CZ2012668A3 - Lécivo ve forme antistafylokokového fágového lyzátu, zpusob jeho výroby a pouzití - Google Patents
Lécivo ve forme antistafylokokového fágového lyzátu, zpusob jeho výroby a pouzití Download PDFInfo
- Publication number
- CZ2012668A3 CZ2012668A3 CZ20120668A CZ2012668A CZ2012668A3 CZ 2012668 A3 CZ2012668 A3 CZ 2012668A3 CZ 20120668 A CZ20120668 A CZ 20120668A CZ 2012668 A CZ2012668 A CZ 2012668A CZ 2012668 A3 CZ2012668 A3 CZ 2012668A3
- Authority
- CZ
- Czechia
- Prior art keywords
- phage
- lysate
- medicament
- tryptone
- preparation
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/02—Bacterial antigens
- A61K39/085—Staphylococcus
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
- A61K35/66—Microorganisms or materials therefrom
- A61K35/76—Viruses; Subviral particles; Bacteriophages
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/04—Antibacterial agents
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N7/00—Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
- C12N7/02—Recovery or purification
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2795/00—Bacteriophages
- C12N2795/00011—Details
- C12N2795/00051—Methods of production or purification of viral material
- C12N2795/00052—Methods of production or purification of viral material relating to complementing cells and packaging systems for producing virus or viral particles
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2795/00—Bacteriophages
- C12N2795/00011—Details
- C12N2795/10011—Details dsDNA Bacteriophages
- C12N2795/10111—Myoviridae
- C12N2795/10133—Use of viral protein as therapeutic agent other than vaccine, e.g. apoptosis inducing or anti-inflammatory
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Public Health (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Mycology (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Virology (AREA)
- Oncology (AREA)
- Communicable Diseases (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Zpusob výroby léciva ve forme antistafylokokového fágového lyzátu, zahrnující následující po sobe jdoucí kroky: ozivení bakteriálního kmene, pasázování bakteriálního kmene, príprava bunecných subkultur, príprava fágového startéru metodou dvouvrstevného agaru, príprava fágového startéru v tekuté pude, príprava bakteriální suspenze, príprava fágového lyzátu, filtrace fágového lyzátu nebo smesi lyzátu, rozplnení filtrovaného lyzátu nebo smesi lyzátu do lahvicek, lyofilizace lahvicek s lyzátem nebo se smesí lyzátu, kde hotový lécivý prípravek je lyofilizovaný prásek pro prípravu roztoku (lyofilizát) vyrobený sterilní filtrací a lyofilizací smesi antistafylokokového fágového lyzátu obsahující úcinné fágové cástice polyvalentního stafylokokového bakteriofága. Lécivo pro lokální pouzití obsahuje vysoce úcinné virulentní fágové cástice s polyvalentním úcinkem.
Description
Léčivo ve formě antistafyloko^eho fágového lyzátu, způsob jeho výroby apoužiti Utoll-6^
Oblast techniky
Vynález se týká léčiva s účinnou látkou ve formě antistafylokokového fágového lyzátu, který obsahuje vysoce virulentní a specificky účinné fágové částice, které mají velmi rychlý, silný a polyvalentní lytický účinek na původce stafylokokových infekcí. Buněčné složky vzniklé destrukcí bakteriálních buněk při lyži po uvolnění fágových virionů mohou působit také imunomodulačně a stimulovat navození nespecifické imunity. Vynález rovněž zahrnuje způsob výroby léčiva a jeho použití.
Dosavadní stav techniky
Infekční choroby způsobované patogenními bakteriemi jsou v celosvětovém měřítku jednou z hlavních příčin úmrtí člověka. Mezi vůbec nejčastěji se vyskytující patogenní bakterie patří stafylokoky, způsobující celou řadu onemocnění, běžnými kožními infekcemi počínaje, přes závažná onemocnění orgánů jako jsou osteomyelitidy, endokarditidy a pneumonie až k těžkým sepsím končícím smrtí pacienta (jedinci s oslabenou imunitou, po léčbě nádorů, s implantáty, starší jedinci, pacienti s cystickou fibrózou). Mimořádnou důležitost má druh Staphylococcus aureus, který patří mezi hlavní původce komunitních a nemocničních (nozokomiálních) infekcí. Závažným problémem, který komplikuje léčbu pacientů, je vznik a šíření kmenů rezistentních k antimikrobiálním preparátům (zejména antibiotikům) jako důsledek neracionálního používání těchto látek k léčbě často banálních onemocnění. Problém zvyšujícího se počtu bakteriálních kmenu rezistentních na antibiotika může být řešen zavedením racionální fágové terapie, tzn. využitím bakteriofágů k léčbě bakteriálních infekcí jako alternativy nebo náhrady léčby antibiotiky, zejména proto, že je časově a finančně značně obtížné získávat nová účinná antibiotika (Gill and Hyman 2010, Curr. Pharm. Biotechnol. 11:2-14).
Polyvalentní stafylokokové bakteriofágy čeledi Myoviridae se v posledních letech staly předmětem zájmu s ohledem na jejich možné praktické využití při fágové terapii, která představuje vhodnou alternativu antibiotikové léčby stafylokokových infekcí (Mann 2008,
-2Res. Microbiol. 59:400-405). K nejlépe prostudovaným fágům z této skupiny patří fág K, u něhož je známa kompletní sekvence genomu (O'Flaherty et al. 2004, J. Bacteriol. 186: 2862-2871, Kwan et al. 2005, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 102:5174-5179). V naší dřívější práci (Pantůček et al. 1998, Virology 246:241-252) jsme podrobně charakterizovali fága 812, který se vyznačuje širokým rozmezím hostitele v rámci r. Staphylococcus. Testováním lytického účinku fága 812 a jeho mutant v rozmezí hostitele provedeným na rozsáhlém počtu kmenů S. aureus různé provenience bylo zjištěno, že 95 % kmenů je citlivých alespoň k jedné mutantě v rozmezí hostitele polyvalentniho fága 812. Ze studia restrikčně deficientnich mutant S. aureus vyplynulo, že rezistence kmenů S. aureus k polyvalentnimu fágu 812 je podmíněna specifickými restrikčně modifikačnimi systémy (Doškař 1989, Scripta Fac. Sci. Nat. Univ. Purk. Brun. 19:391-401).
