nebo působících jako interkalátory. Je známo, že molekuly některých sloučenin jsou schopné vsunout se a vázat do malého žlábku dvoušroubovice DNA (minor groove) nebo mezi báze dvoušroubovice DNA (interkalovat se), a v důsledku toho zvyšovat pevnost vazby komplementárních řetězců DNA účastnících se interakce, a tím teplotu tání vznikajícího duplexu.
Řada molekul působících mechanismem vazby do malého žlábku dvoušroubovice DNA je zkoumána, testována a v některých případech i klinicky využívána pro svou schopnost do určité míry sekvenčně specificky blokovat realizaci genetické informace jako terapeutika, především bakteriálních a parazitárních infekcí, ale i jako potenciální antivirotika či antineoplastika (WARTELL R.M., LARSON J.E., WELLS R.D. J. Biol. Chem. 1974, vol. 249, p. 6719-6731; ZIMMER C. Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. 1975, vol. 15, p. 285-318; NGUYEN B., NEIDLE S., WILSON W.D. Acc. Chem. Res. 2009, vol. 42, p. 11-21; ARAFA R.K., ISMAIL M.A., MUNDE M., WILSON W.D., WENZLER T., BRUN R., BOYKIN D.W. Eur. J. Med. Chem. 2008, vol. 43, p. 2901-2908; FU X.B., LIU D.D., LIN Y., et al. Dalton Trans., 2014, vol. 43, p. 8721-8737; WANG M., YU Y., LIANG CH., et al. Int. J. Mol. Sci. 2016, vol. 17, p. 779795; ALNISS H.Y. J. Med. Chem. 2019, vol. 62, p. 385-402; aj.). Díky vazbě v malém žlábku komplikují transkripci a následně tedy translaci a množení nežádoucích buněk či tkání. Z klinicky významných je možno uvést např. pentamidin.
Velkou oblastí využití MGB i interkalátorů je molekulární biologie a diagnostika. Z MGB patří mezi nejvýznamnější molekuly pro tyto aplikace sloučeniny typu Hoechst (PJURA P.E., GRZESKOWIAK K., DICKERSON R.E. J. Mol. Biol. 1987, vol. 197, p. 257-271). Komerčně v oblasti molekulární biologie jako MGB využívá molekuly nezveřejněné struktury např. společnost Applied Biosystems Inc. (nyní Life Technologies Corp.). Jako komponentu pro syntézu oligonukleotidů dodává společnost Glen Research MGB charakteru trimeru pyrroloindolu CDPI3 (trimer-amid 1,2-dihydro-(3H)-pyrrolo[3,2-e]indol-7-karboxylové kyseliny). Základní struktura této molekuly, odvozená ze struktury duokarmycinů, je známa již řadu let, její syntéza je poměrně komplikovaná a problematická může být i stabilita (BOGER D.L., COLEMAN R.S., INVERGO B.J. J. Org. Chem. 1987, vol. 52, no. 8, p. 1521-1530). Ani CDPI3 však není vhodný pro všechny aplikace (US 5801155, US 6084102, US 7582739, US 20110172289) a je zakázáno používat uvedenou komponentu pro komerční výrobu oligonukleotidů bez další licenční dohody.
