CS277564B6 - Method of preparing modified immunoglobuline preparation with low anti-complementar activity - Google Patents
Method of preparing modified immunoglobuline preparation with low anti-complementar activity Download PDFInfo
- Publication number
- CS277564B6 CS277564B6 CS32388A CS32388A CS277564B6 CS 277564 B6 CS277564 B6 CS 277564B6 CS 32388 A CS32388 A CS 32388A CS 32388 A CS32388 A CS 32388A CS 277564 B6 CS277564 B6 CS 277564B6
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- immunoglobulin
- solution
- preparation
- modified
- calcium phosphate
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 25
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title claims description 34
- 230000000694 effects Effects 0.000 title description 5
- 108060003951 Immunoglobulin Proteins 0.000 claims abstract description 51
- 102000018358 immunoglobulin Human genes 0.000 claims abstract description 51
- DHMQDGOQFOQNFH-UHFFFAOYSA-N Glycine Chemical compound NCC(O)=O DHMQDGOQFOQNFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 16
- 238000001990 intravenous administration Methods 0.000 claims abstract description 16
- 230000003171 anti-complementary effect Effects 0.000 claims abstract description 14
- 239000001506 calcium phosphate Substances 0.000 claims abstract description 14
- 229910000389 calcium phosphate Inorganic materials 0.000 claims abstract description 14
- 235000011010 calcium phosphates Nutrition 0.000 claims abstract description 14
- QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H tricalcium bis(phosphate) Chemical compound [Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H 0.000 claims abstract description 14
- OWEGMIWEEQEYGQ-UHFFFAOYSA-N 100676-05-9 Natural products OC1C(O)C(O)C(CO)OC1OCC1C(O)C(O)C(O)C(OC2C(OC(O)C(O)C2O)CO)O1 OWEGMIWEEQEYGQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 8
- 239000004471 Glycine Substances 0.000 claims abstract description 8
- GUBGYTABKSRVRQ-PICCSMPSSA-N Maltose Natural products O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)OC(O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-PICCSMPSSA-N 0.000 claims abstract description 8
- 102000007562 Serum Albumin Human genes 0.000 claims abstract description 8
- 108010071390 Serum Albumin Proteins 0.000 claims abstract description 8
- PGLTVOMIXTUURA-UHFFFAOYSA-N iodoacetamide Chemical compound NC(=O)CI PGLTVOMIXTUURA-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 6
- GUBGYTABKSRVRQ-QUYVBRFLSA-N beta-maltose Chemical compound OC[C@H]1O[C@H](O[C@H]2[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)O[C@@H]2CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-QUYVBRFLSA-N 0.000 claims abstract description 5
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 10
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 8
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims description 8
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 8
- 238000007385 chemical modification Methods 0.000 claims description 6
- 230000000087 stabilizing effect Effects 0.000 claims description 6
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims description 5
- 238000003756 stirring Methods 0.000 claims description 4
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 claims description 3
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 claims description 3
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 2
- 238000011146 sterile filtration Methods 0.000 claims description 2
- 201000010099 disease Diseases 0.000 abstract description 7
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 abstract description 7
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 abstract description 5
- 230000003612 virological effect Effects 0.000 abstract description 5
- 238000011026 diafiltration Methods 0.000 abstract description 4
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 abstract description 4
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 abstract description 3
- 102000007474 Multiprotein Complexes Human genes 0.000 abstract description 2
- 108010085220 Multiprotein Complexes Proteins 0.000 abstract description 2
- 238000000926 separation method Methods 0.000 abstract description 2
- 206010067484 Adverse reaction Diseases 0.000 abstract 1
- 230000006838 adverse reaction Effects 0.000 abstract 1
- 230000002152 alkylating effect Effects 0.000 abstract 1
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 abstract 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 39
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 6
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 5
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 5
- 239000013543 active substance Substances 0.000 description 4
- 230000029936 alkylation Effects 0.000 description 4
- 238000005804 alkylation reaction Methods 0.000 description 4
- 238000007918 intramuscular administration Methods 0.000 description 4
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 4
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 238000003776 cleavage reaction Methods 0.000 description 3
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 3
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 3
- 230000007017 scission Effects 0.000 description 3
- VHJLVAABSRFDPM-UHFFFAOYSA-N 1,4-dithiothreitol Chemical compound SCC(O)C(O)CS VHJLVAABSRFDPM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000700198 Cavia Species 0.000 description 2
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 2
- 108090000113 Plasma Kallikrein Proteins 0.000 description 2
- 230000002411 adverse Effects 0.000 description 2
- 208000003455 anaphylaxis Diseases 0.000 description 2
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 2
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 2
- 239000006227 byproduct Substances 0.000 description 2
- VHJLVAABSRFDPM-QWWZWVQMSA-N dithiothreitol Chemical compound SC[C@@H](O)[C@H](O)CS VHJLVAABSRFDPM-QWWZWVQMSA-N 0.000 description 2
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 2
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 description 2
- 238000005194 fractionation Methods 0.000 description 2
- 230000036541 health Effects 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- 230000008520 organization Effects 0.000 description 2
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K phosphate Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 2
- 239000007858 starting material Substances 0.000 description 2
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000009027 Albumins Human genes 0.000 description 1
- 108010088751 Albumins Proteins 0.000 description 1
- OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N Calcium Chemical compound [Ca] OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L Calcium chloride Chemical compound [Cl-].[Cl-].[Ca+2] UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 241001432959 Chernes Species 0.000 description 1