Podstata vynálezu
Podstatou vynálezu je antistafylokokový fágový lyzát pro lokální použití, je určen výhradně pro místní aplikaci u infekcí vyvolaných stafylokokovými kmeny. Může se použít v humánní i veterinární medicíně u všech forem stafylokokových infekcí. Slouží k destrukci stafylokokových buněk v místě probíhající infekce.
Popis biologického materiálu je následující.
Polyvalentní stafylokokový bakteriofág
Označeni: Bakteriofág DSM 26144 (směs několika subtypů polyvalentniho bakteriofága, izolovaných genetickou selekcí na klinických izolátech Staphylococcus aureus)
Taxonomické zařazeni: Řád Caudovirales, čeled Myoviridae, rod SPO1 like viruses
Typ nukleové kyseliny: lineární dvouřetězcová DNA bez koheznich konců, velikost 138,7 kbp; molárni obsah G+C 30,42 s! genetická odlišnost subtypů 0,2% sekvence DNA zahrnuje 27 sekvenčních variací (krátké inzerce, delece a záměny) a 287 bodových mutací popsaných v sekvenci formou degenerovaných bází dle nomenklatury IUPAC
Sekvence genomu: doloženo na CD
-3 ····· ·· · · · · ·
Rozmezí hostitele: kmeny různých druhů rodu Staphylococcus, zejména Staphylococcus aureus
Životní cyklus: výhradně virulentní bakteriální virus, nepodléhá lyzogennímu cyklu, v sekvenci DNA neprokázány geny pro integrázy nebo antirepresory, jež jsou charakteristické pro temperované bakteriofágy Struktura virionu: Hlavička a bičík s kontraktilní pochvou, bazální destička s hroty, velikost hlavičky 80 - 100 nm, délka bičíku 200 250 nm (příloha elektronmikroskopický snímek bakteriofága).
Uložení ve sbírce: Biologický materiál byl uložen dle Budapeštské smlouvy v DSMZ-Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH, InhoffenstraBe 7B, 38124 Braunschweig, Germany s prioritou k 3. 7.2012 (číslo v databázi DSM 26144)
Pomnožovací kmen Staphylococcus aureus pro bakteriofága
Označení: Staphylococcus aureus CCM 8428
Taxonomícké zařazení: Bacteria; Firmicutes; Bacilli; Bacillales, Staphylococcaceae
Koncept sekvence genomu: sekvence genomu o délce 2446 kb představující 87% celkové délky genomové DNA a je doložena na CD ve formě kontigů Klonální zařazení: Sekvenční typ ST30 , spa-typ t021
Fenotypová charakteristika: G+ koky, průměr 0,8-1 pm, jednotlivé, dvojice, hrozníčky, hloučky. Na krevním agaru nebo na tryptonovém agaru tvoří kolonie 1-2 mm, okraje rovné, povrch hladký, vypouklý, barva béžová, neprůhledná. Na krevním agaru produkuje hemolyzin alfa a beta. Clumping-faktor pozitivní, hyaluronidáza pozitivní. Metodou RPLA nebyla prokázána produkce enterotoxinů SEA - SEE, TSST-1, ETA a ETB.
Citlivost k bakteriofagům: vysoce citlivý k temperovaným bakteriofágům 29, 52, 52Ά, 79, 80, 6, 42E, 47, 53, 54, 75, 77, 83A, 84, 85, 81 a 95.
Genotypová charakteristika: Kmen bez profágů, bez plazmidů, metodou PCR nebyly prokázány geny enterotoxinů (sea - see, seh - sen, sep seu) a geny pro PVL, TSST-1, ETA, ETB, ETD, dále nebyly prokázány geny pro rezistence k antibiotikům mecA, blaZ, tetK, tetM, ermA, ermB a ermC.
Uložení ve sbírce: Biologicky materiál byl uložen dle Budapešťské smlouvy v CCM-České sbírce mikroorganismů v Brně s prioritou k 21.6.2012 (číslo v databázi CCM 8428)
-4- .:.. : ·..· ..· .:.
Výchozím materiálem pro výrobu lyzátu jsou subtypy polyvalentniho bakteriofága, které jsou uchovávány v lyofilizovaném stavu za dodrženi systému jednotné inokulace (seed lot systém). Tyto bakteriofágy jsou při výrobě fágového lyzátu pomnoženy na nepatogennim pomnožovacím kmeni Staphylococcus aureus do vysokého titru (108 - 109 PFU/ml) a zpracovány do finálního preparátu, přičemž jednotka PFU (Plague forming units) je měřítkem množství infekčních virových částic.
Používá se hlavně k eliminaci původců stafylokokových infekcí z ložisek infekce (hnisavé procesy kůže, podkoží a kožních adnex) i potenciálních rezervoárů (především nosohltanu, střevního a močového traktu). Představuje významný prostředek při komplexní léčbě chronických forem stafylokokových infekcí (hnisavé afekce, abscesy, píštěle, infekce postihující hluboko uložené měkké tkáně), který zabraňuje jejich vyústění v septický stav. Je též důležitou součástí preventivních opatření v předoperační přípravě s cílem zabránit vzniku superponovaných pyogenních komplikací po operativních intervencích.
Alternativním využitím preparátu je uplatnění při konzervaci a uchovávání potravin, při výrobě krmiv pro hospodářská zvířata a využití při dekontaminaci povrchů (nemocniční prostředí, lékařské pomůcky).
Princip výrobního procesu
Bakteriální hostitelská kultura se kultivuje v tekutém tryptonovém médiu. Po dosažení růstu blížícího se hodnotě lxlO9 PFU/ml se přidá aktivní fágový kmen v přibližném poměru MI 1 (MI = multiplicita infekce), což znamená, že fágová částice připadá na 1 bakteriální buňku. Po proběhlé lýze bakteriální kultury se fágový lyzát uloží do lednice, kde je uchováván do dalšího zpracování. Léčivá látka je připravena jako směs obsahující vysoce účinné virulentní fágové částice s polyvalentním účinkem připravené kultivací subtypů bakteriofágů a standardizována ve své účinnosti podle koncentrace specifických fágových částic v 1 ml.
