CS265578B1 - Stabilizovaný substrát pro stanovení katalytické aktivity fosfomonoesteras - Google Patents

Stabilizovaný substrát pro stanovení katalytické aktivity fosfomonoesteras Download PDF

Info

Publication number
CS265578B1
CS265578B1 CS876784A CS678487A CS265578B1 CS 265578 B1 CS265578 B1 CS 265578B1 CS 876784 A CS876784 A CS 876784A CS 678487 A CS678487 A CS 678487A CS 265578 B1 CS265578 B1 CS 265578B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
phosphate
substrate
nitrophenyl phosphate
phosphomonoesterases
catalytic activity
Prior art date
Application number
CS876784A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Other versions
CS678487A1 (en
Inventor
Vratislav Ing Csc Chromy
Milan Rndr Maly
Original Assignee
Chromy Vratislav
Maly Milan
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Chromy Vratislav, Maly Milan filed Critical Chromy Vratislav
Priority to CS876784A priority Critical patent/CS265578B1/cs
Publication of CS678487A1 publication Critical patent/CS678487A1/cs
Publication of CS265578B1 publication Critical patent/CS265578B1/cs

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Vynález se týká stabilizovaného substrátu pro stanoveni katalytické aktivity fosfomonoesteras.
Alkalické a kyselé fosfomonoesterasy představují skupinu enzymů významných zejména v klinické enzymologii. Stanovení jejich katalytické koncentrace v krevním séru, plazmě nebo i jiných biologických tekutinách je důležitým diagnostickým prostředkem pro řadu onemocněni. Alkalická fosfatasa pro nemoci jaterního parenchymu, žlučových cest, kostního aparátu a podobně, kyselá fosfatasa hlavně pro maligní onemocnění prostaty, některých chorob kostních a pro hematologická vyšetření.
Stanoveni katalytických koncentraci alkalických i kyselých fosfomonoesteras se provádí nejčastěji tak, že sek roztoku substrátu v tlumiči o vhodném pH přidá vzorek biologického materiálu a sleduje se rychlost štěpení substrátu, které je katalyzováno enzymem. Při stanovení kyselé fosfatasy probíhá reakce ve slabě kyselém prostředí při pH kolem 5, stanovení alkalické fosfatasy se provádí ve slabě alkalickém roztoku při pH 9,5 až 10,5 v prostředí transfosforylačních médií, která umožňují přenos fosforečnanu ze substrátu na vhodný akceptor, jimiž jsou aminoalkanoly, které působí současně i jako pufry. Jsou to například diethanolamin, aminomethylpropanol nebo methylglukamin.
V poslední době je jako substrát používán téměř výhradně 4-nitrofenylfosfát, který je fosfomonoesterasami štěpen při enzymové reakci na 4'-nitrofenol a fosforečnan. Obsah •4-nitrofenolu, vzniklého při enzymové reakci, který je přímo úměrný katalytické koncentraci enzymu ve vzorku, se měři fotometricky v alkalickém prostředí jako žlutý nitrofenolát. Fotometrické měřeni se provádí v alkalickém prostředí nad pH 9, neboť disociační konstanta 4-nitrofenolu je asi 7,2.
Stanovení katalytické koncentrace fosfomonoesteras vyžaduje, aby substrát neobsahoval inhibující látky zpomalující enzymovou reakci, které mohou inhibivat enzym nebo zpomalovat enzymové štěpení substrátu. V případě 4-nitrofenylfosfátu jsou to zejména volný 4-nitrofenol a fosforečnan, které jsou jako nečistoty provázející syntézu v substrátu vždy přítomny. Podle Bowerse (G. N. Bowers, Jr., R. B. McComb, A. Upretti: Clin. Chem. 27, 135 až 143, 1981) může 4-nitrofenylfosfát vysoké čistoty obsahovat nejvýše 10 milimolů volného fosforečnanu a 0,3 milimolů 4-nitrofenolu na jeden mol substrátu.