- 208000035473 Communicable disease Diseases 0.000 description 1
- UNXHWFMMPAWVPI-UHFFFAOYSA-N Erythritol Natural products OCC(O)C(O)CO UNXHWFMMPAWVPI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108010010803 Gelatin Proteins 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 1
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 description 1
- 102000057297 Pepsin A Human genes 0.000 description 1
- 108090000284 Pepsin A Proteins 0.000 description 1
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 1
- 230000009435 amidation Effects 0.000 description 1
- 238000007112 amidation reaction Methods 0.000 description 1
- 230000000941 anti-staphylcoccal effect Effects 0.000 description 1
- 239000008346 aqueous phase Substances 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N beta-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 description 1
- VEZXCJBBBCKRPI-UHFFFAOYSA-N beta-propiolactone Chemical compound O=C1CCO1 VEZXCJBBBCKRPI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 230000000903 blocking effect Effects 0.000 description 1
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 1
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 1
- 239000010836 blood and blood product Substances 0.000 description 1
- 239000011575 calcium Substances 0.000 description 1
- 229910052791 calcium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001110 calcium chloride Substances 0.000 description 1
- 229910001628 calcium chloride Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 239000007795 chemical reaction product Substances 0.000 description 1
- 230000001010 compromised effect Effects 0.000 description 1
- 238000010908 decantation Methods 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 238000007865 diluting Methods 0.000 description 1
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 1
- 238000012869 ethanol precipitation Methods 0.000 description 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 1
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 1
- 125000000524 functional group Chemical group 0.000 description 1
- 108010074605 gamma-Globulins Proteins 0.000 description 1
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 description 1
- 235000019322 gelatine Nutrition 0.000 description 1
- 235000011852 gelatine desserts Nutrition 0.000 description 1
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 1
- 230000001456 gonadotroph Effects 0.000 description 1
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 1
- 229940088597 hormone Drugs 0.000 description 1
- 239000005556 hormone Substances 0.000 description 1
- 230000003053 immunization Effects 0.000 description 1
- 238000002649 immunization Methods 0.000 description 1
- 238000009177 immunoglobulin therapy Methods 0.000 description 1
- 229940072221 immunoglobulins Drugs 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 1
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 1
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 1
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- 229940111202 pepsin Drugs 0.000 description 1
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 description 1
- 210000002381 plasma Anatomy 0.000 description 1
- 229940012957 plasmin Drugs 0.000 description 1
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 229960000380 propiolactone Drugs 0.000 description 1
- 230000009145 protein modification Effects 0.000 description 1
- 230000006337 proteolytic cleavage Effects 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 238000005215 recombination Methods 0.000 description 1
- 230000006798 recombination Effects 0.000 description 1
- 238000006722 reduction reaction Methods 0.000 description 1
- 239000001488 sodium phosphate Substances 0.000 description 1
- 229910000162 sodium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000002594 sorbent Substances 0.000 description 1
- 239000003381 stabilizer Substances 0.000 description 1
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 1
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 1
- RYFMWSXOAZQYPI-UHFFFAOYSA-K trisodium phosphate Chemical compound [Na+].[Na+].[Na+].[O-]P([O-])([O-])=O RYFMWSXOAZQYPI-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 238000012795 verification Methods 0.000 description 1
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Způsob přípravy modifikovaného imunoglobulinu o nízké antikomplementární aktivitě je založen na principu nespecifické sorpce balastních látek na fosforečnan vápenatý, redukci imunoglobulinu dithio-DL-treitolem, jeho alkylaci jodacetamidem a oddělení nízkomolekulámích látek dialyzou nebo diafiltrací. Takto připravený roztok modifikovaného imunoglobulinu je stabilizován přidáním malťózy, glycinu, popřípadě sérového albuminu. Roztok 5% modifikovaného imunoglobulinu, pokud byly při jeho přípravě zachovány podmínky pro apyrogenní práci, je vhodný pro intravenózní aplikaci. Má nízkou antikomplementární aktivitu, neobsahuje vysoce agregované bílkovinné komplexy, schopné vyvolat nežádoucí reakce, má biologický poločas vylučování porovnatelný s nativním imunoglobulinem a při jeho aplikaci je maximálně sníženo riziko přenosu virových onemocnění.A method for preparing a modified immunoglobulin low anticomplementary activity is based on the principle of non-specific ballast sorption calcium phosphate, reducing the immunoglobulin dithio-DL-treitol, alkylating it iodoacetamide and separation of low molecular weight by dialysis or diafiltration. So prepared the modified immunoglobulin solution is stabilized adding maltose, glycine, optionally serum albumin. 5% modified solution immunoglobulin when prepared the conditions for apyrogenic work are maintained suitable for intravenous administration. He's low anti-complementary activity, does not contain high aggregate protein complexes capable of inducing adverse reaction has a half-life comparable to native immunoglobulin and its application is minimized risk of transmission of viral diseases.
Description
Vynález se týká způsobu výroby přípravku chemicky modifikovaného imunoglobulinu o nízké antikomplementární aktivitě, který je vhodný pro intravenozní aplikaci, způsobem umožňujícím zvýšení kvality, zejména z hlediska dalšího snížení antikomplementární aktivity, obsahu vysokomolekulárních agregovaných komplexů bílkovin, nežádoucího účinku biologicky aktivních látek a rizika přenosu některých virových onemocnění.The present invention relates to a process for the preparation of a chemically modified immunoglobulin preparation with low anticomplementary activity, which is suitable for intravenous administration, by a method which improves quality, in particular disease.
