CS264947B1 - Mouse lymphocyte hybridoma GF-01 producing antibody to glial acid protein of middle filaments - Google Patents
Mouse lymphocyte hybridoma GF-01 producing antibody to glial acid protein of middle filaments Download PDFInfo
- Publication number
- CS264947B1 CS264947B1 CS883399A CS339988A CS264947B1 CS 264947 B1 CS264947 B1 CS 264947B1 CS 883399 A CS883399 A CS 883399A CS 339988 A CS339988 A CS 339988A CS 264947 B1 CS264947 B1 CS 264947B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- hybridoma
- cells
- antibody
- glial
- acidic protein
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Řešení ,$e týká lymfocytárního hybridomu, produkujícího protilátku proti lidskému gliovému kyselému proteinu středních filament, uloženého ve sbírce hybridomů Ústavu molekulární genetiky ČSAV v Praze pod označením IMG CZAS GF-01. Samotná monoklonální protilátka hybridomů GF-01 je vhodná pro použití v enzymoimunologické a radioimunologické analýze, k testování tkání, buněk a tělních tekutin, jakož i pro vizualizaci gliového kyselého proteinu v buňkách na úrovni optického a elektronového mikroskopu a i imunohistochemického průkazu gliového kyselého proteinu na tkáňových řezech.The solution relates to a lymphocyte hybridoma producing an antibody against human glial acidic protein of intermediate filaments, stored in the hybridoma collection of the Institute of Molecular Genetics of the Czechoslovak Academy of Sciences in Prague under the designation IMG CZAS GF-01. The monoclonal antibody of the hybridoma GF-01 itself is suitable for use in enzyme-immunological and radioimmunological analysis, for testing tissues, cells and body fluids, as well as for visualization of glial acidic protein in cells at the optical and electron microscope level and also immunohistochemical detection of glial acidic protein on tissue sections.
Description
Vynález se týká myšího lymfocytárního hybridomu GF-01 produkujícího monoklonální protilátku třídy IgM proti lidskému gliovému kyselému proteinu středních filament (GFAP).The invention relates to the murine lymphocyte hybridoma GF-01 producing a monoclonal antibody of the IgM class against human glial intermediate filament acidic protein (GFAP).
Doposud se protilátky obecně vyrábějí imunizací zvířat tak, že je antigen opakovaně aplikován zpravidla spolu s adjuvans pokusným zvířatům, nejčastěji králíkům, morčatům prasatům či kozám. Sérum takto imunizovaných zvířat se odebírá po určité době působení antigenu a slouží jako zdroj protilátek, které se používají pro diagnostiku a léčbu řady onemocnění, ale i pro studium výskytu a funkce těchto antigenů v buněčné patofyziologii. Tento postup, nazývaný konvenční imunizací, má několik nevýhod. V séru imunizovaných zvířat se nachází heterogenní směs protilátek, jejichž spektrum je v každém jednotlivém organismu různé a neopakovatelné. Organismus zpravidla vytvoří kromě protilátek vůči žádanému antigenu i protilátky proti nečistotám antigenního preparátu, které je nutné ze sér odstraňovat složitým způsobem zvaným vysycování. V případě antisér proti proteinům středních filament je situace komplikována jejich značnou vzájemnou podobností, takže připravit konvenční antisérum proti jedinému proteinu středních filament vysycováním je pracné. Výrobní šarže konvenčních antisér se proto dají jen velmi nesnadno standardizovat a vycházejí z výroby v širokém rozmezí kvality. Pro výrobu každé šarže je třeba připravit značně čistý imunizační antigen a další antigeny pro vysycení balastních protilátek proti nečistotám či proti podobným molekulám, jako je např. vimentin, desmin nebo keratiny.Until now, antibodies have generally been produced by immunizing animals by repeatedly applying the antigen, usually together with an adjuvant, to experimental animals, most often rabbits, guinea pigs, pigs or goats. The serum of animals immunized in this way is collected after a certain period of exposure to the antigen and serves as a source of antibodies that are used for the diagnosis and treatment of a number of diseases, but also for studying the occurrence and function of these antigens in cellular pathophysiology. This procedure, called conventional immunization, has several disadvantages. The serum of immunized animals contains a heterogeneous mixture of antibodies, the spectrum of which is different and unrepeatable in each individual organism. In addition to antibodies to the desired antigen, the organism usually produces antibodies against impurities of the antigen preparation, which must be removed from the serum in a complex process called saturation. In the case of antisera against intermediate filament proteins, the situation is complicated by their considerable mutual similarity, so preparing a conventional antiserum against a single intermediate filament protein by saturation is laborious. Therefore, production batches of conventional antisera are very difficult to standardize and come out of production with a wide range of quality. For the production of each batch, it is necessary to prepare a highly pure immunizing antigen and other antigens to saturate ballast antibodies against impurities or similar molecules such as vimentin, desmin or keratins.
