CS268012B1 - Způsob konzervace luminiscentnich baktérii lyofilizaci - Google Patents

Způsob konzervace luminiscentnich baktérii lyofilizaci Download PDF

Info

Publication number
CS268012B1
CS268012B1 CS874608A CS460887A CS268012B1 CS 268012 B1 CS268012 B1 CS 268012B1 CS 874608 A CS874608 A CS 874608A CS 460887 A CS460887 A CS 460887A CS 268012 B1 CS268012 B1 CS 268012B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
lyophilization
nacl
luminescent bacteria
weight
luminescent
Prior art date
Application number
CS874608A
Other languages
English (en)
Other versions
CS460887A1 (en
Inventor
Miroslava Rndr Csc Opekarova
Ivan Rndr Csc Janda
Original Assignee
Miroslava Rndr Csc Opekarova
Ivan Rndr Csc Janda
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Miroslava Rndr Csc Opekarova, Ivan Rndr Csc Janda filed Critical Miroslava Rndr Csc Opekarova
Priority to CS874608A priority Critical patent/CS268012B1/cs
Publication of CS460887A1 publication Critical patent/CS460887A1/cs
Publication of CS268012B1 publication Critical patent/CS268012B1/cs

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Konzervace luminiscentnich baktérií zahrnuje lyofilizaci v kryoprotektivnim médiu s nižší iontovou silou-(l % NaCl), které obsahuje 15 % laktosu a 5 % rozpustný škrob. Oehydratované kultury se uchovávají v evakuovaném stavu v chladu a před použitím se rekonstituují přídavkem původního objemu 2 % NaCl.

