CS266252B1 - Process for preparing blood mixed preparate on base igg +iga+igm - Google Patents
Process for preparing blood mixed preparate on base igg +iga+igm Download PDFInfo
- Publication number
- CS266252B1 CS266252B1 CS847200A CS720084A CS266252B1 CS 266252 B1 CS266252 B1 CS 266252B1 CS 847200 A CS847200 A CS 847200A CS 720084 A CS720084 A CS 720084A CS 266252 B1 CS266252 B1 CS 266252B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- molecular weight
- iga
- igg
- igm
- low molecular
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Spósob přípravy krvného zmesného imunoglobulinového preparátu na báze IgG + IgA + 4 IgA + XgM pre i.m. podanie je výrobny postup, ktorého cielom }e vyrobiť terapeutický .alebo diagnostický preparát, ktorý možno využit v obore klln^ckej imunologie, medicí ny, farmácie a biologie. Výrobný postup umožňuje vyrobit zmesný imunoglobulinový preparát na báze IgG + IgA + XgM, ktorý , možno aplikovat intramuskulárně. Bielkovmný materiál, obsahujúci purifikovanú zmes imunoglobulinov na báze IgG + IgA + IgM z krvnej plazmy alebo séra s definovanou antibakteriálnou, antitoxickou alebo antivirovou protilátkovou aktivitou, sa suspenduje za aseptických podmienok v takom množstve destilovanej apyrogennej vody o teplote 0 °C až +16 °C, aby hodnota koncentrácie bielkovín sa nachádzala v rozmedzí 10 až 150 gramov na liter, imunoglobulinový roztok sa vyčíri například filtráciou a oddelenie nízkomolekularnych zlúčenín, vyjádřené do 50 000 molekulovou hmotnostou, sa prevedie gelovou filtráciou, dialýzou, ultrafiltráciou alebo diafiltráciou pomocou elúcie alebo nariečlovaním s vodným roztokom chloridu sodného o koncentrácii do 30 gramov na liter o teplote 0 °C až +6 °C s hodnotou pH v rozmedzi 4,0 až 8,0, pričom roztok imuno^lobulinov na báze IgG + IgA + IgM, zbaveny nízkomolekulárných zlúčenín, sa sterilizuje například filtráciou, radiačnou sterilizáciou alebo inými metodami, podlá potřeby sa zakoncentrováva ultrafiltráciou, vymrazovaním, vakuovou destiláciou alebo inými metodami, rozplňuje sa, lyofilizuje a v případe potřeby sa podrobí čtalšiemu spracovaniu.A method of preparing a blood mixed immunoglobulin IgG + IgA + 4 IgA + XgM for i.m. submission is a manufacturing process intended to produce therapeutic or a diagnostic preparation which may be used in the field of clinical immunology, medicine pharmacy and biology. Production process makes it possible to produce a mixed immunoglobulin IgG + IgA + XgM preparation, which can be administered intramuscularly. Bielkovmný a material containing the purified mixture immunoglobulins based on IgG + IgA + IgM plasma or serum defined antibacterial, antitoxic or antiviral antibody activity is suspended under aseptic conditions in such an amount distilled pyrogen-free water at room temperature 0 ° C to + 16 ° C to give a concentration value protein was found to be in the range of 10 to 150 grams per liter, immunoglobulin solution for example by filtration and separation low molecular weight compounds, expressed in 50,000 molecular weight, is converted gel filtration, dialysis, ultrafiltration or diafiltration by elution or with an aqueous chloride solution up to 30 grams per liter at a temperature of 0 ° C to + 6 ° C with a pH in the range of 4.0 to 8.0, wherein the immunobacterial solution based on IgG + IgA + IgM, low molecular weight compounds, are sterilized, for example filtration, radiation sterilization or by other methods, it is optionally concentrated ultrafiltration, freeze-drying, by vacuum distillation or other methods, it is filled, lyophilized and if necessary undergoes more processing.
Description
2 CS 266 252 B12 CS 266 252 B1
Vynález sa týká spósobu přípravy zmesného imunoglobulinového preparátu na báze IgG + + Igň + IgM, z normálnej alebo hyperimunej plazmy, připadne z normálneho alebo retroplacentár-ného připadne hypertmunného séra, ktorý je určený pre terapeutické účely cestou i.m. aplikácieBACKGROUND OF THE INVENTION The present invention relates to a method for the preparation of a mixed immunoglobulin preparation based on IgG + + Ig? + IgM, from normal or hyperimmune plasma, or from normal or retroplacental or hypertensive serum, which is intended for therapeutic purposes via the i.m. applications
Na přeci pi láci ii balastnýcb bielkovín zo zmesi imunoglobulínov IgG + IqA + IgM bol použily π I l mi utni umy ,ι ι I vano I (hi hw I rk II. 11. , I Ί iiclii i .1 . , l ;> · I l II. : Ι'ι ι >> |. I.......ol, I o I .However, in the case of the ballast proteins of the mixture of IgG + IqA + IgM immunoglobulins, I I was used, I I vano I (hi hw I rk II. 11, I iiclii i. 1, 1; I I II.: I ... I I ....... ol I I I.