- 1 CZ 309849 B6
Strukturně jsou látky působící mechanismem MGB poměrně různorodé, např. heterocyklické oligoamidy netropsin, distamycin a jejich analogy, diamidino- resp. diguanidinosubstituované látky jako pentamidin, berenil, 4',6-diamidino-2-fenylindol (LARSEN T.A., GOODSELL D.S., CASCIO D., GRZESKOWIAK K., DICKERSON R.E. J. Biomol. Struct. Dyn. 1989, vol. 7, p. 477-491) i méně bazické deriváty benzimidazolu (Hoechst sloučeniny), případně kombinace uvedených struktur (SHENG J., GAN J., HUANG Z. Med. Res. Rev. 2013, vol. 33, no. 5, p. 1119-1173). Předpokladem vazby do malého žlábku DNA je vhodné prostorové zakřivení molekuly, schopnost vytvářet van der Waalsovy a vodíkové vazby s exocyklickými skupinami a heterocyklickými dusíky nukleových bází a výhodou je vzhledem k anionickému charakteru nativních řetězců DNA bazicita MGB molekul (KIELKOPF C.L., WHITE S., SZEWCZYK J.W., TURNER J.M., BAIRD E.E., DERVAN P.B., REES D.C. Science 1998, vol. 282, p. 111115; SQUIRE C.J., BAKER L.J., CLARK G.R., MARTIN R.F., WHITE J. Nucleic Acids Res. 2000, vol. 28, p. 1252-1258; NEIDLE S., MANN J., RAYNER E., BARON A., BOAHEN Y., SIMPSON I.J., SMITH N.J., FOX K.R., HARTLEY J.A., KELLAND L.R. Chem. Commun. 1999, p. 929-930). Jednotlivé typy vazeb se uplatňují u molekul MGB v různé míře; van der Waalsovy vazby jsou základem interakce látek typu Hoechst s DNA, naproti tomu vodíkové vazby jsou klíčové u oligoamidů (netropsin, distamycin). Mezi MGB patří jak molekuly s poměrně flexibilní strukturou, jejichž příkladem je pentamidin, tak i poměrně rigidní, např. již zmíněné deriváty benzimidazolu. Několik typů látek působících mechanismem MGB je patentováno za účelem využití pro stabilizaci duplexů nukleových kyselin, např. distamycin a jeho deriváty (US 5955590, US 6949367). Publikovány byly i duplex stabilizující konjugáty oligonukleotidů s analogy barviva Hoechst 33258 (RAJUR S.B., ROBLES J., WIEDERHOLT K., KUIMELIS R.G., MCLAUGHLIN L.W. J. Org. Chem. 1997, vol. 62, p. 523-529) nebo DAPI.
Podobně je i řada molekul působících jako interkalátory zkoumána, testována, a to mnohem častěji než MGB, pro svou schopnost blokovat realizaci genetické informace jako terapeutika bakteriálních a parazitárních infekcí, jako potenciální antivirotika, klinicky jsou však interkalátory využívány především jako antineoplastika (např. GOFTAR M.K., KOR N.M., KOR Z.M. Int. J. Adv. Biol. Biom. Res. 2014, vol. 2(3), p. 811-822). Interkalací mezi báze DNA se komplikuje transkripce a následně i translace a množení buněk. Z klinicky významných interkalátorů možno uvést např. doxorubicin, mithoxanthron, aktinomyciny.
Předpokladem pro interkalační účinek je přítomnost relativně velké planární části molekuly, nejčastěji tri- a vícecyklického útvaru, skládajícího se z sp2 hybridizovaných atomů uhlíku, případně stericky odpovídajících heteroatomů. Interkalační účinek je pak často podpořen přítomností polární části molekuly (sacharidu nebo analogické struktury), která díky hydroxylovým skupinám a aminoskupinám vytváří vodíkové můstky k interkalované DNA a „kotví“ tak interkalátor.
Co se týče použití v molekulární biologii, je z interkalátorů možné zmínit např. ethidium bromid. Interkalátory mají výhodu v silnější stabilizaci duplexu DNA.
Přetrvává potřeba uvést do praktického použití sloučeniny interkalující DNA či vázající se do malého žlábku dvoušroubovice DNA, které by byly flexibilní, ale zároveň snadno připravitelné, s relativně malou molekulou, nízkou molekulovou hmotností a konjugovatelné na oligonukleotidové sondy.