Description

Vynález se týká způscrbu koncentrace luminiscentních bakterii lyofilizaci pro potřeby mikrobiálního testu toxicity nebo dlouhodobého uchováváni ve sbírkách.
Některé mořské baktérie (např. z rodů Photobacterium a Vibrip) se vyznačují intenzívní bioluminiscencí, tj. produkcí viditelného světla. S bioluminiscencí interferují nejrůznějši toxické látky, např. ionty těžkých kovů, pesticidy, organická rozpouštědla, syntetická hnojivá aj., které mohou z vnějšího prostředí pronikat dovnitř buněk l.uminiscentních bakterií. Ze změn intenzity bioluminiscence je možno usuzovat na toxicitu neznámých vzorků, popřípadě u známých toxikantů stanovit jejich koncentraci. Rutinně se mikrobiální te t toxicity provádí pomoci luminiscenčního fotometru a speciálně připravených dehydratovaných luminiscentních baktérií, jejichž luminiscence se měří v přítomnosti a nepřítomnosti potenciálního toxikantů (tzv. Microtox test: Bulich A. A., Process Biochem. 17, 45 až 47, 1982). Metoda k je vhodná jako primární screening při kontrole čistoty životního prostředí.
V literatuře byly popsány metody, jimiž je údajně možné buňky fotobaktérií lyofilizovat tak, aby nejen přežily ve vysušeném stavu několik měsíců, ale byly i okamžitě po rehydrataci schopné bioluminiscence. Podle jedné metody (Nealson Κ. H., Methoda Enzymol. 57, 153 až 166, 1978k) se buňky luminiscentních baktérií resuspendují v médiu s nižší iontovou silou, která obsahuje cca 0,75% hmot. NaCl, další anorganické solí, 0,5 % hmot, pepton a 0,5 % fjmot. kvasničný extrakt, zmrazí se a lyofilizují. Druhý způsob (patentový spis NSR č. 28 41 8964) používá před lyofilizaci suspendováni fotobakterií v 2 % hmot, roztoku NaCl obsahujícím 20 % hmot, odtučnělého mléka. '
Nevýhodou těchto metod je, že neposkytují reprodukovatelné výsledky pro široké spektrum druhů luminiscentních baktérií, zásadním nedostatkem je, že stupeň přežití a intenzita bioluminiscenzé konzervovaných buněk jsou nízké. Komerčně vyráběné konzervy fotobaktérií pro Microtax test jsou velmi drahé. V zemích RVHP nebyla technologie sériové výroby dehydratovaných fotobaktérií dosud zavedpna.
Fakt, že luminiscentní baktérie se nedají běžnými způsoby spolehlivě lyofilizovat, je také velkým problémem pro sbírky mikroorganismů. Dosud používané způsoby dlouhodobé konzervace těchto baktérií jsou bu3 nákladné (uchovávání v kapalném dusíku), nebo pracné a nepohodlné (uchovávání na agarových půdách v chladničce a časté přeočkováváni).
Tyto nevýhody odstraňuje způsob konzervace luminiscentních baktérií podle vynálezu, jehož podstatou je, že bakteriální buňky se lyofilizují v lyofilním médiu, které obsahuje jako kryoprotektivní látku laktó v koncentraci 10 až 25 % hmot, a jako látku usnadňující rehydrataci rozpustný škrob v koncentraci 1 až 10 % hmot, a před použitím se rehydratují roztokem uni-onlvaletního elektrolytu, s výhodou NaCl, jehož koncentrace před lyofilizaci je 0,8 až 1,2 % hmot., přičemž rehydratace se provádí doplněním do původního objemu přídavkem 2% roztoku NaCl. Buňky luminiscentních baktérií narostlé v kapalném médiu nebo na pevné půdě se resuspendují v lyofilním médiu s nižší koncentrací NaCl (např. 1 %), které obsahuje laktozu jako kryoprotektivní látku a šroub jako látku, jež usnadňuje pozdější rehydraci; tato suspenze se dále lyofilizuje obvyklým způsobem. Lyofilizát se uloží v evakuované nádobce v chladu (kolem 4 °C). Před použitím se lyofilizovaná kultura rekonstituuje do původního objemu přídavkem roztoku NaCl tak, aby výsledná koncentrace NaCl byla optimální pro bioluminiscencí (kolem 3 %). Za těchto podmínek vykazují rehydratované buňky intenzívní a stabilní bioluminiscencí, takže jich lze použít pro Microtox test. Resuscitace sbírkových kmenů se provádí obvyklým způsobem, např. suspendováním v růstovém m= médiu.
Způsob konzervace luminiscentních baktérií podle vynálezu zajištuje: 1. vysoký stupeň přežití bakteriálních buněk i po několika měsících skladováni; 2. jednoduchou skladovatelnost konzervovaných kultur, což umožňuje provádět testy toxicity v terénu;
3. snadnou rehydrataci vysušeného materiálu, která je podmínkou reprodukovatelného
CS 268012 81 a správného rozdělováni luminiskujici kultury na alikvotni části na začátku testu; 4. dostatečně silnou a stálou luminiscenci konzervovaných buněk po rehydrataci.
Dále je uveden přiklad použiti metody podle vynálezu. Je popsána jen jedna z možnosti provedeni - konkrétním hodnotám koncentraci, teploty, tlaku a jiných veličin nelze přičítat omezující význam vzhledem k ochraně vynálezu.
Přiklad 1
Luminiscentni baktérie Photobacterium lelognathi LN-la, byly kultivovány na rotační třepačce při 22 °C v živném médiu obsahujícím (g/L) tKHgPO^, 2,5 : NaCl, 30,0 : NH^Cl, 0,3 : MgSO^. 7 HgO, 0,4 : FeCl^, 0,005 : glycerol, 5,0 : kvasničný extrakt (SERVA, NSR) 1,0 : trypcon (0X010, Velká Británie) 15,0 (pH 7,1). Kultura v pozdní logaritmické fázi byla ochlazena v ledu, buňky byly odděleny centrifugací a resuspendovány v 3 % hmot. NaCl na koncentraci 1,4 x lO^^L-^. Alikvotni části (0,04 ml) byly přidávány k 0,5 mL lyofilního média obsahujícího ve 100 mL : 1 g NaCl, 23 mg pyrofosforečnanu sodného (dekahydrátů), 0,5 mg kvasničného extraktu (SERVA), 15 g laktozy a 5 g rozpustného škrobu (podle Louliera; LACHEMA).
Část této suspenze byla použita pro zjištěni intenzity bioluminiscence a koncentrace živých buněk. Počet buněk schopných tvořit kolonie byl zjištěn výsevem ředěné suspenze na Petriho misky obsahující 2 % hmot, agar v živném médiu výše uvedeného složeni a inkubací pří 22 °C. Luminiscence bakteriální suspenze byla měřena při 15 °C v luminiscenčním fotometru Microtox model 2055 (BECKMAN, USA) při nastaveni zitsku fotonásobíče 4,00 až 0 9,50 x 1 (Bulich A. A., Process Biochem. 17, 45 až 47, 1982).
Ostatní vzorky byly ihned po suspendování zmrazený ve směsi led/etylalkohol a lyofilizovány v lyofilizátoru (HETOSICC CO 52-1; HETO, Dánsko) při vakuu 7 Pa po dobu 3,5 h. Vysušené preparáty byly v evakuovaném stavu zataveny do skloněných zkumavek a uloženy při 2 až 4 °C.
Po 90 dnech skladováni v chladu byly konzervované kultury resuscitovány přidáním 0,5 mL a 2 % hmot. NaCl (takže výsledná koncentrace NaCl byla 3 %). Bioluminiscence a životaschopnost rehydratovaných buněk byla testována stejnými metodami jako před lyofilizaci. Naměřené hodnoty jsou uvedeny v tabulce.
Přiklad 2
Stejně jako v přikladu 1 bylo postupováno při konzervaci luminíscentnich baktérií Photobacterium phosphoreum MVI 02.
Přiklad 3
Stejně jako v přikladu 1 bylo postupováno při konzervaci luminiscentnich baktérií Vibrio fischer! MO-1.
Z tabulky je zřejmé, že u všech studovaných mikroorganismů je lyofilizaci podle vynálezu schopnost tvorby kolonii redukována na hodnoty, které Jsou pro sbírkové účely zcela dostatečné. Celková bioluminiscence kultur Je snížena na 1/10 až 1/4 původní hodnoty před lyofilizaci, což velmi dobře vyhovuje potřebám mikrobiálního textu toxicity.
Tabulka
Vliv konzervační metody podle vynálezu na životaschopnost a bioluminiscenci fotobaktérií
Mikroorganismus Schopnost tvorby kolonii3 Bioluminiscence8
před lyof. 90 dnů po lyof. před lyof. 90 dnů po fyof .
P. phosphoreum MVI 02 4,28 x 109 1,48 x 108 695 65
P. leiognathi LN - la 2,04 x 109 5,70 x io8 191 48 .
V. fiocheri MO-1 4,40 x 10 6,81 x 108 944 243
= přepočteno na koncentraci životaschopných buněk v 1 mL suspenze (průměr z 5 hodnot) = V arbitrácních jednotkách displeje luminometru Microtox 2055. Měřena byla vždy luminiscence 0,01 mL bakteriální suspenze v 0,5 mL 3 % hmot. NaCl (průměr ze 3 hodnot).