Stand. 4, 86, 1970; Rchwick II. G. : Vox Sang. 23, 112 , 1972), kyselina borita (ΙΌ jaudíerL. , Audran P., Steinbuch M. : Vox Sang. 23, 165, 1972) a kyselina kaprylová (Blatrix G.,Stand. 4, 86, 1970; Rchwick II. G.: Vox Sang. 23, 112, 1972), boric acid (ududilL., Audran P., Steinbuch M.: Vox Sang. 23, 165, 1972) and caprylic acid (Blatrix G.,
Israěl J., Reinert Ph. , Grisceli G. , Steinbuch M. : l,a Nouvelle presse Medicale 5, 1 193, 1976). Súčasná technologická prax na jednej straně sice odděluje zmesný imunoglobulinovýpreparát na báze IgG + lgA + IgM od zmesi iných krvných bielkovín, ale na druhéj stranězanáša do roztoku IgG i IgA + IgM nízkomoLekulárné anorganické alebo organické zlúčenínypoužité na precipitáciu bielkovín. Technologický postup móže taktiež časť niektorých zlúče-nin s biochemicko-fyziologickou aktivitou v roztoku zmesného imunoglobulinového preparátukoncentrovat t. j. obohacovat vzhladom ku ich koncentráeii vo východzej surovině, z ktorejbolí imunoglobulíny IgG + IgA + IgM izolované. Přítomnost přebytku anorganických solí alebo solí organických kyselin znižuje použitel-nost injekčného roztoku a spolu s prítomnostou nízkomolekulárných zlúčenín v roztoku imuno-globulinov vytvára předpoklady pre vznik nežiaducich interakcii týchto zlúčenín s molekulamiIgG + IgA + IgM a to najma pri skladovaní za nízkých teplot Sálej pri lyofilizácli alebov priebehu skladovania v podobě terapeutického preparátu.Israel J., Reinert Ph. , Grisceli G., Steinbuch M.: 1, and Nouvelle presse Medicale 5, 1,193, 1976). Current technological practice, on the one hand, separates a mixed immunoglobulin preparation based on IgG + IgA + IgM from a mixture of other blood proteins, but on the other side into a solution of IgG and IgA + IgM low-molecular inorganic or organic compounds used for protein precipitation. The technological process can also concentrate some of the compounds with biochemical-physiological activity in the mixed immunoglobulin preparation solution, i.e. enrich with respect to their concentration in the starting material, from which the IgG + IgA + IgM immunoglobulins are isolated. The presence of an excess of inorganic salts or salts of organic acids reduces the usability of the injectable solution and, together with the presence of low molecular weight compounds in the immunoglobulin solution, creates the prerequisites for the undesirable interaction of these compounds with the IgG + IgA + IgM molecules, especially when stored at low temperatures. or storage conditions in the form of a therapeutic preparation.
Zmesný imunoglobulinový preparát na báze IgG + IgA + IgM připravený podlá doposialpopísaných technologii má dokazatelný hypotenzívny a antikomplementárny účinok čo je ajpre kvalitu preparátu pre i.m. podanie nevhodné. Podanie intramuskulárného preparátu týchtokvalit móže v dósledku poklesu krvného tlaku pacienta ohrozit a v dósledku antikomplementár-nej aktivity oslabit jeho nešpecifickú obranu.The IgG + IgA + IgM mixed immunoglobulin preparation prepared according to the previously described technology has a proven hypotensive and anticomplementary effect which is also for the quality of the preparation for i.m. inappropriate. Administration of an intramuscular preparation of these pathogens may compromise the patient's blood pressure as a result of the anti-complementary activity and weaken its non-specific defense.
Na odstraňovanie antikomplementárnej aktivity gama globulínu, ktorý bol připravenýzo zmesi plazjnatických alebo sérových bielkovín bola použitá úprava hodnoty pH na 4,0 pri24 hodinovej inkubácii pri 37 °C (Barandun S., Kistler P., Jeunet F. , Isliker H.: Vox Sang. 7, 157, 1962).To remove the anti-complementary gamma globulin activity prepared from the plasma or serum protein mixture, a pH adjustment of 4.0 at 24 hours incubation at 37 ° C was used (Barandun S., Kistler P., Jeunet F., Isliker H .: Vox Sang 7, 157, 1962).
Pokles antikomplementárnej aktivity gama globulínu bol zaznamenaný po přidaní aktívné-ho uhlia (Steinbuch Μ., Audran R., Amouch P., Blatrix C.: Vox Sang. 13, 103, 1967), popřidaní trikalciumfosfátu (Steinbuch Μ., Audran R., Amouch P. , Blatrix C.: Rev. med. Tourssuppl. No 3, 79, 1968) a po přidaní albuminu (Auerswald W., Kiesewetter E.:Wien. med. Wschr.115, 690, 1965).The decrease in anticomplementary gamma globulin activity was noted after the addition of activated charcoal (Steinbuch, Audran, R., Amouch, P., Blatrix, Vox. Sang. 13, 103, 1967), and tricalcium phosphate (Steinbuch, Audran, R.). , Amouch P., Blatrix C .: Rev. Med Tourssuppl No 3, 79, 1968) and after the addition of albumin (Auerswald W., Kiesewetter E.:Wien. Med. Wschr. 115, 690, 1965).
Znižovanie antikomplementárnej aktivity gama globulinového roztoku pomocou proteolytic-kého štiepenia bolo realizované pepsínom (Schultze Η. E., Schwick G.: Dtsch. med. Wschr. 87, 1 643, 1962) a plazmínom (Sgouris J. T.: Vox Sang. 13, 71, 196?).Reduction of the anti-complementary activity of the gamma globulin solution by proteolytic cleavage was performed by pepsin (Schultze, E., Schwick G .: Dtsch. Med. Wschr. 87, 1 643, 1962) and plasmin (Sgouris JT: Vox Sang. 13, 71) , 196?).
Antikomplementárnú aktivitu gama globulinovej molekuly je možné znížiť jej chemickouredukciou beta merkaptoetanolom (Wiederman G., Miescher P. A., Franklin E. C.: Proč. Soc.exp. Biol. Med. 113, 609, 1963), modifikáciou beta propiolaktonom (Stephan W.: Z. kliň.The anti-complementary activity of the gamma globulin molecule can be reduced by its chemical reduction by beta mercaptoethanol (Wiederman G., Miescher PA, Franklin EC: Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 113, 609, 1963), modified by beta propiolactone (Stephan W .: Z. wedge.