Ze stavu techniky, příkladně z dokumentů IMOTO, Shuhei; HIROHAMA, Tomoya; NAGATSUGI, Fumi. New Methodology to Search for DNA Binding Ligands Based on Duplex DNA-Templated Click Chemistry In: Nucleic Acids Symposium Series. Oxford University Press, 2008. p. 381-382; IMOTO, Shuhei; HIROHAMA, Tomoya; NAGATSUGI, Fumi. DNAtemplated click chemistry for creation of novel DNA binding molecules. Bioorganic & medicinal chemistry letters, 2008, 18.20: 5660-5663; HOWELL, Lesley A., et al. Synthesis and evaluation
- 2 CZ 309849 B6 of 9-aminoacridines derived from benzyne click chemistry. Bioorganic & medicinal chemistry letters, 2009, 19.20: 5880-5883, jsou známé sloučeniny na bázi akridinu nesoucí azidovou skupinu vázanou přes aromatický amin, které mohou být použity pro zvýšení teploty tání DNA a přípravu oligonukleotidových sond. Při přípravě těchto sond je ovšem nutné se vyhnout použití silně bazických činidel, příkladně při deprotekčních krocích, jelikož nevýhodou těchto sloučenin je nízká stabilita v bazickém prostředí. V důsledku toho je nutné používat drahé, komplikované a méně efektivní syntetické postupy.
Podstata vynálezu
Předmětem vynálezu jsou deriváty akridinu, které odstraňují uvedené nedostatky dosavadního stavu techniky. Vynálezem je použití látek obecného vzorce I jako sloučenin pro zvýšení teploty tání dvoušroubovice DNA. Jedná se o molekuly na bázi aromatického jádra akridinu, výhodně nesoucí skupinu obsahující uhlíkatý řetězec zakončený bazickou funkcí, substituovaného karboxamidovou skupinou s řetězcem zakončeným azidoskupinou sloužící ke kovalentní vazbě příkladně na oligonukleotidovou sondu. Modifikace jádra slouží k upevnění vazby na dvoušroubovici DNA pomocí vodíkových vazeb s dusíkem a kyslíkem guaninu, dále pak pomocí vodíkové vazby amidického vodíku přes molekulu vody na fosfátovou skupinu mezi příslušným guanosinem a sousedním nukleosidem. Azidoskupina sloužící k azido-alkynové cykloadici (takzvané click reakci) na vhodně modifikovaný řetězec, příkladně oligonukleotidů.
Vynález se týká použití derivátů akridinu obecného vzorce I:
(I), kde:
substituent Q1 navázaný v kterékoliv volné poloze tricyklického jádra představuje skupinu obecného vzorce II:
(Π), kde:
n je celé číslo od 0 do 9;
-3CZ 309849 B6 dále substituenty Q2 a Q3 navázané v kterékoli volné poloze tricyklického jádra jsou nezávisle na sobě vybírány ze skupiny zahrnující: -Η, -NH2 a -X-(CH2)n-T, kde:
X je -CONH-, -O-, -S-, -CH2-, -NH- nebo -NR1-, kde R1 je alkyl nebo aryl;
nje celé číslo od 0 do 10;
T je -COOH, -CONH2, -CONHR2, -CONR2R3, -COOR2, -NH2, -NHR2 nebo -NR2R3, kde R2 a R3 jsou nezávisle na sobě alkyl nebo aryl;
a dále jejich solí vzniklých reakcí s HC1, H2SO4, H3PO4 nebo HNO3 jako meziproduktů k přípravě interkalátorů zvyšujících pevnost vazby komplementárních řetězců DNA účastnících se interakce a ovlivňujících teplotu tání vznikajícího duplexu.