Tyto nedostatky jsou odstraněny použitím hybridomu produkujícího zcela homogenní monoklonální protilátku proti kyselému proteinu gliálních středních filament (GFAP) podle vynálezu .These shortcomings are overcome by using a hybridoma producing a completely homogeneous monoclonal antibody against glial intermediate filament acidic protein (GFAP) according to the invention.
Tento myší lymgocytární hybridom GF-01 byl získán způsobem známým z odborné literatury (Kohler G., Milstein C.: Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specifity, Nátuře 256:495, 1975: Galfré G., Howe S. C., Milstein C., Butcher G. W., Howard J. C.: Antibodies to major histocompatibility antigen produced by hybrid cell lineš, Nátuře 266:550, 1977; Fazekas de St. Groth S., Scheidigger D.: Production of monoclonal antibodies: Stratégy and tactics, J. Immuol. Meth. 35: 1-21, 1980) klonováním souboru hybridních buněk, vzniklých fúzí buněk myší myelomové linie Sp 2/0 a buněk získaných ze sleziny myší kmene BALB/c, imunizovaných izolovaným cytoskeletálním preparátem' získaným z prasečího mozku.This mouse lymphocytic hybridoma GF-01 was obtained in a manner known from the literature (Kohler G., Milstein C.: Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity, Nature 256:495, 1975; Galfré G., Howe S. C., Milstein C., Butcher G. W., Howard J. C.: Antibodies to major histocompatibility antigen produced by hybrid cell lines, Nature 266:550, 1977; Fazekas de St. Groth S., Scheidigger D.: Production of monoclonal antibodies: Strategies and tactics, J. Immuol. Meth. 35: 1-21, 1980) by cloning a set of hybrid cells, resulting from the fusion of cells of the mouse myeloma line Sp 2/0 and cells obtained from the spleen of BALB/c mice, immunized with an isolated cytoskeletal preparation obtained from pig brain.
Výhodou myšího lymfocytárního hybridomu GF-01 je, že se váže na cílovou strukturu GFAP, která je stabilní i při relativní drastické fixaci lidského materiálu formaldehydem a následném zalití do parafinu, což je rutinně používané fixace histologického materiálu ve všech histopatologických laboratořích. Jiné v zahraničí známé protilátky např. anti GFAP protilátka fy Labsystems, Helsinki, Finsko reagují na obdobně připravených řezech až po enzymovém natrávení nebo vyžadují šetrnější speciální fixaci. Žádné z protilátek proti lidskému kyselému proteinu gliálních středních filament produkované dosud popsanými hybridomy nemají schopnost reagovat na parafinových, nenatrávených řezech. Protilátka GF-01 dává velmi dobré výsledky i na mražených tkáňových řezech. Tabulka č. 1 ukazuje sílu reakce protilátky GF-01 při použití různých způsobů zpracování tkáně:The advantage of the mouse lymphocyte hybridoma GF-01 is that it binds to the target structure GFAP, which is stable even with relatively drastic fixation of human material with formaldehyde and subsequent embedding in paraffin, which is a routinely used fixation of histological material in all histopathological laboratories. Other antibodies known abroad, e.g. anti GFAP antibody from Labsystems, Helsinki, Finland, react on similarly prepared sections only after enzyme digestion or require more gentle special fixation. None of the antibodies against human glial intermediate filament acidic protein produced by the hybridomas described so far have the ability to react on paraffin, undigested sections. The GF-01 antibody also gives very good results on frozen tissue sections. Table 1 shows the strength of the reaction of the GF-01 antibody when using various methods of tissue processing:
Tabulka 1Table 1
Intenzita reakce protilátky GF-01 na tkáňových řezech fixovaných třemi různými způsoby (+ středně silná reakce, ++ silná reakce, - nereaktivita)Intensity of the GF-01 antibody reaction on tissue sections fixed in three different ways (+ moderate reaction, ++ strong reaction, - non-reactivity)
Použitá fixace metanol/aceton metakarn formaldehydFixation used methanol/acetone metacarb formaldehyde
Příprava tkáně zmražené parafinované parafinovanéTissue preparation frozen paraffin embedded paraffin embedded
Výsledná reakce + ++ ++Resulting reaction + ++ ++
Výsledky ukazují, že tato protilátka muže být využita na všech patologických odděleních pro rutinní diferenciální diagnostiku k odlišení nádorů pocházejících z gliových buněk.The results show that this antibody can be used in all pathology departments for routine differential diagnosis to distinguish tumors originating from glial cells.