Chem. 7, 282, 1969; Stephan W.; Vox Sang. 28, 422, 1975), redukciou s dithioerythritolom(Isenman D. E., Dorrington K. J., Painter R. H.: J. Immun. 114, 1 726, 1975), sulfonáciou(Masuho Y., Tomibe K., Matsuzawa K., Ohtsu A.: Vox Sang. 32, 175, 1977), amidáciou (Schmidt-berger R. : US Patent No 4 118 379 - 1978), redukciou s dithiothreitolom a alkyláciou s jodacet-amidom (Fernandes P. Μ., Lundblad J. L.: Vox. Sang. 39, 101, 1980) s redukciou s dithiothreito-lom v kombinácii s dithiorythritolom s následnou alkyláciou pomocou jodacptamidu alebometyljodidu, akrylonitrilu, benzylbromidu připadne etylénoxydu (Schroeder D. D., TankersleyD. L., Lundblad J. L. : Vox Sang. 40, 373, 1981). CS 266 252 Bl * 3Chem. 7, 282, 1969; Stephan W .; Vox Sang. 28, 422, 1975) by reduction with dithioerythritol (Isenman DE, Dorrington KJ, Painter RH: J. Immun. 114, 1726, 1975), by sulfonation (Masuho Y., Tomibe K, Matsuzawa K, Ohtsu A .: Vox Sang., 32, 175, 1977), by amidation (Schmidtergerger R.: US Patent No. 4,118,379 - 1978), by reduction with dithiothreitol and alkylation with iodoacetamide (Fernandes P., Lundblad JL: Vox. Sang 39, 101, 1980) with reduction with dithiothreito in combination with dithiorythritol followed by alkylation with iodacptamide butbomethyl iodide, acrylonitrile, benzyl bromide and ethylene oxide (Schroeder DD, Tankersley, L., Lundblad JL: Vox Sang. 40, 373, 1981) . CS 266 252 Bl * 3
Antikomplementárna aktivita zmesného imunoglobulinového preparátu súvisí jednak sovznikom polymerov IgG + IgA + IgM, ktoré móžu vznikat v procese technologickéj izoláciea jednak vzniká v procese lyofilizácie pravděpodobně v dósledku interakcie niektorých nízko-molekulárných látok s molekulami imunoglobulinov. Použitie vodného roztoku chloridu sodnéhov destilovanej apyrogennej vodě v koncentrácii do 30 gramov na liter zaručuje polyméromI inum η j 11») m I | m tv v i ««: I < ik ti j .< 11 ι Η,11ι'ι ii t .-«) > i I l I υ π > t< >< Ίι/ηΙζη I ιίι ku Hr,>n i ói · t 1 li I z koltu · I oku I Λ t nyc blátok, ktoré potom už nespósobujú vznik antikomplementárnej aktivity v procese lyofilizácie.The anti-complementary activity of the mixed immunoglobulin preparation is related, on the one hand, to the polymer of IgG + IgA + IgM polymers, which can be formed in the process of technological isolation and is probably due to the interaction of some low-molecular substances with immunoglobulin molecules. The use of an aqueous solution of sodium chloride in distilled pyrogen-free water at a concentration of up to 30 grams per liter guarantees the polymeric inorganic water. m tv vi ««: i <ik ti j. <11 ι Η, 11 'ii ii t .-) i i l l υ π> t <> </ι / ηΙζη I ιίι ku Hr,> ni ói · t 1 li I from the colloid of the tok t nyc mud, which then no longer cause the anticomplementary activity in the lyophilization process.
Antikomplementárna aktivita bola testovaná na základe úbytku aktivity komplementu.Anti-complementary activity was tested based on loss of complement activity.
Obytok známej hodnoty aktivity komplementu po přidaní známého množstva roztoku lyofilizova-ného zmesného imunoglobulinového preparátu na báze IgG + IgA + IgM bol stanovený metodoupodlá Kabata a Mayera (Rabat E. A., Mayer Μ. M.i Experimentální imunochemie ČSAV, Praha1965 str. 180). Pokiaí niesú v zmesnom roztoku imunoglobulinov vyššie polymery bolo stanove-né zníženie antikomplementárnej aktivity u 10 experimentálnych šarží po lyofilizácii o 80 až95 % v porovnaní s tým istým materiálom u ktorého nebolo realizované oddelenie nízkomolekulár-nych látok. Pokial sa polymery vyskytovali bolo stanovené zníženie antikomplementárnejaktivity iba o 35 až 45 % v porovnaní s tým istým materiálom u ktorého nebolo realizovanéoddelenie nízkomolekulárných látok.The residual known value of complement activity after the addition of a known amount of a lyophilized mixed immunoglobulin preparation based on IgG + IgA + IgM was determined by the method of Kabat and Mayer (Rabat E. A., Mayer, M.i Experimental Immunochemistry of CSAV, Prague 1965 p. 180). When the higher polymers are not present in the mixed immunoglobulin solution, a reduction in anticomplementary activity was determined in 10 experimental lots after lyophilization of 80-95% compared to the same material in which the separation of low molecular weight substances was not realized. When polymers were present, a reduction in anticomplementary activity was determined by only 35 to 45% compared to the same material in which the separation of low molecular weight substances was not realized.
Hypotenzívny účinok bol testovaný na základe poklesu krvného tlaku králíka priamoukrvnou metodou podlá ČSL 3 (ČSL 3, svazok I, vydanie III, Avicenum Praha str. 149) s tým,že králíkovi o hmotnosti 2 až 3 kg sa aplíkujú 2 ml zmesného imunoglobulinového preparátuna báze IgG + IgA + IgM na kg hmotnosti. Obsah bielkovín v aplikovanom zmesnom imunoglobuli-novom preparáte je 15 gramov na 1 000 ml roztoku. U preparátov připravených podía navrhova-ného postupu sa hypotenzívna aktivita nevyskytovala v tak výraznej intenzitě, čo je možnédokumentovat údajom, že z 10 připravených experimentálných šarží podlá předloženého vynálezubol stanovený pokles systolického krvného tlaku maximálně o 4 až 8 % v porovnaní s týmistým materiálom v tej istej dávke bez separácie nízkomolekulárných zlúčenín, kde bol stano-vený pokles systolického tlaku od 20 do 30 %.The hypotensive effect was tested on the basis of the drop in blood pressure of the rabbit by a direct blood method according to CSL 3 (CSL 3, Volume I, Issue III, Avicenum Prague p. 149), with 2 ml of mixed immunoglobulin base preparation being administered to a rabbit weighing 2 to 3 kg IgG + IgA + IgM per kg body weight. The protein content of the mixed immunoglobulin preparation applied is 15 grams per 1000 ml of solution. For the preparations prepared according to the proposed procedure, the hypotensive activity did not appear to be as pronounced as documented by the fact that out of the 10 experimental lots prepared according to the present invention, a decrease in systolic blood pressure was determined by a maximum of 4 to 8% compared to the same material in the same dose without separation of low molecular weight compounds where a decrease in systolic pressure from 20 to 30% was determined.