V průběhu posledních dvou desetiletí se všeobecně projevuje stále vzrůstající snaha využívat imunoglobulinovou frakci krevní plazmy nejen jako intramuskulární preparát, ale také upravit ji tak, aby bylo možné ji bezpečně aplikovat intravenozně. Tento vývoj je charakterizován snahou o přípravu plně účinného intravenozního roztoku, který by nevyvolával nežádoucí anafylaktické reakce u příjemců a byl bezpečný z hlediska přenosu virových onemocnění. Úkol spočívá v přípravě roztoku imunoglobulinu, který vykazuje velmi nízkou antikomplementární aktivitu, obsahuje pouze minimální množství agregovaných bílkovinných komplexů a obsahuje co nejméně biologicky aktivních látek, jako jsou skupinové látky krve, prekalikreinová aktivita gonadotropní hormon a podobně. Zároveň musí být vyloučena možnost přenosu virových onemocnění. Postupem doby bylo v této oblasti získáno mnoho zkušeností a existuje řada publikací, zabývajících se jak způsoby přípravy intravenožních preparátů a zjišťování jejich kvality, tak klinickým ověřováním jejich účinnosti a příklady aplikace při různých onemocněních. Nejdéle známým způsobem přípravy je parciální proteolytické štěpení,například pepsinem /H.E.Schultze,G.Schwick: Dtsch.Med.Wschr. 87, 1643 (1962)/,/S.Barandun,P.Kistler,J.Jeunet,H.Istiker: Vox Sang. 7, 157 (1962)/, /S.Barandun: Biblthemat.No.17 (Kargel·,Basel 1964), Die Gamma-globulin - Therapie/, /1.Banda a kolektiv: čs. autorské osvědčení č. 239838 / nebo plasminem /J.T.Sqouris: Vox Sang. 13,71 (1967)/, /I.Biněva,L.Bazadžiev,B.Zacharia:Probl.Infect.Parazit.Dis. 12,84 (1985)/. Preparáty tohoto typu mají minimální antikomplementární aktivitu a neobsahují agregované pornylery /F.R.Seiler: Die gelben Hefte XXII (1),L (1982)/. Část odborníků pokládá takto připravený imunoglobulinový preparát prozatím za nejbezpečnější z hlediska možného výskytu reakcí u příjemce, naopak jiná skupina jej označuje za zastaralý, zejména z důvodů velmi nízkého biologického poločasu vylučování a možné přítomnosti vedlejších produktů enzymatického štěpení /F.Škvařil, B.Roth-Wicky,S.Barandum: Vox Sang. 38, 147 (1980)/, /J.Rómer, F.Škvařil: Vox Sang.42, 62 (1982)/, /B.M.Alving,J.S.Findayson (editors): Immunoglobulins, characteristics and uses of intravenous preparations. US Dep. of Helth, 1979/, /F.R.Seiler,R.G. Geursen (editors): 7S-Immunoglobulin zur intravenosen Anwendung. Kargel 1982/, /R.E.Schmidt,I.Stroehmann (editors):Immunoglobulin therapie Grundlagen und klinische Anwendung. Symposium in Bonn, Karger 1981/, /R.A.Good (editor): Am.J.Med 76,3A (1984) Intra veil·: as Immune Globulin and the Compromised Host/. Dalším typem intravenózního preparátu je roztok nepozměněného, vysoce purifikovaného plně nativního imunoglobulinu. Tento druh přípravku je vysoce účinný a má délku biologického poločasu stejnou jako normální imunoglobulin. Využívání nativního typu takovéhoto preparátu, má však jistá úskalí. Problém spočívá v bezpečném vyloučení výskytu všech reakcí u příjemce. Stává se totiž diskutabilní objektivně vymezit hranici mezi intramuskulárním a intravenózním preparátem a tak stanovit přijatelný stupeň nebezpečí možného výskytu nežádoucích klinických reakcí. Obecně zde platí zásada požadující maximálně dosažitelnou elektroforetickou čistotu imunoglobulinu, co nejnižší obsah agregovaných bílkovin, minimální antikomplementární aktivitu a minimální obsah biologicky aktivních látek. Riziko přenosu virových onemocnění se u těchto preparátů vylučuje pečlivou kontrolou vstupní suroviny a zařazením etanolového srážecího stupně nebo jiných purifikačních kroků do frakcionačních postupů /Η.H.Hoppe,T.Mester^.Henning, H.J.Krebs: Vox Sang. 25, 308 (1973)/, /C.J.Cunninghan: Biochem.Soc.Transs. 8, 178 (1980)/, /W.Scheider,D.Wolter,L.J.McCarty: Vox sang. 31, 141 (1976)/, /A.D.Friesen, J.M.Bowmann, H.W.Price: J.Appl.Biochem. 3, 166 (1981)/, /J.Vaňák, A. Stejskal: čs. autorské osvědčení č. 220 725/, /R.M.Condie: US Patent 4.130094 - 1979/, /R.M.Condie: US Patent 4.296027 - 1981/, /W. Guddat, K.Hillger: DD patent 208918 A 61 K - 39395/, /1.Štěpánek: čs. autorské osvědčení č. 255 356/, /R.S.Lane: Lancet 974 (1983)/, /A.M.L.Lewer a kolektiv: Lancet 1062 (1984)/, /H.D.Ochs a kolektiv: Lancet 404 (1985)/, /M.A.Wells a kolektiv: Transfusion 26 (2), 212 (1986)/, /H.Friedli,J.Morgethaler: Lancet 1215 (1985). Kvalita intravenózního neštěpeného imunoglobulinu bývá vymezena směrnicí na příklad Světové zdravotnické organizace /Směrnice WHO The Collection, Fractionation, Quality, Control and Use of Blood and Blood Products, Geneva 1981, str. 50/ nebo normou /Podniková norma PNY 31-147-82/. Při volbě kvality je nutné mít na zřeteli to, že čím jsou hodnoty sledovaných veličin stanoveny tolerantněji, tím více se zvyšuje nebezpečí vzniku komplikací u příjemce.Over the last two decades, there has been a growing effort to use the immunoglobulin fraction of blood plasma not only as an intramuscular preparation, but also to modify it so that it can be safely administered intravenously. This development is characterized by the desire to prepare a fully effective intravenous solution that does not cause adverse anaphylactic reactions in recipients and is safe for transmission of viral diseases. The task is to prepare an immunoglobulin solution which has very low anticomplementary activity, contains only a minimal amount of aggregated protein complexes and contains as few biologically active substances as possible, such as blood grouping substances, prekallikrein activity, gonadotropic hormone and the like. At the same time, the possibility of transmitting viral diseases must be ruled out. Over time, much experience has been gained in this field and there are a number of publications dealing with both methods for the preparation of intravenous preparations and their quality, as well as clinical verification of their efficacy and examples of application in various diseases. The longest known method of preparation is partial proteolytic cleavage, for example with pepsin / H. E. Schultze, G. Schwick: Dtsch.Med.Wschr. 