CS 264 947 BlCS 264 947 Bl
Hybridom GF-01 je možné kultivovat in vitro v médiích vhodných pro pěstování živočišných buněk nebo v podmínkách in vivo v peritoneální dutině myší kmene BALB/c. Hybridom GF-01 je vhodný k dlouhodobému uchovávání v konzervách uložených v kapalném dusíku. Produkci monoklonální protilátky je možno zahájit po rozmražení buněčné konzervy, aniž by bylo třeba dalšího antigenu. Monoklonální protilátka, produkovaná hybridomem GF-01, reaguje s lidským GFAP a nereaguje s žádným proteinem středních filament ani s dalšími buněčnými bílkovinami, jak bylo zjištěno imunoblotingem, enzymoimunologickým testem, nepřímou imunoperixidázou a nepřímou imunofluorescenční metodou. Průkaz této specifičnosti byl získán po elektroforetickém přenosu rozsáhlého spektra buněčných a tkáňových, lysátů a preparátů izolovaného cytoskeletu různých lidských tkání a buněčných linií, a to po separaci bílkovinných komponent v polyakrylamidovém gelu v prostředí dodecylsulfátu sodného za redukujících podmínek. Po přenosu rozdělených bílkovin na nitrocelulózovou membránu byl GFAP specificky vizualizován (detekován) s použitím GF-01 a následně prasečího antiséra proti myším imunoglobulinům konjugovaného s křenovou peroxidázou (ÚSOL, Praha). Jako pozitivní kontrola sloužila monoklonální protilátka proti GFAP od firmy Labsystems, Helsinki, Finsko, která dávala obdobné výsledky.The GF-01 hybridoma can be cultured in vitro in media suitable for growing animal cells or in vivo in the peritoneal cavity of BALB/c mice. The GF-01 hybridoma is suitable for long-term storage in cans stored in liquid nitrogen. Monoclonal antibody production can be initiated after thawing the cell can without the need for additional antigen. The monoclonal antibody produced by the GF-01 hybridoma reacts with human GFAP and does not react with any intermediate filament protein or other cellular proteins, as determined by immunoblotting, enzyme-linked immunosorbent assay, indirect immunoperoxidase, and indirect immunofluorescence. This specificity was demonstrated by electrophoretic transfer of a wide range of cell and tissue lysates and preparations of isolated cytoskeleton from various human tissues and cell lines, after separation of protein components in a polyacrylamide gel in sodium dodecyl sulfate under reducing conditions. After transfer of the separated proteins to a nitrocellulose membrane, GFAP was specifically visualized (detected) using GF-01 and subsequently a porcine antiserum against mouse immunoglobulins conjugated with horseradish peroxidase (ÚSOL, Prague). A monoclonal antibody against GFAP from Labsystems, Helsinki, Finland, which gave similar results, served as a positive control.
Pomocí imunoperoxidázové reakce na tkáňových řezech lidských tkání, kterou potvrzovaly i výsledky dosažené při nepřímé imunofluorescentní metodě, byla u protilátky GF-01 zjištěna reaktivita s astrocyty a jejich modifikacemi v mozku a míše. Pozitivní reakce byla též prokázána v buňkách astrocytomů a ependymomů. V nepřímé imunofluorescenci využívající protilátky GF-01 a následné inkubace s prasečím antisérem proti myším imunoglobulinům označeným fluorescein-izo-thio-kyanátem nedocházelo u testovaných buněčných typů několika druhů k zobrazení intermediálních filament vimentinového, neutrálního i keratinového typu. Nebyla též prokázána reaktivita s buňkami gliomu krysy. Mikrotubuly ani mikrofilamenta odlišitelné svojí charakteristickou lokalizací a citlivostí ke kolcemidu a cytochalasinu B s protilátkou GF-01 nereagovaly. Rovněž nereagovaly ostatní struktury testovaných buněk s výjimkou nematinových struktur u 3T3 buněk, které mohou být totožné nebo podobné GFAP (Willingham M.Using the immunoperoxidase reaction on tissue sections of human tissues, which was also confirmed by the results achieved with the indirect immunofluorescence method, the GF-01 antibody was found to be reactive with astrocytes and their modifications in the brain and spinal cord. A positive reaction was also demonstrated in astrocytoma and ependymoma cells. In indirect immunofluorescence using GF-01 antibodies and subsequent incubation with swine antiserum against mouse immunoglobulins labeled with fluorescein-iso-thio-cyanate, intermediate filaments of the vimentin, neutral and keratin types were not visualized in the tested cell types of several species. Reactivity with rat glioma cells was also not demonstrated. Microtubules or microfilaments distinguishable by their characteristic localization and sensitivity to colcemid and cytochalasin B did not react with the GF-01 antibody. Other structures of the tested cells also did not react, with the exception of nematin structures in 3T3 cells, which may be identical or similar to GFAP (Willingham M.
