CS271570B1 - Alpha amylace producing strain streptomyces liviidans as 28 - Google Patents
Alpha amylace producing strain streptomyces liviidans as 28 Download PDFInfo
- Publication number
- CS271570B1 CS271570B1 CS878303A CS830387A CS271570B1 CS 271570 B1 CS271570 B1 CS 271570B1 CS 878303 A CS878303 A CS 878303A CS 830387 A CS830387 A CS 830387A CS 271570 B1 CS271570 B1 CS 271570B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- strain
- amylase
- alpha
- liviidans
- amylace
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Description
Vynález se týká kmene Streptomycez Lividans AS 28 produkujícího alfa amylázu.The invention relates to a strain of Streptomycez Lividans AS 28 producing alpha amylase.
Tento nový produkční průmyslový bakteriální kmen se vyznačuje vysokou produkcí exocelulárniho enzymu^/-amylázy.This new production industrial bacterial strain is characterized by high production of the exocellular β-amylase enzyme.
Streptomycety produkují řadu extracelulárních enzymů (Williame et al., □. Gen Microbiol. 129 : 1743, 1983). Znamená to, že podobně Jako rod Bacillus mají vysoce účinný systém exportu proteinů z buňky. Vznikla proto snaha spojit dlouholetou zkušenost e fermentaci streptomycet, získanou při výrobě antibiotik, 8 produkcí některých průmyelově důležitých enzymů. Genovou manipulaci byly připraveny kmeny etreptomycet sekretujicí enzymy tyrozinázu /Katz et al·, □. Gen. Microbiol. 129 í 2703, 1983/, endoglykosidézu H /Robbine et al·, □ . Biol. Chem· 256: 10640, 1981/ a agarázu, která hydrolyzuje agarový či agaro8ový polymer /Kendall a Cullum Gene 29: 315, 1984/. V roce 1986 McKillop et al· /FEMS Microbiol· Lett. 36: 3, 1986/ uepěšně klonovali -amylázu ze Streptomyces,hydroscopiue v Streptomaces lividane· Příprava -amylázu superprodukujících streptomycet má velký význam pro přípravu cukerného sirupu o vysokém obsahu maltosy, který je žádanou surovinou pro potravinářský a kvasný průmysl.Streptomyces produce a number of extracellular enzymes (Williame et al., Gen Gen Microbiol. 129: 1743, 1983). This means that, like the genus Bacillus, they have a highly efficient system of protein export from the cell. An effort has therefore been made to combine the long-term experience in the fermentation of streptomycetes obtained in the production of antibiotics by the production of some important enzymes of industrial interest. Gene manipulation was prepared by etreptomycetes secreting tyrosinase enzymes / Katz et al., ·. Gene. Microbiol. 129, 2703 (1983), endoglycosidesis H (Robbine et al., Vol. Biol. Chem., 256: 10640, 1981) and an agarase which hydrolyzes an agar or agarose polymer (Kendall and Cullum Gene 29: 315, 1984). In 1986 McKillop et al. / FEMS Microbiol. Lett. 36: 3, 1986 / cloned rapidly - Streptomyces amylase, hydroscopiue in Streptomaces lividane · Preparation of Streptomyces superproducing amylase is of great importance for the preparation of high maltose sugar syrup, which is a desired raw material for the food and fermentation industry.
Nový kmen Streptomyces lividans AS28 byl získán vnesením nově konstruovaného mnohokopiového plasmidu pAS28, kódujícího syntézu^/,-amylázy, do kmene Streptomyces lividans TK24· Genetické informace pro syntézu^/-amylázy byla nejprve vyčleněna z chromozomu Streptomyces limosus, kde Je přítomna v Jedné kopii a zmnožena klonováním v mnohokopiovém plasmidovóm vektoru pI0622. Rekombinovaný plaemid pSA28 je předmětem čs. АО č· 269 939. Charakteristickým znakem kmene Streptomyces lividane AS28 Je schopnost růstu na škrobnatých substrátech doplněných organickým a anorganickým dusíkem za současné produkce X-amylázy. Konečným produktem degradace škrobu Jsou oligoeacharidy· Produkční schopnosti kmene zůstávají plně zachovány Jak při submerzni vsádkovó, tak i kontinuální kultivaci· Při submerzni vsádkovó kultivaci 8 2 % škrobu Jako substrátu, kmen Streptomyces lividans AS28 produkuje 4 500 až 5 000 jednotekoó-amylázy (měřeno Spofa•amylázovým testem) na ml média·A new strain of Streptomyces lividans AS28 was obtained by introducing the newly constructed multicopy plasmid pAS28, coding for the synthesis of / / - amylase, into the Streptomyces lividans TK24 strain. and multiplied by cloning in the multi-copy plasmid vector pI0622. The recombinant plasmid pSA28 is the subject of U.S. Pat. АО No. 269 939. Characteristic of the strain Streptomyces lividane AS28 It is the ability to grow on starchy substrates supplemented with organic and inorganic nitrogen while producing X-amylase. The end product of starch degradation Oligoeacharides · Production capacity of the strain remains fully maintained in both submerged batch and continuous cultivation · Submerged batch cultivation 8 2% starch As a substrate, the Streptomyces lividans AS28 strain produces 4,500 to 5,000 units-amylase (measured by Spofa) • amylase test) per ml medium ·