Podstatou vynálezu je odstranenie balastných neimunoglobulinových příměsí, ktoré majúvzhladom ku IgG, IgA a IgM nižšiu molekulárnú hmotnost. Za hraničně hodnoty je možno považovatúdaje okolo 50 000 molekulárnej hmotnosti.SUMMARY OF THE INVENTION It is an object of the present invention to eliminate ballast non-immunoglobulin impurities having a lower molecular weight in relation to IgG, IgA and IgM. Boundary values of about 50,000 molecular weight may be considered.
Odstranenie balastných neimunoglobulinových příměsí je možné previest: A. Gelovou filtráciou B. Dialyzou C. Ultrafiltráciou D. Diafiltráciou A. V súčasnosti existuje celá rada komerčných materiálov pre gelovú filtráciu na bázedextranovaných gelov, pod označením Sephadex, polyakrylamidových gelov, pod označe-ním Biogel, hydroxyalkylmetakrylátových gélov, pod označením Spheron, polystyréno-vých gélov, pod označením Styragel, polyvinilacetátových gélov, pod označením Marcko-gel, porézných silikátov, pod označením Porasil, a porezných skiel pod označenímBioglas, ktoré majú odstupňované velkosti pórov v gelových časticiach a umožňujúgelovú filtráciu v poměrně širokých rozmedziach molekulárných hmotností. B. Dialyza sa v poslednom desatročí znovu začína uplatňovat najmá pri výrobě liečivako technologická metoda separacíe tých zmesí prírodných alebo syntetických látok,ktorých molekuly majú podstatné rozdielnú hmotnost. V súčasnosti existuje celá rada komerčných membrán pre dialyzu či už v podobě rovinnej membrány alebo v podobě potrubia o menlivom priemere a menlivej velkosti pórov na báze regenerovanej celulózy alebo jej derivátov, připadne na báze kolodia a taktiež na báze vinilových polymerov. 4 CS 266 252 B1 C. Separácia nízkomolekulárnych zlúčenín do raolekulovej hmotnosti 50 000 sa móže uskutočniť aj pomocou ultrafiltrácie, ktorú možno realizovat v podobě dutých nití pričomimunoglobulinový roztok preteká pod tlakom do 800 kP vo vnútri niťovej membrány a cez póry v stene niťovej membrány prestupujú nízkomolcku1árne látky vo vodnomroztoku do zbernej nádoby. U1 tra f i L Lráe ί,υ je možno realizovat aj v podobě kazetového systému kde v rovinnom usporiadaní je alebo vyměnitelná membrána aiebo doska z umelej hmoty s definovanými veíkosťamiporov. Roztok zmesných imunoglobulinov pod tlakom do 800 kP preteká například nad membránoua cez póry v stene rovinnej membrány alebo došky z umelej hmoty prestupujú relativné nízko-molekuláme látky vo vodnom roztoku do zbernej nádoby. D. Odstraňovanie relativné nízkomolekulárnych zlúčenín do molekulárnej hmotnosti 50 000je možno uskutočniť aj pomocou diafiltrácie čo je kombinácia dialyzy a ultrafiltrácie,Diafiltráciu je možné realizovat jednak v podobě dutých nití pričom gama globulinovýroztok preteká pod tlakom do 200 kP vo vnútri niťovej membrány a cez póry v steneniťovej membrány prestupujú reálne nízkomolekulárne látky do z vonkajšej stranypretekájúceho roztoku, ktorý relativné nízkomolekulárne látky odplavuje od niťovejmembrány do odpadu.The removal of the ballast non-immunoglobulin impurities can be accomplished by: A. Gel filtration by B. Dialyza C. Ultrafiltration D. Diafiltration A. Currently, there are a number of commercial materials for gel filtration on baseextranslated gels, designated Sephadex, polyacrylamide gels, under the name Biogel, hydroxyalkyl methacrylate gels, designated Spheron, polystyrene gels, under the designation Styragel, polyvinyl acetate gels, under the designation Marko-gel, porous silicates under the designation Porasil, and cutting glasses under the designation Bioglas, which have graded pore sizes in gel particles and allow gel filtration in relatively wide molecular weight ranges. B. Dialyza has been re-applying in the last decade, in particular, in the manufacture of a medicament as a technological method of separating those mixtures of natural or synthetic substances whose molecules have a substantially different weight. At present, there are a number of commercial dialysis membranes, either in the form of a planar membrane or in the form of a pipe of varying diameter and pore size based on regenerated cellulose or its derivatives, optionally based on collodion and also on the basis of vinil polymers. C. CS 266 252 B1 C. The separation of low molecular weight compounds into a molecular weight of 50,000 can also be accomplished by ultrafiltration, which can be realized in the form of hollow threads while the immunoglobulin solution flows under pressure up to 800 kP inside the thread membrane and permeates low molecular weight through the pores in the thread membrane wall. in the aqueous solution to the collection vessel. It is possible to realize also in the form of a cassette system where, in a planar arrangement, the diaphragm or the plate is made of plastic with defined sizes. The mixed immunoglobulin solution under a pressure of up to 800 kP flows, for example, over the membrane and through the pores in the wall of a planar membrane or plastic dock, to transfer relatively low-molecular weight substances in an aqueous solution to a collection vessel. D. Removal of relatively low molecular weight compounds up to 50,000 molecular weights can also be accomplished by diafiltration, which is a combination of dialysis and ultrafiltration. Diafiltration can be accomplished both as hollow threads while gamma globulin solution flows under 200 kP inside the yarn membrane and through pores in the stenenite the membranes penetrate the real low molecular weight substances from the outer side of the solution solution, which releases the relatively low molecular weight substances from the yarn membrane to the waste.
