CS272934B1 - Method of hind ii and hind iii enzymes purifications for genic handlings - Google Patents
Method of hind ii and hind iii enzymes purifications for genic handlings Download PDFInfo
- Publication number
- CS272934B1 CS272934B1 CS69789A CS69789A CS272934B1 CS 272934 B1 CS272934 B1 CS 272934B1 CS 69789 A CS69789 A CS 69789A CS 69789 A CS69789 A CS 69789A CS 272934 B1 CS272934 B1 CS 272934B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- hind
- cellulose
- hind iii
- column
- columns
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Description
(57) Způsob purifikace restrikčních endonukleas Hind II a Hind III pomocí sloupcové kapalinové chromatografie tak, že se obě aktivity dělí na kolonách fosfocelulosy nebo Blue-celulosy nebo heparin-celulosy, s výhodou kombinacemi těchto kolon a popřípadě s kolonou OEAE-celulosy, čímž se docílí vyšší účinnosti dělení než na samotné koloně DEAEcelulosy.(57) A method of purifying restriction endonucleases Hind II and Hind III by column liquid chromatography such that both activities are separated on phosphocellulose or blue-cellulose or heparin-cellulose columns, preferably by a combination of these columns and optionally an OEAE-cellulose column, thereby achieves a higher separation efficiency than on DEAEcellulose alone.
CS 272934 BlCS 272934 Bl
CS 272 934 BlCS 272 934 Bl
Vynález se ťýká využití sorbentů Blue-celulosy, heparin-celulosy a fosfocelulosy, ‘případně v kombinaci s DEAE-celulosou při puriřikaci enzymů restrikčních endonukleáz Hind II a Hind III z kmene Haemophilus'influenzae Rd.The invention relates to the use of sorbents of Blue-cellulose, heparin-cellulose and phosphocellulose, optionally in combination with DEAE-cellulose in the purification of restriction endonuclease enzymes Hind II and Hind III from Haemophilus influenzae Rd.
Aktivity obou enzymů se nacházejí v kmeni společně. Pro jejich využití v molekulární biologii je důležité co nejlepší rozdělení obou aktivit. Obecný způsob purifikace enzymů využívá kroků jako desintegrace buněk, centrifugace a sloupcová kapalinová chromatografie.The activities of both enzymes are found in the strain together. For their use in molecular biology, it is important to best divide both activities. The general method of enzyme purification utilizes steps such as cell disintegration, centrifugation, and column chromatography.
K dělení obou aktivit se používá v publikovaných pracech výhradně kolona DEAE celulosy (např. Old, Murray, Boises, 3. Mol. Biol. 92, p. 33, 1975). Jiné purifikační kroky slouží k oddělení nespecifických nečistot, nikoliv k dělení obou aktivit. Na většinu sorbentů se totiž vážou oba enzymy přibližně stejně silně a neumožní efektivní rozdělení. Za vhodných podmínek se na koloně DEAE-celulosy zachytí jen enzym Hind II a enzym Hind III proteče.Only the DEAE cellulose column (eg Old, Murray, Boises, 3rd Mol. Biol. 92, p. 33, 1975) is used to separate both activities in the published works. Other purification steps serve to separate non-specific impurities, not to separate both activities. Indeed, most sorbents bind both enzymes approximately equally strongly and do not allow efficient separation. Under suitable conditions, only the Hind II enzyme and the Hind III enzyme are collected on a DEAE-cellulose column.
Hind III je zachycen další kolonou, např. fosfocelulosou, která ale neodstraní zbytky aktivity Hind II kontaminující Hind III. Enzymy jsou potom vymyty gradientem iontové síly a převedeny do vhodného skladovacího roztoku. Takto připravený enzym vyhovuje pro řadu prací, ale v některých případech, kdy je třeba použít nadbytek enzymu, jsou i malé kontaminace druhou aktivitou na závadu. Předmět vynálezu řeší tento problém tak, že používá pro dělení aktivit další nové kolony.Hind III is captured by another column, such as phosphocellulose, but which does not remove Hind II activity residues contaminating Hind III. The enzymes are then eluted with an ionic strength gradient and transferred to a suitable storage solution. The enzyme prepared in this way is suitable for a number of applications, but in some cases where excess enzyme needs to be used, even minor contamination is a second activity of defect. The present invention solves this problem by using other new columns to divide the activities.
Nový postup využívá kromě DEAE-celulosy těchto sorbentů:In addition to DEAE-cellulose, the new process uses the following sorbents:
Fosfocelulosa: Obě aktivity se eluují blízko sebe, což lze využít pro předčištění, ale nelze využít pro zbavení se stop druhé aktivity.Phosphocellulose: Both activities elute close to each other, which can be used for pretreatment but cannot be used to get rid of traces of the other activity.
Blue-celulosa: Zachytí většinu Hind III, nezachytí se Hind II.Blue-cellulose: Captures most of Hind III, does not capture Hind II.
