CZ20031277A3 - Process for preparing latent antithrombin III - Google Patents
Process for preparing latent antithrombin III Download PDFInfo
- Publication number
- CZ20031277A3 CZ20031277A3 CZ20031277A CZ20031277A CZ20031277A3 CZ 20031277 A3 CZ20031277 A3 CZ 20031277A3 CZ 20031277 A CZ20031277 A CZ 20031277A CZ 20031277 A CZ20031277 A CZ 20031277A CZ 20031277 A3 CZ20031277 A3 CZ 20031277A3
- Authority
- CZ
- Czechia
- Prior art keywords
- sample
- sulfate
- buffer
- hepes
- range
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/81—Protease inhibitors
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P21/00—Preparation of peptides or proteins
- C12P21/02—Preparation of peptides or proteins having a known sequence of two or more amino acids, e.g. glutathione
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P25/00—Drugs for disorders of the nervous system
- A61P25/28—Drugs for disorders of the nervous system for treating neurodegenerative disorders of the central nervous system, e.g. nootropic agents, cognition enhancers, drugs for treating Alzheimer's disease or other forms of dementia
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P29/00—Non-central analgesic, antipyretic or antiinflammatory agents, e.g. antirheumatic agents; Non-steroidal antiinflammatory drugs [NSAID]
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/12—Antivirals
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P7/00—Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
- A61P7/02—Antithrombotic agents; Anticoagulants; Platelet aggregation inhibitors
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/81—Protease inhibitors
- C07K14/8107—Endopeptidase (E.C. 3.4.21-99) inhibitors
- C07K14/811—Serine protease (E.C. 3.4.21) inhibitors
- C07K14/8121—Serpins
- C07K14/8128—Antithrombin III
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
Abstract
Description
POSTUP PŘÍPRAVY LATENTNÍHO ANTITROMBINU IIIPROCEDURE FOR PREPARING LATENT ANTITROMBIN III
POSTUP PRIPRAVÝPREPARATION PROCESS
Oblast technikyTechnical field
Předkládaný vynález souvisí s postupem pro přípravu latentního antitrombinu III.The present invention relates to a process for the preparation of latent antithrombin III.
Dosavadní stav technikyBACKGROUND OF THE INVENTION
Antitrombin III (AT) je plasmatický g.lykoprotein s celkovou molekulovou hmotností 58,1 kDa (Lebing a kol., Vox Sang. 67, 117-124, 1994), který inhibuje serinové proteasy v koagulační kaskádě a proto hraje hlavní roli v regulaci srážení krve. Antitrombin III je inhibitor Faktorů IXa, Xa, XI a Xlla, stejně jako trombinu. AT tedy reguluje tvorbu sraženiny v různých stádiích koagulační kaskády. Malý pokles obsahu AT v krvi je spojen se zvýšeným rizikem tromboembolismu. Koncentráty AT jsou používány při prevenci a léčbě tromboembolických poruch u pacientů se získaným nebo dědičným nedostatkem antitrombinu. Kromě toho, bylo publikováno, že AT má funkci 'v mnoha jiných procesech v lidském těle, například během angiogeneze a reakce na zánětlivé podněty. Funkce AT v těchto fyziologických procesech není plně prozkoumána.Antithrombin III (AT) is a plasma glycoprotein with a total molecular weight of 58.1 kDa (Lebing et al., Vox Sang. 67, 117-124, 1994), which inhibits serine proteases in the coagulation cascade and therefore plays a major role in regulation blood clotting. Antithrombin III is an inhibitor of Factors IXa, Xa, XI and XIa as well as thrombin. Thus, AT regulates clot formation at various stages of the coagulation cascade. A small decrease in AT content in the blood is associated with an increased risk of thromboembolism. AT concentrates are used in the prevention and treatment of thromboembolic disorders in patients with acquired or hereditary antithrombin deficiency. In addition, AT has been reported to function in many other processes in the human body, for example during angiogenesis and response to inflammatory stimuli. The function of AT in these physiological processes is not fully investigated.
. Konkrétní forma antitrombinu III, která byla poprvé charakterizována Wardellem a kol. (Biochemistry 36, 1313313142, 1997), je známa jako latentní forma (L-AT). Bylo ukázáno, že L-AT a selektivně štěpená varianta elastasy mají silnou antiangiogenní aktivitu a také potlačují růst nádoru u myši, které byla subkutánně injektována lidská neuroblastomová buněčná linie (O'Reilly a kol., Science 285, 1926-1928, 1999, a WO 00/20026) . Z těchto důvodů musí být L-AT považována za potenciální lidský ·· ···· ·» ···· ·· ···· φ φ φ φ φ · ·· · protinádorový lék. Klinické ověřeni tohoto potenciálního léku musí být ještě provedeno.. A particular form of antithrombin III, which was first characterized by Wardell et al. (Biochemistry 36, 1313313142, 1997), is known as the latent form (L-AT). L-AT and a selectively cleaved elastase variant have been shown to have potent anti-angiogenic activity and also suppress tumor growth in mice injected subcutaneously with a human neuroblastoma cell line (O'Reilly et al., Science 285, 1926-1928, 1999, and WO 00/20026). For these reasons, L-AT must be considered as a potential human anti-cancer drug.-Φ φ · · · · · · · · · prot prot prot Clinical verification of this potential drug has yet to be performed.