Diafiltráciu je možno realizovať aj v podobě kazetového systému kde v rovinnom usporia-daní je alebo vyměnitelná membrána připadne doska z umelej hmoty s definovanou velkosťoupórov. Roztok imunoglobulinov IgG + IgA + IgM pod mierným tlakom do 200 kP preteká napříkladnad membránou a cez póry v stene rovinnej membrány alebo poreznej došky prestupujú reálnevelmi pomalým prietpkom relativné nízkomolekulárne látky do pod membránou pretekájúcehoroztoku, ktorý odplavuje relativné nízkomolekulárne látky do odpadu.Diafiltration can also be carried out in the form of a cassette system where, in a planar arrangement, a replaceable membrane falls on a plastic plate with defined size. The IgG + IgA + IgM immunoglobulin solution at moderate pressure up to 200 kP flows, for example, through the membrane, and through the pores in the plane of the planar membrane or porous wall, the relatively low molecular weight flows into the underflow flow membrane that flushes the relatively low molecular weight into the waste.
Bielkovinný materiál obsahujúci purifikovaný IgG + IgA + IgM sa suspenduje za aseptic-kých podmienok v takom množstve apyrogennej destilovanej vody o teplote 0 °C až +6 °C,aby hodnota koncentrácie bielkovín sa nachádzala v rozmedzí 10 až 150 gramov na liter,s optimom 20 až "40 gramov na liter, roztok zmesných imunoglobulinov sa vycíri napříkladfiltráciou a separácia nízkomolekulárnych zlúčenín sa prevádza v prostředí vodného roztokuchloridu sodného v koncentrácii do 30 g na liter pomocou elúcie alebo nariedovania. Optimál-na koncentrácia chloridu sodného v destilovanej apyrogennej vodě je 3,0 až 9,0 gramov naliter, o teplote 0 °C až +6 °C s hodnotou pH v rozmedzí 4,0 až 8,0. Roztok imunoglobulinovzbavený nízkomolekulárnych zlúčenín sa sterilizuje například filtráciou, radiačnou sterilizá-ciou alebo inými metodami, podlá potřeby sa zakoncentrováva ultrafiltráciou, vymrazovaním,vakuovou destiláciou alebo inými metodami, rozplňuje sa, lyofilizuje a v případe potřebysa podrobí dalšiemu spracovanju na konečný produkt.Protein material containing purified IgG + IgA + IgM is suspended under aseptic conditions in an amount of pyrogen-free distilled water at 0 ° C to + 6 ° C so that the protein concentration is between 10 and 150 grams per liter, with optimum 20 to 40 grams per liter, the mixed immunoglobulin solution is screened for example by filtration and the separation of low molecular weight compounds is carried out in an aqueous sodium chloride solution at a concentration of up to 30 grams per liter by elution or dilution. 0 to 9.0 grams of liter, at a temperature of 0 ° C to + 6 ° C with a pH in the range of 4.0 to 8.0 The low molecular weight immunoglobulin solution is sterilized by, for example, filtration, radiation sterilization or other methods, as required. is concentrated by ultrafiltration, freeze-drying, vacuum distillation or other methods U is a, in the case of lyophilized and subjected to further potřebysa spracovanju the final product.
Vynález je dalej objasněný na príkladoch prevedenia, ktorými jeho obsah nieje aniobmedzený ani vyčerpaný. Příklady prevedenia Příklad 1 Východziou surovinou može byť bielkovinná pasta zmesného imunoglobulinového preparátuna báze IgG + IgA + IgM získaná například metodou podlá Pejaudiera a spol. (Pejaudier L.,Audran R., Steinbuch M.: Vox Sang. 23, 165, 1972). Bielkovinný materiál vyprecipitovanýchzmesných imunoglobulinov sa rozpusta v takom množstve destilovanej apyrogennej vody o teplote0 °C až +6 °C, aby hodnota koncentrácie bilekovín sa nachádzala v rozmedzí 10 až 150 gramovna liter, s optimom 20 až 40 gramov na liter. Rozpúštanie sa urýchluje miešaním. Po roz-puštění sa roztok imunoglobulinov na báze IgG + IgA + IgM vyčíri například filtráciou. V technologických podmienkách sú vyššie uvedené podmienky zpravidla zachované vtedy, ked rozpúšťame 1 kg bielkovinnej pasty zmesných imunoglobulinov v 2 000 ml apyrogennej CS 266 252 B1 5 destilovanej vody o teplote 0 °C až +6 °C. Hodnota pH takto vzniknutého roztoku imuno-globulinov bývá v rozmedzí 4,0 až 8,0, s optimom 7,0, a koncentrácia bielkovín bývá v roz-medzí 20 až 40 qramov na liter. Takto připravený roztok sa vyčíri například Eiltrácioua nízkomolckulárne zlúčeniny sa z roztoku imuncglobulinov na báze IgG + IgA + IgM od-s t r a n i a : Λ. Gelovou filtráciou B. DiaJ.yzou C. Ultrafiltráciou D. Diafiltráciou A. Odstranenie nízkomolekulárnych zlúčenín sa prevádza elučnou gelovou chromatografious destilovanou vodou v ktorej bol rozpuštěný chlorid sodný do koncentrácie 30 gramovna liter pri teplote 0 °C až 46 °C pri pH 4,0 až 8,0 s vylučovacou medzou geluvyjádřenou molekulárnou hmotnostou do 50 000 pričom je potřebné uvedené materiálypoužívat v optimálnom zrnění zaručujucom prietok v technologických podmienkách.Optimálna koncentrácia chloridu sodného je 3,0 až 9,0 gramov na liter a optimálně” pH je 7,0The invention is further illustrated by the following examples, which are not intended to be limiting or exhausted. EXAMPLES Example 1 The starting material may be a mixed immunoglobulin preparation paste of IgG + IgA + IgM base obtained by, for example, the method of Pejaudier et al. (Pejaudier L., Audran R., Steinbuch M .: Vox Sang. 23, 165, 1972). The proteinaceous material precipitated in the mixed immunoglobulins is dissolved in an amount of distilled pyrogen-free water at a temperature of 0 ° C to + 6 ° C, so that the concentration of the protein is between 10 and 150 gram liter, with an optimum of 20 to 40 grams per liter. The dissolution is accelerated by stirring. After dissolution, the