87, 1643 (1962) /, / S.Barandun, P.Kistler, J.Jeunet, H.Istiker: Vox Sang. 7, 157 (1962) /, /S.Barandun: Biblthemat.No.17 (Kargel ·, Basel 1964), Die Gamma-globulin - Therapie /, /1.Banda a kolektiv: čs. author's certificate No. 239838 / or plasmin /J.T.Sqouris: Vox Sang. 13.71 (1967) /, /I.Biněva,L.Bazadžiev,B.Zacharia:Probl.Infect.Parazit.Dis. 12.84 (1985). Preparations of this type have minimal anticomplementary activity and do not contain aggregated pornylers (F. R. Seiler: Die gelben Hefte XXII (1), L (1982)). Some experts consider the immunoglobulin preparation prepared in this way to be the safest in terms of possible reactions in the recipient, while another group describes it as obsolete, especially due to very low biological half-life and possible presence of by-products of enzymatic cleavage /F.Škvařil, B.Roth Wicky, S.Barandum: Vox Sang. 38, 147 (1980) /, /J.Rómer, F.Škvařil: Vox Sang.42, 62 (1982) /, /B.M.Alving,J.S.Findayson (editors): Immunoglobulins, characteristics and uses of intravenous preparations. US Dep. of Helth, 1979 /, /F.R.Seiler,R.G. Geurses (editors): 7S-Immunoglobulin for intravenous use. Kargel 1982 /, /R.E.Schmidt,I.Stroehmann (editors): Immunoglobulin therapy Grundlagen und klinische Dwendung. Symposium in Bonn, Karger 1981 /, /R.A.Good (editor): Am.J.Med 76,3A (1984) Intra veil ·: as Immune Globulin and the Compromised Host /. Another type of intravenous preparation is a solution of unmodified, highly purified fully native immunoglobulin. This type of preparation is highly effective and has the same half-life as normal immunoglobulin. However, the use of the native type of such a preparation has certain drawbacks. The problem is to safely rule out all reactions in the recipient. This is because it becomes debatable to objectively define the boundary between an intramuscular and an intravenous preparation and thus to determine an acceptable degree of risk of the possible occurrence of adverse clinical reactions. In general, there is a principle requiring the maximum achievable electrophoretic purity of the immunoglobulin, the lowest possible content of aggregated proteins, a minimum of anticomplementary activity and a minimum content of biologically active substances. The risk of transmission of viral diseases in these preparations is eliminated by careful control of the starting material and by the inclusion of an ethanol precipitation step or other purification steps in the fractionation procedures /Η.H.Hoppe,T.Mester^.Henning, H.J.Krebs: Vox Sang. 25, 308 (1973) /, /C.J.Cunninghan: Biochem.Soc.Transs. 8, 178 (1980) /, /W.Scheider,D.Wolter,L.J.McCarty: Vox sang. 31, 141 (1976)], / A. D. Friesen, J. M. Bowmann, H. W. Price: J. Appl. Biochem. 3, 166 (1981) /, /J.Vaňák, A. Stejskal: Czechosl. Author's Certificate No. 220 725 /, /R.M.Condie: US Patent 4.130094 - 1979 /, /R.M.Condie: US Patent 4.296027 - 1981 /, / W. Guddat, K.Hillger: DD patent 208918 A 61 K - 39395 /, /1.Štěpánek: čs. author's certificate No. 255 356 /, / RSLane: Lancet 974 (1983) /, / AMLLewer and team: Lancet 1062 (1984) /, / HDOchs and team: Lancet 404 (1985) /, / MAWells and team : Transfusion 26 (2), 212 (1986) /, /H.Friedli, J. Morgethaler: Lancet 1215 (1985). The quality of intravenous undigested immunoglobulin is defined by a directive, for example the World Health Organization / WHO Guidelines The Collection, Fractionation, Quality, Control and Use of Blood and Blood Products, Geneva 1981, p. 50 / or a standard / Company standard PNY 31-147-82 / . When choosing the quality, it is necessary to keep in mind that the more tolerant the values of the monitored variables, the greater the risk of complications in the recipient.
Určitým kompromisním řešením, které odstraňuje některé nevýhody obou výše uvedených typů intravenóžních roztoků imunoglobulinů, je třetí způsob přípravy, založený na chemické modifikaci imunoglobulinu. Parciálním rozštěpením molekul imunoglobulinu a chemickým zablokováním příslušných funkčních skupin je zabráněno vzniku agregátů schopných vyvolat reakce u příjemce. Současně je dosaženo částečného snížení antikomplementární aktivity. Biologický poločas vylučování z organismu je srovnatelný s poločasem u nativního imunoglobulinu, protože štěpy jsou za vhodných podmínek schopné in vivo i in vitro, rekombinace. Obsah účinných protilátek zůstává nezměněn. Chemickou modifikací molekul bílkovin dochází k likvidaci biologicky aktivních látek, například prekalikreinové aktivity /P.M.Fernandes,J.L.Lundblad: Vox Sang. 39, 101 (1980)/ a k desaktivaci· popřípadě přítomných nativních virů /W.Stephan: Vox Sang. 20, 442 (1971)/, /A.M.Price,W.Stephan, B.Brotman: Vox Sang. 46 (2), 80 (1984)/, /W-.Stephan: Z.Klin.Chem. Klin.Biochem.: 7, 286 (1969)/, /D.D.Schroeder a spolupracovníci: Am.J.Med. 76 (3A), 33 (1984)/. Z nej známějších postupů modifikace imunoglobulinu se uvádějí reakce s beta propiolaktonem /W.Stephan: Beitr.Infusionther.Klin.Enahr. 