1. Oživení bakteriálního kmene
Lyofilizovaný kmen se po rozpuštění vyočkuje na 1,5% tryptonový agar a kultivuje se 24 hodin při teplotě +37 °C ± 1 °C.
-5- .:.. : ·..· ..· .:.
Pasážování kmene
Narostlý bakteriální kmen se přeočkuje na potřebný počet ploten s 1,5 % tryptonovým agarem a kultivuje se 24 hodin při teplotě + 37 C + 1 °C. Narostlá kultura se použije pro zaočkování tekuté tryptonové půdy. Mezioperační kontrola: Kultivační a mikroskopická kontrola čistoty kmene.
2. Příprava subkultur
Bakteriální kultura se z pevné půdy přeočkuje do Erlenmayerovy baňky se 100 ml tryptonové půdy. Množství zaočkovaných Erlenmayerových baněk závisí na potřebném množství subkultur pro výrobu (1-3 ks), kultivace probíhá 24 hodin při teplotě + 37 °C ± 1 °C.
Mezioperační kontrola: Mikroskopická kontrola čistoty subkultur.
3. Příprava fágového startéru
Rozpuštěný fágový kmen se nejprve oživí a pomnoží metodou dvouvrstevného agaru a dále se kultivuje v tekuté pudě.
Metoda dvouvrstevného agaru
Petriho misky s 1,5 % tryptonovým agarem, který slouží jako základ, se přelijí 3 ml 0,36% tryptonového agaru, který obsahuje bakteriální suspenzi příslušné hostitelské bakterie Staphylococcus aureus a suspenzi bakteriofága, získaného resuspendováním lyofilizovaného fágového kmene v izotonickém roztoku. Následuje inkubace 24 h při teplotě +37 °C ± 1 °C. Poté se povrch každé plotny přelije tryptonovým tekutým médiem. Po 30 minutách se měkký povrch s 0,36-8 tryptonovým agarem smyje a centrifuguje 3x1 hodinu při 5000 RPM. Bakteriofág je obsažen v supernatantu.
Mezioperační kontrola: Stanovení počtu fágových částic.
4. Příprava v tekuté půdě
Subkulturou hostitelské bakterie Staphylococcus aureus se inokuluje tryptonová půda. Kultivace probíhá v termostatu při teplotě +37 °C ± 1 °C tak dlouho, až je dosažena optická denzita biomasy 0,3 - 0,4 (měřeno na spektrofotometru při vlnové délce 500 nm). Do stafylokokové suspenze se přidá 15 - 20 ml fágového lyzátu (připraveného dle předchozího bodu, o min. titru 1 x 10 PFU/ml).
-6- .:.. : ·..· ..· .:.
Probíhá pomnožení bakteriofága při pokojové teplotě 18 - 20 hodin za stálého třepáni. Následuje centrifugace 1 hodinu při 5000 RPM. Bakteriofág je obsažen v supernatantu.
Mezioperační kontrola: Kontrola denzity bakteriální suspenze a během bakteriolýzy, stanoveni počtu fágových částic fágového startéru.
5. Příprava bakteriální suspenze
Bakteriální suspenze z Erlenmayerových baněk se zaočkuje do 3000 ml kryptonové půdy v 5 1 lahvi.
Kultivace při + 37 °C ± 1°C probíhá tak dlouho, než se dosáhne požadované denzity (optická denzita 0,25 - 0,35). Doba kultivace se pohybuje zpravidla v rozmezí 4 až 5 hodin. První vzorek na kontrolu denzity je odebrán po 3 hodinách kultivace, další vzorky jsou odebírány v závislosti na nárůstu bakterií.
Mezioperační kontrola: Provozní kontrola provádí během kultivace měření denzity a po ukončení kultivace mikroskopickou kontrolou.
6. Příprava fágového lyzátu
K bakteriální suspenzi se přidá fágový startér o min. titru 1 x 1010 PFU/ml v množství cca 50 - 60 ml. Startér je asepticky přidán v okamžiku, kdy je hodnota optické denzity vzorku v intervalu (0,25 0,35 ).
Bakteriolýza probíhá při pokojové teplotě 20 - 30 hodin. Během bakteriolýzy dochází k projasňování tekuté kultury. Optická denzita lyžované bakteriální suspenze musí poklesnout pod hodnotu 0,1.
Mezioperační kontrola: Provozní kontrola provádí měření denzity.
Kultivační média pro výrobu fágového lyzátu: Tryptonová půda.
- suroviny Trypton Oxoid, Yeast extract Oxoid, chlorid sodný, purifikovaná voda
Tryptonový agar kryptonová půda, Agar Oxoid Ν’ 1
Sterilizace připraveného kryptonového agaru i tryptonové půdy probíhá v parním sterilizátoru při teplotě 121 °C pro dobu 30 minut.
-7 - . · · .· .
·«··· · · · · *
Kontrola kultivačních půd je založena na ověřeni růstových vlastností pomocí kmene Staphylococcus aureus.