Substrát 4-nitrofenylfosfát je jak v pevném stavu, tak zejména v roztoku značně nestálý. Spontánně se rozkládá a postupně v něm narůstá obsah obou rozkladných produktů, které inhibují při stanovení fosfomonoesteras enzymový rozklad substrátu, pravděpodobně mechanismem zpětné vazby.
Rozklad substrátu je katalyzován teplem, světlem, ale i látkami, které působí jako transfosforylační média pro stanovení fosfomonoesteras. Studiem vodných roztoků 4-nitrofenýlfosfátu o různém pH bylo zjištěno, že spontánní rozklad substrátu je katalyzován vodíkovými ionty. V kyselém prostředí probíhá nejrychleji, pomaleji v prostřed! neutrálním a nejpomaleji v prostředí slabě alkalickém. Protože produkty hydrolýzy 4-nitrofenylfosfátu postupně reakční médium okyselují, působí současně jako autokatalyzátory jeho rozkladu. Tak například vodný roztok vysoce čistého 4-nitrofenylfosfátu, jehož pH bylo nastaveno hydroxidem sodným na 8,5 změnil po týdnu pH na 7 a obsah volného 4-nitrofenolu se v roztoku zvýšil čtyřnásobně. Proměnné a postupně se zvyšující množství nečistot ve 4-nitrofenylfosfátu způsobuje změny v enzymové štěpitelnosti substrátu, a tím i změny ve výsledné katalytické aktivitě fosfomonoesteras. Tyto vlivy závažným způsobem snižují spolehlivost a správnost enzymologických vyšetření.
Uvedené nedostatky do značné míry odstraňuje stabilizovaný substrát na bázi 4-nitrofenylfosfátu. Jeho podstata spočívá v tom, že na 1 mol 4-nitrofenylfosfátu obsahuje 20 až 97 milimolů fosforečnanového pufru. Fosforečnanový pufr je tvořen sodnými nebo draselnými solemi kyselin hydrogenfosforečné a dihydrogenfosforečné. Pokud obsahuje substrát endogenní fosforečnan sodný v množství 20 až 97 milimolů na 1 mol substrátu, což odpovídá obsahu volných anorganických fosforečnanů v substrátu 0,5 až 2,4 % hmot. a pH jeho vodného roztoku o koncentraci 1 % hmot. je mezi 8 a 10, plní funkci fosforečnanového pufru přímo endogenní fosforečnany.
Stabilizace 4-nitrofenylfosfátu fosfórečnanovým pufrem o pH 8 až 10 vychází z překvapivého zjištění, že přesné množství alkalického fosforečnanu mezi 20 až 97 milimoly na 1 mol substrátu již dostatečně 4-nitrofenylfosfát stabilizuje, aniž by fosforečnan ještě působil inhibičně při vlastní enzymové analýze fosfomonoesteras.
Optimální koncentrace fosforečnanového pufru ve 4-nitrofenylfosfátu byla zjištěna experimentálně, na základě stanovení katalytické koncentrace alkalické fosfatasy ve směsném lidském séru se substráty s různým obsahem volných fosforečnanů, kdy byl současně sledován jejich vliv na katalytickou aktivitu séra a na stálost vodných roztoků 4-nitrofenylfosfátu. Bylo zjištěno, že vysoce čistý 4-nitrofenylfosfát s obsahem fosforečnanů nižším než 10 milimolů na·jeden mol, který prakticky není fosforečnanem pufrován, ještě nemůže účinně kompenzovat vliv kysele reagujících složek vznikajících při spontánní hydrolýze substrátu, které autokatalyzují jeho rozklad. Dvojnásobné množství fosforečnanu již vykazuje dostatečný pufrační účinek. Obsah fosforečnanů nad 97 milimolů na mol substrátu již může působit inhibičně př.i enzymové analýze. Podrobněji je vliv obsahu fosforečnanů patrný z tabulky uvedené v příloze.
