CS262081B1 - Zařízení pro automatickou výrobu řady peptidů syntézou na pevné fázi - Google Patents
Zařízení pro automatickou výrobu řady peptidů syntézou na pevné fázi Download PDFInfo
- Publication number
- CS262081B1 CS262081B1 CS873178A CS317887A CS262081B1 CS 262081 B1 CS262081 B1 CS 262081B1 CS 873178 A CS873178 A CS 873178A CS 317887 A CS317887 A CS 317887A CS 262081 B1 CS262081 B1 CS 262081B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- peptides
- reactors
- series
- connected via
- way valve
- Prior art date
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Zařízení pro automatickou výrobu řady peptidů syntézou na pevné fázi, které se skládá ze zásobních lahví, ve kterých Je přetlak 20 až 50 kPa inertního plynu, spojených přes distribuční ventil se sériově zapojenými reaktory, které jsou spojeny přes čtyřcestný ventil s odpadem, a zásobník je propojen přes čtyřcestný ventil a peristaltické čerpadlo s distribučním ventilem a reaktory. Zařízení bylo s úspěchem využito pro syntézu řady peptidů současně.
Description
(54) Zařízení pro automatickou výrobu řady peptidů syntézou na pevné fázi
Zařízení pro automatickou výrobu řady peptidů syntézou na pevné fázi, které se skládá ze zásobních lahví, ve kterých Je přetlak 20 až 50 kPa inertního plynu, spojených přes distribuční ventil se sériově zapojenými reaktory, které jsou spojeny přes čtyřcestný ventil s odpadem, a zásobník je propojen přes čtyřcestný ventil a peristaltické čerpadlo s distribučním ventilem a reaktory.
Zařízení bylo s úspěchem využito pro syntézu řady peptidů současně.
Obr. <
Vynález se týká zařízení pro automatickou výrobu řady pepidů syntézou na pevné fázi.
V současné době je při základním výzkumu nových preparátů peptidového charakteru kladen požadavek získat k předběžnému testování velké soubory poměrně malých množství peptidů. Jak klasické provedení syntézy peptidů na pevné fázi v míchaném reaktoru, tak kontinuální průtočné zařízení, které vyžaduje aparaturu podobnou zařízení pro vysokoúčinnou kapalinovou chromatografií, tomuto trendu hevyhovují, protože syntetizují větší množství vždy jen jednoho peptidů. Připojování chráněných aminokyselin k polymernímu nosiči se provádí promývacími cykly, které většinou řídí automat. Aby bylo možné syntetizátor peptidů automaticky řídit, je nutné použít kompaktibilní cykly, takže všechny kroky syntézy jsou shodné s výjimkou připojování aminokyseliny. Tímto způsobem se syntetizují stále se opakujícími shodnými cykly jednotlivé peptidy. Současná zařízení však neumožňují přípravu několika různých peptidů vedle sebe, takže každé i sebemenší množství žádaných peptidů se musí připravovat samostatně. To je náročné hlavně časově, přitom spotřeba energie 1 surovin (zvláště rozpouštědel) je značná.
Uvedené nevýhody odstraňuje zařízení pro automatickou výrobu řady peptidů syntézou na pevné fázi, skládající se ze zásobních lahví pod tlakem, distribučního a vícecestného ventilu, průtočných reaktorů a peristaltického čerpadla podle vynálezu, jehož podstata spočívá v tom, že zásobní láhve, ve kterých je přetlak 20 až 50 kPa inertního plynu, jsou spojeny přes distribuční ventil se sériově zapojenými reaktory, které jsou spojeny přes vícecestný ventil s odpadem a zásobník je propojen přes vícecestný ventil a peristaltické čerpadlo s distribučním ventilem a reaktory.
Zařízení podle vynálezu umožňuje současnou výrobu řady různých peptidů a tím podstatně zkracuje dobu jejich přípravy. To má hlavní výhodu v tom, že je okamžitě k dispozici např. menší množství řady peptidů, potřebných třeba pro klinické zkoušky, další syntézu nebo výzkumné práce. Zařízením podle vynálezu dojde k efektivnějšímu využití všech surovin, energie i pracovní obsluhy, protože zvláště při miniaturizaci zařízení a jeho napojení na počítač je celá výroba řízena minimálním počtem lidí a z jednoho místa. Zařízení podle vynálezu podstatně zrychluje a zjednodušuje syntézu peptidů.