C., Richert W. D., Rutterford A. V.: Experimental Cell Research 171: 285-295, 1987). Tento pozitivní nález však v žádném případě nemůže vést k záměně v identifikaci třídy intermediálních filament, nebot jde o zcela odlišné struktury.C., Richert W. D., Rutterford A. V.: Experimental Cell Research 171: 285-295, 1987). However, this positive finding can in no way lead to confusion in the identification of the intermediate filament class, as these are completely different structures.
Myší lymfocytární hybridom GF-01 je uložen ve sbírce hybridomů Ostavu molekulární genetiky ČSAV v Praze pod označením IMG CZAS GF-01.The mouse lymphocyte hybridoma GF-01 is stored in the hybridoma collection of the Molecular Genetics Collection of the Czechoslovak Academy of Sciences in Prague under the designation IMG CZAS GF-01.
PříkladExample
Za účelem pomnožení buněk hybridomů GF-01 v podmínkách in vivo bylo aplikováno 1x10^ buněk do peritoneální dutiny myší. Aby došlo k lepšímu uchycení aplikovaných buněk, byla myš 14 dnů před přenosem buněk hybridomů ovlivněna parafinovým olejem (0,5 ml peritoneálně). Po 12 dnech růstu hybridomů v peritoneální dutině byla myš usmrcena a naprodukovaná ascitická tekutina odebrána. Celkem bylo získáno 2,5 ml ascitické tekutiny, která obsahovala 2,5 mg/ml imunoglobulinu. Specificita získané protilátky byla testována na zmražených řezech lidského mozku, a to jak v nepřímé imunofluorescenci s využitím prasečí protilátky proti myšímu imunoglobulinu značené fluorescein-izo-thiokyanátem a imunoperoxidázou reakcí s prasečí protilátkou proti myšímu Ig značenou křenovou peroxidázou (ÚSOL, Praha), tak i po elektroforetickém přenosu tkáňového lyzátu připraveného z lidského mozku na nitrocelulózovou membránu s následnou detekcí nepřímým imunoperoxidázovým testem (viz výše). Výsledky jsou shrnuty v tabulce č. 2.In order to propagate GF-01 hybridoma cells in vivo, 1x10^ cells were injected into the peritoneal cavity of mice. In order to improve the adhesion of the injected cells, the mice were treated with paraffin oil (0.5 ml peritoneally) 14 days before the transfer of hybridoma cells. After 12 days of hybridoma growth in the peritoneal cavity, the mice were sacrificed and the produced ascitic fluid was collected. A total of 2.5 ml of ascitic fluid was obtained, which contained 2.5 mg/ml of immunoglobulin. The specificity of the obtained antibody was tested on frozen sections of human brain, both in indirect immunofluorescence using a swine antibody against mouse immunoglobulin labeled with fluorescein isothiocyanate and immunoperoxidase by reaction with a swine antibody against mouse Ig labeled with horseradish peroxidase (ÚSOL, Prague), and after electrophoretic transfer of tissue lysate prepared from human brain to a nitrocellulose membrane with subsequent detection by an indirect immunoperoxidase test (see above). The results are summarized in Table 2.
Tabulka 2Table 2
Reaktivita protilátky GF-01 s normálními lidskými tkáněmi (+ pozitivita, - negativita,Reactivity of the GF-01 antibody with normal human tissues (+ positivity, - negativity,
V-vimentin, D-desmin, G-GFAP, N-proetiny neurofilament, K-keratiny).V-vimentin, D-desmin, G-GFAP, neurofilament N-proteins, K-keratins).
