CS261324B1 - A method of separating amylolytic enzymes - Google Patents

A method of separating amylolytic enzymes Download PDF

Info

Publication number
CS261324B1
CS261324B1 CS876175A CS617587A CS261324B1 CS 261324 B1 CS261324 B1 CS 261324B1 CS 876175 A CS876175 A CS 876175A CS 617587 A CS617587 A CS 617587A CS 261324 B1 CS261324 B1 CS 261324B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
solution
amylolytic enzymes
enzyme
sorbed
separating
Prior art date
Application number
CS876175A
Other languages
Czech (cs)
Other versions
CS617587A1 (en
Inventor
Maria Gottvaldova
Jiri Kucera
Alexandra Proskova
Original Assignee
Maria Gottvaldova
Jiri Kucera
Alexandra Proskova
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Maria Gottvaldova, Jiri Kucera, Alexandra Proskova filed Critical Maria Gottvaldova
Priority to CS876175A priority Critical patent/CS261324B1/en
Publication of CS617587A1 publication Critical patent/CS617587A1/en
Publication of CS261324B1 publication Critical patent/CS261324B1/en

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

Roztok enzymů se vsádkově nebo ve sloupci sorbuje na cyklodextriny vázané na nerozpustném nosiči a po promytí se sorbované amylolytické enzymy eluují rbztokem cyklodextrinu o koncentraci 5 až 25 mM. Výhodou uvedeného řešení je vysoká čistota získaného enzymu,.The enzyme solution is sorbed batchwise or in a column onto cyclodextrins bound to an insoluble carrier and, after washing, the sorbed amylolytic enzymes are eluted with a cyclodextrin solution with a concentration of 5 to 25 mM. The advantage of the above solution is the high purity of the enzyme obtained.

Description

Vynález se týká způsobu separace amylolytických enzymů z kultivační kapaliny po kultivaci plísní nebo bakterií, z extraktu rostlinných nebo živočišných materiálů nebo z jiných roztoků amylolytické enzymy obsahujících.The invention relates to a process for separating amylolytic enzymes from a culture liquid after cultivation of fungi or bacteria, from an extract of plant or animal materials or from other solutions containing amylolytic enzymes.

K separaci amylolytických enzymů se používá metody, při níž se roztok enzymu sráží síranem amonným, taninem, etanolem, acetonem nebo jejich směsi a sraženina se pak suší.A method is used to separate amylolytic enzymes in which the enzyme solution is precipitated with ammonium sulfate, tannin, ethanol, acetone, or mixtures thereof, and then the precipitate is dried.

Jinou možností je zahuštění roztoku enzymu odpařením za snížené teploty nebo ultrafiltrací. Suchý práškový enzym může být rovněž připraven z jeho roztoku sušením na rozprašovací sušárně.Another possibility is to concentrate the enzyme solution by evaporation at reduced temperature or by ultrafiltration. The dry powdered enzyme may also be prepared from its solution by spray drying.

Nevýhody uvedených postupů spočívají v tom, že při srážení vzniká velké množství silně znečistěných odpadních vod nebo je nutno srážedlo regenerovat odpařením či destilací, což je energeticky náročné. Zahuštění enzymu ultrafiltrací je omezeno kapacitou zařízení, která je zpravidla nízká, a investiční nákladností tohoto zařízení. Všechny uvedené metody, separace pak dávají pouze technicky enzymový koncentrát, jehož kvalita je silně závislá na druhu použité suroviny, a na vedlejších látkách, které nejsou žádnou z uvedených metod odstraňovány.The disadvantages of these processes are that large amounts of heavily polluted waste water are generated during precipitation or that the precipitant must be regenerated by evaporation or distillation, which is energy intensive. Concentration of the enzyme by ultrafiltration is limited by the capacity of the device, which is generally low, and the investment cost of the device. All these methods, separation then give only technically enzyme concentrate, the quality of which is strongly dependent on the type of raw material used and on by-products which are not removed by any of the mentioned methods.

Uvedené nevýhody odstraňuje způsob podle vynálezu, spočívající v tom, že je enzym sorbován, vsádkově nebo kontinuálně, na nerozpustný derivát cyklodextrinu připravený, sítěním cyklodextrinu nebo jejich vazbou na nerozpustný nosič, s výhodou perlovou cejujlosu.These disadvantages are overcome by the method according to the invention, characterized in that the enzyme is sorbed, batchwise or continuously, to the insoluble cyclodextrin derivative prepared by cross-linking the cyclodextrin or by binding them to an insoluble carrier, preferably pearl cejujlos.