Purifikace AT afinitní chromatografií byla provedena použitím vyčištěného heparinu jako pevně navázaného ligandu, jak je známo v oboru. MillerAndersson a kol.(Thrombosis Research 5, 439-452, 1974) ukázali použití heparin-Sepharosy pro purifikaci lidského AT. Tento chromatografický systém je také užitečný pro oddělení AT a L-AT, kde snížená afinita heparinu pro L-AT ve' srovnání s AT umožňuje rozlišit tyto dvě složky, jak je popsáno v Chang a Harper (Thrombosis and Haemostasis 77, 323-328, 1997). Hydrofobní chromatografie byla použita pro rozdělení nativní a latentní formy AT (Karlsson, G & Winge, S. (2001) Protein Expr. Purif. 21:149-155) .Purification by AT affinity chromatography was performed using purified heparin as a tightly bound ligand as known in the art. MillerAndersson et al (Thrombosis Research 5, 439-452, 1974) demonstrated the use of heparin-Sepharose for purification of human AT. This chromatographic system is also useful for separating AT and L-AT, where the reduced affinity of heparin for L-AT compared to AT makes it possible to distinguish these two components as described in Chang and Harper (Thrombosis and Haemostasis 77, 323-328, 1997). Hydrophobic chromatography was used to separate native and latent forms of AT (Karlsson, G & Winge, S. (2001) Protein Expr. Purif. 21: 149-155).
Indukce latentní formy AT byla dříve provedena, jak je popsáno Wardellem a kol. (supra), kteří získali 50-60% L-AT inkubací AT v 0,25 M citrátu, 10 mM Tris/HCl, pH 7,4, po 15 h při 60°C.Induction of the latent form of AT was previously performed as described by Wardell et al. (supra) who obtained 50-60% L-AT by incubating AT in 0.25 M citrate, 10 mM Tris / HCl, pH 7.4, for 15 h at 60 ° C.
Po inkubaci nativního antitrombinu III při 60°C v médiu nebo pouze v pufru se často tvořily agregáty polymerizovaného proteinu. Přítomnost těchto agregátů poškozuje vysoký výtěžek latentního antitrombinu III a mělo by se jim pokud možno zabránit.After incubation of native antithrombin III at 60 ° C in medium or buffer alone, polymerized protein aggregates were often formed. The presence of these aggregates damages the high yield of latent antithrombin III and should be avoided wherever possible.
Předmětem předkládaného vynálezu je tedy poskytnout postup pro přípravu latentního antitrombinu III, L-AT z roztoku nativního antitrombinu III, AT, kde takový postup poskytuje vyšší výtěžek žádaného produktu než předchozí postup, známý v oboru.It is therefore an object of the present invention to provide a process for preparing latent antithrombin III, L-AT from a solution of native antithrombin III, AT, wherein such a process provides a higher yield of the desired product than the prior art known in the art.
Dalším předmětem vynálezu je poskytnutí postupu pro přípravu L-AT z AT, kde tvorba agregátů polymerů AT je minimální.It is another object of the invention to provide a process for preparing L-AT from AT, wherein formation of aggregates of AT polymers is minimal.
Dalším předmětem vynálezu je poskytnutí postupu pro přeměnu AT na L-AT, ve kterém jsou použity běžně dostupná • · ··· · • · ····· ·· · ·· · · · · · * · · • · ·· ····· ···· · ·· ··· ·· ·» činidla a roztoky pufrů a které jsou prováděny in vitro.It is a further object of the invention to provide a process for converting AT to L-AT, wherein commercially available AT-L-ATs are used. Reagents and buffer solutions, which are carried out in vitro.
Ještě dalším předmětem vynálezu je poskytnutí postupu pro přípravu L-AT z AT, který je snadno rozšiřitelný pro průmyslovou výrobu L-AT.Yet another object of the invention is to provide a process for preparing L-AT from AT, which is readily scalable for industrial production of L-AT.
Popis vynálezuDescription of the invention
Shora uvedené a jiné předměty vynálezu vyhovují postupu, který je definován nároky. Proto je poskytnut postup, který zahrnuje inkubaci roztoku nativního antitrombinu III v přítomnosti síranových iontů a pufrů vybraných z Goodových pufrů obojetných iontů. Překvapivě bylo zjištěno, že tyto inkubační podmínky, které se vyhýbají možným agregačním problémům, umožňují znovuzískání L-AT z postupu v takových výtěžcích, které jsou podstatně vyšší než ty, které jsou získány způsoby přednostního oboru (zejména citrátové podmínky Wardella a kol.) .The foregoing and other objects of the invention comply with the process defined by the claims. Therefore, a method is provided which comprises incubating a solution of native antithrombin III in the presence of sulfate ions and buffers selected from Good zwitterionic buffers. Surprisingly, it has been found that these incubation conditions, which avoid possible aggregation problems, allow recovery of L-AT from the process in yields that are substantially higher than those obtained by methods of the prior art (particularly the citrate conditions of Wardella et al.).
Popisy k ObrázkůmDescriptions for Figures
Obrázek 1: Heparinová afinitní chromatografie antitrombinu použitím gradientu chloridu sodného 0-2 M (5-60 min). Nastříknuté množství proteinu bylo 100 pg pro vzorek A-B a 150 pg pro vzorek C-D. Všechny vzorky byly inkubovány při 60 °C po 16 h kromě referenčního AT vzorku A, který nebyl teplotně upraven (vzorek 7 v příkladu). Vzorek B(vzorek 6 v příkladu) byl inkubován podle Wardella, tj. v 0,5 M citrátu. Vzorek C (vzorek 2 v příkladu) byl inkubován v 5 mM HEPES, pH 7,4 s 0,9 M síranem amonným a vzorek D (vzorek 1 v příkladu) byl inkubován v 5 mM HEPES, pH 7,4 s 0,8 M síranem amonným. Integrace vrcholu vázajícího se k heparinu s nízkou afinitou, eluovaného v 22 min, poskytla 44% celkové integrační plochy vzorku B, 71% celkové integrační plochy vzorku C a 89% celkové integrační plochy vzorku D.Figure 1: Heparin affinity chromatography of antithrombin using a 0-2 M sodium chloride gradient (5-60 min). The amount of protein injected was 100 pg for sample A-B and 150 pg for sample C-D. All samples were incubated at 60 ° C for 16 h except reference AT sample A, which was not heat treated (sample 7 in the example). Sample B (sample 6 in the example) was incubated according to Wardell, i.e. in 0.5 M citrate. Sample C (Sample 2 in the example) was incubated in 5 mM HEPES, pH 7.4 with 0.9 M ammonium sulfate and Sample D (Sample 1 in the example) was incubated in 5 mM HEPES, pH 7.4 with 0.8 M ammonium sulfate. Integration of the low affinity heparin-binding peak eluted at 22 min gave 44% of the total integration area of sample B, 71% of the total integration area of sample C and 89% of the total integration area of sample D.