Optimální pH fosforečnanového pufru pro stabilizaci 4-nitrofenylfosfátu bylo odvozeno z křivek hydrolýzy pufrovaných roztoků substrátu v závislosti na pH.a čase. Bylo zjištěno, že při pH mezi 8 až 10 jsou pufrované roztoky 4-nitrofenylfosfátu nejstálejší. Při nižším nebo i vyšším pří se zvyšuje rychlost štěpení esterové vazby. Protože se vlastní stanovení katalytické koncentrace fosfomonoesteras provádí vždy v roztoku pufrů o koncentraci 50 až 500 nunol/1 a obsah substrátu v inkubační směsi je obvykle mezi 5 až 20 mmol/1, neruší obsah stabilizujících fosforečnanů vlastní enzymové stanovení ani svým pufračním účinkem, nebot jejich koncentrace v inkubační směsi je proti koncentraci vlastního pufračního média pro fosfomonoesterasy nejméně dvacetpětkrát až dvěstěpadesátkrát nižší.
Stabilizace 4-nitrofenylfosfátu pomocí přesného množství fosforečnanového pufru o pH 8 až 10 má několik výhod. Umožňuje stabilizovat jednotným způsobem 4-nitrofenylfosfát jako substrát jak pro kyselé, tak i pro alkalické fosfomonoesterasy, nebot fosforečnan tvoří, na rozdíl od jiných médií, pro 4-nitrofenylfosfát přirozený pufr, který v uvedeném množství při enzymové analýze neinterferuje. Protože endogenní fosforečnan je vždy součástí 4-nitrofenylfosfátu, lze.syntézu nebo čištění substrátu řídit tak, aby obsahoval právě potřebné množství fosforečnanu o pH 8 až 10 nezbytné pro jeho stabilizaci.
Příklad 1
Připraví se vodný roztok 4-nitrofenylfosfátu obsahující 100 mmol/1 substrátu a 2 mmol/1 dihydrogenfosforečnanu draselného. Jeho pH se upraví hydroxidem·draselným na 8 až 10. Roztok se uchovává v-chladu a temnu a je pro stanovení fosfomonoesteras použitelný nejméně dva týdny. Ve zmrazeném stavu je použitelný nejméně 4 měsíce.
Příklad 2
Z vysoce čistého 4-nitrofenylfosfátu, který obsahuje méně než 0,1 % hmot. volných fosforečnanových iontů, z chloridu draselného a z bezvodých solí hydrogenfosforečnanu sodného a dihydrogenfosforečnanu draselného se připraví tablety o hmotnosti 500 mg z tabletovací směsi obsahující:
4-nitrofenylfosfát, disodná sůl, hexahydrát Hydrogenfosforečnan disodný mol
0,095 molů
0,002 molů 5,3 molů
Dihydrogenfosforečnan draselný Chlorid draselný
Tablety se uchovávají v temnu a chladu při teplotě poď +5 °C a jsou pro stanovení fosfomonoesteras použitelné nejméně jeden rok.
Příklad 3
Substrát pro stanovení fosfomonoesteras se připraví z disodné soli 4-nitrofenylfosfátu, hexahydrátu, který obsahuje na 1 mol substrátu 50 mmolů volných anorganických fosforečnanových iontů a jehož vodný roztok o koncentraci 1 % hmot. má pH 9,2.
Tabulka
Stabilizovaný substrát pro stanovení katalytické aktivity fosfomonoesteras
Vliv fosforečnanů ve 4-nitrofenylfosfátu na stanovení alkalické fosfatasy
Obsah PO4 v substrátu (% hmot.) Stanovená aktivita fosfatasy'3'^ (^jkat/1)
0,20 5,13
0,26 5,06
1,27 4,99
2,08 5,08
2,56 ' 5,03
a/ Obsah 0,2 % hmot. PO^ odpovídá obsahu 10 mmol PO^/mol substrátu Reprodukovatel stanovení aktivity asi + 6 %

