CS261324B1 - A method of separating amylolytic enzymes - Google Patents
A method of separating amylolytic enzymes Download PDFInfo
- Publication number
- CS261324B1 CS261324B1 CS876175A CS617587A CS261324B1 CS 261324 B1 CS261324 B1 CS 261324B1 CS 876175 A CS876175 A CS 876175A CS 617587 A CS617587 A CS 617587A CS 261324 B1 CS261324 B1 CS 261324B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- solution
- amylolytic enzymes
- enzyme
- sorbed
- separating
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Roztok enzymů se vsádkově nebo ve sloupci sorbuje na cyklodextriny vázané na nerozpustném nosiči a po promytí se sorbované amylolytické enzymy eluují rbztokem cyklodextrinu o koncentraci 5 až 25 mM. Výhodou uvedeného řešení je vysoká čistota získaného enzymu,.The enzyme solution is sorbed batchwise or in a column onto cyclodextrins bound to an insoluble carrier and, after washing, the sorbed amylolytic enzymes are eluted with a cyclodextrin solution with a concentration of 5 to 25 mM. The advantage of the above solution is the high purity of the enzyme obtained.
Description
Vynález se týká způsobu separace amylolytických enzymů z kultivační kapaliny po kultivaci plísní nebo bakterií, z extraktu rostlinných nebo živočišných materiálů nebo z jiných roztoků amylolytické enzymy obsahujících.The invention relates to a process for separating amylolytic enzymes from a culture liquid after cultivation of fungi or bacteria, from an extract of plant or animal materials or from other solutions containing amylolytic enzymes.
K separaci amylolytických enzymů se používá metody, při níž se roztok enzymu sráží síranem amonným, taninem, etanolem, acetonem nebo jejich směsi a sraženina se pak suší.A method is used to separate amylolytic enzymes in which the enzyme solution is precipitated with ammonium sulfate, tannin, ethanol, acetone, or mixtures thereof, and then the precipitate is dried.
Jinou možností je zahuštění roztoku enzymu odpařením za snížené teploty nebo ultrafiltrací. Suchý práškový enzym může být rovněž připraven z jeho roztoku sušením na rozprašovací sušárně.Another possibility is to concentrate the enzyme solution by evaporation at reduced temperature or by ultrafiltration. The dry powdered enzyme may also be prepared from its solution by spray drying.
Nevýhody uvedených postupů spočívají v tom, že při srážení vzniká velké množství silně znečistěných odpadních vod nebo je nutno srážedlo regenerovat odpařením či destilací, což je energeticky náročné. Zahuštění enzymu ultrafiltrací je omezeno kapacitou zařízení, která je zpravidla nízká, a investiční nákladností tohoto zařízení. Všechny uvedené metody, separace pak dávají pouze technicky enzymový koncentrát, jehož kvalita je silně závislá na druhu použité suroviny, a na vedlejších látkách, které nejsou žádnou z uvedených metod odstraňovány.The disadvantages of these processes are that large amounts of heavily polluted waste water are generated during precipitation or that the precipitant must be regenerated by evaporation or distillation, which is energy intensive. Concentration of the enzyme by ultrafiltration is limited by the capacity of the device, which is generally low, and the investment cost of the device. All these methods, separation then give only technically enzyme concentrate, the quality of which is strongly dependent on the type of raw material used and on by-products which are not removed by any of the mentioned methods.
Uvedené nevýhody odstraňuje způsob podle vynálezu, spočívající v tom, že je enzym sorbován, vsádkově nebo kontinuálně, na nerozpustný derivát cyklodextrinu připravený, sítěním cyklodextrinu nebo jejich vazbou na nerozpustný nosič, s výhodou perlovou cejujlosu.These disadvantages are overcome by the method according to the invention, characterized in that the enzyme is sorbed, batchwise or continuously, to the insoluble cyclodextrin derivative prepared by cross-linking the cyclodextrin or by binding them to an insoluble carrier, preferably pearl cejujlos.
Po promytí sorbentu s enzymem vodou, je pak enzym eluován ze sorbentu roztokem cyklodextrinu o koncentraci 5 až 25 milimolu na litr. Touto dvojí afinitní separací je získán enzym o vysoké čistotě s téměř kvantitativním výtěžkem, jehož kvalita není ovlivněna kvalitou použité suroviny.After washing the sorbent with the enzyme with water, the enzyme is then eluted from the sorbent with a solution of cyclodextrin at a concentration of 5 to 25 millimoles per liter. This double affinity separation yields a high purity enzyme with an almost quantitative yield, the quality of which is not affected by the quality of the raw material used.
Příklad 1Example 1
Kolona rozměru 1x12 cm je naplněna acylodextrinem kovalentně'vázaným na perlovou celulosu a promyta O,1M acetátovým pufrem pH 5,5. Potom je kolonou propuštěn extrakt žita obsahující žitné alfa - a beta-amylázy. Po průtoku 30 ml extraktu obsahujícího 40 mg bílkovin je sloupec promyt O,1M acetátem pH 5,5 a poté jsou amýlázy eluovány 10 mM roztokem beta cyklodextrinu v témže pufru. Jsou získány amylolytické anzymy v koncentrovaném stavu s výtěžkem pro alfa-amylázu 92,6 %, pro beta-amylázy 79,2 %.The 1x12 cm column is packed with acylodextrin covalently bound to bead cellulose and washed with 0.1 M acetate buffer pH 5.5. Then the column is passed through the rye extract containing rye alpha and beta amylases. After passing 30 ml of extract containing 40 mg of protein, the column is washed with 0.1 M acetate pH 5.5 and then the amylases are eluted with 10 mM beta cyclodextrin solution in the same buffer. Concentrated amylolytic enzymes are obtained with a yield for alpha-amylase of 92.6%, for beta-amylase of 79.2%.