IgG + IgA + IgM-based immunoglobulin solution is excreted, for example, by filtration. Under technological conditions, the above conditions are generally maintained when 1 kg of mixed immunoglobulin protein paste is dissolved in 2000 ml of pyrogen-free CS 266 252 B1 5 distilled water at 0 ° C to + 6 ° C. The pH of the resulting immunoglobulin solution is in the range of 4.0 to 8.0, with an optimum of 7.0, and the protein concentration is in the range of 20 to 40 qram per liter. The solution thus prepared is excreted, for example, by E-filtration and low-molecular-weight compounds from IgG + IgA + IgM-based immunoglobulin solutions. Gel filtration by B. DiaJyz C. Ultrafiltration D. Diafiltration A. Removal of low molecular weight compounds is carried out by elution gel chromatography distilled water in which sodium chloride was dissolved to a concentration of 30 gram liter at 0 ° C to 46 ° C at pH 4.0 up to 8.0 with an exclusion limit of gel expressed by molecular weight of up to 50,000, and the use of these materials in optimum grain flow ensuring technological flow. The optimal concentration of sodium chloride is 3.0 to 9.0 grams per liter and optimally ”pH is 7.0
Do kolony naplnenej s napučaným gelovým materiálom necháváme nasavat zmesný roztok imunoglobulinov IgG + IgA + IgM takou rýchlosťou, aby prietok spodnou plochou kolony sa2 pohyboval medzi 0,01 rul až 3,0 ml za minutu na plochu 1 cm . Množstvo imunoglobulinovéhoroztoku nasadeného na kolonu nemá překročit 25 až 30 % objemu gelovej časti kolony. Očinnostdelenia je možné sledovat podlá stupňa oddelenia etylalkoholu, chloroformu a ninhydrinpozitívnych látok z imunoglobulinového roztoku. Pokial by nedošlo ku dokonalému oddeleniuje potřebné zmenšit obsah vkladeného zmesného imunoglobulinového roztoku na kolonu a spomaliťprietok. Po separácii nízkomolekulárnych zlúčenín z imunoglobulinového zmesného roztokusa tento óalej spracováva. B. Sterilný roztok zmesných imunoglobulinov sa opatrné přesaje do sterilného dialyzačnéhopotrubia, ktoré sa před zahájením presavania v spodnej časti uzatvorí uzlom a popřesátí sa vrchná část uzatvorí uzlom so slučkou za ktorú sa naplněné potrubiezavěsí na háčik, ktorý je tak umiestnený, aby roztok zmesných imunoglobulinov v dialyzačnoni potrubí bol v styku s pretekajúcim vodným roztokom chloridu sodnéhov destilovanej apyrogennej o koncentrácii do 30 gramov na liter, s optimom 3,0 až9,0 gramov na liter, pri teplote 0 °C až +6 °C, pri pH 4,0 až 8,0, s optimom pH7,0, pričom velkost porov v dialyzačnej membráně by mala byt tak velká, aby umožnilaseparáciu relativné nízkomolekulárnych zlúčenín vyjadrenú molekulárnou hmotnosioudo 50 000.Let the mixed solution of IgG + IgA + IgM immunoglobulins be sucked into the column filled with the swollen gel material at a rate such that the flow rate of the lower column surface is between 0.01 and 3.0 ml per minute per 1 cm. The amount of immunoglobulin solution loaded on the column should not exceed 25-30% of the volume of the gel portion of the column. The activities can be monitored according to the degree of separation of the ethyl alcohol, chloroform and ninhydrin-positive substances from the immunoglobulin solution. If there is no perfect separation, it is necessary to reduce the content of the mixed mixed immunoglobulin solution to the column and slow down the flow. After separation of the low molecular weight compounds from the immunoglobulin mixed solution, this is further processed. B. Sterile mixed immunoglobulin solution is carefully sieved into sterile dialysis tubing, which is closed with a knot prior to sieving at the bottom, and the top is closed with a loop of knot being filled with a pipeline to the hook so that the mixed immunoglobulin solution in the dialysis tubing was contacted with a flowing aqueous solution of sodium chloride distilled and hydrogenated at a concentration of up to 30 grams per liter, with an optimum of 3.0 to 9.0 grams per liter, at 0 ° C to + 6 ° C, at pH 4.0 to 8.0, with an optimum pH of 7.0, wherein the size of the dialysis membrane pores should be large enough to allow separation of relatively low molecular weight compounds expressed as molecular weight up to 50,000.
Koniec dialýzy je indikovaný negativnou reakciou na etanol, chloroform a na ninhydrinpozitivně látky v pretekajúcej dialyzačnej tekutině ako aj negativnou reakciou na etanola chloroform v zmesnom imunoglobulinovom roztoku. Po skončení dialýzy sa dialyzačné potrubieso zmesným .imunoglobulinovým roztokom zvesí z háčika, opatrné sa vyberie a po rozstrihnutísa roztok IgG + IgA + IgM preleje do zbernej nádoby a dalej sa spracováva. C. Odstraňovanie relativné nízkomolekulárnych zlúčenín do molekulárnej hmotnosti 50 000 je možné uskutočnit pomocou ultrafiltrácie pričom relativné nízkomolekulárnelátky v podobě roztoku po přestupe membránou odtekajú do zbernej nádoby.The end of dialysis is indicated by a negative reaction to ethanol, chloroform, and ninhydrinosites in the flowing dialysis fluid as well as a negative reaction to ethanol chloroform in the mixed immunoglobulin solution. Upon completion of the dialysis, the dialysis tubing is mixed from the hook with the mixed immunoglobulin solution, carefully removed, and the IgG + IgA + IgM solution is sheared into the collection vessel and further processed. C. Removal of relatively low molecular weight compounds up to a molecular weight of 50,000 can be accomplished by ultrafiltration, wherein the relatively low molecular weight solution in solution after flow through the membrane flows into a collection vessel.