Na připojených výkresech je znázorněno zařízení podle vynálezu. Na obr. 1 je znázorněn v řezu jeden průtokový reaktor, na obr. 2 je schematicky nakresleno sériové zapojení řady reaktorů tak, jak bylo ověřeno v praxi autory vynálezu při přípravě řady nových peptidů.
Zařízení podle vynálezu se skládá ze zásobních lahví 1, ve kterých jsou připravena různá rozpouštědla a roztoky činidel jako např. DMF, DCM, DIEA v DCM, TFA v DCM apod. Ze zásobních lahví 1 jsou teflonovými hadičkami 7 přes distribuční ventil 2 napouštěny žádané roztoky do reaktorů 4, které jsou sériově propojeny a jejichž počet není omezen. V konkrétním případě je možno zařízení použít i jen pro jeden reaktor 4, přičemž velikost reaktorů 4 se řídí potřebou připravovaného množství peptidů. Z reaktorů 4 vedou teflonové hadičky 7 přes čtyřcestný ventil 3 do odpadu 8, kde se shromažďují již nepotřebná rozpouštědla. Zásobník 6, ve kterém je aktivovaná chráněná aminokyselina, je spojen teflonovými hadičkami 7, přes čtyřcestný ventil 3 a peristaltické čerpadlo 5 a distribuční ventil 2 s reaktory 4.
Zařízení podle vynálezu pracuje tak, že ze zásobních lahví 1, které jsou pod tlakem inertního plynu, jehož hodnota se vyrovnává pojistnými tlakovými ventily, nadávkuje příslušný roztok přes distribuční ventil 2 do reaktorů 4. V reaktoru 4 je polymerní nosič, upravený benzhydrylaminovými skupinami nebo chlormetylovanými skupinami esterifikovanými karboxyterminální aminokyselinou, na který se postupně přikondenzovávají aktivní chráněné aminokyseliny, které se předem mimo připraví a shromažďují v zásobníku 6. Tyto chráněné aminokyseliny se ze zásobníku 6 vedou přes čtyřcestný ventil 3 a peristaltické čerpadlo 5 a distribuční ventil 2 do reaktorů 4. Po nadávkování chráněné aminokyseliny se přepne čtyřcestný ventil tak, aby ACA recirkulovala v okruhu, který tvoří peristal-. tické čerpadlo 5, distribuční ventil 2, reaktor 4 a čtyřcestný ventil 3. Po ukončení reakce, která se sleduje ninhydrinovým testem, se čtyřcestný ventil přepne do původní polohy a ACA se vymyje z reaktorů 4 a příslušné kontaminované části zařízení rozpouštědlem přímo do odpadu 8. Reaktory jsou určeny typem chráněné aminokyseliny, kterou je nutné kondenzovat, a proto před každým reakčním cyklem se operativně mění počet sériově zapojených reaktorů 4.
Reaktor 4 je sériově vyráběná polypropylenová chromatografická kolonka, opatřená uvnitř dvěma síťkami, mezi kterými je polymerní nosič a zvenku má 2 kónické 'koncovky, které umožňují sériové zapojení reaktorů. Vlastní reaktor 4 je ovšem možné vyrobit ze skla či jiného vhodného materiálu, přičemž vždy je nutno splnit požadavek přesného zhotovení do sebe zapadajících koncovek. Velikost reaktorů je určena množstvím připravovaných peptidů.
V zařízení podle vynálezu se syntetizují peptidy na pevné fázi s použitím průtočných reaktorů zapojených do série, v kterých je umístěno malé množství polymerního nosiče a tak je možné připravit větší počet peptidů v množství dostatečném pro orientační biologické testy. Při vlastním ověřování zařízení podle vynálezu se osvědčily polypropylenové průtokové reaktory s dvojitými síťkami, zabraňujícími míšení nosiče, které se běžně používají k předchromatografii při vysokoúčinné kapalinové chromatografii (dále jen HPLC). V zařízení podle vynálezu se do reaktoru umístí polymerní nosič. Reaktory jsou opatřeny koncovkami, podobnými špičce jednorázové injekční stříkačky, které je možné do sebe zasunout. Takovouto sérií reaktorů lze protlačovat kapalinu oběma směry pouhým mírným přetlakem nosného plynu (vzduch, dusík). Syntézu je možno kdykoliv přerušit zrušením přetlaku.