Kontrola kritických kroků a meziproduktů
Krok | Metoda | Požadavky |
1. Oživení a pasážování bakteriálního kmene | Mikroskopická čistota Kultivační čistota | G+ koky, průměr 0,8-1 pm, jednotlivé, dvojice, hrozníčky, hloučky. Nesmí obsahovat cizí mikroorganismy Kolonie 1-2 mm, okraje rovné, povrch hladký, vypouklý, barva zlatožlutá (bílá, béžová), neprůhledná, konzistence mazlavá. Nesmí obsahovat kolonie jiného mikrobiálního druhu. |
2.Příprava bakteriálních subkultur | Mikroskopická čistota | G+ koky, průměr 0,8-1 pm, jednotlivé, dvojice, hrozníčky, hloučky. Nesmí obsahovat cizí mikroorganismy |
3.Příprava fágového startéru dvouvrstevný agar | Stanovení počtu fágových částic | min. 1 . 1010 PFU/ml |
4.Příprava fágového startéru - tekutá půda | Měření denzity spektrofotometricky | Nárůst hostitelské bakterie na OD 0,3 - 0,4 |
Stanovení počtu fágových částic | min. 1 . 1010 PFU/ml | |
5.Příprava bakteriální suspense | Mikroskopická čistota | G+ koky, průměr 0,8-1 pm, jednotlivé, dvojice, hrozníčky, hloučky. Nesmí obsahovat cizí mikroorganismy |
Měření denzity | Nárůst hostitelské bakterie na |
-----' ' | spektrofotometríčky | OD 0,25,-0,35 |
6.Příprava fágového lyzátů | Měření denzity spektrofotometríčky | Kontrola nárůstu bakteriofága pokles OD pod 0,1 |
Použití k:
Rozšíření spektra účinnosti preparátu na aktuálně se vyskytující kmeny
Účinnost preparátu
Preparát je v současnosti účinný na 85 % prověřovaných kmenů (n=100) včetně nemocničních a komunitních kmenů ze závažných infekcí a MRSA shromážděných z nemocničních zařízení a klinických laboratoří z několika regionů. Většina citlivých kmenů Staphylococcus aureus je klasifikována do klonálních linií STI, ST5, ST8, ST20, ST22, ST30, ST36, STIH, ST154, ST225, ST228, ST247, ST624. Genotypy a vlastnosti stafylokokových kmenů však podléhají poměrně rychlé evoluci a v budoucnosti se dá očekávat výskyt necitlivých kmenů. Pro rozšíření spektra účinnosti na základě testování citlivosti aktuálně se vyskytujících kmenů Staphylococcus aureus je navrženo použít pro přípravu inovovaného přípravku směs více fágových lyzátů obsahujících několik subtypů bakteriofágů (fágových mutant s rozšířeným rozmezím hostitele).
Izolace nových subtypů bakteriofága a inovace preparátu
Subtypy bakteriofága s širším rozmezím hostitele jsou izolovány z plaků vyrostlých po výsevu výchozího fága na necitlivé bakteriální kmeny Staphylococcus aureus. Izolace nových účinných subtypů je prováděna výsevem lyzátů fágů o vysokém titru na nárůst rezistentních kmenů. Jednotlivé plaky, které na těchto kmenech vyrostou s velmi nízkou frekvencí (10-9 - 10 6) , jsou pak použity k založení lyzátů obsahujících mutantní fágy. Pro dosažení širokého lytického spektra může být selekce prováděna v několika stupních, během nichž jsou fágové mutanty získané na jednom rezistentním kmeni následně vysévány na další (jiné) rezistentní kmeny. Během tohoto procesu probíhají ve fágových genomech mutace, které ovlivňují lytické schopnosti fága a vedou k rozšíření jeho rozmezí hostitele. Eventualita, že selektované fágy mohou být výsledkem modifikace indukované hostitelským kmenem použitým pro jejich selekci, je ověřena stanovením hodnoty účinnosti výsevu (eop) na testovaných kmenech a jejich schopnosti udržet si široké rozmezí hostitele po opakovaném pomnožení na propagačním kmeni
-9(testováni reverze) . Na základě vlastních dlouholetých zkušenosti má však většina takto získaných bakteriofágových subtypů charakter mutant, které si rozšířené rozmezí hostitele trvale udržují.
Výroba konečného přípravku
Popis a složeni konečného přípravku
Hotový léčivý přípravek je lyofilizovaný prášek pro přípravu roztoku (lyofilizát) vyrobený sterilní filtrací a lyofilizací směsi antistafylokokového fágového lyzátu obsahující účinné fágové částice polyvalentního stafylokokového bakteriofága.
Léčivo pro lokální použití obsahuje vysoce účinné virulentní fágové částice s polyvalentním účinkem. Je standardizován ve své účinnosti podle koncentrace specifických fágových částic po rekonstituci prášku pro přípravu roztoku v rozpouštědle (voda na injekci) na 1 ml.
V jedné terapeutické dávce je obsaženo minimálně 106 částic.
Výrobní proces konečného léčivého přípravku
Výroba šarže konečného přípravku kontinuálně navazuje na výrobu fágových lyzátů jednotlivých subtypů fágového kmene. Šarže konečného přípravku je vyrobena smícháním stejného množství fágových lyzátů jednotlivých subtypů bakteriofága, připravená směs je sterilně zfiltrována, rozplněna do lahviček a lyofilizována. Po ukončení lyofilizace jsou lahvičky s hotovým přípravkem uzavřeny zátkou, zajištěnou pertlí.
Filtrace
Směs lyzátů se po odebrání vzorku pro mikrobiální zátěž (100 ml) filtruje přes filtrační vrstvu o porositě 0,22 pm.
Mezioperační kontrola:
Stanovení mikrobiální zátěže přípravku - max. 10 PFU/100 ml.
Rozplňování
Filtrovaný lyzát se rozplňuje po 10 ml do lahviček PNC 20 ml.
Mezioperační kontrola: Kontrola plněného objemu pomocí kalibrovaného odměrného válce.
-10 - : ‘..· J
Lyofilizace
Naplněné lahvičky překryté lyofilizačni zátkou jsou lyofilizovány ve vakuu z hlubokého namraženi (-45 °C) zahříváním na deskách do stanovené teploty (+30 °C).
Popis lyofilizačního cyklu:
I. Fáze: namraženi desek na -50 °C, založení materiálu, namraženi materiálu do vyrovnání teploty desek a materiálu na stejnou hodnotu (doba trvání fáze 1 hod.)
II. Fáze: Je udržována zmrazovací teplota desek na -50 °C a zahřívána vývěva (doba trvání fáze 30 min.)
III. Fáze: hlavního sušení - evakuace sušícího prostoru do nastaveného vakua (30-80 Pa) . Po dosažení hodnoty tlaku, začíná ohřívání desek nastavené na teplotu +30 °C dle časového režimu. Tato fáze lyofilizačního procesu představuje přibližně 90 % celkového času a trvá přibližně 24 hodin.
IV. Fáze: Finální sušení za maximálního vakua (2 - 0,5 Pa) a maximální teploty +30 °C. Pokud je dosaženo teploty produktu shodné s teplotou topných desek a hodnoty vakua se při testu ukončení sušení nemění, je lyofilizace ukončena zrušením vakua.
Po ukončení lyofilizace jsou zátky zajištěny pertlí.