Způsob přípravy monohokopiového plasmidu pAS28, který kóduje syntézu^-amylázy ve etreptomycetách;A process for the preparation of the monohocopium plasmid pAS28 which encodes the synthesis of β-amylase in etreptomycetes;
Z kmene Streoptomycee limosus, producenta pZ-amylázy, byla izolována chromosomová ONA. Chromosomová ONA byla parciálně štěpena reetrikční endonukleázou Sau3AI nebo Mbol a získané reetrikční fragmenty byly rozděleny podle molekulové hmotnosti centrifugací v sacharozovém gradientu· Fragmenty o velikosti 2 až 4 kb byly použity pro ligaci in vitro do mnohokopiovóho plasmidového vektoru pI0622. Klonováním v jediném zásahovém místě plasmidového vektoru pro reetrikční endonukleázu BglII, došlo ke zrušení syntézy tyrozinázy kódované tímto plaemidem a plasmidový vektor obsahující insertované restrikční fragmenty chOfreorové DNA mohl.být po transformaci do recipientniho kmene Streptomycee lividans TK24 indentifikován v thioetrepton resistentnich, melanin neprodukujicích buňkách· Rekombinovaný plasmid pAS28 Je složen z plasmidového vektoru pI0622 (Kieser et al., MolGen. Genet. 185: 223, 1982) s ineertovaným Sau3Al nestříkáním fragmentem o velikosti 3 kb, na kterém Je lokalizován gen pro produkcieZ-amylázy. Reetrikční fragment obsahuje i zásahové místo pro reetrikční endonukleázu -PvuII, Sstl a EcoRI· Reetrikční endonukleázy KpnI a EcoRI jsou situovány mimo oblast kódující produkci-amylázy. Zásahové místo pro raetrikčni endonukleázu Sstl Je lokalizováno v oblasti kódující syntézu ©ó -amylázy a inserce do Sstl zásahového místa vede ke ztrátě produkceoC-aniylázy.Chromosomal ONA was isolated from a strain of β-amylase of Streoptomycee limosus. Chromosome ONA was partially digested with Sau3AI or Mbol reetric endonuclease and the obtained reetric fragments were separated by molecular weight by sucrose gradient centrifugation. 2-4 kb fragments were used for ligation in vitro into the multicopy plasmid vector pI0622. By cloning at a single site of the plasmid vector for the Retric endonuclease BglII, the synthesis of the tyrosinase encoded by this plasmid was abolished and the plasmid vector containing the inserted restriction fragments of chOphreor DNA could be indentified in thioetrexines after transformation into the recipient Streptomycee lividans TK24 strain. plasmid pAS28 It is composed of the plasmid vector pI0622 (Kieser et al., MolGen. Genet. 185: 223, 1982) with an inert Sau3A1 non-spray fragment of the 3 kb fragment on which the gene for Z-amylase production is located. The restriction fragment also contains an intervention site for the retetric endonuclease -PvuII, SstI and EcoRI. The restriction endonucleases KpnI and EcoRI are located outside the coding region of amylase production. Sstl Retrieving Endonuclease Reaching Site It is located in the coding region of the β-amylase synthesis, and insertion into the Sst1 intervention site results in the loss of α-α-aylase production.
a) Morfologická pozorováni(a) Morphological observations
1· Vegetativní buňky kmene Streptomyces lividans AS28 jeou Grampozitivní spojené v mnohabuňkovó mycelium.1 · Vegetative cells of Streptomyces lividans AS28 strain are Gram positive in multi-cell mycelium.
2. Na tekutých půdách kmen S. lividans AS28 vykazuje myceliární růst. Cen zřídka roste ve dvojicích.2. On liquid soils, S. lividans AS28 strain exhibits mycelial growth. Prices rarely grow in pairs.
CS 271 570 BlCS 271 570 Bl
3. Na pevných půdách je mycelium zakončeno sporami. Spory jsou termosenzitivní·3. On solid soils, the mycelium is terminated by spores. Spores are thermosensitive ·
4. Růst na pevných půdách: kolonie na agaru jsou okrouhlé, světle žluté či bělové. Profil kolonii js pravidelný a plochý. Kolonie pevně vrůstají do živého agaru. Povrch kolonií je většinou hladký, ale může být na sušších agarech až drsný s četnými jiz- p? vámi.4. Growth on solid soils: colonies on agar are round, pale yellow or whitish. The colony profile is regular and flat. Colonies grow firmly into living agar. The surface of the colonies is mostly smooth, but can it be rough on drier agar with numerous scars? you.
b) Fyziologické podmínky rb) Physiological conditions r
1. Kmen roste striktně aerobně.1. The strain grows strictly aerobically.
2. Teplotní optimum kmene je mezi 25 až 34 °C. Teplotní maximum je 37 až 45 °C.2. The temperature optimum of the batch is between 25 and 34 ° C. The temperature maximum is 37 to 45 ° C.