Sloučeniny obecného vzorce I lze tedy použít dle vynálezu jako látky zvyšující teplotu tání dvoušroubovice DNA. Jejich předností je nízká molekulová hmotnost, bazicita, a tedy možnost tvorby ve vodě velmi dobře rozpustných solí, flexibilita a vysoká stabilizace duplexu DNA. Lze je použít například v kombinaci s vhodnými dvojicemi oligonukleotidů jako systém interní kontroly v analýze teploty tání pro real-time PCR, kde má význam sledovat vliv látek v reakci na teplotu tání (např. u analýz genetických polymorfismů), přičemž sekvence oligonukleotidů se volí tak, aby nebyly komplementární s DNA sekvencemi běžně se vyskytujícími v přírodě. Oproti stavu techniky je možné při přípravě oligonukleotidů s navázanou molekulou stabilizující DNA aplikovat postupy odchránění využívající silně bazická činidla, které by u sloučenin dle stavu techniky vedla k odštěpení substituentů z aromatického jádra.
Sloučeniny je dále možné použít v kombinaci s dvojicemi vhodných oligonukleotidů například v metodách srovnání vlivu dalších sloučenin na zvýšení teploty tání duplexu a experimentech zjišťujících závislost vlivu na zvýšení teploty tání duplexu na sekvenci oligonukleotidů. Sloučeniny obecného vzorce I obsahující ve své molekule azidoskupinu dle vynálezu jsou, mimo použití popsané výše, současně vhodné pro připojení kovalentní vazbou příkladně na oligonukleotidové sondy. Vzniklé struktury je možné následně využít při zjišťování bodových mutací v genech.
Příklady uskutečnění vynálezu
Příklad 1
Příklad č. 1 demonstruje přípravu a charakterizaci sloučeniny vzorce (V).
(V)
Kbezvodému uhličitanu draselnému (5 g) se přidá kyselina anthranilová (6,8 g) a kyselina 2-chlorbenzoová (7,8 g). Do směsi se přidá isoamylalkohol (70 ml) a katalytické množství práškové mědi. Směs se 24 h míchá při teplotě 140 °C. Poté se ze směsi za sníženého tlaku
-4CZ 309849 B6 oddestiluje isoamylalkohol a surový produkt se převede do horké vody (1 l). Směs se míchá a zahřívá do rozpuštění produktu. Následně se do směsi přidává koncentrovaná kyselina chlorovodíková do kyselé reakce. Vzniklá sraženina se odsaje a promyje horkou vodou (0,5 l). Sraženina se rozpustí v 1M NaOH a za míchání a zahřívání se přidá aktivní uhlí (0,5 g). Směs se přefiltruje a k filtrátu se přidá koncentrovaná kyselina chlorovodíková. Sraženina se odsaje, promyje horkou vodou (0,5 l) a vysuší. Vysušená sraženina se rozpustí za horka v 96% ethanolu (1 l). Za míchání se přidá destilovaná voda do stálého zakalení. Směs se ponechá k vysrážení 20 h. Vzniklá sraženina se odsaje a vysuší. Připraví se 5,14 g jemně žluté, pevné krystalické látky, což odpovídá výtěžku 32 %.
K 2,2‘-iminodibenzoové kyselině (7,78 g, 30,24 mmol) se přidá POCh (90 ml), směs se míchá 1 h při 140 °C pod zpětným chladičem. Poté se do směsi ochlazené na 50 °C pomalu přidává bezvodý MeOH (100 ml) po dobu 2 h. Poté se do směsi přidává POCl3 do rozpuštění krystalů a směs se míchá 12 h. Přebytečný MeOH se ze směsi oddestiluje a vzniklé krystaly se odsají a rekrystalizují z horkého MeOH. Krystaly se odsají, promyjí ledovým MeOH a vysuší. Získá se 6,11 g hnědožluté krystalické látky, což odpovídá výtěžku 79 %.