11, 20 (1983)/, amidace imunoglobulinu /R/Schmidtberger: US Patent 4, 118379 - 1978/, sulfitolytické štěpení /F.Franěk,O.M.Zorina: Coll.Czech. Chern.Commun. 32, 3229 (1967)/, /H. Muller: Open-laid Patent Gazette DE-AS 2658 334 - 1976/, /Y.Masubo,Y.Tomibe,T.Watanabe, Y.Fukomoto: Vox Sang. 32, 200 (1977)/, /Y.Masubo,Y.Tomibe, Y.Fukomoto,T.Watanabe: Vox Sang. 32, 290 (1977)/, /P.Gronski, E.Kanzy,G.Luben: Die gelben Hefte 40 (1982)/, /Z.Olšovská, F.Franěk:Folia biologica 29 (4), 282 (1983)/, /Z.Olšovská, F.Franěk: Folia biologica 29 (6), 365 (1983)/, /P.Gronski,A third compromise solution, which overcomes some of the disadvantages of the two types of intravenous immunoglobulin solutions mentioned above, is a third method of preparation based on the chemical modification of an immunoglobulin. The partial cleavage of the immunoglobulin molecules and the chemical blocking of the respective functional groups prevents the formation of aggregates capable of eliciting reactions in the recipient. At the same time, a partial reduction in anticomplementary activity is achieved. The biological half-life of the organism is comparable to that of native immunoglobulin, as the grafts are capable of recombination in vivo and in vitro under appropriate conditions. The content of active antibodies remains unchanged. Chemical modification of protein molecules eliminates biologically active substances, for example prekallikrein activity /P.M.Fernandes,J.L.Lundblad: Vox Sang. 39, 101 (1980)] and to deactivate any native viruses present (W. Stephan: Vox Sang. 20, 442 (1971) /, /A.M.Price,W.Stephan, B.Brotman: Vox Sang. 46 (2), 80 (1984) /, /W-.Stephan: Z.Klin.Chem. Klin.Biochem .: 7, 286 (1969) /, /D.D.Schroeder et al., Am.J.Med. 76 (3A), 33 (1984) /. One of the best known immunoglobulin modification procedures is the reaction with beta propiolactone [W. Stane: Beitr.Infusionther.Klin.Enahr. 11, 20 (1983)], immunoglobulin amidation (R) Schmidtberger: U.S. Pat. No. 4,118,779-1978, sulfitolytic cleavage (F. Frankek, O. M. Zorina: Coll. Czech. Chern.Commun. 32, 3229 (1967) /, / H. Muller: Open-laid Patent Gazette DE-AS 2658 334 - 1976 /, /Y.Masubo,Y.Tomibe,T.Watanabe, Y.Fukomoto: Vox Sang. 32, 200 (1977) /, /Y.Masubo,Y.Tomibe, Y.Fukomoto, T.Watanabe: Vox Sang. 32, 290 (1977) /, /P.Gronski, E.Kanzy, G.Luben: Die gelben Hefte 40 (1982) /, /Z.Olšovská, F.Franěk: Folia biologica 29 (4), 282 (1983) /, /Z.Olšovská, F.Franěk: Folia biologica 29 (6), 365 (1983) /, /P.Gronski,
T.Hofstaetter,E.J.Kanzy,G.Luben,F.R.Seiler: Vox Sang. 45, 144 (1985)/, /T. Hofstaetter,P.Gronski,E. J.Kanzy,H.U.Schorlemmer, F.R. Seiler: Vox Sang. 45, 155 (1983)/, /P.Gronski a spolupracovníci: Ric.Clin.Lab. 14 Suppl. 1, 7 (1984)/. Osvědčeným způsobem modifikace je redukce s následnou alkylací /P.M.Fernandes,J.L.Lundblad: Vox Sang. 39, 101 (1980)/, /D.D.Schroeder, D.T.Tankersley,J.L. Lunblod: Vox Sang. 40,373 (1981)/, /D.D.Schroeder a spolupracovníci: Am.J.Med. 76 (3A), 33 (1984)/. Podstatný vliv na kvalitu konečného preparátu, na jeho bezpečnost při klinické aplikaci a na exspirační dobu má složení stabilizačního roztoku. Ke stabilizaci intravenozních roztoků imunoglobulinu se nejčastěji užívá glycin v kombinaci s některým cukrem, na příklad s maltózou nebo glukózou v různých koncentracích. V některých případech se u roztoku nativního imunoglobulinu užívá k jeho protekci sérového albuminu /D.Gislason a spolupracovníci: Vox Sang. 34, 143 (1978)/ nebo modifikované želatiny /T.Tomoto,K.Ikeda,T.Suzuki: Vox Sang. 51, 85 (1986)/.T.Hofstaetter, E.J. Kanzy, G.Luben, F.R.Seiler: Vox Sang. 45, 144 (1985) /, / T. Hofstaetter, P. Gronski, E. J. Kanzy, H.U.Schorlemmer, F.R. Seiler: Vox Sang. 45, 155 (1983) /, /P.Gronski et al., Ric.Clin.Lab. 14 Suppl. 1, 7 (1984). A good method of modification is reduction followed by alkylation of [P.M. Fernandes, J. L. Lundblad: Vox Sang. 39, 101 (1980) /, D. D. Schroeder, D. T. Tankersley, J. L. Lunblod: Vox Sang. 40,373 (1981) /, /.D.D.Schroeder et al., Am.J.Med. 76 (3A), 33 (1984) /. The composition of the stabilizing solution has a significant effect on the quality of the final preparation, on its safety during clinical application and on the expiration time. Glycine in combination with a sugar, for example maltose or glucose in various concentrations, is most often used to stabilize intravenous immunoglobulin solutions. In some cases, a native immunoglobulin solution is used to protect its serum albumin [D. Gislason et al., Vox Sang. 34, 143 (1978) / or modified gelatins (T. Tomoto, K. Ikeda, T. Suzuki: Vox Sang. 51, 85 (1986).
Na základě výsledků našich pokusů, uvedených v následující tabulce, a údajů, obsažených v citovaných pracích, byl navržen postup přípravy intravenózního roztoku imunoglobulinu s nízkou antikomplementární aktivitou, jak jej předkládá předmět vynálezu.Based on the results of our experiments, shown in the following table, and the data contained in the cited works, a process for the preparation of an intravenous immunoglobulin solution with low anticomplementary activity was proposed, as presented by the present invention.
Φ 4-> •H > •rd 4->Φ 4-> • H> • rd 4->
ΦΦ
Přehled výsledků stanovení antikomplementární aktivity u 5% roztoků imunoglobulinů připravených různými postupy.Overview of the results of the determination of anticomplementary activity in 5% immunoglobulin solutions prepared by various procedures.