Přehled obrázků na výkresech
Obr. 1 znázorňuje schéma přípravy fágového lyzátu
Obr. 2 znázorňuje schéma výroby konečného přípravku
Příklad provedeni vynálezu
Příklad 1
- 11 Způsob výroby léčiva vs formě antistafylokokového fágového lyzátu zahrnuje následující po sobě jdoucí kroky: - oživení bakteriálního kmene;
- pasážování bakteriálního kmene;
- příprava buněčných subkultur;
- příprava fágového startéru metodou dvouvrstevného agaru;
- příprava fágového startéru v tekuté půdě;
- příprava bakteriální suspenze;
- příprava fágového lyzátu;
- filtrace fágového lyzátu nebo směsi lyzátů;
- rozplnění filtrovaného lyzátu nebo směsi lyzátů do lahviček;
- lyofilizace lahviček s lyzátem nebo se směsí lyzátů.
Krok oživení bakteriálního kmene zahrnuje vyočkování lyofilizovaného bakteriálního kmene po jeho rozpuštění na 1,5% tryptonový agar a jeho následnou kultivaci po dobu 24 hodin při teplotě +37 °C ± 1 °C.
Krok pasážování bakteriálního kmene zahrnuje přeočkování narostlého bakteriálního kmenu na potřebný počet ploten s 1,5 % tryptonovým agarem a jeho kultivace po dobu 24 hodin při teplotě + 37 °C ± 1 °C.
Krok přípravy buněčných subkultur zahrnuje přeočkování bakteriální kultury z pevné půdy do Erlenmayerovy baňky se 100 ml tryptonové půdy, přičemž množství zaočkovaných Erlenmayerových baněk závisí na potřebném množství subkultur pro výrobu a kultivace probíhá 24 hodin při teplotě + 37 °C ± 1 °C.
Krok přípravy fágového startéru metodou dvouvrstevného agaru zahrnuje oživení rozpuštěného fágového kmene a jeho pomnožení, přičemž Petriho misky s 1,5 % tryptonovým agarem, který slouží jako základ, se přelijí 3 ml 0,36% tryptonového agaru, který obsahuje bakteriální suspenzi příslušné hostitelské bakterie Staphylococcus aureus a suspenzi bakteriofága, získaného resuspendováním lyofilizovaného fágového kmene v izotonickém roztoku, následuje inkubace 24 h při teplotě +37 C + 1 °C, poté se povrch každé plotny přelije tryptonovým agarem, po 30 minutách se měkký povrch s 0,36% tryptonovým agarem smyje a centrifuguje 3krát 1 hodinu při 5000 RPM, přičemž bakteriofág je obsažen v supernatantu.
-12Krok přípravy fágového startéru v tekuté půdě zahrnuje inokulaci tryptonové půdy subkulturou hostitelské bakterie Staphylococcus aureus, kultivace probíhá v termostatu při teplotě +37 °C ± 1 °C tak dlouho, až je dosažena optická denzita biomasy 0,3 - 0,4, měřeno na spektrofotometru při vlnové délce 500 nm, do stafylokokové suspenze se přidá 15 - 20 ml fágového lyzátu připraveného dle předchozího bodu, o min. titru 1 x 1010 PFU/ml, probíhá pomnožení bakteriofága při pokojové teplotě 18 - 20 hodin za stálého třepání, následuje centrifugace 1 hodinu při 5000 RPM, přičemž bakteriofág je obsažen v supernatantu.
Krok přípravy bakteriální suspenze zahrnuje zaočkování bakteriální suspenze z Erlenmayerových baněk do 3000 ml tryptonové půdy v 5 1 lahvi, přičemž kultivace při + 37 °C ± 1°C probíhá tak dlouho, než se dosáhne požadované denzity v rozmezí 0,25 - 0,35, doba kultivace probíhá v rozmezí 4 až 5 hodin, první vzorek na kontrolu denzity je odebrán po 3 hodinách kultivace a další vzorky jsou odebírány v závislosti na nárůstu bakterií.
Krok přípravy fágového lyzátu nebo směsi fágových lyzátů zahrnuje přidání fágového startéru startér o min. titru 1 x 1010 PFU/ml v množství o objemu 50 — 60 ml k bakteriální suspenzi, přičemž startér je asepticky přidán v okamžiku, kdy je hodnota optické denzity vzorku v intervalu 0,25 - 0,35, bakteriolýza probíhá při pokojové teplotě 20 - 30 hodin, během bakteriolýzy dochází k projasňování tekuté kultury a optická denzita lyžované bakteriální suspenze musí poklesnout pod hodnotu 0,1.
Po odebrání vzorku pro mikrobiální zátěž o obsahu vzoru 100 ml se fágový lyzát nebo směs lyzátu filtruje přes filtrační vrstvu o porositě 0,22 pm, přičemž mikrobiální zátěž přípravku odpovídá max. 10 PFU/100 ml.
Filtrovaný lyzát se rozplňuje po 10 ml do lahviček PNC 20 ml.
Lahvičky s lyzátem nebo se směsí lyzátů překryté lyofilizační zátkou jsou lyofilizovány ve vakuu z hlubokého namražení (-45 °C) zahříváním na deskách do stanovené teploty ( + 30 °C) , přičemž krok lyofilizace sestává z následujících fází a po ukončení lyofilizace jsou zátky zajištěny pertlí:
I. Fáze: namražení desek na -50 °C, založeni materiálu, namraženi materiálu do vyrovnání teploty desek a materiálu na stejnou hodnotu (doba trvání fáze 1 hod.)
II. Fáze: Je udržována zmrazovací teplota desek na -50 °C a zahřívána vývěva (doba trvání fáze 30 min.)
III. Fáze: hlavního sušení - evakuace sušícího prostoru do nastaveného vakua (30-80 Pa) . Po dosažení hodnoty tlaku, začíná ohřívání desek nastavené na teplotu +30 °C dle časového režimu. Tato fáze lyofilizačního procesu představuje přibližně 90 % celkového času a trvá přibližně 24 hodin.