K methylesteru kyseliny 9-oxoakridan-4-karboxylové (0,5 g, 1,97 mmol) se přidá SOCh (1 ml) a katalytické množství DMF. Směs se míchá při teplotě 80 °C pod zpětným chladičem. Poté se ze směsi oddestiluje SOCh za sníženého tlaku. Do surového produktu se přidá suchý fenol (1,86 g, 19,74 mmol) a směs se zahřeje na 110 °C po dobu 15 minut. Poté se teplota sníží na 55 °C a do směsi se přidá 2-dimethylaminoethylamin (434 mg, 4,92 mmol). Směs se míchá při stejné teplotě 24 hodin. Po ukončení reakce se směs převede do chloroformu a vytřepe 1x 2M roztokem hydroxidu sodného (20 ml). Organická vrstva se vysuší Na2SO4 a odpaří. Produkt se přečistí sloupcovou chromatografií na silikagelu (hexan:ethylacetát 7:3). Frakce s čistým produktem se odpaří.
K roztoku methylesteru 9-{[2-(dimethylammo)ethyl]ammo}akridm-4-karboxylové kyseliny (63 mg, 0,195 mmol) v THF se přidá nasycený roztok NaOH ve směsi MeOH/H2O 5:1 v nadbytku. Směs se míchá 1 h při laboratorní teplotě. Poté se ze směsi oddestilují organická rozpouštědla za sníženého tlaku. Směs se rozpustí ve vodě a vytřepe 3x chloroformem. Organické vrstvy se spojí a vysuší Na2SO4. Směs se zahustí za sníženého tlaku. Poté se směs vytřepe 10% HCl a organická vrstva se vysuší Na2SO4 a odpaří za sníženého tlaku. Produkt se přečistí sloupcovou chromatografií na silikagelu.
K roztoku 9-{[2-(dimethylamino)ethyl]amino}akridin-4-karboxylové kyseliny (150 mg, 0,485 mmol) v bezvodém dichlormethanu se přidá HBTU (368 mg, 0,97 mmol) a triethylamin (98 mg, 0,97 mmol). Směs se na 15 minut vloží do ultrazvukové lázně. Poté se do směsi přidá 6azidohexylamin (0,485 mmol) a směs se míchá 2 hodiny za laboratorní teploty. Po ukončení reakce se ze směsi oddestiluje dichlormethan za sníženého tlaku. Produkt se přečistí sloupcovou chromatografií na silikagelu.
1H NMR (500 MHz, CDCb) δ 12,51 (s, 1H); 8,87 (d, J = 7,1; 1,4 Hz, 1H); 8,29 (d, J = 8,7; 1,5 Hz, 1H); 8,18 (d, J = 8,8; 0,9 Hz, 1H); 7,93 (d, J = 8,7; 1,3 Hz, 1H); 7,71 (t, J = 8,3; 6,6; 1,3 Hz, 1H); 7,45 - 7,34 (m, 2H); 7,14 (s, 1H); 3,91 (t, J = 5,8 Hz, 2H); 3,68 (q, J = 6,9; 5,3 Hz, 2H); 3,28 (t, J = 7,0 Hz, 2H); 2,82 - 2,76 (m, 2H); 2,69 (q, J = 7,1 Hz, 4H); 1,83 (p, J = 7,0 Hz, 2H); 1,70 - 1,57 (m, 4H); 1,57 - 1,47 (m, 2H); 1,13 (t, J = 7,1 Hz, 6H); 13C NMR (126 MHz, CDCh) δ 166,54; 152,91; 147,87; 147,43; 134,59; 130,57; 128,98; 127,91; 126,81; 123,03; 122,80; 121,51; 116,13; 115,26; 52,18; 51,40; 46,37; 46,07; 39,55; 29,66; 29,50; 28,81; 27,01; 26,54; 11,87.
Příklad 2
Příklad č. 2 demonstruje obecnou přípravu a charakterizaci oligonukleotidu s navázanou DNA interkalující molekulou metodou click reakce.
- 5 CZ 309849 B6
Oligonukleotid se syntetizuje na syntetizéru DNA/RNA ABI 394, v průběhu syntézy se s využitím standardních komerčních monomerů provede modifikace fosfátem na 3'-konci, 6-karboxyfluoresceinem (6-FAM) na 5'-konci a v pozici 7 se inkorporuje deoxythymidin modifikovaný dibenzocyklooktynem.
