CS269267B1 - Způsob přípravy celulosových materiálů s imobilizovanou cholinesterasou - Google Patents

Způsob přípravy celulosových materiálů s imobilizovanou cholinesterasou Download PDF

Info

Publication number
CS269267B1
CS269267B1 CS883559A CS355988A CS269267B1 CS 269267 B1 CS269267 B1 CS 269267B1 CS 883559 A CS883559 A CS 883559A CS 355988 A CS355988 A CS 355988A CS 269267 B1 CS269267 B1 CS 269267B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
cellulose
cholinesterase
materials
solution
enzyme
Prior art date
Application number
CS883559A
Other languages
English (en)
Other versions
CS355988A1 (en
Inventor
Ivana Ing Tusarova
Emil Doc Ing Csc Halamek
Jiri Ing Csc Kucera
Zbynek Ing Kobliha
Original Assignee
Ivana Ing Tusarova
Halamek Emil
Kucera Jiri
Zbynek Ing Kobliha
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ivana Ing Tusarova, Halamek Emil, Kucera Jiri, Zbynek Ing Kobliha filed Critical Ivana Ing Tusarova
Priority to CS883559A priority Critical patent/CS269267B1/cs
Publication of CS355988A1 publication Critical patent/CS355988A1/cs
Publication of CS269267B1 publication Critical patent/CS269267B1/cs

Links

Landscapes

  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Abstract

Řešení patří do oblasti kontroly ži-i votního prostředí, agrochemie a farmaceutické analýzy a týká se přípravy celulosových materiálů s imobilizovanou cholinesterasou, využitelných pro detekci a stanovení inhibitorů acetylcholinesterasy. Podstatou řešení je způsob přípravy celulosových materiálů s imobilizovanou cholinesterasou, který spočívá v zachycení enzymu na surových nebo bělených celulosových vláknech nebo tkanině, celulosovém filtračním papíru nebo mikrokrystalické a perlové celulose sorpcí z pufrovaného vodného roztoku enzymu, obsahujícího neionogenní tenzid pro zvýšení smáčivosti materiálů a sacharidy jako je dextran nebo sacharosa jako stabilizující přísadu sorpčně vázaného enzymu na celulosovém nosiči. Materiály připravené podle vynálezu mohou být využity při konstrukci kontinuálních detektorů, analyzátorů a reaktorů a pro důkaz a stanoveni malých množství a velmi nízkých koncentrací inhibitorů acetylcholinesterasy z vodných roztorků a extraktů, po záchytu ze vzduchu z hlediska potřeb, monitorování životního prostředí a v zemědělství.