ΦΦ
Φ taΦ ta
ΦΦ
ΌΌ
>N >N> N> N
Φ Φ co inΦ Φ co in
04 > Φ >4 CL '304> Φ> 4 CL '3
0404
Poznámka: a) - mikrostanovení podle Fultona a Dumbella, b) - stanovení podle PNY 31-147-82 c) - imunoglobulin obsahuje přibližně 10 % agregovaných podílů bílkovin d) - rozsah stanovených hodnot u více stanoveníNote: a) - microassays according to Fulton and Dumbell, b) - assays according to PNY 31-147-82 c) - immunoglobulin contains approximately 10% of aggregated parts of proteins d) - range of determined values for more assays
Navržený způsob výroby přípravku modifikovaného imunoglobulinu o nízké antikomplementární aktivitě, který je vhodný pro intravenozní aplikaci, založený na kombinaci známých postupů přípravy fosforečnanu vápenatého, chemické modifikace imunoglobulinu DL-dithiotreitolem a přidání maltózy, glycinu a sérového albuminu jako stabilizačních složek, vyznačující se tím, že se vodný roztok obsahující 3 až 10 g imunoglobulinu, o elektroforetické čistotě nejméně 95 %, na každých 100 ml uvede do kontaktu s fosforečnanem vápenatým na dobu 30 až 60 minut, potom se fosforečnan vápenatý oddělí od tekutiny, k takto získanému roztoku imunoglobulinu se přidá 1,4-dithio-DL-treitol v množství 23 až 38 mg na každých 100 ml roztoku a po 30 minutovém míchání se přidá 50 až 100 mg jodacetamidu na každých 100 ml roztoku, míchá se dalších 60 minut, roztok takto modifikovaného imunoglobulinu se dialyzuje nebo diafiltruje proti roztoku obsahujícímu 0,2 až 0,4 g chloridu sodného na každých 100 ml, potom se upraví koncentrace bílkovin naředěním roztokem chloridu sodného o uvedené koncentraci, nebo naopak zahustí ultrafiltrací tak, aby obsahoval 4,5 až 5,5 g modifikovaného imunoglobulinu na 100 ml roztoku, potom se přidá stabilizační složky 1 až 5 g maltózy, 1 až 2,5 g glycinu, popřípadě 1 až 5 g sérového albuminu na každých 100 ml roztoku, jeho hodnota pH se upraví na 6,4 až 7,4 a provede se sterilní filtrace.The proposed process for the preparation of a modified immunoglobulin preparation with low anticomplementary activity, which is suitable for intravenous administration, based on a combination of known calcium phosphate preparation methods, chemical modification of immunoglobulin with DL-dithiothreitol and addition of maltose, glycine and serum albumin as stabilizing components. an aqueous solution containing 3 to 10 g of immunoglobulin, with an electrophoretic purity of at least 95%, is contacted with calcium phosphate for every 100 ml for 30 to 60 minutes, then the calcium phosphate is separated from the liquid, to the immunoglobulin solution thus obtained is added 1 , 4-dithio-DL-threitol in an amount of 23 to 38 mg for every 100 ml of solution and after stirring for 30 minutes, 50 to 100 mg of iodoacetamide for every 100 ml of solution is added, stirred for another 60 minutes, the immunoglobulin solution thus modified is dialyzed or diafiltered against a solution containing 0,2 to 0,4 g of sodium chloride per 100 ml, then adjust the co concentrate the proteins by diluting with sodium chloride solution of the indicated concentration, or, conversely, concentrate by ultrafiltration to contain 4,5 to 5,5 g of modified immunoglobulin per 100 ml of solution, then add the stabilizing components 1 to 5 g of maltose, 1 to 2,5 g glycine or 1 to 5 g of serum albumin for every 100 ml of solution, its pH is adjusted to 6.4 to 7.4 and sterile filtration is carried out.
Předností navrženého postupu přípravy modifikovaného imunoglobulinu je to, že umožňuje výrobu potřebného léku vhodného pro intravenozní aplikaci, který vykazuje nízkou antikomplementární aktivitu, neobsahuje agregované podíly bílkovin, má snížený obsah biologicky aktivních látek, maximálně snižuje riziko přenosu virových onemocnění, je klinicky bezpečný a má biologický poločas vylučování srovnatelný s nativním neštěpeným imunoglobulinem. Roztok modifikovaného imunoglobulinu, připravený podle navrženého postupu, si podržuje stejný obsah protilátek, jaký měl výchozí materiál. Preparát je stálý při provedení zkoušky stability podle směrnice Světové zdravotnické organizace a nemění svůj vzhled a viskozitu po čtyřhodinovém zahřívání na 58 °C. Roztok modifikovaného imunoglobulinu je neškodný na morčatech a myších.The advantage of the proposed process for the preparation of modified immunoglobulin is that it allows the production of the necessary drug suitable for intravenous administration, which has low anticomplementary activity, does not contain aggregated protein, has a reduced content of biologically active substances, maximally reduces the risk of transmitting viral diseases, is clinically safe and has biologically safe. half-life comparable to native uncleaved immunoglobulin. The modified immunoglobulin solution prepared according to the proposed procedure retains the same antibody content as the starting material. The preparation is stable when tested for stability according to the guidelines of the World Health Organization and does not change its appearance and viscosity after heating at 58 ° C for four hours. The modified immunoglobulin solution is harmless in guinea pigs and mice.