CS 264 947 BlCS 264 947 Bl
Tabulka 2 pokračováníTable 2 continued
Buňky periferních nervovýchPeripheral nerve cells
Z výsledků uvedených v tabulce č. 2 je zřejmé, že protilátka GF-01 reaguje výhradně s lidským kyselým gliovým fibrilárním proteinem. Úzká specificita protilátky byla potvrzena v imunoblotingu, kde byla nalezena silná reakce s GFAP, přičemž ostatní testované cytoskeletální proteiny byly negativní (víz tabulka č. 3).The results presented in Table 2 show that the GF-01 antibody reacts exclusively with human glial fibrillary acidic protein. The narrow specificity of the antibody was confirmed by immunoblotting, where a strong reaction with GFAP was found, while other cytoskeletal proteins tested were negative (see Table 3).
Tabulka 3Table 3
Reaktivita protilátky GF-01 s cytoskeletálními proteiny z lidského mozku (+ reaktivita,Reactivity of the GF-01 antibody with cytoskeletal proteins from human brain (+ reactivity,
- negativita)- negativity)
Cytoskeletální protein Reakce v. imunoblotingu alfa-tubulin beta-tubulin vimentin proteiny neurofilamentCytoskeletal protein Reaction in immunoblotting alpha-tubulin beta-tubulin vimentin proteins neurofilament
GFAP +GFAP +
Specifita získané protilátky byla dále testována na panelu buněk z tkáňových kultur, a to jak v nepřímé imunofluorescenci z tkáňových kultur, a to jak v nepřímé imunofluorescenci s využitím prasečí protilátky proti myšímu imunoglobulinu značené fluorescein-izo-thiokyanátem, tak i po elektroforetickém přenosu buněčných lyzátů na nitrocelulózovou membránu s následnou detekcí nepřímým imunoperoxidázovým testem. Výsledky jsou shrnuty v tabulce č. 4.The specificity of the obtained antibody was further tested on a panel of cells from tissue cultures, both in indirect immunofluorescence from tissue cultures, both in indirect immunofluorescence using a swine antibody against mouse immunoglobulin labeled with fluorescein isothiocyanate, and after electrophoretic transfer of cell lysates to a nitrocellulose membrane with subsequent detection by indirect immunoperoxidase assay. The results are summarized in Table 4.
Tabulka 4Table 4
Reaktivita protilátky GF-01 s buňkami různých linií (V-vimentin, K-keratiny, N-proteiny, neurofilament, IF-imunofluorescence, IB-imunobloting)Reactivity of the GF-01 antibody with cells of different lineages (V-vimentin, K-keratins, N-proteins, neurofilament, IF-immunofluorescence, IB-immunoblotting)
Druh Tkáňový původ Název Typ interm. Reakce filament IF IBSpecies Tissue origin Name Type interm. Reaction filament IF IB
LEP V -X člověk plicnl fibroblast kulatobuněčný karcinomLEP V - X human lung fibroblast round cell carcinoma
U 1280At 1280
CS 264 947 BlCS 264 947 Bl
Tabulka 4 pokračováníTable 4 continued
x pozitivita nematinových strukturx positivity of nematin structures
Buňky hybridomu GF-01 mají morfologický obraz typických myelomových buněk. V podmínkách in vitro rostou v podobě polosuspenzních kultur. Základním kultivačním médiem je RPMI doplněné L-glutaminem (3mM), penicilinem, streptomycinem, gentamyci-nem a inaktivovaným koňským sérem. Hybridom je kultivován při 37 °C, střední generační čas je 19 hodin a modální počet chromosomů 7 měsíců po sestrojení hybridomu byl 76. Produkovaná protilátka je myší monoklonální imunoglobulin třídy IgM.The GF-01 hybridoma cells have a morphological appearance typical of myeloma cells. They grow in vitro as semi-suspension cultures. The basic culture medium is RPMI supplemented with L-glutamine (3mM), penicillin, streptomycin, gentamicin and inactivated horse serum. The hybridoma is cultured at 37 °C, the median generation time is 19 hours and the modal chromosome number 7 months after the hybridoma was constructed was 76. The antibody produced is a mouse monoclonal immunoglobulin of the IgM class.