Heparin-celulosa: Zachytl Hind II a malou část Hind III, většina Hind III se nezachytí. Při eluci se stopy Hind III uvolní dříve a nekontaminují Hind II.Heparin-cellulose: Captured Hind II and a small portion of Hind III, most Hind III do not capture. On elution, Hind III traces are released earlier and do not contaminate Hind II.
Izolační roztoky jsou obvykle roztoky fosforečnanu draselného s koncentrací kolem 10 mM nebo Trisu s koncentrací kolem 20 mM . Dále obsahují obvyklé ImM EDTA a7 mM 2-merkaptoetanol. Koncentrace NaCl je proměnlivá, při adsorpci enzymu na kolonu se 'pohybuje v rozmezí 0 až 0,1 M a na konci gradientu v rozmezí 0,5 až 1,0 M. pH roztoků se pohybuje v rozmezí 7 až 8. Tyto podmínky lze měnit v poměrně širokém rozmezí. Skladovací roztok obsahuje navíc 50 procent glycerolu. Objem gradientu bývá asi desetinásobek objemu kolony a průtok bývá asi půl objemu kolony za hodinu.Isolation solutions are typically potassium phosphate solutions at a concentration of about 10 mM or Tris at a concentration of about 20 mM. They also contain conventional 1M EDTA and 7 mM 2-mercaptoethanol. The NaCl concentration is variable, with the adsorption of the enzyme on the column being in the range of 0 to 0.1 M and at the end of the gradient in the range of 0.5 to 1.0 M. The pH of the solutions is in the range of 7 to 8. These conditions can be varied. over a relatively wide range. The storage solution additionally contains 50 percent glycerol. The volume of the gradient is about 10 times the column volume and the flow rate is about half the column volume per hour.
Příklad 1Example 1
Z 50 g buněčné pasty (Haemophilus influenzae Rd) bylo připraveno 200 ml buněčného extraktu. Z něho byly odstraněny nukleové kyseliny srážením l,3procentním streptomycinsulfátem a oddělena frakce proteinů mezi 50 a 70 procenty nasycení síranem amonným. Tato síranová frakce byla dialyzována proti izolačnímu pufru a nanesena na kolonu fosfocelulosy (200 ml). Enzymové aktivity byly eluovány gradientem NaCl a spojily se frakce s převládající aktivitou Hind II a Hind III odděleně. Spojené frakce Hind III byly naneseny na kolonu DEAE-celulosy (BOml). Tam se zachytil Hind II, ale Hind III se nezachytil. Proteklý roztok s Hind III byl nanesen na kolonu Blue-celulosy, kde se zachytil Hind III a poslední stopy Hind II se nezachytily. Enzym Hind III byl eluován gradientem NaCl a přěVéden do skladovacího roztoku. Spojené frakce Hind II byly naneseny na tutéž kolonu DEAE-celulosy a zbytky Hind III se nezachytily. Hind II byl eluován gradientem NaCl a nanesen na kolonu heparin-celulosy (40 ml). Hind II zbavený stop Hind III byl eluován gradientem NaCl a převeden do skladovacího roztoku. Oba enzymy je možno dále čistit na dalších kolonách, např. na hydroxylapatitu.200 ml of cell extract was prepared from 50 g cell paste (Haemophilus influenzae Rd). Nucleic acids were removed from it by precipitation with 1.3% streptomycin sulfate and the protein fraction separated between 50 and 70 percent saturation with ammonium sulfate. This sulfate fraction was dialyzed against the isolation buffer and loaded onto a phosphocellulose column (200 mL). Enzyme activities were eluted with a NaCl gradient and the fractions with predominant Hind II and Hind III activity were pooled separately. The pooled Hind III fractions were loaded onto a DEAE-cellulose column (BOml). There captured Hind II, but Hind III did not. The run-through solution with Hind III was loaded onto a Blue-cellulose column where Hind III was collected and the last traces of Hind II were not captured. The Hind III enzyme was eluted with a NaCl gradient and transferred to a storage solution. Hind II pooled fractions were loaded onto the same DEAE-cellulose column and Hind III residues were not collected. Hind II was eluted with a NaCl gradient and loaded onto a heparin-cellulose column (40 mL). Hind III-free Hind III was eluted with a NaCl gradient and transferred to the storage solution. Both enzymes can be further purified on other columns, e.g., hydroxylapatite.
Příklad 2Example 2
200 ml buněčného extraktu z 50 g bakterií bylo naneseno na kolonu fosfocelulosy (200 ml) a enzymové aktivity byly eluovány gradientem NaCl. Spojily se frakce s převládající aktivitou Hind II a Hind III odděleně. Spojené frakce Hind III byly naneseny na kolonu Blue-celuCS 272 934 Bl t200 ml cell extract of 50 g bacteria was loaded onto a phosphocellulose column (200 ml) and the enzyme activities were eluted with a NaCl gradient. Fractions with predominant Hind II and Hind III activity were pooled separately. Hind III pooled fractions were loaded onto a Blue-cell CS 272 934 B1 t column
«?«?
losy (60 ml), kde se zachytil Hind III, ale Hind II protekl. Tento roztok i spojené frakce s Hind II byly naneseny na kolonu heparin-celulosy (60 ml). Oba enzymy na obou kolonách by ly eluovány gradienty NaCl a převedeny do skladovacího roztoku.lots (60 ml) where Hind III was captured but Hind II flowed. Both the solution and the combined Hind II fractions were loaded onto a heparin-cellulose column (60 mL). Both enzymes on both columns were eluted with NaCl gradients and transferred to storage solution.