Způsob přípravy preparátu o nízké antikomplementární aktivitě je v principu založen na vhodné kombinaci nespecifické sorpce vysokomolekulárních látek na fosforečnan vápenatý, chemické modifikace molekuly imunoglobulinu redukcí dithiotreitolem a alkylací jodacetamidem. Nežádoucí nízkomolekulární látky jsou odstraněny dialýzou nebo diafiltrací. Injekční roztok je vhodným způsobem stabilizován. Účinek fosforečnanu vápenatého je možné dosáhnout jiným vhodným způsobem, na příklad užitím iontoměniče nebo sorbentu podobných vlastností. Provedení chemické modifikace diothiotreitolem a jodacetamidem je podle výsledků našich pokusů i podle zkušeností jiných autorů výhodnější, než je modifikace pomocí sulfitolýzy. Zařazením náležitě účinné dialýzy nebo diafiltrace je dosaženo nejen odstranění vedlejších produktů redukce a alkylace, ale také oddělení dalších nízkomolekulárních látek, původně obsažených ve výchozím roztoku imunoglobulinu řádově o čtyři řády. Jako stabilizační složka se nejlépe osvědčila kombinace maltózy a glycinu s doplněním o sérový albumin. Přítomnost albuminu zvyšuje stabilitu modifikovaného imunoglobulinu, zajišťuje blokování i stopových zbytků reakčních produktů, dále snižuje riziko anafylaktických reakcí a při klinické aplikaci napomáhá detoxikaci látek vzniklých v důsledku infekčního onemocnění v organizmu příjemce.The process for the preparation of a preparation with low anticomplementary activity is in principle based on a suitable combination of non-specific sorption of high molecular weight substances to calcium phosphate, chemical modification of the immunoglobulin molecule by reduction with dithiothreitol and alkylation with iodoacetamide. Unwanted low molecular weight substances are removed by dialysis or diafiltration. The solution for injection is suitably stabilized. The effect of calcium phosphate can be achieved in another suitable way, for example by using an ion exchanger or a sorbent with similar properties. According to the results of our experiments and the experience of other authors, performing chemical modification with diothiothreitol and iodoacetamide is more advantageous than modification by sulfitolysis. The inclusion of properly efficient dialysis or diafiltration achieves not only the removal of by-products of reduction and alkylation, but also the separation of other low molecular weight substances originally contained in the immunoglobulin starting solution by the order of four orders of magnitude. The combination of maltose and glycine with the addition of serum albumin proved to be the best stabilizing component. The presence of albumin increases the stability of the modified immunoglobulin, blocks even trace residues of reaction products, further reduces the risk of anaphylactic reactions and in clinical application helps to detoxify substances caused by infectious diseases in the recipient's body.
Z hlediska technologické přípravy je navržený postup jednoduchý a nevyžaduje žádná mimořádná zařízení. Předností postupu je také skutečnost, že umožňuje přípravu žádaného intravenozního preparátu, jehož léčebný význam se bude nepochybně dále zvyšovat, z imunoglobulinu připraveného způsobem, Vhodným pro intramuskulární aplikaci, o který zájem stále klesá.In terms of technological preparation, the proposed procedure is simple and does not require any special equipment. An advantage of the process is also the fact that it allows the preparation of the desired intravenous preparation, the therapeutic importance of which will undoubtedly increase further, from an immunoglobulin prepared in a manner suitable for intramuscular administration, for which interest is constantly declining.
Příklad 1 g lyofilizovaného imunoglobulinu, vhodného pro přípravu intramuskulárního preparátu, který vykazuje nejméně 95 % elektroforetickou čistotu, se rozpustí ve 200 ml destilované apyrogenní vody a pH roztoku se upraví na hodnotu 7,2 ± 0,2 pomocí 0,2 M roztoku hydroxidu sodného nebo 0,2 M kyseliny octové. K roztoku se přidá 40 ml hustého sedimentu fosforečnanu vápenatého, připraveného podle dále uvedeného postupu. Vzniklá suspenze se míchá 60 minut, potom se fosforečnan oddělí filtrací přes vrstvy typu K5 a EKS2. Dále se přidá na každých 100 ml filtrátu 23 až 38 mg 1,4-dithio-DL-treitolu a po 30 minutovém míchání se přidá 55 až 100 mg jodacetamidu. Roztok se míchá dalších 60 minut. Roztok redukovaného a alkylovaného imunoglobulinu se potom dialyzuje třikrát opakovaně proti 20 násobnému objemu 0,2 až 0,4% roztoku chloridu sodného nebo se za podobných podmínek podrobí diafiltraci. Dialyzovaný roztok se naředí na koncentraci 5 ± 0,5 % bílkovin a přidá se na každých 100 ml 1 až.5 g maltózy, 1 až 1,5 g glycinu a 1 až 5 g sérového albuminu. Provede se konečná kontrola, popřípadě úprava pH na hodnotu 6,4 až 7,4, roztok se sterilně zfiltruje a rozplní na požadované dávky. Celý pracovní postup se provádí při teplotách 4 až 8 °C a musí se provádět podle zásad apyrogenní práce. Z 20 g výchozího množství lyofilizovaného imunoglobulinu bylo uvedeným postupem připraveno 260 ml 5% roztoku, který vykazoval antikomplementární aktivitu 0,06 CH50/mg. Roztok byl neškodný při zkouškách na myších a morčatech a měl nezměněný obsah antistafylokokových protilátek. Roztok byl stabilní při zahřívání na 58 ’C po dobu 4 hodin.Example 1 g of lyophilized immunoglobulin suitable for the preparation of an intramuscular preparation having at least 95% electrophoretic purity is dissolved in 200 ml of distilled pyrogen-free water and the pH of the solution is adjusted to 7.2 ± 0.2 with 0.2 M sodium hydroxide solution. or 0.2 M acetic acid. To the solution was added 40 ml of a thick calcium phosphate sediment prepared according to the following procedure. The resulting suspension was stirred for 60 minutes, then the phosphate was separated by filtration through K5 and EKS2 type layers. Next, 23 to 38 mg of 1,4-dithio-DL-threitol are added for every 100 ml of filtrate, and after stirring for 30 minutes, 55 to 100 mg of iodoacetamide are added. The solution was stirred for another 60 minutes. The reduced and alkylated immunoglobulin solution is then dialyzed three times repeatedly against a 20-fold volume of 0.2 to 0.4% sodium chloride solution or diafiltered under similar conditions. The dialyzed solution is diluted to a concentration of 5 ± 0.5% protein and added to each 100 ml of 1 to 5 g of maltose, 1 to 1.5 g of glycine and 1 to 5 g of serum albumin. A final check is performed, or the pH is adjusted to 6.4 to 7.4, the solution is sterile filtered and filled to the required doses. The entire procedure is performed at temperatures of 4 to 8 ° C and must be performed according to the principles of pyrogen-free operation. From 20 g of the starting amount of lyophilized immunoglobulin, 260 ml of a 5% solution having an anticomplementary activity of 0.06 CH 50 / mg was prepared according to the above procedure. The solution was harmless when tested in mice and guinea pigs and had unchanged antistaphylococcal antibody content. The solution was stable when heated to 58 ° C for 4 hours.