Monoklonální protilátka produkovaná hybridomem GF-01 reaguje specificky s lidským gliovým kyselým fibrilárním proteinem i na formaldehydem fixovaných histologických řezech zalitých parafinem a je tedy využitelná ve všech histopatologických laboratořích za použití různých testů ímunohistochemických, enzymoimunologických, imunofluorescenčních, imunoblotingu. Kromě lékařské praxe je využitelná v oblasti teoretického výzkumu lidských intermediálních filament.The monoclonal antibody produced by the GF-01 hybridoma reacts specifically with human glial acidic fibrillary protein even on formaldehyde-fixed paraffin-embedded histological sections and is therefore usable in all histopathological laboratories using various immunohistochemical, enzyme-immunological, immunofluorescence, and immunoblotting tests. In addition to medical practice, it is useful in the field of theoretical research on human intermediate filaments.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS883399A CS264947B1 (en) | 1988-05-19 | 1988-05-19 | Mouse lymphocyte hybridoma GF-01 producing antibody to glial acid protein of middle filaments |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS883399A CS264947B1 (en) | 1988-05-19 | 1988-05-19 | Mouse lymphocyte hybridoma GF-01 producing antibody to glial acid protein of middle filaments |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS339988A1 CS339988A1 (en) | 1988-12-15 |
CS264947B1 true CS264947B1 (en) | 1989-09-12 |
Family
ID=5373932
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS883399A CS264947B1 (en) | 1988-05-19 | 1988-05-19 | Mouse lymphocyte hybridoma GF-01 producing antibody to glial acid protein of middle filaments |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CS (1) | CS264947B1 (en) |
-
1988
- 1988-05-19 CS CS883399A patent/CS264947B1/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CS339988A1 (en) | 1988-12-15 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Santella et al. | Monoclonal antibodies to DNA modified by a benzo [a] pyrene diol epoxide | |
JPH08275778A (en) | Monoclonal antibody-producing hybridoma cell line | |
EP2105447A1 (en) | Avian-derived antibody capable of binding specifically to human hmgb1, immunological determination method for human hmgb1, and immunological determination reagent for human hmgb1 | |
Dreyer et al. | Tissue specific nuclear antigens in the germinal vesicle of Xenopus laevis oocytes | |
US11953504B2 (en) | Antibody specifically binding to bovine pregnancy-associated glycoprotein 1 and use thereof | |
JPS61204135A (en) | Inhibitor for cancer initiative gene producer | |
DE69030494T2 (en) | CARCINOMA RELATED HAPTOGLOBIN (HPR) | |
DE69011613T2 (en) | Monoclonal antibody to nuclear hCG-beta, its production and use. | |
Schaart et al. | Baby hamster kidney (BHK-21/C13) cells can express striated muscle type proteins | |
DE3688204T2 (en) | MONOCLONAL ANTIBODY AGAINST A P21-RELATED DODECAPEPTIDE OF THE RAS ONCOGEN. | |
DE69619226T2 (en) | MONOCLONAL ANTIBODY AGAINST THE COMPLEX OF FACTOR XA AND THE INHIBITOR FOR THE TISSUE FACTOR (XA. TFPI) | |
Abrass | Evaluation of sequential glomerular eluates from rats with Heymann nephritis. | |
JPS61275655A (en) | Immunological histochemical analysis method for detecting tumor connective mark p53 | |
DE68929511T2 (en) | Detection, quantification and classification of RAS proteins in body fluids and tissues | |
CS264947B1 (en) | Mouse lymphocyte hybridoma GF-01 producing antibody to glial acid protein of middle filaments | |
WO1986002359A1 (en) | Monoclonal antibodies and their use | |
CS264946B1 (en) | Mouse lymphocyte hybridoma NF-01 producing antibody against the 210 kDa protein neurofilament | |
WO1986002355A1 (en) | Monoclonal antibodies and their use | |
JP3419084B2 (en) | Antibody Recognizing Active MAP Kinase | |
CN116814573B (en) | Immunogen for preparing succinylation site specific antibody of lactate dehydrogenase C, and preparation method and application thereof | |
CA1294905C (en) | Anti-lafora body monoclonal antibody | |
WO1986002354A1 (en) | Monoclonal antibodies and their use | |
JPS63222699A (en) | Monoclonal antibody and measurement of pseudouridine phi using said antibody | |
SU1726511A1 (en) | Strain of hybridous cultured cell mus musculus l , used for preparation of monoclonal antibodies to the general antigenic determinant of human and swine insulin | |
JP3005284B2 (en) | Antibodies to smooth muscle myosin heavy chain |