Ultrafiltráciu je možné realizovat jednak v podobě dutých nití alebo v podobě kazetové-ho systému kde sa používájú došky alebo membrány s definovanými velkostami porov.Ultrafiltration can be carried out either in the form of hollow yarns or in the form of a cassette system where docks or membranes with defined pore sizes are used.
Vzhladom na to, že roztok imunoglobulinov sa pri ultrafiltrácii zakoncentrováva, prevedie me opatovné nariedenie s vodným roztokom chloridu sodného v koncentrácii do 30 gramov na liter, s optimom 3,0 až 9,0 gramov na liter, pri teplote 0 °C až +6 °C, pri pH 4,0 až 8,0, 6 CS 266 252 Bl s optimom pH 7,0 a toto zakoncentrovavaniena povodný objem prevádzame dovtedy pokialtomnosť chloroformu a etanolu pozitivna. například na polovičný objem a nariedovanieje reakcia imunoglobulinového roztoku na príSince the immunoglobulin solution is concentrated by ultrafiltration, it is carefully diluted with an aqueous sodium chloride solution up to 30 grams per liter, with an optimum of 3.0 to 9.0 grams per liter, at 0 ° C to +6. ° C, at pH 4.0 to 8.0, 6 CS 266 252 B1 with an optimum pH of 7.0 and this concentration of the flood volume is until now the presence of chloroform and ethanol positive. for example, to half the volume and dilute the response of the immunoglobulin solution to
Sterilizácia u1trafi 1tračného zariadenia sa prevádza alebo parou alebo chnmickou rrstouíkl.id | u <*p I ·'·< ‘hnu I l tu <»j»<iiaJmy vodným /oztokom I oř πι.ι I řnu o končen L i ác I í do ',{) gramov na liter a následným vymytím formalínu sterilnou destilovanou vodou. D. Odstraňovanie relativné nízkomolekulárnych zlúčenín do molekulárnej hmotnosti 50 000je možné uskutočniť pomocou diafiltrácie pričom relativné nízkomolekulárne látkypřestupujú do roztoku chloridu sodného v destilovanéj apyrogennej vodě, o koncentráciido 30 gramov na liter, s optimom 3,0 až 9,0 g na liter, pri teplote 0 °C až +6 °C,pri píí 4,0 až 8,0 s optimom pri pH 1,0, ktorý relativné nízkomolekulárne látkyodplavuje do odpadu.The sterilization of the drawing apparatus is carried out by steam or chemical grade. In the case of water / water, the water is poured into the water / water stream and then washed away by sterile sterile washing of formalin. distilled water. D. Removal of relatively low molecular weight compounds up to 50,000 molecular weight can be accomplished by diafiltration, while the relative low molecular weight substances are transferred to a sodium chloride solution in distilled, pyrogen-free water, at a concentration of 30 grams per liter, with an optimum of 3.0 to 9.0 grams per liter at temperature 0 ° C to + 6 ° C, at a pH of 4.0 to 8.0 with an optimum at pH 1.0, which releases the relatively low molecular weight material to waste.
Diafiltráciu je možné realizovat jednak v podobě dutých nití alebo v podobě kazetovéhosystému kde sa používajú došky z umelej hmoty alebo membrány s definovanými velkosťamiporov.Diafiltration can be carried out either in the form of hollow yarns or in the form of a cassette system where plastic or diaphragm with defined sizes are used.
Vzhladom na to, že zmesný imunoglobulinový roztok sa pri diafiltrácii zakoncentrovávaprevedieme opatovné nariedenie s vodným roztokom chloridu sodného, ktorý používáme pridiafiltrácii a toto zakoncentrovávanie například na polovičný objem a nariedovanie na povodnýobjem prevádzame dovtedy pokial je reakcia zmesného imunoglobulinového preparátu na bázeIgG + IgA + IgM na přítomnost chloroformu a etanolu pozitivna. Zmesný imunoglobulinovýroztok sa preleje do zbernej nádoby a dalej sa spracováva.Since the mixed immunoglobulin solution is concentrated in the diafiltration, dilution is carried out with an aqueous solution of sodium chloride which is used to add filtration and this concentration, for example, to half the volume and dilution to the water volume until the reaction of the mixed immunoglobulin preparation is based on IgG + IgA + IgM for presence chloroform and ethanol positive. The mixed immunoglobulin solution is poured into a collection vessel and further processed.
Sterilizácia diafiltračného zariadenia sa prevádza alebo parou alebo chemickou cestounapříklad prepláchnutím aparatúry vodným roztokom formalínu o koncentrácii do 50 gramovna liter s následným vymytím formalínu sterilnou destilovanou vodou. Dókaz chloroformu sa prevádza Fujiwarovou reakciou (Fujiwara: Sitzber. Naturw. Ges.Sterilization of the diafiltration device is carried out by steam or chemical passage, for example by flushing the apparatus with an aqueous solution of formalin at a concentration of up to 50 grams liter followed by washing the formalin with sterile distilled water. The chloroform assay is performed by a Fujiwar reaction (Fujiwara: Sitzber. Naturw. Ges.
Rostock 6, 33, 1916) či už v póvodnom usporiadaní alebo v novších aplikáciach podlá Setaa Schultzeho (.Seto T. A., Schultze M. O.: Anal. Chem. 28, 1 625, 1956), Hildebrechta(ílildebrecht C. D. : Anal. Chem. 29, 1 037, 1957), Friedmana a Coopera /Friedman P. J.,Rostock 6, 33, 1916) either in the original arrangement or in later applications by Setaa Schultze (Seto TA, Schultze MO: Anal. Chem. 28, 1 625, 1956), Hildebrecht (et al., CD: Anal. Chem. 29, 1 037, 1957), Friedman and Cooper / Friedman PJ,
Cooper J. R. : Anal. Chem. 30, 1 674, 1958).Cooper J.R.: Anal. Chem. 30, 1774 (1958).