Claims (1)

  1. předmEt vynalezu
    Stabilizovaný substrát pro stanovení katalytické aktivity fosfomonoesteras na bázi 4-nitrofenylfosfátu, vyznačený tím, že na 1 mol 4-nitrofenylfosfátu obsahuje 20 až 97 milimolů fosforečnanového pufru o pH 8 až 10, přičemž fosforečnanový pufr je tvořen sodnými nebo draselnými solemi kyselin hydrogenfosforečné a dihydrogenfosforečné.
    Severografia, n. p„ MOST
    Cena 2,40 Kčs
CS876784A 1987-09-21 1987-09-21 Stabilizovaný substrát pro stanovení katalytické aktivity fosfomonoesteras CS265578B1 (sk)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS876784A CS265578B1 (sk) 1987-09-21 1987-09-21 Stabilizovaný substrát pro stanovení katalytické aktivity fosfomonoesteras

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS876784A CS265578B1 (sk) 1987-09-21 1987-09-21 Stabilizovaný substrát pro stanovení katalytické aktivity fosfomonoesteras

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS678487A1 CS678487A1 (en) 1989-02-10
CS265578B1 true CS265578B1 (sk) 1989-10-13

Family

ID=5415658

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS876784A CS265578B1 (sk) 1987-09-21 1987-09-21 Stabilizovaný substrát pro stanovení katalytické aktivity fosfomonoesteras

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS265578B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS678487A1 (en) 1989-02-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4543326A (en) Stabilization of oxidase
Lazdunski et al. Flip‐Flop Mechanisms in Enzymology: A Model: the Alkaline Phosphatase of Escherichia coli
Nelsestuen et al. Role of gamma-carboxyglutamic acid. Cation specificity of prothrombin and factor X-phospholipid binding.
Harkness Studies on human placental alkaline phosphatase: II. kinetic properties and studies on the apoenzyme
Baginski et al. Glucose-6-phosphatase
Innocenti et al. Investigations of the esterase, phosphatase, and sulfatase activities of the cytosolic mammalian carbonic anhydrase isoforms I, II, and XIII with 4-nitrophenyl esters as substrates
EP0072581B1 (en) The stabilization of working reagent solutions containing enzymes, and the use of such stabilized reagents in enzyme or substrate assays
EP0085348B1 (en) Reagents for the determination of enzymes
Martin et al. [55] Characterization and assay of phosphatidate phosphatase
Hird et al. Oxidative phosphorylation accompanying oxidation of short-chain fatty acids by rat-liver mitochondria
Wahlefeld et al. Creatinine
Campbell et al. Spectrofluorimetric determination of acid phosphatase activity
Siddiqi An electrochemical assay system for peroxidase and peroxidase-couplers reactions based on a fluoride ion-selective electrode.
Mushak et al. Hydrolysis of a stable oxygen ester of phosphorothioic acid by alkaline phosphatase
Neumann et al. Hydrolysis of S-substituted monoesters of phosphorothioic acid by alkaline phosphatase from Escherichia coli
EP0045122B1 (en) Stabilization of creatine kinase (ck) and its application as a reference standard
Lenz et al. On the nature of the serum enzyme catalyzing paraoxon hydrolysis
CS265578B1 (sk) Stabilizovaný substrát pro stanovení katalytické aktivity fosfomonoesteras
US4816393A (en) Nucleoside triphosphate-dependent 1-methylhydantoinase, a process for obtaining it and the use thereof
Holmsen et al. [29] Measurement of secretion of lysosomal acid glycosidases
GB1593949A (en) Diagnostic reagents
Wirnt Trypsin
US4206280A (en) Determination of acid phosphatase
CA2237888C (en) Improved method for the determination of lipase
EP0104780B1 (en) Measurement of alpha-amylase activity