Příklad 2 ‘Example 2 ‘
250 ml 3 až 8% roztoku imunoglobulinu, který vznikl rozpuštěním sedimentu bílkovin při etanolové francionaci a vykazuje nejméně 95% elektroforetickou čistotu, se přefiltruje přes filtrační vrstvu typu ΕΚ. K filtrátu se přidá 40 ml hustého sedimentu fosforečnanu vápenatého připraveného podle dále uvedeného postupu. Sorpce na fosforečnan vápenatý, redukce a alkylace, dialyza, diafiltrace a složení stabilizátoru je stejné jako v příkladě 1. Pokud po dialýze je koncentrace bílkovin nižší, roztok se zahustí ultrafiltrací na požadovanou koncentraci. Sterilně zfiltrovaný roztok se rozplní do požadovaných dávek a usuší lyofilizací.250 ml of a 3 to 8% solution of immunoglobulin, which is formed by dissolving the protein sediment in ethanol franking and has at least 95% electrophoretic purity, is filtered through a ΕΚ type filter pad. To the filtrate was added 40 ml of a thick calcium phosphate sediment prepared according to the following procedure. Calcium phosphate sorption, reduction and alkylation, dialysis, diafiltration and stabilizer composition are the same as in Example 1. If the protein concentration is lower after dialysis, the solution is concentrated by ultrafiltration to the desired concentration. The sterile filtered solution is filled into the required doses and dried by lyophilization.
Příprava fosforečnanu vápenatého:Preparation of calcium phosphate:
Fosforečnan vápenatý se připraví pozvolným směšováním 0,2M roztoku chloridu vápenatého a 0,2M středního fosforečnanu sodného v ekvimolárním poměru za stálého míchání. Vzniklá suspenze se po ukončení srážení ještě míchá 20 až 30 minut a potom se promývá dekantací s destilovanou vodou tak dlouho, pokud roztok vykazuje reakci na přítomnost vápníkových nebo fosforečnanových iontů. Sraženina se ponechá sedimentovat při +4'°C po dobu 16 až 24 hodin, vodná fáze se oddělí a sediment se během dalších 24 hodin užije k sorpci nebo se vysterilizuje autoklávováním. Celý postup práce musí být proveden podle zásad platných pro apyrogenní práci.Calcium phosphate is prepared by slowly mixing a 0.2M solution of calcium chloride and 0.2M medium sodium phosphate in an equimolar ratio with constant stirring. The resulting suspension is stirred for a further 20 to 30 minutes after precipitation and then washed by decantation with distilled water until the solution reacts with the presence of calcium or phosphate ions. The precipitate is allowed to settle at + 4 ° C for 16 to 24 hours, the aqueous phase is separated and the sediment is used for sorption or autoclaved for a further 24 hours. The whole work procedure must be performed according to the principles valid for pyrogen-free work.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS32388A CS277564B6 (en) | 1988-01-18 | 1988-01-18 | Method of preparing modified immunoglobuline preparation with low anti-complementar activity |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS32388A CS277564B6 (en) | 1988-01-18 | 1988-01-18 | Method of preparing modified immunoglobuline preparation with low anti-complementar activity |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS8800323A1 CS8800323A1 (en) | 1990-08-14 |
CS277564B6 true CS277564B6 (en) | 1993-03-17 |
Family
ID=5335149
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS32388A CS277564B6 (en) | 1988-01-18 | 1988-01-18 | Method of preparing modified immunoglobuline preparation with low anti-complementar activity |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CS (1) | CS277564B6 (en) |
-
1988
- 1988-01-18 CS CS32388A patent/CS277564B6/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CS8800323A1 (en) | 1990-08-14 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP0073371B1 (en) | Intravenously injectable immune serum globulin and method of preparing same | |
JP6612186B2 (en) | Antibody preparation | |
EP0037078B1 (en) | Process for heat treatment of aqueous solution containing human blood coagulation factor xiii | |
DE2801123C2 (en) | Process for the production of a serum protein preparation which can be administered intravenously | |
US20030143222A1 (en) | Method of producing igg | |
AU2001273907A1 (en) | A method of producing IgG | |
US5132406A (en) | Method of producing immunoglobulin preparations for intravenous injection | |
US3916026A (en) | Method for the preparation of gamma-globulin suitable for intravenous use | |
US4199450A (en) | Process of separating from an aqueous medium a protein or a morphologically organized unit by liquid exclusion chromatography | |
JPH06321994A (en) | Antithrombin preparation and method of its preparation | |
US4322403A (en) | Method for the preparation of an immune globulin solution suitable for intravenous use | |
AU709608B2 (en) | Preparation of virally inactivated intravenously injectable immune serum globulin | |
EP0253313B1 (en) | Process for heat treating chemically unmodified gamma-globulin | |
JPS59227827A (en) | Malaria parasite-derived sugar chain-related antigen and its production method | |
CS277564B6 (en) | Method of preparing modified immunoglobuline preparation with low anti-complementar activity | |
EP0234405A2 (en) | Use of an immunoglobulin-containing composition in the prophylaxis and therapy of AIDS of human | |
DE19600939C1 (en) | Procedure for the separation of IgG and IgA | |
JPH0720874B2 (en) | Biochemical agent and method for producing the same | |
DE2014957C2 (en) | Process for purifying proteins from blood serum or plasma | |
JP4331798B2 (en) | Allergen prescription | |
JP4003235B2 (en) | Method for producing intravenous immunoglobulin preparation | |
JPH0723319B2 (en) | Method for removing blood group antibodies from blood products | |
JPS6237009B2 (en) | ||
JPH07103045B2 (en) | Method for heat treatment of non-chemically modified γ-globulin | |
JPS5872526A (en) | Method for producing monochrome HBS antibody |