IV. Fáze: Finální sušení za maximálního vakua (2 - 0,5 Pa) a maximální teploty +30 °C. Pokud je dosaženo teploty produktu shodné s teplotou topných desek a hodnoty vakua se při testu ukončení sušení nemění, je lyofilizace ukončena zrušením vakua.
Při výrobě byla použita tryptonová půda vytvořená ze souboru látek zahrnujícího Trypton Oxoid, Yeast extract Oxoid, chlorid sodný a purifikovanou vodu, a dále byl použit tryptonový agar sestávající z kombinace tryptonové půdy a Agar Oxoid Ν' 1. Sterilizace připraveného tryptonového agaru a tryptonové půdy probíhala v parním sterilizátoru při teplotě 121 °C pro dobu 30 minut.
Příklad 2
Léčivo ve formě antistafylokového fágového lyzátu obsahující účinné fágové částice polyvalentního stafylokokového bakteriofága, které je připravené způsobem podle příkladu 1. V jedné terapeutické dávce je minimálně 106 částic bakteriofága.
Průmyslová využitelnost
Vynález je průmyslově využitelný v oblasti humánní i veterinární medicíny u všech forem stafylokokových infekcí. Slouží k destrukci stafylokokových buněk v místě probíhající infekce.
Claims (23)
- PATENTOVÉ NÁROKY f>l/ WL-1. Způsob výroby léčiva ve formě antistafylokokového fágového lyzátu, vyznačující se tím, že zahrnuje následující po sobě jdoucí kroky:- oživení bakteriálního kmene;- pasážování bakteriálního kmene;- příprava buněčných subkultur;— příprava fágového startéru metodou dvouvrstevného agaru,- příprava fágového startéru v tekuté půdě;- příprava bakteriální suspenze;- příprava fágového lyzátu;- filtrace fágového lyzátu nebo směsi lyzátu;- rozplnění filtrovaného lyzátu nebo směsi lyzátu do lahviček;- lyofilizace lahviček s lyzátem nebo se směsí lyzátů.nebo zahrnuje následující po sobě jdoucí kroky:- oživení bakteriálního kmene;- pasážování bakteriálního kmene;- příprava buněčných subkultur;- příprava bakteriální suspenze;- příprava fágového startéru metodou dvouvrstevného agaru;- příprava fágového startéru v tekuté půdě;- příprava fágového lyzátu;- filtrace fágového lyzátu nebo směsi lyzátů;- rozplnění filtrovaného lyzátu nebo směsi lyzátů do lahviček;- lyofilizace lahviček s lyzátem nebo se směsí lyzátů.
- 2. Způsob výroby léčiva podle nároku 1, vyznačující se tím, že krok oživení bakteriálního kmene zahrnuje vyočkování lyofilizovaného bakteriálního kmene po jeho rozpuštění na 1,5% tryptonový agar a jeho následnou kultivaci po dobu 24 hodin při teplotě +37 C + 1 °C.
- 3. Způsob výroby léčiva podle nároku 1, vyznačující se tím, že krok pasážování bakteriálního kmene zahrnuje přeočkování narostlého bakteriálního kmenu na potřebný počet ploten s 1,5 % tryptonovým- 15 agarem a jeho kultivace po dobu 24 hodin při teplotě + 37 °C ± 1 °C.
- 4. Způsob výroby léčiva podle nároku 1, vyznačující se tím, že krok přípravy buněčných subkultur zahrnuje přeočkování bakteriální kultury z pevné půdy do Erlenmayerovy baňky se 100 ml tryptonové půdy, přičemž množství zaočkovaných Erlenmayerových baněk závisí na potřebném množství subkultur pro výrobu a kultivace probíhá 24 hodin při teplotě + 37 °C ± 1 °C.
- 5. Způsob výroby léčiva podle nároku 1, vyznačující se tím, že krok přípravy fágového startéru metodou dvouvrstevného agaru zahrnuje oživení rozpuštěného fágového kmene a jeho pomnožení, přičemž Petriho misky s 1,5 % tryptonovým agarem, který slouží jako základ, se přelijí 3 ml 0,36% tryptonového agaru, který obsahuje bakteriální suspenzi příslušné hostitelské bakterieStaphylococcus aureus a suspenzi bakteriofága, získaného resuspendováním lyofilizovaného fágového kmene v izotonickém roztoku, následuje inkubace 24 h při teplotě +37 °C ± 1 °C, poté se povrch každé plotny přelije tryptonovým agarem, po 30 minutách se měkký povrch s 0,36% tryptonovým agarem smyje a centrifuguje 3krát 1 hodinu při 5000 RPM, přičemž bakteriofág je obsažen v supernatantu.
- 6. Způsob výroby léčiva podle nároku 1, vyznačující se tím, že krok přípravy fágového startéru v tekuté půdě zahrnuje inokulaci tryptonové půdy subkulturou hostitelské bakterie Staphylococcus aureus, kultivace probíhá v termostatu při teplotě +37 °C ± 1 °C tak dlouho, až je dosažena optická denzita biomasy 0,3 - 0,4, měřeno na spektrofotometru při vlnové délce 500 nm, do stafylokokové suspenze se přidá 15 - 20 ml fágového lyzátu připraveného dle předchozího bodu, o min. titru 1 x 1010 PFU/ml, probíhá pomnožení bakteriofága při pokojové teplotě 18 - 20 hodin za stálého třepání, následuje centrifugace 1 hodinu při 5000 RPM, přičemž bakteriofág je obsažen v supernatantu.
- 7. Způsob výroby léčiva podle nároku 1, vyznačující se tím, že krok přípravy bakteriální suspenze zahrnuje zaočkování bakteriální suspenze z Erlenmayerových baněk do 3000 ml tryptonové půdy v 5 1-16lahvi, přičemž kultivace při + 37 °C + 1°C probíhá tak dlouho, než se dosáhne požadované denzity v rozmezí 0,25 - 0,35, doba kultivace probíhá v rozmezí 4 až 5 hodin, první vzorek na kontrolu denzity je odebrán po 3 hodinách kultivace a další vzorky jsou odebírány v závislosti na nárůstu bakterií.