Description

Vynález se týká způsobu přípravy materiálu na bázi celulosy s imobillzovanou cholinesterasou. Tyto filtrační absorpční celulosové materiály s imobilizovanou cholinesterasou řeší řadu problémů spojených převážně se záchytem a stanovením inhibitorů cholinesteras, sloučenin používaných v zemědělství, významných v oblasti průmyslové chemie, při kontrole vody, krmiv, potravin a životního prostředí.
Biochemická cholinesterašová reakce jako velmi citlivá a poměrně selektivní metoda je široce využívána v celé řadě modifikací a aplikací pro detekci a stanovení početného souboru inhibitorů cholinesteras /AMMON, R. - VOSS, G., Pflugers Arch. ges. Physiol., 235 (1935), s. 393; MICHEL, 0., H., J. Lab. clin. Med., 34 (1949), s. 1564/.Na cholinesterasové reakci jsou založeny různé typy technických prostředků k detekci a stanovení inhibitorů cholinesteras, počínaje komplikovanými automatickými analyzátory ovzduší a vody, přes jednodušší provedení, jako jsou trubičkové detektory až po nejjednodušší detekční průkazníkové papíry /FRANKE, S.: Lehrbuch der Militarchemie, Militarverlag DDR, díl II., Berlin 1977, s. 481/. Zásadním problémem použití filtračních nebo sorpčních materiálů včetně papíru je fixace a stabilizace enzymů. Částečným řešením tohoto problému je imobilizace cholinesterasy na nosiči chemickou vazbou. Tento způsob imobilizace je však nevýhodný, něhož je složitý, vyžaduje použití speciálního .derivatizovaného nosiče, drahého vysoce purifikovaného enzymu a je obvykle doprovázen značnou ztrátou aktivity enzymu, přičemž prodloužení exspirace vázaného enzymu není velké /BODOGA, P., BADILESCU, F., CIOBANI, O.: RO č. 82028/. Nejbližším známým řešením způsobu přípravy enzymového průkazníkového papíru je imobilizace na speciálním chromatografickém papíru s iontoměničovou funkcí ve směsi s dextranovým gelem a indikací chromogenním substrátem /DAHLGREN, E., BERGEK, S., MARTENSSON, K.: WO 85-04423/, kdy při prodloužení skladovatelnosti průkazníkových papírů ndoylo dosaženo požadované citlivosti a přitom uvedený postup vyžaduje navíc drahé a obtížně dostupné speciální materiály a chemikálie. Uvedené nedostatky jednotlivých způsobů přípravy materiálů, tj. nedostatečná fixace a stabilizace enzymu na nosiči, krátká exspirace, nízká citlivost, vysoká cena při nedostupnosti speciálních materiálů a purifikovaných enzymů a zejména pak nemožnost opakovaného a dlouhodobého měření, nebo i zpracování velkých objemů vodných vzorků v důsledku i nedostatečné mechanické odolnosti materiálu, jsou odstraněny způsobem přípravy celulosových materiálů s imobilizovanou cholinesterasou podle vynálezu.
Podstatou vynálezu je způsob přípravy celulosových materiálů s imobilizovanou cholinesterasou, který spočívá v zachycení enzymu sorpcí na vláknech celulosových nosičů, jako jsou surová nebo bělená bavlněná vlákna nebo tkanina nebo celulosový filtrační papír nebo mikrokrystalická a perlová celulosa, ponořením celulosového materiálu do pufrovaného roztoku enzymu obsahujícího neionogenní tenzid a sacharidy nebo nanesením roztoku na tenkou vrstvu celulosového materiálu.
Způsobem přípravy celulosových materiálů s imobilizovanou cholinesterasou je dosahováno nového účinku tím, že připravené filtrační a sorpční materiály je možné opakovaně a dlouhodobě používat až do ztráty hydrolytické aktivity bez nutnosti používat reaktivní materiály vyvinuté pro imobilizaci enzymů nebo speciální chromatografické materiály. Vyššího účinku je dosahováno použitím dalších celulosových materiálů vedle papíru, perlové a mikrokrystalické celulosy i bavlněné tkaniny pro imobilizaci cholinesterasy jako filtračního a sorpčního materiálu umožňujícího vysoce selektivně zachycovat i