Syntetizovaný oligonukleotid se ponechá neodštěpený na pevné fázi. 0,01 mmol DNA interkalující molekuly se rozpustí v 0,2 ml methanolu, přidá se 6 mg pevné fáze s navázaným DBCO modifikovaným oligonukleotidem (200 nmol) a třepe se za laboratorní teploty na třepačce přes noc.
Poté se roztok DNA interkalující molekuly v methanolu odpipetuje a pevná fáze se promyje opakovaně methanolem a dichlormethanem, dokud není rozpouštědlo bezbarvé. Pak se pevná fáze vysuší, přidá se 0,5 ml 50mM roztoku K2CO3 v methanolu a třepe se za laboratorní teploty na třepačce 8 hodin.
Methanolický roztok se poté odpipetuje od pevné fáze, k ní se přidá 0,5 ml vody, protřepe se, voda se opět odpipetuje a přidá se k methanolickému roztoku odblokovaného oligonukleotidu.
Vznikne tak 1 ml roztoku, který se následně zbaví nízkomolekulárních vedlejších produktů gelovou chromatografií. Roztok surového oligonukleotidu z gelové chromatografie se pak odpaří do sucha, zbytek se rozpustí v definovaném objemu příslušného rozpouštědla a přečistí se na HPLC.
Pro analýzu modifikovaných oligonukleotidových sond se aplikuje chromatografická metoda, která umožňuje také semi-preparativní purifikaci, a to při následujících separačních podmínkách: kolona Luna-PhenylHexyl 150*3,0 mm, 5 μm, izokratická eluce s využitím mobilní fáze ACN:TEAA (83:17, v/v).
Průmyslová využitelnost
Vynález je průmyslově využitelný při výrobě oligonukleotidových DNA sond a činidel pro studium DNA.

Claims (1)

1. Použití derivátů akridinu obecného vzorce I:
kde:
substituent Q1 navázaný v kterékoli volné poloze tricyklického jádra představuje skupinu obecného vzorce II:
(Π), kde:
n je celé číslo od 0 do 9;
dále substituenty Q2 a Q3 navázané v kterékoliv volné poloze tricyklického jádra jsou nezávisle na sobě vybírány ze skupiny zahrnující: -Η, -NH2 a -X-(CH2)n-T, kde:
X je -CONH-, -0-, -S-, -CH2-, -NH- nebo -NR1-, kde R1 je alkyl nebo aryl;
nje celé číslo od 0 do 10;
T je -COOH, -CONH2, -CONHR2, -CONR2R3, -COOR2, -NH2, -NHR2 nebo -NR2R3, kde R2 a R3 jsou nezávisle na sobě alkyl nebo aryl;
a dále jejich soli vzniklé reakcí s HC1, H2SO4, H3PO4 nebo HNO3 jako meziproduktů k přípravě interkalátorů zvyšujících pevnost vazby komplementárních řetězců DNA a ovlivňujících její teplotu tání.