···· »·«· ·« ♦ · · · • · · · · · • · · · · · • · · · • ·· ·♦· ·· · ····· · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · ·
Nativní AT byl eluován v 39 min.Native AT was eluted at 39 min.
Obrázek 2: Nativní elektroforesa vzorků antitrombinu, použitím 12,5% polyakrylamidu v homogenním gelu. Množství vzorku bylo 0,5 μg proteinu/dráha a gely byly po ukončení rozdělení obarveny stříbrem. Všechny vzorky, kromě dráhy 7, byly inkubovány při 60°C po 16 h.Figure 2: Native electrophoresis of antithrombin samples using 12.5% polyacrylamide in a homogeneous gel. The sample amount was 0.5 µg protein / lane and the gels were stained with silver at the end of the split. All samples, except lane 7, were incubated at 60 ° C for 16 h.
Dráha 1)Track 1)
Dráha 2)Runway 2)
Dráha 3)Dráha 3)
Dráha 4)Dráha 4)
Dráha 5)Track 5)
Dráha 6) 10 mmol Tris/HCl, 0,5 M citrát trojsodný, pH 7,4 (podle Wardell a kol. 1997)Lane 6) 10 mmol Tris / HCl, 0.5 M trisodium citrate, pH 7.4 (according to Wardell et al. 1997)
Dráha 7) referenční AT vzorek, bez tepelné úpravy Dráha 8) 25 mM fosforečnan sodný,, 100 mM chlorid sodný, pH 7,4Lane 7) reference AT sample, no heat treatment Lane 8) 25 mM sodium phosphate, 100 mM sodium chloride, pH 7.4
Dráha 9) 25 mM HEPES, 0,8 M síran amonný, pH 7,4Lane 9) 25 mM HEPES, 0.8 M ammonium sulfate, pH 7.4
Dráha 10) 5 mM HEPES, 0,5 M síran amonný, pH 7,4 Dráha 11) 5 mM HEPES, 2,0 M síran amonný, pH 7,4 Dráha 12) 5 mM HEPES, 0,8 M síran amonný, pH 7,0 Všechna čísla odpovídají číslům vzorků uvedených v příkladu níže.Lane 10) 5 mM HEPES, 0.5 M ammonium sulfate, pH 7.4 Lane 11) 5 mM HEPES, 2.0 M ammonium sulfate, pH 7.4 Lane 12) 5 mM HEPES, 0.8 M ammonium sulfate, pH 7.0 All numbers refer to the sample numbers given in the example below.
Detailní popis vynálezuDetailed description of the invention
Vynález poskytuje popis pro přípravu latentního antitrombinu III (označovaného jako L-AT), počínaje od roztoku antitrombinu III v jeho nativní formě (označované jako AT). AT může být izolován z krevní plasmy chromatografií na heparin-Sepharose, jak bylo popsáno. Podle vynálezu je AT poté inkubován v přítomnosti síranových iontů a pufrů. Teplota a trvání inkubace mohou být snadno stanoveny osobou, orientovanou v oboru, ale bylo zjištěno, že normální pasterační podmínky, jako teplota přibližně 60°C po dobu přibližně • · · · ·· ···· • 9 9999 • · ···· · · · • · ····· · · ·The invention provides a description for the preparation of latent antithrombin III (referred to as L-AT), starting from a solution of antithrombin III in its native form (referred to as AT). AT can be isolated from blood plasma by heparin-Sepharose chromatography as described. According to the invention, AT is then incubated in the presence of sulfate ions and buffers. The temperature and duration of the incubation can be readily determined by one of ordinary skill in the art, but it has been found that normal pasteurization conditions, such as a temperature of about 60 ° C for about 60 ° C, for approximately 9 9999. · · · · · · ····· · · ·
9 9 9 9 · · · · · • « · · ····· ····· »···· 9 9 ·· hodin také poskytují dobré výsledky.9 9 9 9 · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · ·
Síranové ionty jsou přednostně poskytnuty ve formě soli síranu. Zde je přednostní použití síranu alkalických zemin, síranu alkalických kovů nebo síranu amonného. Obzvláště předností je použití síranu amonného. Vhodná koncentrace iontů síranu v postupu podle vynálezu leží v rozmezí od 0,5 do 2,0 M, výhodněji od 0,7 do 1 M a nejpřednostnější koncentrace je mezi 0,8 a 0, 9 M.The sulfate ions are preferably provided in the form of a sulfate salt. Here, the use of alkaline earth sulfate, alkali metal sulfate or ammonium sulfate is preferred. Especially preferred is the use of ammonium sulfate. A suitable concentration of sulfate ions in the process of the invention is in the range of from 0.5 to 2.0 M, more preferably from 0.7 to 1 M, and most preferably the concentration is between 0.8 and 0.9 M.