- 8. Způsob výroby léčiva podle nároku 1, vyznačující se tím, že krok přípravy fágového lyzátu nebo směsi fágových lyzátu zahrnuje přidání fágového startéru startér o min. titru 1 x 1010 PFU/ml v množství o objemu 50 — 60 ml k bakteriální suspenzi, přičemž startér je asepticky přidán v okamžiku, kdy je hodnota optické denzity vzorku v intervalu 0,25 - 0,35, bakteriolýza probíhá při pokojové teplotě 20 - 30 hodin, během bakteriolýzy dochází k projasňováni tekuté kultury a optická denzita lyžované bakteriální suspenze musí poklesnout pod hodnotu 0,1.
- 9. Způsob výroby léčiva podle nároku 1, vyznačující se tím, že po odebrání vzorku pro mikrobiální zátěž o obsahu vzoru 100 ml se fágový lyzát nebo směs lyzátů filtruje přes filtrační vrstvu o porositě 0,22 pm, přičemž mikrobiální zátěž přípravku odpovídá max. 10 PFU/100 ml.
- 10. Způsob výroby léčiva podle nároku 1, vyznačující se tím, že filtrovaný lyzát se rozplňuje po 10 ml do lahviček PNC 20 ml.
- 11. Způsob výroby léčiva podle nároku 1, vyznačující se tím, že lahvičky s lyzátem nebo se směsí lyzátů překryté lyofilizačni zátkou jsou lyofilizovány ve vakuu z hlubokého namraženi (-45 °C) zahříváním na deskách do stanovené teploty ( + 30 °C) , přičemž krok lyofilizace sestává z následujících fází a po ukončení lyofilizace jsou zátky zajištěny pertlí:I. Fáze: namraženi desek na -50 °C, založení materiálu, namraženi materiálu do vyrovnání teploty desek a materiálu na stejnou hodnotu (doba trvání fáze 1 hod.)II. Fáze: Je udržována zmrazovací teplota desek na -50 °C a zahřívána vývěva (doba trvání fáze 30 min.)III. Fáze: hlavního sušení - evakuace sušícího prostoru do nastaveného vakua (30-80 Pa) . Po dosažení hodnoty tlaku, začíná ohřívání desek nastavené na teplotu +30 C dle časového režimu. Tato fáze lyofilizačního procesu představuje přibližně 90 % celkového času a trvá přibližně 24 hodin.IV. Fáze: Finální sušení za maximálního vakua (2 - 0,5 Pa) a maximální teploty +30 °C. Pokud je dosaženo teploty produktu shodné s teplotou topných desek a hodnoty vakua se při testu ukončení sušení nemění, je lyofilizace ukončena zrušením vakua.
- 12. Způsob výroby léčiva podle některého z nároků 1 až 7, vyznačující se tím, že zahrnuje použití tryptonové pudy vytvořené ze souboru látek zahrnujícího Trypton Oxoid, Yeast extract Oxoid, chlorid sodný a purifikovanou vodu.
- 13. Způsob výroby léčiva podle některého z nároků 1 až 7 a 10, vyznačující se tím, že zahrnuje použití tryptonového agaru sestávajícího z kombinace tryptonové půdy a Agar Oxoid N’ 1.
- 14. Způsob výroby léčiva podle nároku 1, vyznačující se tím, že zahrnuje sterilizaci připraveného tryptonového agaru a/nebo tryptonové půdy, která probíhá v parním sterilizátoru při teplotě 121 °C pro dobu 30 minut.
- 15. Léčivo ve formě antistafylokového fágového lyzátu připravitelné způsobem podle nároků 1 až 14 obsahující účinné fágové částice více jak jednoho subtypu polyvalentního stafylokokového bakteriofága.
- 16. Léčivo ve formě antistafylokového fágového lyzátu připravitelné způsobem podle nároků 1 až 14 obsahující účinné fágové částice z více jak jednoho subtypu polyvalentního stafylokokového bakteriofága a fágových mutant s rozšířeným rozmezím hostitele.
- 17. Způsob výroby léčiva podle nároku 16, vyznačující se tím, že subtypy bakteriofága s širším rozmezím hostitele jsou izolovány z plaků vyrostlých po výsevu výchozího fága na necitlivé bakteriální kmeny Staphylococcus aureus, kdy izolace nových účinných subtypu je prováděna výsevem lyzátu fágů o vysokém titru-18na nárůst rezistentních kmenů, pak jednotlivé plaky, které na těchto kmenech vyrostou s velmi nízkou frekvencí (10 9 - 10 ) , jsou následně použity k založení lyzátů obsahujících mutantní fágy, selekce je prováděna v několika stupních, během nichž jsou fágové mutanty získané na jednom rezistentním kmeni následně vysévány na další rezistentní kmeny pro dosažení širokého lytického spektra.
- 18. Léčivo podle nároku 15 nebo 16 vyznačující se tím, že v jedné terapeutické dávce obsahuje minimálně 106 částic bakteriofágů.
- 19. Použití léčiva ve formě antistafylokového fágového lyzátů podle nároků 15 nebo 16 vyrobeného způsobem podle nároků 1 až 14 a nebo 17 pro místní aplikaci k léčbě infekcí vyvolaných stafylokokovými kmeny.
- 20. Použití léčiva ve formě antistafylokového fágového lyzátů podle nároků 15 nebo 16 vyrobeného způsobem podle nároků 1 až 14 a nebo 17 jako součást preventivních opatření v předoperační přípravě.
- 21. Použití léčiva ve formě antistafylokového fágového lyzátů podle nároků 15 nebo 16 vyrobeného způsobem podle nároků 1 až 14 a nebo 17 k zabránění vzniku superponovaných pyogenních komplikací po operativních intervencích.
- 22. Použití léčiva ve formě antistafylokového fágového lyzátů podle nároků 15 nebo 16 vyrobeného způsobem podle nároků 1 až 14 a nebo 17 ke konzervaci a uchovávání potravin a nebo při výrobě krmiv pro hospodářská zvířata.
- 23. Použití léčiva ve formě antistafylokového fágového lyzátů podle nároku 15 nebo 16 vyrobeného způsobem podle nároků 1 až 14 a nebo 17 využití při dekontaminaci povrchů zejména v nemocničním prostředí anebo při dekontaminaci lékařských nástrojů a pomůcek.