Jednotlivé reaktory se mohou ze série vyřadit nebo naopak nový reaktor zařadit. Této přednosti se nejvíce používá právě při syntéze podobných peptidů, které se liší v jedné aminokyselině, případně vynecháním aminokyseliny nebo zařazením jedné aminokyseliny navíc. Principiálně lze však zařízení použít při syntéze velkého souboru peptidů (více než stoj. Reaktory se pak budou spojovat k zařazení žádané aminokyseliny nezávisle na počtu připojených aminokyselin.
Následující příklady provedení zařízení podle vynálezu pouze dokládají, ale nijak neomezují.
Příklad 1
Do polypropylenových reaktorů (20 X 4 milimetry, volný obsah 0,7 ml) se umístí 150 mg benzhydrylaminového polymerního nosiče (0,8 mmolu/g). Reaktory se označí a zapojí do série. Cykly syntézy sestávají z následujících promývacích kroků:
1. 50 % TFA v DCM,
2. DCM,
3. 10 % DIEA v chloroformu,
4. DCM,
5. DMF,
6. roztok 5 mmolů HOBt esteru aminokyseliny v DMF,
7. DCM.
První syntetický cyklus začíná krokem 2. V sérii jako poslední ve směru toku činidel byl zařazen reaktor, z kterého byly odebírány vzorky. V případě pozitivního· testu na volnou aminoskupinu po provedené kondenzaci byly kroky č. 6 a 7 opakovány a do roztoku aktivní komponenty bylo přidáno katalytické množství dimethylamidopyridinu (100 mg). V jednotlivých cyklech byly připojeny následující chráněné aminokyseliny:
BocLeu, Boc-Pro, Boc-Asn,
Boc-Arg(Tos), Boc-Ser(Bzl),
Boc-Asp( OBzl], Boc-Arg(Tos),
Boc-Tyr(Z), Boc-Tyr(Z) a Boc-Val.
Postupně byl vždy na jeden cyklus (zařazení jedné aminokyseliny) vyřazen jeden reaktor. Výjimku tvoří první a poslední reaktor ve směru toku činidel, který byl ponechán v sérii celou syntézu a na vyřazení tyrosinu ze sekvence byl použit pouze jeden reaktor. Hmotnostní přírůstek byl cca 100 miligramů na reaktor. Jednotlivé peptidyl-pryskyřice byly štěpeny kapalným fluorovodíkem s přídavkem 5 % p-kresolu, 1 horinu při 0 °C. Po odpaření fluorovodíku byl p-kresol extrahován chladným ethylacetátem a peptid byl rozpuštěn ve 20% kyselině octové. Po lyofilizaci byly surové produkty (20,2 až 47,2 mg] analyzovány na HPLC chromatografu a bylo zjištěno aminokyselinové složení. Výsledky jsou uvedeny v tabulkách č. 1 a 2.