Další složkou v inkubační směsi je pufr, vybraný z Goodových pufrů obojetných iontů (Good a kol., Biochemistry 5, 467-477, 1966). Výběr použití jednoho z ukázaných pufrů může být stanoven bez toho, že by se prováděl experiment, s tím, že je třeba mít na paměti, že by pufr měl splňovat většinu nebo všechny z následujících požadavků: měl by vykazovat hodnotu pKa mezi přibližně 6 a přibližně 9, maximální rozpustnost ve vodě a minimální rozpustnost v jiných rozpouštědlech, vytvářet minimum solných účinků, být stabilní za použitých experimentálních podmínek a neabsorbovat světlo ve viditelné nebo ultrafialové spektrální oblasti (a tak neinterferovat se spektrofotometrickými měřeními). Goodovy pufry obojetných iontů, včetně pufrů jako jsou HEPES, MES a PIPES, většinou vykazují žádané charakteristiky. Použití HEPES je zejména přednostní v postupu podle vynálezu. Hojně rozšířený Tris pufr je nevhodný pro účely vynálezu. Přednostní koncentrace pufrů jsou určitým způsobem závislé na vybraném pufru, ale většinou leží v rozmezí od 1 do 25 mM, výhodněji od 2,5 do 10 mM a nejvýhodněji od 4 do 6 mM.Another component in the incubation mixture is a buffer selected from Good zwitterionic buffers (Good et al., Biochemistry 5, 467-477, 1966). The choice of use of one of the shown buffers can be determined without conducting the experiment, bearing in mind that the buffer should meet most or all of the following requirements: it should have a pK a of between about 6 and about 9, maximum solubility in water and minimal solubility in other solvents, creating a minimum of salt effects, being stable under the experimental conditions used and not absorbing light in the visible or ultraviolet spectral range (and thus not interfering with spectrophotometric measurements). Good zwitterion buffers, including buffers such as HEPES, MES, and PIPES, typically exhibit desirable characteristics. The use of HEPES is particularly preferred in the process of the invention. The widespread Tris buffer is unsuitable for the purposes of the invention. Preferred buffer concentrations are somewhat dependent on the selected buffer, but are generally in the range of from 1 to 25 mM, more preferably from 2.5 to 10 mM, and most preferably from 4 to 6 mM.
Jak je naznačeno výše, mělo by pH inkubační reakce ležet mezi pH 6 a pH 9, výhodně mezi pH 7 a pH 8 a nejvýhodněji mezi pH 7,4 a pH 7,6.As indicated above, the pH of the incubation reaction should lie between pH 6 and pH 9, preferably between pH 7 and pH 8, and most preferably between pH 7.4 and pH 7.6.
Následně po inkubaci AT za podmínek ukázaných výše, je ·· 99·· ·· ♦··· «« ···· ♦ · • ···Following the incubation of AT under the conditions shown above, it is 99 · · je · · · · · · · · · · · ·
9 · · · 9 9 9 9 9 · ·· ····· ···· ♦ ·· ··· ·· ·· oddělení takto získaného L-AT od zbývajícího AT provedeno pomocí afinitní chromatografie na heparinu. LAT, který vykazuje nižší vazebnou afinitu k heparinu, než AT, se eluuje podstatně rychleji a umožňuje snadné oddělení těchto dvou forem antitrombinu III.The separation of the L-AT thus obtained from the remaining AT was carried out by means of affinity chromatography on heparin. LAT, which exhibits a lower binding affinity for heparin than AT, elutes significantly faster and allows easy separation of the two forms of antithrombin III.
Preparát takto získaného L-AT je výhodně vystaven úpravě pro inaktivaci nebo odstranění patogenů, zejména ve formě virů a prionů. Toto může být provedeno v jakémkoliv stupni postupu použitím jednoho z několika způsobů inaktivace nebo odstranění známých v oboru nebo kombinací takových způsobů. Příklady takových způsobů zahrnují chemickou inaktivaci, tepelnou inaktivaci, inaktivaci světlem, mikrovlnou inaktivaci a odstraněním pomocí filtrování přes nanometrické filtry. Filtrace s příčným tokem s vysokým obsahem soli, podobně jak je popsáno v WO96/00237, je zejména přednostní, samotná nebo v kombinaci s jinými postupy. Odstranění a inaktivace patogenů mohou být provedeny, když jsou molekuly antitrombinu III v nativním stavu, před přeměnou na L-AT.The preparation of the L-AT thus obtained is preferably subjected to a treatment for inactivation or removal of pathogens, in particular in the form of viruses and prions. This can be done at any stage of the process using one of several methods of inactivation or removal known in the art, or a combination of such methods. Examples of such methods include chemical inactivation, thermal inactivation, light inactivation, microwave inactivation and removal by nanometric filtering. Cross-flow filtration with a high salt content, as described in WO96 / 00237, is particularly preferred, alone or in combination with other processes. Removal and inactivation of pathogens may be performed when the antithrombin III molecules are in the native state, prior to conversion to L-AT.
Vynález je dále doložen následujícím, neomezujícím příkladem.The invention is further illustrated by the following non-limiting example.
PŘÍKLADEXAMPLE
Laboratorní vzorek AT o čistotě > 95% byl získán zA laboratory AT sample of> 95% purity was obtained from
Plasma Products,. Pharmacia, Stockholm, Švédsko. Tento vzorek byl připraven podle známých způsobů (MillerAndersson a kol., supra) a použit pro indukci latentní formy antitrombinu.Plasma Products ,. Pharmacia, Stockholm, Sweden. This sample was prepared according to known methods (MillerAndersson et al., Supra) and used to induce the latent form of antithrombin.