Ninhydrin pozitivně látky stanovujeme spósobom podlá Ruhemanna (Ruhemann S.: J. Chem.Ninhydrin is positively determined by Ruhemanna (Ruhemann S .: J. Chem.
Soc. 97, 1 438, 1910). Stanovenie etanolu sa prevádza Agulhonovou reakciou (Agulhon H.:Soc. 97, 1438, 1910). The determination of ethanol is carried out by Agulhon reaction (Agulhon H .:
Bull. soc. chim. France (4), 9, 881, 1911) či už v póvodnom usporiadaní alebo v novějšíchaplikáciách podlá Kelletta (Kellett E. G.: Analyst 62, 728, 1937) alebo Webba (Webb D. A.: Sci. Proč. Roy Dublin. Soc. 21, 281, 1936).Bull. soc. chim. France (4), 9, 881, 1911) either in its original layout or in newer applications by Kellett (Kellett EG: Analyst 62, 728, 1937) or Webb (Webb DA: Sci. Why Roy Dublin. Soc. 21, 281) , 1936).
Zmesný imunoglobulinový roztok zbavený nízkomolekulárnych zlúčenín se sterilizujenapříklad filtráciou, radiačnou sterilizáciou alebo inými metodami, podlá potřeby sa zakon-centrováva ultrafiltráciou, vymrazovaním, vakuovou destiláciou alebo inými metodami, roz-plňuje sa, lyofilizuje a v případe potřeby sa podrobí dalšiemu spracovaniu. Příklad 2 Východziou surovinou móže byť bielkovinná pasta zmesného imunoglobulinového preparátuna baze IgG + IgA + IgM alebo bielkovinný roztok, ktoré boli izolované aj pomocou iných ’metod. Bielkovinná pasta alebo bielkovinný roztok sa spracováva v dalšom postupe podobnéako v příklade č. 1 s tým rozdielom, že kritérium odstranenia nízkomolekulárnych zlúčenínzo zmesného imunoglobulinového roztoku nesúvisí s prítomnosťou liehu alebo chloroformu,ale s prítomnosťou precipitačnej látky, ktorá bola na precipitáciu alebo imobilizácíoupoužitá.The low-molecular weight compound immunoglobulin solution is sterilized by, for example, filtration, radiation sterilization, or other methods, concentrated by ultrafiltration, freeze-drying, vacuum distillation, or other methods, dissolved, lyophilized, and subjected to further processing if necessary. Example 2 The starting material may be a proteinaceous paste of a mixed immunoglobulin preparation of the base IgG + IgA + IgM or protein solution, which were also isolated by other methods. The protein paste or protein solution is processed in a similar manner to Example 1 except that the criterion for removing low molecular weight mixed immunoglobulin solutions is not related to the presence of alcohol or chloroform, but to the presence of a precipitating agent that has been used for precipitation or immobilization.
Claims (4)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS847200A CS266252B1 (en) | 1984-09-25 | 1984-09-25 | Process for preparing blood mixed preparate on base igg +iga+igm |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS847200A CS266252B1 (en) | 1984-09-25 | 1984-09-25 | Process for preparing blood mixed preparate on base igg +iga+igm |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS720084A1 CS720084A1 (en) | 1987-08-13 |
CS266252B1 true CS266252B1 (en) | 1989-12-13 |
Family
ID=5420708
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS847200A CS266252B1 (en) | 1984-09-25 | 1984-09-25 | Process for preparing blood mixed preparate on base igg +iga+igm |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CS (1) | CS266252B1 (en) |
-
1984
- 1984-09-25 CS CS847200A patent/CS266252B1/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CS720084A1 (en) | 1987-08-13 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US5164487A (en) | Manufacturing intravenous tolerable immunoglobulin-g preparation | |
DE3689734T2 (en) | Purified immunoglobulin related factor, monoclonal antibodies, hybridoma cell lines, methods and uses. | |
US4216205A (en) | Process of preparing a serum protein composition for intravenous application | |
US3903262A (en) | Pharmaceutical compositions comprising intravenously injectable modified serum globulin, its production and use | |
US5221483A (en) | Process and apparatus for removal of DNA, viruses and endotoxins | |
CN106414476B (en) | Methods for purifying immunoglobulins | |
JP2002517516A (en) | Methods for producing immunoglobulins and other immunoglobulin products for intravenous administration | |
CN107080842A (en) | Antibody preparation | |
JPH0694421B2 (en) | Intravenous immunoglobulin | |
RU2008916C1 (en) | Method for aqueous solution of immunoglobulin pasteurization | |
JP2015091866A (en) | IMMUNOGLOBULIN G (IgG) CONCENTRATE DEPLETED OF ANTI-A AND ANTI-B ANTIBODIES AND OF POLYREACTIVE IgG | |
SK287633B6 (en) | Method for the production of human gammaglobulin G and virus-inactivated human gammaglobulin G | |
KR20170030033A (en) | Novel affinity chromatography media for removal of anti-a and/or anti-b antibodies | |
US4434093A (en) | Methods for preparation of HBs Ag free gamma globulins | |
US3790552A (en) | Method of removing hepatitis-associated antigen from a protein fraction using polyethylene glycol | |
JPH08242849A (en) | Getting rid of virus from protein solution by ultrafiltration | |
EP0186360B1 (en) | Methods for preparation of highly purified, gamma globulins free of hepatitis-b-virus infectivity | |
EP1356829A2 (en) | Preparation of virally inactivated intravenously injectable immune serum globulin | |
Fernandes et al. | Preparation of a stable intravenous gamma‐globulin: process design and scale‐up | |
US5659017A (en) | Anion exchange process for the purification of Factor VIII | |
CS266252B1 (en) | Process for preparing blood mixed preparate on base igg +iga+igm | |
Bloom et al. | Factor VIII (antihaemophilic factor) in tissues detected by antibody neutralization | |
CS244306B1 (en) | Blood gamma globulin preparation method with reduced hypotensive and anti complementary effect | |
US4541953A (en) | Preparation of anti-T-lymphocyte globulin | |
CS247303B1 (en) | Method of blood mixed immunoglobulin preparation overlay |