TABULKA 1
Aminokyselinové analýzy jednotlivých nových peptidů
Peptid Ak Aminokyselinová analýza
| č. | vynech. | Val | Tyr | Arg | Asp | Ser | Pro | Leu |
| 1 | Leu | 0,91 | 1,83 | 2,13 | 2,08 2,15 | 1,04 | 1,01 | |
| 2 | Pro | 0,94 | 1,74 | 2,07 | 1,00 | — | 1,10 | |
| 3 | Asn | 0,91 | 1,71 | 2,09 | 1,08 | 1,04 | 1,08 | 1,10 |
| 4 | Arg | 0,94 | 1,88 | 0,95 | 2,08 | 0,97 | 1,04 | 1,12 |
| 5 | Ser | 0,97 | 1,84 | 2,06 | 2,05 | — | 1,01 | 1,06 |
| 6 | Asp | 0,90 | 1,78 | 2,10 | 1,15 | 1,02 | 1,09 | 1,12 |
| 7, | Arg | 0,93 | 1,56 | 1,12 | 2,12 | 0,98 | 1,10 | 1,16 |
| 8 | Tyr | 0,88 | 0,84 | 2,06 | 2,08 | 0,97 | 1,06 | 1,10 |
| 9 | Val | — | 1,67 | 2,10 | 2,04 | 0,94 | 1,09 | 1,15 |
| 10 | !- | 0,87 | 1,78 | 2,04 | 2,08 2,10 | 0,97 | 1,13 | 1,14 |
| 11 | /— | 0,90 | 1,79 | 2,06 | 0,96 | 1,09 | 1,09 |
| TABULKA 2 | |||||
| Analytická a | fyzikální data jednotlivých nových peptidů | ||||
| Peptid č. | Ak vynech. | Výtěžek Rt (mg) (min.) | Obsah* (%) | Rt (min.) | Obsah** (%) |
| 1 | Leu | 35,2 | 4,10 | 84,6 | 6,34 | 92,6 |
| 2 | Pro | 20,2 | 6,37 | 88,4 | 12,54 | 86,2 |
| 3 | Asn | 24,1 | 8,87 | 94,9 | 20,29 | 93,8 |
| 4 | Arg | 37,3 | 12,72 | 85,9 | 25,58 | 89,9 |
| 5 | Ser | 47,2 | 11,95 | 93,7 | 26,49 | 94,8 |
| 6 | Asp | 42,1 | 11,18 | 90,0 | 26,95 | 91,0 |
| 7 | Arg | 39,4 | 14,26 | 89,1 | 28,65 | 85,0 |
| 8 | Tyr | 21,4 | 8,34 | 93,6 | 19,61 | 86,3 |
| 9 | Val | 44,8 | 8,88 | 85,9 | 21,72 | 94,5 |
| 10*** | — | 35,0 | 12,63 | 88,4 | 27,09 | 89,3 |
| H»»· | — | 27,0 | 12,71 | 87,9 | 27,10 | 87,8 |
| Retenční časy | (min.) a | obsahy peptidů | (%) získané | vysokoúčinnou kapalinovou | chro- |
matografií za podmínek:
(*) isokraticky 40 % methanolu ve vodě obsahující 0,1 °/o TFA, průtok 25 ml/hod., kolona 150 x 3 mm plněná silikagelem s hydrofobními uhlíkatými zbytky, detekce UV při 220 nm, (**) gradientově fáze A methanol, fáze B voda obsahující 0,1 % TFA, profil gradientu:
čas (min) 0 15 35 36 obsah fáze A v B (%) 23 38 38 23 průtok 0,1 ml/min, kolona 150 x 2,1 mm, detekce UV 210 nm a 280 nm, (***) peptidy č. 10 a 11 byly syntetizovány v prvním a posledním reaktoru.
Vysvětlivky zkratek použitých v textu: Arg — arginin
Leu — leucin
ACA — aktivovaná chráněná aminokyselina Pro — prolin
DMF — dimetylformamid Ser — serin
DCM — dichlormetan Tyr — tyrosin
TFA — kyselina trifluoroctová Val — valin
DIEA — dlisopropyletylamin Boc — t-butyloxykarbonyl
HOBt — hydroxybenztriazol OBzl — benzyloxy
Asn — asparagin Z — benzyloxykarbonyl
Ašp — kyselina asparagová
Claims (1)
- PŘEDMĚTZařízení pro automatickou výrobu řady peptidů syntézou na pevné fázi, sestávající ze zásobních lahví pod tlakem, distribučního a vícecestného ventilu, průtočných reaktorů a peristaltického čerpadla, vyznačující sě tím, že zásobní láhve (1), ve kterých je přetlak 20 až 50 kPa inertního plynu,VYNALEZU jsou spojeny přes distribuční ventil (2) se sériově zapojenými reaktory (4), které jsou spojeny přes ětyřcestný ventil (3) s odpadem (8) a zásobník (6) je propojen přes ětyřcestný ventil (3) a peristaltlcké čerpadlo (5) s distribučním ventilem (2j a reaktory (4).