Příprava L-ATPreparation of L-AT
Laboratorní vzorek AT byl převeden do následujících roztoků:The laboratory AT sample was transferred to the following solutions:
Vzorek 1) 5 mM HEPES, 0,8 M síran amonný, pH 7,4 ·· ·♦··Sample 1) 5 mM HEPES, 0.8 M ammonium sulfate, pH 7.4 ·· · ♦ ··
99999999
99999999
Všechny pufry uvedené shora byly upraveny na požadované pH při laboratorní teplotě; 1 M HC1 byla použita pro úpravu Vzorku 6, zatímco pro úpravu pH všech ostatních vzorků byl použit 1 M hydroxid sodný.All buffers listed above were adjusted to the desired pH at room temperature; 1 M HCl was used to adjust Sample 6, while 1 M sodium hydroxide was used to adjust the pH of all other samples.
AT ve finální koncentraci 6 mg/ml byl inkubován v roztocích (Vzorky 1-13) ve skleněných trubičkách po 16 h při 60 °C (kromě Vzorku 1, který byl udržován v ledničce při přibližně 8°C) a přeneseny do roztoku obsahujícího 50 mM Tris/HCl, 50 mM chlorid sodný, pH 7,4, použitím malých kolon pro gelovou filtraci (NAP-5 Amersham Pharmacia Biotech, Uppsala, Švédsko).AT at a final concentration of 6 mg / ml was incubated in solutions (Samples 1-13) in glass tubes for 16 h at 60 ° C (except for Sample 1, which was kept in a refrigerator at about 8 ° C) and transferred to a solution containing 50 ° C. mM Tris / HCl, 50 mM sodium chloride, pH 7.4, using small gel filtration columns (NAP-5 Amersham Pharmacia Biotech, Uppsala, Sweden).
Vytvoření L-AT ve vzorcích bylo analyzováno afinitní chromatografií na heparinu a přítomnost agregátů byla analyzována nativní elektroforézou.The formation of L-AT in the samples was analyzed by affinity chromatography on heparin and the presence of aggregates was analyzed by native electrophoresis.
Afinitní chromatografie na heparinuAffinity chromatography on heparin
Tento způsob byl proveden podle Changa a Harpera (supra). Bylo použito HPLC vybavené TSK Heparin® kolonou (Tosohaas, Stuttgart, Germany, 7,5 vnitřní průměr x 75 mm, 10 jim, 1000 Á). Jako eluční pufry byly použity 20 mM Tris/HCl pufr, pH 7,4 (pufr A) a 2 M *· ····This method was performed according to Chang and Harper (supra). An HPLC equipped with a TSK Heparin® column (Tosohaas, Stuttgart, Germany, 7.5 ID x 75 mm, 10 µm, 1000 Å) was used. 20 mM Tris / HCl buffer, pH 7.4 (Buffer A) and 2 M * were used as elution buffers.
·· ···· ···· • · · · · · « · · · ··· • · · · · · ♦ • · · · · g ··♦· · ·· ··« chlorid sodný ve 20 mM Tris/HCl pufru, pH 7,4 (pufr B) . Byl použit, lineární gradient (0-5 min 0% B, 5-60 min 0-100% B, 60-90 min 0% B). Průtoková rychlost byla 0,4 ml/min a detekce byla provedena měřením absorbance při 280 nm.· Chloride in 20 mM Tris / HCl buffer, pH 7.4 (buffer B). Linear gradient (0-5 min 0% B, 5-60 min 0-100% B, 60-90 min 0% B) was used. The flow rate was 0.4 ml / min and detection was performed by measuring absorbance at 280 nm.
Nativní elektroforeza v polyakrylamidovém geluNative polyacrylamide gel electrophoresis
Elektroforeza byla provedena použitím 12,5% polyakrylamidového homogenního Phast® gelu (Amersham Pharmacia Biotech, Uppsala, Švédsko) za dodržení doporučených parametrů. Do každé dráhy bylo naneseno 0,5 μρ proteinu v 1 μΐ. Bylo provedeno barvení diamino-stříbrem podle příručky od Pharmacia & Upjohn (Phast System™, Technical Notě No 2, Two-dimensional electrophoresis with PhastGel™ separation media, Pharmacia LKB Biotechnology AB, Uppsala, Švédsko), s výjimkou, že byl použit trochu silnější fixační roztok, obsahující 50% ethanol, 10% kyselinu octovou a 40% vodu.Electrophoresis was performed using a 12.5% polyacrylamide homogeneous Phast ® gel (Amersham Pharmacia Biotech, Uppsala, Sweden) following the recommended parameters. Each lane was loaded with 0.5 μρ of protein at 1 μΐ. Diamino-silver staining was performed according to the Pharmacia & Upjohn Handbook (Phast System ™, Technical Note No 2, Two-Dimensional Electrophoresis with PhastGel ™ separation media, Pharmacia LKB Biotechnology AB, Uppsala, Sweden) except that a slightly stronger one was used. fixative solution containing 50% ethanol, 10% acetic acid and 40% water.
Antitrombinová aktivitaAntithrombin activity
Vzorek 2 (inkubace v 0,9 M síranu amonném) byl analyzován na biologickou AT aktivitu s trombinovým chromogenním peptidovým substrátem (S-2238) (Chromogenix, Molndal, Švédsko), podle Handelanda a kol. (Scand J. Haematol. 31, 427-436, 1983). Testovací roztok sestával z trombinu, heparinu, chromogenního substrátu a vzorku, a po inkubaci byla odezva zaznamenána jako změna absorbance při 405 nm.Sample 2 (incubation in 0.9 M ammonium sulfate) was analyzed for biological AT activity with thrombin chromogenic peptide substrate (S-2238) (Chromogenix, Molndal, Sweden), according to Handeland et al. (Scand J. Haematol. 31: 427-436,1983). The test solution consisted of thrombin, heparin, chromogenic substrate and sample, and after incubation the response was recorded as a change in absorbance at 405 nm.