CZ2020-154A 2020-03-19 2020-03-19 Použití derivátů akridinu jako sloučenin interkalujících se do DNA CZ309849B6 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2020-154A CZ309849B6 (cs) 2020-03-19 2020-03-19 Použití derivátů akridinu jako sloučenin interkalujících se do DNA

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2020-154A CZ309849B6 (cs) 2020-03-19 2020-03-19 Použití derivátů akridinu jako sloučenin interkalujících se do DNA

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ2020154A3 CZ2020154A3 (cs) 2021-09-29
CZ309849B6 true CZ309849B6 (cs) 2023-12-13

Family

ID=77851942

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ2020-154A CZ309849B6 (cs) 2020-03-19 2020-03-19 Použití derivátů akridinu jako sloučenin interkalujících se do DNA

Country Status (1)

Country Link
CZ (1) CZ309849B6 (cs)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CZ309844B6 (cs) * 2021-09-03 2023-12-06 Univerzita Karlova Deriváty akridinu jako sloučeniny interkalující se do DNA a jejich použití

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
HOWELL, Lesley A., et al. Synthesis and evaluation of 9-aminoacridines derived from benzyne click chemistry. Bioorganic & medicinal chemistry letters, 2009, 19.20: 5880-5883; ISSN 0960-894X *
IMOTO, Shuhei; HIROHAMA, Tomoya; NAGATSUGI, Fumi. DNA-templated click chemistry for creation of novel DNA binding molecules. Bioorganic & medicinal chemistry letters, 2008, 18.20: 5660-5663; ISSN: 0960-894X *
IMOTO, Shuhei; HIROHAMA, Tomoya; NAGATSUGI, Fumi. New Methodology to Search for DNA Binding Ligands Based on Duplex DNA-Templated Click Chemistry. In: Nucleic Acids Symposium Series. Oxford University Press, 2008. p. 381-382; ISSN 1746-8272 *

Also Published As

Publication number Publication date
CZ2020154A3 (cs) 2021-09-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP4098356B2 (ja) 標識結合パートナーのためのピリミジン誘導体
JP4948690B2 (ja) 共有結合したオリゴヌクレオチド小溝結合物質複合体
US7851606B2 (en) Negatively charged minor groove binders
JP5493117B2 (ja) オリゴヌクレオチド誘導体及びその利用
CN106661577A (zh) 反义核酸
WO2013082548A1 (en) Oligonucleotides for treating expanded repeat diseases
WO2011032034A2 (en) Nucleobase-functionalized conformationally restricted nucleotides and oligonucleotides for targeting nucleic acids
Gröger et al. Guanidiniocarbonyl-pyrrole-aryl conjugates as nucleic acid sensors: Switch of binding mode and spectroscopic responses by introducing additional binding sites into the linker
Jain et al. Influence of pendant chiral Cγ-(alkylideneamino/guanidino) cationic side-chains of PNA backbone on hybridization with complementary DNA/RNA and cell permeability
EP2736916B1 (en) Minor groove binder phosphoramidites and methods of use
CZ309849B6 (cs) Použití derivátů akridinu jako sloučenin interkalujících se do DNA
KR20210035079A (ko) 설포로다민 포스포아미다이트 염료
JP2004339202A (ja) 6員環を有するヌクレオチドアナログ
Saarbach et al. Facile access to modified and functionalized PNAs through Ugi-based solid phase oligomerization
Tumir et al. Interactions of novel phenanthridinium–nucleobase conjugates with complementary and non‐complementary nucleotides in aqueous media
Wamberg et al. Intercalating nucleic acids (INAs) containing insertions of 6H-indolo [2, 3-b] quinoxaline
JP5201639B2 (ja) Rna選択的ハイブリダイズ試薬及びその利用
CZ2021407A3 (cs) Deriváty akridinu jako sloučeniny interkalující se do DNA a jejich použití
JP7413362B2 (ja) 新規人工核酸、その製造方法及び用途
JP2009514865A (ja) 有糸分裂キネシン阻害剤
Kamaike et al. Synthesis and evaluation of MGB polyamide-oligonucleotide conjugates as gene expression control compounds
WO2005023248A1 (ja) TGF−β遺伝子発現抑制剤
Fader et al. Synthesis of novel analogs of aromatic peptide nucleic acids (APNAs) with modified conformational and electrostatic properties
WO2019036225A1 (en) FLUORESCENCE EXTINGUISHERS STABILIZING DUPLEX FOR NUCLEIC PROBES
Ohkubo et al. Efficient solid-phase synthesis of oligodeoxynucleotides having a 5′-terminal 2, 2, 7-trimethylguanosine pyrophosphate linkage