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS873178A CS262081B1 (cs) | 1987-05-05 | 1987-05-05 | Zařízení pro automatickou výrobu řady peptidů syntézou na pevné fázi |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS873178A CS262081B1 (cs) | 1987-05-05 | 1987-05-05 | Zařízení pro automatickou výrobu řady peptidů syntézou na pevné fázi |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS317887A1 CS317887A1 (en) | 1988-07-15 |
| CS262081B1 true CS262081B1 (cs) | 1989-02-10 |
Family
ID=5371117
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS873178A CS262081B1 (cs) | 1987-05-05 | 1987-05-05 | Zařízení pro automatickou výrobu řady peptidů syntézou na pevné fázi |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS262081B1 (cs) |
-
1987
- 1987-05-05 CS CS873178A patent/CS262081B1/cs unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS317887A1 (en) | 1988-07-15 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Dryland et al. | Peptide synthesis. Part 8. A system for solid-phase synthesis under low pressure continuous flow conditions | |
| US5240680A (en) | Automated apparatus for use in peptide synthesis | |
| Arshady et al. | Peptide synthesis. Part 1. Preparation and use of polar supports based on poly (dimethylacrylamide) | |
| Jung et al. | Multiple peptide synthesis methods and their applications. New synthetic methods (87) | |
| US4816513A (en) | Automated polypeptide synthesis process | |
| Merrifield | Solid-phase peptide synthesis | |
| US6008058A (en) | Cyclic peptide mixtures via side chain or backbone attachment and solid phase synthesis | |
| AU698501B2 (en) | Compounds having the antigenicity of hCG | |
| EP0445915B1 (en) | Method of performing a multiple synthesis of peptides on a solid carrier and apparatus for carrying out this method | |
| KR870700100A (ko) | 최소한 일부분이 알려진 뉴클레오티드 암호서열 또는 아미노산 서열을 갖는 프로테인 또는 펩티드에 상보적인 폴리펩티드와 이것의 디자인 방법 | |
| Le-Nguyen et al. | Renin substrates. Part 2. Rapid solid phase synthesis of the ratine sequence tetradecapeptide using BOP reagent | |
| Grego et al. | A microbore high‐performance liquid chromatography strategy for the purification of polypeptides for gas‐phase sequence analysis: Structural studies on the murine transferrin receptor | |
| Atherton et al. | A physically supported gel polymer for low pressure, continuous flow solid phase reactions. Application to solid phase peptide synthesis | |
| US5273715A (en) | Automated system for providing a sequence of chemicals to a reaction process | |
| NITZ et al. | Synthesis and receptor binding affinity of both E‐and Z‐dehydro‐phenylaline4 enkephalins | |
| Chen et al. | [12] One bead-one compound combinatorial peptide library: Different types of screening | |
| CS262081B1 (cs) | Zařízení pro automatickou výrobu řady peptidů syntézou na pevné fázi | |
| Xue et al. | A covalently constrained congener of the Saccharomyces cerevisiae tridecapeptide mating pheromone is an agonist | |
| Leelasvatanakij et al. | A solid‐phase synthetic strategy for the preparation of peptide‐based affinity labels: synthesis of dynorphin A analogs | |
| Rodionov et al. | A swellographic approach to monitoring continuous-flow solid-phase peptide synthesis | |
| Xue et al. | Application of N-(tert-butyloxycarbonyl) amino acid N-carboxyanhydrides in solid-phase peptide synthesis | |
| Delforge et al. | Solid-phase synthesis of tailed cyclic peptides: The use of α-allyl-protected aspartic acid leads to aspartimide and tetramethylguanidinium formation | |
| Delforge et al. | Automated solid-phase synthesis of cyclic peptides bearing a side-chain tail designed for subsequent chemical grafting | |
| Frank et al. | Continuous flow peptide synthesis | |
| Atherton et al. | Peptide synthesis. Part 3. Comparative solid-phase syntheses of human β-endorphin on polyamide supports using t-butoxycarbonyl and fluorenylmethoxycarbonyl protecting groups |