VýsledkyResults
Afinitní chromatografie na heparinu poskytla eluci nativního AT v 39 min (přibližně 0,9 M chlorid sodný) a hlavní latentní vrchol byl eluován v 22 min ·· **·· ·· ·«·· «· ···· • · • ··« • · * ♦ · ···· · • · ·· ♦ « · · t ···« · ·· ··· ♦· ·· (přibližně 0,3 M chlorid sodný ) (obrázek 1A-1B). Integrace vrcholu, málo vázajícího se k heparinu, ukázala výtěžek 44% (obrázek 1B) pro vzorek, připravený podle Wardellova způsobu (Vzorek 6) , zatímco inkubace v 0,9 M síranu amonném (vzorek 2) a 0,8 M síranu amonném (vzorek 1) poskytla 71% pro vzorek 2 a 89% pro vzorek 1 celkové integrované plochy (obrázek 1C-1D). Tabulka 1 ukazuje, že procento vytvořeného L-AT se snižuje při zvýšené koncentraci síranu amonného/HEPES nebo při vyšší hodnotě pH.Heparin affinity chromatography eluted native AT at 39 min (approximately 0.9 M sodium chloride) and the major latent peak eluted at 22 min. (Approximately 0.3 M sodium chloride) (Figure 1A-1B) (Figure 1A-1B) ). Integration of a low heparin-binding peak showed a yield of 44% (Figure 1B) for a sample prepared according to the Wardell method (Sample 6), while incubation in 0.9 M ammonium sulfate (sample 2) and 0.8 M ammonium sulfate ( Sample 1) provided 71% for Sample 2 and 89% for Sample 1 of the total integrated area (Figure 1C-1D). Table 1 shows that the percentage of L-AT formed decreases at increased ammonium sulfate / HEPES concentration or at higher pH.
Nativní elektroforeza AT, inkubovaného při 60 °C ve fosforečnanu/NaCl (Vzorek 8), poskytla silnou tvorbu agregátů a pouze nepatrná část proteinu zůstala v monomerní formě (obrázek 2, dráha 8). AT inkubovaný podle Wardella (obrázek 2, dráha 6), stejně jako neinkubovaný AT (obrázek 2, dráha 7), nevytvořily žádné agregáty. Inkubace v 0,5 M síranu amonném (Vzorek 10) indukovala silnou agregaci (obrázek 2, dráha 10), zatímco 0,8 M (Vzorek 1) poskytla pouze nepatrnou část agregátů (obrázek 2, dráha 1) . Síran amonný o koncentraci 0,9 - 2,0 M (Vzorky 2-5) nevedl k tvorbě viditelných agregátů (obrázek 2, dráhy 2-5) . Mnoho agregátů bylo pozorováno při pH 7,0 (obrázek 2, dráha 12), zatímco při pH 7,8 vzniklo pouze malé množství agregátů (údaje nejsou ukázány).Native AT electrophoresis incubated at 60 ° C in phosphate / NaCl (Sample 8) gave strong aggregation formation and only a minor portion of the protein remained in monomeric form (Figure 2, lane 8). AT incubated according to Wardell (Figure 2, lane 6), as well as unincubated AT (Figure 2, lane 7), did not form any aggregates. Incubation in 0.5 M ammonium sulfate (Sample 10) induced strong aggregation (Figure 2, lane 10), while 0.8 M (Sample 1) gave only a small fraction of the aggregates (Figure 2, lane 1). Ammonium sulphate at a concentration of 0.9 - 2.0 M (Samples 2-5) did not lead to the formation of visible aggregates (Figure 2, lanes 2-5). Many aggregates were observed at pH 7.0 (Figure 2, lane 12), while at pH 7.8 only a small amount of aggregates were formed (data not shown).
Test antitrombinové aktivity ve vzorku 2 (s 0,9 M síranem amonným) ukázal, že 34% původní specifické aktivity zůstává; to by mělo být porovnáno s 29% ziskem AT vázajícího se s vysokou afinitou k heparinu po analýzách stejného vzorku afinitní chromatografií (Tabulka 1).The antithrombin activity assay in Sample 2 (with 0.9 M ammonium sulfate) showed that 34% of the original specific activity remained; this should be compared with a 29% gain of AT binding with high affinity for heparin after analyzes of the same sample by affinity chromatography (Table 1).
• ·· · ·« ··«· • * • ··* • · · · ♦ ♦ · · · · • · · · · · · · « 10 ♦··· * ·· ··· *· ··· · 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10
Tabulka 1: Afinitní chromatografie na heparinu. Tvorba L-AT v různých vzorkových pufrech po 16 h inkubace při 60°C.Table 1: Heparin affinity chromatography. L-AT formation in various sample buffers after 16 h incubation at 60 ° C.
1 Podle přikladu 1 By example
Analýza nativní elektroforézou neukázala agregáty (viz Obr.2)Native electrophoresis analysis did not show aggregates (see Figure 2)
Experimentální závěryExperimental conclusions
Inkubací AT v 5 mM HEPES, pH 7,4, obsahující 0,8 M síran amonný při 60 °C po dobu 16h bylo přeměněno přibližně 85-90% AT na latentní formu a inkubací AT v 5 mM HEPES,' pH 7,4, obsahující 0,9 M síran amonný při 60°C po dobu 16h bylo na latentní formu AT přeměněno přibližně 70-75%. Nativní elektroforeza ukázala malý podíl agregátů v 0,8 M síranu amonném a žádné agregáty nebyly pozorovány v 0,9 M. Purifikačním postupem mohou být taková malá množství agregátu snadno odstraněna ·· ·«<· ·♦*·By incubating AT in 5 mM HEPES, pH 7.4, containing 0.8 M ammonium sulfate at 60 ° C for 16h, approximately 85-90% AT was converted to the latent form and incubating AT in 5 mM HEPES, pH 7.4 containing 0.9 M ammonium sulfate at 60 ° C for 16h was converted to the latent form AT of approximately 70-75%. Native electrophoresis showed a small proportion of aggregates in 0.8 M ammonium sulfate, and no aggregates were observed at 0.9 M. By purification, such small amounts of aggregate can be easily removed.