velmi nízké koncetrace inhibitorů cholinesteras z vody, vodných extraktů, roztoků zbarvených nebo zakalených a po zvlhčení celulosového materiálu i ze vzduchu, plně tak využít vysoké citlivosti jednotlivých modifikací cholinesterasové reakce včetně zařízení, reaktorů a detektorů na této reakci založených. Vyššího účinku je rovněž dosaženo v důsledku podstatně zvýšené termické stálosti, dlouhodobě při teplotách do 70°C, což potvrzuje dobu exspirace delší 5 let. Vyšší účinek se výrazně projevuje i použitím dostupných domácích velmi levných surovin, např. použití surového homogenátu
CS 269 267 Bl hovězí mozkové tkáně náhradou za vysoce purifikované a neobyčejně drahé enzymy.
Příklad 1 .
Příprava roztoku acetylchollnesterasy
Podle dalSího předpokládaného použití se hovězí mozková tkáň nucleus caudatús zhoznogenizuje v poměru 1 : 20 nebo 1 : 100 v roztoku 0,2 mol.l^· fosfátového pufru pH 7,4 obsahujícím 5 % dextranu pro infusi, 15 % sacharosy a 0,5 % Slovasolu SF-10.
Příklad 2 · .
Imobilizace acetylchollnesterasy na bavlněné tkanině .
Tkanina se na 30 minut ponoří do roztoku připraveného podle příkladu 1, po vyjmutí z roztoku se tkanina při laboratorní teplotě usuší.
Příklad 3
Imobilizace cholinesterasy na perlové celulose
Suchá perlová celulosa se vloží do roztoku připraveného rozpuštěním lyofilizované plazmové cholinesterasy v roztoku pH 8,0 obsahujícím 0,5 % Slovasolu SF-10, 5 % dextranu pro infusi a směs se 30 minut míchá. Po odfiltrování roztoku se perlová celulosa s imobilizovanou cholinesterasou suší při laboratorní teplotě.
Příklad 4
Použití bavlněné tkaniny sTimobilizovanou acetylcholinestrasou pro detekci inhibitorů cholinesteras ve vodě
Tkanina upravená podle příkladu 2 se vloží na 30 minut do analyzovaného vodného roztoku. Pak se tkanina vyjme a po 10 minutách se na bílou tkaninu přiloží na 1 minutu proužek suchého filtračního papíru nasyceného ethanolovým roztokem s obsahem 0,15 % 5,5'-dithio-bis-2-dinitrobenzoové kyseliny a 0,5 % acetylthiocholinjodidu. Po odstranění papíru se do 1 minuty tkanina zbarví žlutě, za přítomnosti inhibitorů v analyzované vodě zůstane bílá.
Příklad 5
Mez dokazatelnosti mg.l při použití bavlněné tkaniny s imobilizovanou acetylcholinesterasou podle příkladu 4 pro detekci insekticidních přípravků (bez zjištění obsahu aktivní látky) ve vodě a % inhibice acetylchollnesterasy při analýze téhož roztoku spektrofotometrickým postupem dle Ellmana /ELLMAN, G.L., COURTNEY, K.D.,ANDRES, V., FEATHERSTONE, R.M.: Biochem. Pharmacol. 7, 88-95 (1961)/.
,-1 mg.l % inhibice
Sevin 1,0 69,7
Pirimacarb 5,0 76,7
Metathion 10,0 46,5
Nuvan 6,0 79,8
Baygon 1,0 38,2
Dimefox 30,0 40,6
Příklad 6
Použití perlové celulosy s imobilizovanou cholinesterasou pro detekci inhibitorů ve vzduchu
Perlová celuldsa upravená podle příkladu 3, objemu 1 ml ve skleněné koloně se zvlhčí 1 ml vody a kolonou se prosává vzduch. Po ukončení prosávání se do uzavřené kolony vnese 1,5 ml roztorku obsahujícího 0,5 mg butyrylthiocholinjodidu a 0,005 mg 5,5' -dithio-bis-2-dinitrobenzoové kyseliny. Roztok v koloně se do 2 minut .zbarví žlutě, za přítomnosti inhibitorů v analyzovaném vzduchu zůstane bezbarvý.
CS 269 267 Bl
Vynálezu může být využito pro přípravu řady typů filtračních a sorpčních materiálů na bázi celuldsy s imobilizovanou cholinesterasou vykazující dlouhodobě hydrolytickou aktivitu vůči substrátům typu acetylcholinu a vysokou afinitu k inhibitorům acetylcholinesterasy. Tyto mohou být využity v řadě odvětví národního hospodářství, farmaceutickém a chemickém průmyslu, v zemědělství, při monitorování životního prostředí, při konstrukci kontinuálních detektorů, analyzátorů a jako náplň reaktorů biotechnických výrob.
pSedmSt vynálezu