Příklad 2Example 2
Kultivační kapalina po kultivaci plísně Aspergillus oryzae obsahující plísňovou alfa-amylázu je propouštěna kolonou jako v příkladu 1 za stejných podmínek. Stejným postupem jako v příkladu 1 je získán koncentrát plísňové alfa-amylázy s výtěžkem 94,8 %.The culture liquid after the cultivation of the fungus Aspergillus oryzae containing the fungal alpha-amylase is passed through the column as in Example 1 under the same conditions. In the same manner as in Example 1, a fungal alpha-amylase concentrate is obtained in a yield of 94.8%.
Příklad 3Example 3
Obchodní technický preparát bakteriální alfa-amylázy je naředěn na aktivitu 95 EU/ml a zpracován postupem podle příkladu 1 s tim rozdílem, že je použito pufru pH 6,0 pro všechny operace. Je získán čistý preparát bakteriální alfa-amylázy s výtěžkem 93,0 %.The commercial technical preparation of bacterial alpha-amylase is diluted to 95 EU / ml and processed according to the procedure of Example 1 except that a buffer of pH 6.0 is used for all operations. A pure bacterial alpha-amylase preparation is obtained with a yield of 93.0%.
Příklad 4Example 4
Extrakt žita jako v příkladu 1 je propouštěn kolonou rozměru 1x12 cm naplněnou beta-cyklodextrinem kovalentně vázaným na obchodní agarózový gel Ultrogel 34. Všechny ostatní podmínky jsou shodné s příkladem 1. Je získán koncentrát amylolytických enzymů s výtěžkem pro alfa-amylázu 93,8 % a pro beta-amylázu 77,6 %.Rye extract as in Example 1 is passed through a 1x12 cm column packed with beta-cyclodextrin covalently bound to Ultrogel 34 commercial agarose gel. All other conditions are identical to Example 1. An amylolytic enzyme concentrate is obtained with an alpha-amylase yield of 93.8% and for beta-amylase 77.6%.
Příklad 5Example 5
Roztok bakteriální amylázy jako v příkladu 3 je propouštěn kolonou rozměru 1x12 cm obsahující beta-cyklodextrin kovalentně vázaný na hydroxyalkylmetakrylátový gel Spheron 1 000. Všechny ostatní podmínky jsou shodné s příkladem 3. Byl získán koncentrát čisté bakteriální alfa-amylázy s výtěžkem 91,8 %.The bacterial amylase solution as in Example 3 is passed through a 1x12 cm column containing beta-cyclodextrin covalently bound to Spheron 1000 hydroxyalkyl methacrylate gel. All other conditions are the same as in Example 3. A pure bacterial alpha-amylase concentrate was obtained with a yield of 91.8%.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS876175A CS261324B1 (en) | 1987-08-21 | 1987-08-21 | A method of separating amylolytic enzymes |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS876175A CS261324B1 (en) | 1987-08-21 | 1987-08-21 | A method of separating amylolytic enzymes |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS617587A1 CS617587A1 (en) | 1988-06-15 |
CS261324B1 true CS261324B1 (en) | 1989-01-12 |
Family
ID=5408184
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS876175A CS261324B1 (en) | 1987-08-21 | 1987-08-21 | A method of separating amylolytic enzymes |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CS (1) | CS261324B1 (en) |
-
1987
- 1987-08-21 CS CS876175A patent/CS261324B1/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CS617587A1 (en) | 1988-06-15 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
FI61718C (en) | FOERFARANDE FOER FRAMSTAELLNING AV XYLOS GENOM ENZYMATISK HYDROLYS AV XYLANER | |
US4264738A (en) | Process for purification of proteolytic enzymes | |
DE2703615C2 (en) | ||
Whistler et al. | Enzymatic hydrolysis of Xylan1 | |
Tanaka et al. | α-Amylase isozymes in gibberellic acid-treated barley half-seeds | |
Berger et al. | Cocoonase: III. Purification, preliminary characterization, and activation of the zymogen of an insect protease | |
Rippa et al. | Purification and properties of two forms of 6‐phosphogluconate dehydrogenase from Candida utilis | |
Sison Jr et al. | On the mechanism of enzyme action. LXV. A cellulolytic enzyme from the mold Poria vaillantii | |
US3431175A (en) | Method for the preparation of a lipoprotein lipase by cultivating organisms | |
Synge et al. | Bound amino acids in protein-free extracts of Italian ryegrass | |
MacGregor | Isolation, purification and electrophoretic properties of an α‐amylase from malted barley | |
CS261324B1 (en) | A method of separating amylolytic enzymes | |
Coles et al. | Purification, properties and mechanism of action of a staphylolytic enzyme produced by Aeromonas hydrophila | |
Chaga et al. | Isolation and characterization of catalase from Penicillium chrysogenum | |
US4027012A (en) | Process for the extraction of components having anticoagulant activity "in vivo" from snake venoms and products obtained | |
Nummi et al. | Immunoelectrophoretic detection of cellulases | |
Burger et al. | Stabilization, partial purification and characterization of peptidyl peptide hydrolases from germinated barley | |
US4100028A (en) | Method for purification of proteolytic enzymes | |
US3623955A (en) | Purification and recovery of alkaline protease using cationic-exchange resin | |
Sternberg | The separation of proteins with heteropolyacids | |
US4581332A (en) | Novel alkaline protease | |
Shioi et al. | A simple purification method for the preparation of solubilized chlorophyllase from Chlorella protothecoides | |
SU664967A1 (en) | Method of obtaining pectin | |
Tatsuoka et al. | Purification of lipase produced by Rhizopus | |
Deleyn et al. | Immobilised β‐amylase in the production of maltose syrups |