• · · • · ·· · • · » · ·· ·#· · gelovou filtrací nebo podobnými technikami.Gel filtration or similar techniques.
Optimální koncentrace pro přeměnu AT na L-AT použitím síranu . amonného je 0,8-0,9 M. Dobrých výsledků přeměny bude také dosaženo mezi 0,7 a 1 M, a určitých výsledků mezi 0,5 a 2,0 M.. Pro tvorbu L-AT, byl postup využívající 0,5-2,0 M síranu amonného, výhodně 0,8-0,9 M, a až 25 mM HEPES, výhodně ne více než 10 mM, při pH kolem 7,4 nalezen jako ten, který poskytuje nejuspokojivější výsledky. Procento vytvořeného L-AT se bude snižovat s vyšší koncentrací síranu amonného/HEPES nebo při vyšší hodnotě pH. Kromě toho pro zabránění tvorby agregátů je nutné nepoužívat příliš nízkou koncentraci síranu amonného nebo příliš nízkou hodnotu pH.Optimal concentration to convert AT to L-AT using sulfate. ammonium is 0.8-0.9 M. Good conversion results will also be obtained between 0.7 and 1 M, and certain results between 0.5 and 2.0 M. For L-AT formation, the procedure using 0, 5-2.0 M ammonium sulfate, preferably 0.8-0.9 M, and up to 25 mM HEPES, preferably no more than 10 mM, at a pH of about 7.4 found to give the most satisfactory results. The percentage of L-AT formed will decrease with a higher concentration of ammonium sulfate / HEPES or at a higher pH. In addition, it is necessary not to use too low a concentration of ammonium sulfate or too low a pH value to prevent the formation of aggregates.
Claims (11)
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SE0004086A SE0004086D0 (en) | 2000-11-08 | 2000-11-08 | Preparation process |
US25214800P | 2000-11-20 | 2000-11-20 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CZ20031277A3 true CZ20031277A3 (en) | 2003-08-13 |
Family
ID=26655296
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CZ20031277A CZ20031277A3 (en) | 2000-11-08 | 2001-11-08 | Process for preparing latent antithrombin III |
Country Status (15)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP1332159A1 (en) |
JP (1) | JP2004522707A (en) |
KR (1) | KR20030057545A (en) |
AU (1) | AU2002214468A1 (en) |
BR (1) | BR0115188A (en) |
CA (1) | CA2428055A1 (en) |
CZ (1) | CZ20031277A3 (en) |
EE (1) | EE200300218A (en) |
HU (1) | HUP0301766A3 (en) |
IL (1) | IL155539A0 (en) |
MX (1) | MXPA03004030A (en) |
NO (1) | NO20032048D0 (en) |
PL (1) | PL360410A1 (en) |
RU (1) | RU2003117016A (en) |
WO (1) | WO2002038610A1 (en) |
Families Citing this family (22)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20030205538A1 (en) | 2002-05-03 | 2003-11-06 | Randel Dorian | Methods and apparatus for isolating platelets from blood |
US7832566B2 (en) | 2002-05-24 | 2010-11-16 | Biomet Biologics, Llc | Method and apparatus for separating and concentrating a component from a multi-component material including macroparticles |
US7845499B2 (en) | 2002-05-24 | 2010-12-07 | Biomet Biologics, Llc | Apparatus and method for separating and concentrating fluids containing multiple components |
US20060278588A1 (en) | 2002-05-24 | 2006-12-14 | Woodell-May Jennifer E | Apparatus and method for separating and concentrating fluids containing multiple components |
SE0203770D0 (en) * | 2002-12-19 | 2002-12-19 | Biovitrum Ab | Method of separation |
DK1848473T3 (en) | 2005-02-07 | 2013-09-02 | Hanuman Llc | Plasma concentrations device |
US7694828B2 (en) | 2005-04-27 | 2010-04-13 | Biomet Manufacturing Corp. | Method and apparatus for producing autologous clotting components |
US8567609B2 (en) | 2006-05-25 | 2013-10-29 | Biomet Biologics, Llc | Apparatus and method for separating and concentrating fluids containing multiple components |
US8328024B2 (en) | 2007-04-12 | 2012-12-11 | Hanuman, Llc | Buoy suspension fractionation system |
EP2146794B1 (en) | 2007-04-12 | 2016-10-19 | Biomet Biologics, LLC | Buoy suspension fractionation system |
WO2009108890A1 (en) | 2008-02-27 | 2009-09-03 | Biomet Biologics, Llc | Methods and compositions for delivering interleukin-1 receptor antagonist |
EP2254991B1 (en) | 2008-02-29 | 2018-08-22 | Biomet Manufacturing, LLC | A system and process for separating a material |
US8313954B2 (en) | 2009-04-03 | 2012-11-20 | Biomet Biologics, Llc | All-in-one means of separating blood components |
US9011800B2 (en) | 2009-07-16 | 2015-04-21 | Biomet Biologics, Llc | Method and apparatus for separating biological materials |
US8591391B2 (en) | 2010-04-12 | 2013-11-26 | Biomet Biologics, Llc | Method and apparatus for separating a material |
US9642956B2 (en) | 2012-08-27 | 2017-05-09 | Biomet Biologics, Llc | Apparatus and method for separating and concentrating fluids containing multiple components |