Claims (3)

1. Způsob přípravy celulosových materiálů s imobilizovanou cholinesterasou vyznačený tím, že na celulosovém materiálu se imobilizuje cholinesterasa sorpcí z pufrovaného roztoku.
2. Způsob podle bodu 1 vyznačený tím, že k imobilizaci se použije na pH 6 až 8 pufrový vodný homogenát mozkové tkáně nebo roztok lyofilizované plazmové cholinesterasy nebo erythrocytární acetylcholinesterasy obsahující 1 až 10 % neionogenního tenzidu a 5 až 30 % sacharidů, s výhodou dextranu nebo sacharosy.
3. Způsob podle bodu 1 vyznačený tím, že k imobilizaci se použije surová nebo bělená bavlněná vlákna nebo tkanina nebo mikrokrystalická celulosa nebo perlová celulosa nebo filtrační papír.
CS883559A 1988-05-25 1988-05-25 Způsob přípravy celulosových materiálů s imobilizovanou cholinesterasou CS269267B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS883559A CS269267B1 (cs) 1988-05-25 1988-05-25 Způsob přípravy celulosových materiálů s imobilizovanou cholinesterasou

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS883559A CS269267B1 (cs) 1988-05-25 1988-05-25 Způsob přípravy celulosových materiálů s imobilizovanou cholinesterasou

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS355988A1 CS355988A1 (en) 1989-09-12
CS269267B1 true CS269267B1 (cs) 1990-04-11

Family

ID=5376029

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS883559A CS269267B1 (cs) 1988-05-25 1988-05-25 Způsob přípravy celulosových materiálů s imobilizovanou cholinesterasou

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS269267B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS355988A1 (en) 1989-09-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
La Rosa et al. Amperometric flow-through biosensor for the determination of pesticides
Cammann Bio-sensors based on ion-selective electrodes
US5118428A (en) Method to remove red blood cells from whole blood samples
US3235337A (en) Diagnostic compositions and test indicators
US4324858A (en) Stabilization of cholinesterase, detector kit using stabilized cholinesterase, and methods of making and using the same
CA2049098A1 (en) Urine testing apparatus with urinary sediment and device
JPH0252824B2 (cs)
Mattiasson et al. Enzyme thermistor assay of cholesterol, glucose, lactose and uric acid in standard solutions as well as in biological samples
Liu et al. Studies on a potentiometric urea biosensor based on an ammonia electrode and urease, immobilized on a γ-aluminum oxide matrix
Caldwell et al. Immobilization of enzymes based on hydrophobic interaction. I. Preparation and properties of a β‐amylase adsorbate
Cattaneo et al. Monitoring glutamine in animal cell cultures using a chemiluminescence fiber optic biosensor
US6465202B1 (en) Method for stabilizing aminotransferase activity in a biological fluid
CS269267B1 (cs) Způsob přípravy celulosových materiálů s imobilizovanou cholinesterasou
Kunz et al. Immobilized glucose oxidase used to measure glucose in serum
Kessler et al. Utilization of exogenous sugars for biosynthesis of carbohydrates in germinating pollen
Cardoso et al. The development of an immobilized enzyme reactor containing glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase from Trypanosoma cruzi: the effect of species' specific differences on the immobilization
US2850359A (en) Testing unit and method of testing for glucose
US5015572A (en) Apparatus for determining a proteolytic or esterolytic substance and method for determining a proteolytic or esterolytic substance using a layered apparatus
Mattiasson et al. Enzyme thermistor analysis of penicillin in standard solutions and in fermentation broth
JP2681635B2 (ja) 分析感度及び分析精度を向上させる方法
Yamato et al. Preparation and characterization of immobilized acid phosphatase used for an enzyme reactor: evaluation in flow-injection analysis and pre-column liquid chromatography
SK281395B6 (sk) Biosenzor, spôsob prípravy zóny s imobilizovanou cholínesterázou, spôsob detekcie a rozlíšenia inhibítorov cholínesteráz biosenzorom
Olson et al. Studies on the mechanism of action of ethylene. I. The effects of ethylene on mitochondria prepared from bean cotyledons
CN101691566B (zh) 果糖二磷酸钠(fdp)含量测定专用固体复合酶(ald、tim、gdh)试剂
JP3378390B2 (ja) 試験用具