Příklad 3Example 3
Síranová frakce, podle příkladu 1, byla nanesena na kolonu Blue-celulosy (100 ml) a za ní připojenou kolonu heparin-celulosy (100 ml). Hind III se zachytil na první koloně a Hind II na druhé. Oba enzymy na obou kolonách byly eluovány gradienty NaCl a převedeny do skladovacího toztoku.The sulphate fraction of Example 1 was loaded onto a Blue cellulose column (100 mL) followed by a heparin cellulose column (100 mL). Hind III caught on the first column and Hind II on the second. Both enzymes on both columns were eluted with NaCl gradients and transferred to storage flow.
Příklad 4Example 4
Buněčný extrakt byl nanesen na kolonu Blue-celulosy (100 ml). Hind II se nezachytil a byl v přeteklém roztoku. Hind III byl eluován gradientem NaCl. Oba enzymy byly převedeny do skladovacího roztoku. Oba enzymy je možno přečistit na dalších kolonách.The cell extract was loaded onto a Blue cellulose column (100 mL). Hind II did not get caught and was in overflowing solution. Hind III was eluted with a NaCl gradient. Both enzymes were transferred to storage solution. Both enzymes can be purified on additional columns.
Předchozí příklady provedení způsob podle vynálezu dokládají, ale neomezují.The foregoing examples illustrate but do not limit the method of the invention.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS69789A CS272934B1 (en) | 1989-02-01 | 1989-02-01 | Method of hind ii and hind iii enzymes purifications for genic handlings |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS69789A CS272934B1 (en) | 1989-02-01 | 1989-02-01 | Method of hind ii and hind iii enzymes purifications for genic handlings |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS69789A1 CS69789A1 (en) | 1990-06-13 |
CS272934B1 true CS272934B1 (en) | 1991-02-12 |
Family
ID=5339562
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS69789A CS272934B1 (en) | 1989-02-01 | 1989-02-01 | Method of hind ii and hind iii enzymes purifications for genic handlings |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CS (1) | CS272934B1 (en) |
-
1989
- 1989-02-01 CS CS69789A patent/CS272934B1/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CS69789A1 (en) | 1990-06-13 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Doonan | General Strategies | |
Ogasawara et al. | Isozymes of rat AMP deaminase | |
CA2469815A1 (en) | Methods for purifying protein | |
DE68915675D1 (en) | Process for the purification of vitamin K-dependent proteins. | |
Porath | Fractionation of polypeptides and proteins on dextran gels | |
Levine et al. | Immuno-electrophoretic and chemical analyses of human parotid saliva | |
Scopes | Multiple enzyme purifications from muscle extracts by using affinity-elution-chromatographic procedures | |
Bruton et al. | The binding of aminoacyl-tRNA synthetases to triazine dye conjugates | |
Hotta et al. | Isolation and properties of a new type of sialopolysaccharide-protein complex from the jelly coat of sea urchin eggs | |
JPH0279995A (en) | Enzymatic purification method | |
Børresen et al. | Purification and characterisation of tyrosine decar☐ ylase and aromatic-l-amino-acid decar☐ ylase | |
EP0733104B1 (en) | Purification of vitamin-k dependent proteins by membrane chromatography | |
JPH03501085A (en) | chemical process | |
CS272934B1 (en) | Method of hind ii and hind iii enzymes purifications for genic handlings | |
ATE166062T1 (en) | METHOD FOR PURIFYING THE BIG-ENDOTHELIN PROTEIN | |
Grant et al. | Optimisation of Conditions for the Affinity Chromatography of Human Enterokinase on Immobilised p‐Aminobenzamidine: Improvement of the Preparative Procedure by Inclusion of Negative Affinity Chromatography with Glycylglycyl‐aniline | |
EP0310719B1 (en) | Method for purification of antibodies | |
DE3578181D1 (en) | METHOD FOR CLEANING GAMMA INTERFERON. | |
US4841024A (en) | Purification of antibodies | |
Baran et al. | Cell sorting using a universally applicable affinity chromatography matrix: solid-phase anti-fluorescein isothiocyanate antibody | |
Ninfali et al. | Goat immunoglobulin purification on phosphocellulose and DEAE Affi-Gel blue | |
Habeeb | A study of the soluble antigens of Clostridium perfringens type D | |
US4308204A (en) | Process for preparing the third component of the complement from human blood plasma | |
Mannhalter | Purification of plasma protein | |
Schutyser et al. | The isolation of proteins from whey with a new strongly acidic silica-based ion exchanger |