Claims (1)

  1. PŘEDMĚT VYNÁLEZU
    Způsob konzervace luminiscentnich bakterii lyofilisací, vyznačující se tím, že bakteriální buňky se lyofilizuji v lyofilním médiu, které obsahuje kryoprotektivní látku laktozu v koncentraci 10 až 25 % hmot a jako látku usnadňující rehydrataci rozpustný škrob v koncentraci 1 až 10 % hmot, a před použitím se rehydratují roztokem uni-univalentního elektrolytu, s výhodou NaCl, jehož koncentrace před lyofilizací je 0,8 až 1,2 % hmot., přičemž rehydratace se provádí doplněním do původního objemu přídavkem 2 % roztoku NaCl.
CS874608A 1987-06-22 1987-06-22 Způsob konzervace luminiscentnich baktérii lyofilizaci CS268012B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS874608A CS268012B1 (cs) 1987-06-22 1987-06-22 Způsob konzervace luminiscentnich baktérii lyofilizaci

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS874608A CS268012B1 (cs) 1987-06-22 1987-06-22 Způsob konzervace luminiscentnich baktérii lyofilizaci

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS460887A1 CS460887A1 (en) 1989-07-12
CS268012B1 true CS268012B1 (cs) 1990-03-14

Family

ID=5389247

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS874608A CS268012B1 (cs) 1987-06-22 1987-06-22 Způsob konzervace luminiscentnich baktérii lyofilizaci

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS268012B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS460887A1 (en) 1989-07-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Zobell et al. Filament formation by Escherichia coli at increased hydrostatic pressures
EP0226394B1 (en) Production of microbial field crop inoculants
CA1238875A (en) Method of culturing freeze-dried microorganisms
Danso et al. Survival of two strains of Rhizobium in soil
EP0755456B1 (en) A rapid microbiological test for the detection of antibacterial compounds
EP0510188A1 (en) Process for preparation of bacterial agricultural products
US4879239A (en) Method of culturing freeze-dried microorganisms and resultant preparation
JPH078769B2 (ja) 土壌線虫駆除方法およびそれに用いる線虫駆除組成物
Pesenti-Barili et al. Survival of Agrobacterium radiobacter K84 on various carriers for crown gall control
US5939282A (en) Methods of assessing viability of microbial cultures
Wang et al. Influence of agitation and aeration on growth and antibiotic production by Xenorhabdus nematophila
AU6000400A (en) Storage of microorganisms, cells and tissue
Berikten Survival of thermophilic fungi in various preservation methods: a comparative study
Sakane et al. Long-term preservation of halophilic archaebacteria and thermoacidophilic archaebacteria by liquid drying
CS268012B1 (cs) Způsob konzervace luminiscentnich baktérii lyofilizaci
Janda et al. Long‐term preservation of active luminous bacteria by lyophilization
Lowe et al. Ecological studies on coccoid bacteria in a pine forest soil—II. Growth of bacteria introduced into soil
Fennell et al. Further investigations on the preservation of mold cultures
CN117158474A (zh) 普罗旺斯类芽孢杆菌pp-2在海鲈鱼保鲜中的应用
Henis et al. Inhibition of fungal growth by bacteria during cellulose-decomposition
Jong Microbial germplasm
RU2849182C1 (ru) Питательная среда для выращивания культур грамотрицательных бактерий с повышенным сроком сохранения жизнеспособности клеток
Souza et al. Application of biopolymers to preserve'Pseudomonas fluorescens' cells and their efficiency in the biological control of'Macrophomina'sp.
Schu et al. Evaluation of different preparation parameters for the production and cryopreservation of seed cultures with recombinant Saccharomyces cerevisae
Stojanova et al. The influence of Lyophilization conditions on Yeast vitality and Fermentation activity.