US10143725B2 (en) | 2013-03-15 | 2018-12-04 | Biomet Biologics, Llc | Treatment of pain using protein solutions |
US9895418B2 (en) | 2013-03-15 | 2018-02-20 | Biomet Biologics, Llc | Treatment of peripheral vascular disease using protein solutions |
US9950035B2 (en) | 2013-03-15 | 2018-04-24 | Biomet Biologics, Llc | Methods and non-immunogenic compositions for treating inflammatory disorders |
US20140271589A1 (en) | 2013-03-15 | 2014-09-18 | Biomet Biologics, Llc | Treatment of collagen defects using protein solutions |
US10208095B2 (en) | 2013-03-15 | 2019-02-19 | Biomet Manufacturing, Llc | Methods for making cytokine compositions from tissues using non-centrifugal methods |
US9550028B2 (en) | 2014-05-06 | 2017-01-24 | Biomet Biologics, LLC. | Single step desiccating bead-in-syringe concentrating device |
-
2001
- 2001-11-08 WO PCT/SE2001/002473 patent/WO2002038610A1/en not_active Application Discontinuation
- 2001-11-08 CZ CZ20031277A patent/CZ20031277A3/en unknown
- 2001-11-08 EP EP01983012A patent/EP1332159A1/en not_active Withdrawn
- 2001-11-08 IL IL15553901A patent/IL155539A0/en unknown
- 2001-11-08 PL PL36041001A patent/PL360410A1/en unknown
- 2001-11-08 JP JP2002541941A patent/JP2004522707A/en active Pending
- 2001-11-08 BR BR0115188-6A patent/BR0115188A/en not_active Application Discontinuation
- 2001-11-08 HU HU0301766A patent/HUP0301766A3/en unknown
- 2001-11-08 CA CA002428055A patent/CA2428055A1/en not_active Abandoned
- 2001-11-08 MX MXPA03004030A patent/MXPA03004030A/en unknown
- 2001-11-08 AU AU2002214468A patent/AU2002214468A1/en not_active Abandoned
- 2001-11-08 RU RU2003117016/13A patent/RU2003117016A/en not_active Application Discontinuation
- 2001-11-08 EE EEP200300218A patent/EE200300218A/en unknown
- 2001-11-08 KR KR10-2003-7005757A patent/KR20030057545A/en not_active Application Discontinuation
-
2003
- 2003-05-07 NO NO20032048A patent/NO20032048D0/en not_active Application Discontinuation
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP2004522707A (en) | 2004-07-29 |
NO20032048L (en) | 2003-05-07 |
WO2002038610A1 (en) | 2002-05-16 |
HUP0301766A3 (en) | 2005-12-28 |
MXPA03004030A (en) | 2004-02-12 |
AU2002214468A1 (en) | 2002-05-21 |
BR0115188A (en) | 2004-02-03 |
NO20032048D0 (en) | 2003-05-07 |
PL360410A1 (en) | 2004-09-06 |
EE200300218A (en) | 2003-08-15 |
IL155539A0 (en) | 2003-11-23 |
CA2428055A1 (en) | 2002-05-16 |
EP1332159A1 (en) | 2003-08-06 |
RU2003117016A (en) | 2004-12-10 |
HUP0301766A2 (en) | 2003-08-28 |
KR20030057545A (en) | 2003-07-04 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CZ20031277A3 (en) | Process for preparing latent antithrombin III | |
US20020090711A1 (en) | Process for preparing latent antithrombin III | |
EP0796269B1 (en) | Filtration method for removing viruses from virus-contaminated aqueous solutions | |
JP2009524622A (en) | Purification and use of wound healing aids | |
JPH10509144A (en) | (VIII) Factor purification method | |
WO2002060925A1 (en) | Method of producing latent antithrombin iii | |
US5777081A (en) | Process for producing an inter-alpha-trypsin inhibitor concentrate for therapeutic use and concentrate thus obtained | |
US8076462B2 (en) | Method for producing antithrombin composition | |
US20190316133A1 (en) | Anti-Fibrinogen Aptamers and Uses Thereof | |
WO2014089956A1 (en) | Method for preparing α1-antitrypsin | |
AU682368B2 (en) | Thrombin inhibitors | |
EP0282363B1 (en) | Method for preparation of a concentrate of alpha-1-antitrypsin from a human plasma fraction, and its use as a pharmaceutical | |
Karlsson et al. | Separation of latent, prelatent, and native forms of human antithrombin by heparin affinity high-performance liquid chromatography | |
TWI593702B (en) | Purification of cell culture derived alpha1 protease inhibitor | |
ZA200303492B (en) | Process for the preparation of latent antithrombin III. | |
Karlsson et al. | Separation between the α and β forms of human antithrombin by hydroxyapatite high-performance liquid chromatography | |
Karlsson | Pasteurization of antithrombin without generation of the prelatent form of antithrombin | |
AU777294B2 (en) | Process for the purification of antithrombin-III | |
Karlsson et al. | Preparative conversion of native human antithrombin to the latent form | |
CA2395489A1 (en) | Process for the purification of antothrombin-iii | |
WO2023200908A1 (en) | Methods of preparing albumin preparations | |
JP2022551566A (en) | Heparin Insensitivity Assay for Factor XIa | |
AU682274C (en) | Filtration | |
WO2004056870A2 (en) | Method for separation of antithrombin | |
WO2000043412A1 (en) | Compositions containing highly purified heparin cofactor ii and method for separating the same |