3. Aktivní růst probíhá při pH 5,5 až 8,0.3. Active growth takes place at pH 5.5 to 8.0.
4. Na Škrobnatých substrátech tvoři kmen značné množství sxocelulárniho enzymu^-amylázy. Konečným produktem štěpeni škrobu produkovanou^ó-amylázou jsou oligosacharidy. Produkované $6 -amyláza má pH optimum 8,0 a teplotní optimum 37 °C.4. The starch forms a significant amount of sxocellular γ-amylase enzyme on starch substrates. Oligosaccharides are the final product of starch cleavage produced by β-amylase. The $ 6-amylase produced has a pH optimum of 8.0 and a temperature optimum of 37 ° C.
5. Glukóza reprimuje tvorbu^č-amylázy. ·5. Glucose represses N-amylase formation. ·
c) Genetická charakteristikac) Genetic characteristics
1. Kmen nemá detekovanou restrikční aktivitu v podmínkách používaných ke genetickým přenosům.1. The strain has no detected restriction activity under conditions used for genetic transfer.
2. Kmen Streptomyces lividans AS28 se od kmene Streptomyces lividans Tl<24 odlišuje tím, že obsahuje plasmidovou DNA pAS28 o molekulové hmotnosti 921<b, která kóduje resistenci к thioetreptonu a produkci^Z-amylázy.2. The Streptomyces lividans AS28 strain differs from the Streptomyces lividans T1 <24 strain in that it contains plasmid DNA pAS28 having a molecular weight of 921 < b which encodes thioetrepton resistance and β-amylase production.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS878303A CS271570B1 (en) | 1987-11-19 | 1987-11-19 | Alpha amylace producing strain streptomyces liviidans as 28 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS878303A CS271570B1 (en) | 1987-11-19 | 1987-11-19 | Alpha amylace producing strain streptomyces liviidans as 28 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS830387A1 CS830387A1 (en) | 1990-02-12 |
CS271570B1 true CS271570B1 (en) | 1990-10-12 |
Family
ID=5433392
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS878303A CS271570B1 (en) | 1987-11-19 | 1987-11-19 | Alpha amylace producing strain streptomyces liviidans as 28 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CS (1) | CS271570B1 (en) |
-
1987
- 1987-11-19 CS CS878303A patent/CS271570B1/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CS830387A1 (en) | 1990-02-12 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US5731174A (en) | Process for the saccharification of starch | |
Wong et al. | Genetic organization of the cellulose synthase operon in Acetobacter xylinum. | |
Singh et al. | Production of inulinases: recent advances | |
Maiorano et al. | Microbial production of fructosyltransferases for synthesis of pre-biotics | |
Stasinopoulos et al. | Detection of two loci involved in (1→ 3)-β-glucan (curdlan) biosynthesis by Agrobacterium sp. ATCC31749, and comparative sequence analysis of the putative curdlan synthase gene | |
US4469791A (en) | Genetically engineered microorganisms for massive production of amylolytic enzymes and process for preparing same | |
Lamothe et al. | Genetic and biochemical characterization of exopolysaccharide biosynthesis by Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus | |
EP0120693A1 (en) | Maltogenic amylase enzyme product, preparation and use thereof | |
JP3557289B2 (en) | Recombinant thermostable enzyme that releases trehalose from non-reducing carbohydrates | |
US10400228B2 (en) | Truncated pullulanases, methods of production, and methods of use thereof | |
Cimini et al. | Improved fructosylated chondroitin production by kfoC overexpression in E. coli K4 | |
JP3557288B2 (en) | Recombinant thermostable enzyme that produces non-reducing carbohydrates with terminal trehalose structure from reducing starch sugars | |
EP1257638B1 (en) | Bacterial isolates of the genus klebsiella, and an isomaltulose synthase gene isolated therefrom | |
Ananthalakshmy et al. | Optimization of levan production by Zymomonas mobilis | |
EP0694063B1 (en) | An alpha-amylase from pyrococcus | |
JP3559609B2 (en) | Recombinant enzyme, its production method and use | |
JP4259169B2 (en) | Novel α-1,2-mannosidase and gene thereof, and method for producing α-mannosyl sugar compound using the enzyme | |
Kimura et al. | Molecular cloning of the β-cyclodextrin synthetase gene from an alkalophilic Bacillus and its expression in Escherichia coli and Bacillus subtilis | |
CS271570B1 (en) | Alpha amylace producing strain streptomyces liviidans as 28 | |
JP3557272B2 (en) | Recombinant enzyme, its production method and use | |
US5395927A (en) | DNA-fragment having the cyclodextrin glycosyltranferase gene | |
JPH099958A (en) | Sucrose metabolism mutant | |
Wang et al. | Expression and characterization of an α-glucosidase from Thermoanaerobacter ethanolicus JW200 with potential for industrial application | |
Kim et al. | Cloning and expression of raw-starch-digesting α-amylase gene from Bacillus circulans F-2 in Escherichia coli | |
Wasko et al. | A New Protein of ${\alpha} $-Amylase Activity from Lactococcus lactis |