Priority Applications (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CZ20120668A CZ2012668A3 (cs) | 2012-09-27 | 2012-09-27 | Lécivo ve forme antistafylokokového fágového lyzátu, zpusob jeho výroby a pouzití |
PCT/CZ2013/000117 WO2014048407A2 (en) | 2012-09-27 | 2013-09-27 | Medicinal preparation in the form of antistaphylococcal phage lysate, process of its preparation and use |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CZ20120668A CZ2012668A3 (cs) | 2012-09-27 | 2012-09-27 | Lécivo ve forme antistafylokokového fágového lyzátu, zpusob jeho výroby a pouzití |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CZ2012668A3 true CZ2012668A3 (cs) | 2013-08-07 |
Family
ID=48906050
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CZ20120668A CZ2012668A3 (cs) | 2012-09-27 | 2012-09-27 | Lécivo ve forme antistafylokokového fágového lyzátu, zpusob jeho výroby a pouzití |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
CZ (1) | CZ2012668A3 (cs) |
WO (1) | WO2014048407A2 (cs) |
Families Citing this family (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
PL236568B1 (pl) * | 2014-08-31 | 2021-01-25 | Inst Biochemii I Biofizyki Polskiej Akademii Nauk | Szczepy Staphylococcus aureus do produkcji monoklonalnych preparatów fagowych pozbawionych zanieczyszczeń plazmidowym DNA |
RU2677290C1 (ru) * | 2017-08-17 | 2019-01-16 | Наталья Анатольевна Ковязина | Биодеградируемые пластины лекарственные и способ их получения |
DE102019134489B4 (de) * | 2019-12-16 | 2024-08-22 | Fachhochschule Südwestfalen, Köperschaft des öffentlichen Rechts | Phagenkultivierungsvorrichtung, Verfahren zur Präparation von Phagen und Filtervorrichtung dafür |
CZ309429B6 (cs) * | 2020-03-31 | 2023-01-04 | MB PHARMA s.r.o | Lyofilizovaná testovací sada ke stanovení antimikrobiální biologické účinnosti fágových přípravků na bakterii Staphylococcus aureus |
-
2012
- 2012-09-27 CZ CZ20120668A patent/CZ2012668A3/cs unknown
-
2013
- 2013-09-27 WO PCT/CZ2013/000117 patent/WO2014048407A2/en active Application Filing
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
WO2014048407A2 (en) | 2014-04-03 |
WO2014048407A3 (en) | 2014-10-02 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP6053727B2 (ja) | 抗細菌組成物 | |
CN108697744A (zh) | 假单胞菌感染的噬菌体疗法 | |
US20200171108A1 (en) | Therapeutic bacteriophage compositions | |
CZ2012668A3 (cs) | Lécivo ve forme antistafylokokového fágového lyzátu, zpusob jeho výroby a pouzití | |
CN112708600A (zh) | 一株裂解性肺炎克雷伯菌噬菌体rdp-kp-20005及其应用 | |
KR20110130285A (ko) | 황색포도상구균을 사멸시키는 박테리오파지 | |
WO2009087356A1 (en) | Host range change phage | |
KR20180042748A (ko) | 신규한 포도상구균 특이 박테리오파지 sa7 및 이를 포함하는 항균 조성물 | |
CN108179136A (zh) | 大肠杆菌噬菌体Esc-COP-9及其致病性大肠杆菌增殖抑制用途 | |
CN110747177A (zh) | 一株鲍曼不动杆菌噬菌体及医用用途 | |
KR100949389B1 (ko) | 박테리오파지 kctc11120bp를 함유하는 세균증식 억제 또는 사멸용 제제 | |
KR101896512B1 (ko) | 신규한 사이트로박터 프렌디 특이 박테리오파지 cf1 및 이를 포함하는 항균 조성물 | |
CN107802657A (zh) | 灭活乳酸菌在防治猪病毒性疾病药物中的应用 | |
RU2503716C1 (ru) | ВИДОСПЕЦИФИЧЕСКИЙ ВИРУЛЕНТНЫЙ ШТАММ БАКТЕРИОФАГА, ОБЛАДАЮЩИЙ ЛИТИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТЬЮ В ОТНОШЕНИИ Staphylococcus aureus, ВКЛЮЧАЯ МУЛЬТИРЕЗИСТЕНТНЫЕ ШТАММЫ | |
Almelan et al. | Isolation and characterization of bacteriophage targeting Enterococcus faecalis isolated from root canal infection (in vitro study) | |
RU2717026C1 (ru) | Штамм бактериофага Pseudomonas aeruginosa N 325 (500319), предназначенный для приготовления моно- и поливалентных лечебно-профилактических препаратов бактериофагов | |
RU2717451C1 (ru) | Штамм бактериофага Pseudomonas aeruginosa N 323 (500317), предназначенный для приготовления моно- и поливалентных лечебно-профилактических препаратов бактериофагов | |
RU2717435C1 (ru) | Штамм бактериофага Pseudomonas aeruginosa N 326 (500320), предназначенный для приготовления моно- и поливалентных лечебно-профилактических препаратов бактериофагов | |
US20240287468A1 (en) | Bacteriophages against vancomycin-resistant enterococci | |
RU2717972C1 (ru) | Штамм бактериофага Pseudomonas aeruginosa N 324 (500318), предназначенный для приготовления моно- и поливалентных лечебно-профилактических препаратов бактериофагов | |
RU2717420C1 (ru) | Штамм бактериофага Pseudomonas aeruginosa N 327 (500321), предназначенный для приготовления моно- и поливалентных лечебно-профилактических препаратов бактериофагов | |
RU2717022C1 (ru) | Штамм бактериофага Pseudomonas aeruginosa N 328 (500322), предназначенный для приготовления моно- и поливалентных лечебно-профилактических препаратов бактериофагов | |
RU2717973C1 (ru) | Штамм бактериофага Pseudomonas aeruginosa N 322 (500316), предназначенный для приготовления моно- и поливалентных лечебно-профилактических препаратов бактериофагов | |
CZ27386U1 (cs) | Antiseptický přípravek na bázi bakteriofágového lyzátu pro lokální použití | |
Ghareeb | Bacteriophages effects on antibiotic sensitivity of Staphylococcus aureus |