Po promytí sorbentu s enzymem vodou, je pak enzym eluován ze sorbentu roztokem cyklodextrinu o koncentraci 5 až 25 milimolu na litr. Touto dvojí afinitní separací je získán enzym o vysoké čistotě s téměř kvantitativním výtěžkem, jehož kvalita není ovlivněna kvalitou použité suroviny.After washing the sorbent with the enzyme with water, the enzyme is then eluted from the sorbent with a solution of cyclodextrin at a concentration of 5 to 25 millimoles per liter. This double affinity separation yields a high purity enzyme with an almost quantitative yield, the quality of which is not affected by the quality of the raw material used.

Příklad 1Example 1

Kolona rozměru 1x12 cm je naplněna acylodextrinem kovalentně'vázaným na perlovou celulosu a promyta O,1M acetátovým pufrem pH 5,5. Potom je kolonou propuštěn extrakt žita obsahující žitné alfa - a beta-amylázy. Po průtoku 30 ml extraktu obsahujícího 40 mg bílkovin je sloupec promyt O,1M acetátem pH 5,5 a poté jsou amýlázy eluovány 10 mM roztokem beta cyklodextrinu v témže pufru. Jsou získány amylolytické anzymy v koncentrovaném stavu s výtěžkem pro alfa-amylázu 92,6 %, pro beta-amylázy 79,2 %.The 1x12 cm column is packed with acylodextrin covalently bound to bead cellulose and washed with 0.1 M acetate buffer pH 5.5. Then the column is passed through the rye extract containing rye alpha and beta amylases. After passing 30 ml of extract containing 40 mg of protein, the column is washed with 0.1 M acetate pH 5.5 and then the amylases are eluted with 10 mM beta cyclodextrin solution in the same buffer. Concentrated amylolytic enzymes are obtained with a yield for alpha-amylase of 92.6%, for beta-amylase of 79.2%.

Příklad 2Example 2

Kultivační kapalina po kultivaci plísně Aspergillus oryzae obsahující plísňovou alfa-amylázu je propouštěna kolonou jako v příkladu 1 za stejných podmínek. Stejným postupem jako v příkladu 1 je získán koncentrát plísňové alfa-amylázy s výtěžkem 94,8 %.The culture liquid after the cultivation of the fungus Aspergillus oryzae containing the fungal alpha-amylase is passed through the column as in Example 1 under the same conditions. In the same manner as in Example 1, a fungal alpha-amylase concentrate is obtained in a yield of 94.8%.

Příklad 3Example 3

Obchodní technický preparát bakteriální alfa-amylázy je naředěn na aktivitu 95 EU/ml a zpracován postupem podle příkladu 1 s tim rozdílem, že je použito pufru pH 6,0 pro všechny operace. Je získán čistý preparát bakteriální alfa-amylázy s výtěžkem 93,0 %.The commercial technical preparation of bacterial alpha-amylase is diluted to 95 EU / ml and processed according to the procedure of Example 1 except that a buffer of pH 6.0 is used for all operations. A pure bacterial alpha-amylase preparation is obtained with a yield of 93.0%.

Příklad 4Example 4

Extrakt žita jako v příkladu 1 je propouštěn kolonou rozměru 1x12 cm naplněnou beta-cyklodextrinem kovalentně vázaným na obchodní agarózový gel Ultrogel 34. Všechny ostatní podmínky jsou shodné s příkladem 1. Je získán koncentrát amylolytických enzymů s výtěžkem pro alfa-amylázu 93,8 % a pro beta-amylázu 77,6 %.Rye extract as in Example 1 is passed through a 1x12 cm column packed with beta-cyclodextrin covalently bound to Ultrogel 34 commercial agarose gel. All other conditions are identical to Example 1. An amylolytic enzyme concentrate is obtained with an alpha-amylase yield of 93.8% and for beta-amylase 77.6%.

Příklad 5Example 5

Roztok bakteriální amylázy jako v příkladu 3 je propouštěn kolonou rozměru 1x12 cm obsahující beta-cyklodextrin kovalentně vázaný na hydroxyalkylmetakrylátový gel Spheron 1 000. Všechny ostatní podmínky jsou shodné s příkladem 3. Byl získán koncentrát čisté bakteriální alfa-amylázy s výtěžkem 91,8 %.The bacterial amylase solution as in Example 3 is passed through a 1x12 cm column containing beta-cyclodextrin covalently bound to Spheron 1000 hydroxyalkyl methacrylate gel. All other conditions are the same as in Example 3. A pure bacterial alpha-amylase concentrate was obtained with a yield of 91.8%.

Claims (1)

PŘEDMĚT VYNÁLEZUSUBJECT OF THE INVENTION Způsob separace amylolytických enzymů z roztoku získaných kultivací plísní nebo bakterií, nebo z roztoku získaných z extrakcí rostlinných či živočišných tkání, případně jiných roztoků tyto enzymy obsahujících, vyznačený tím, že se roztok enzymu sorbuje,.vsádkově nebo ve sloupci, na cyklodextriny vázané na nerozpustném nosiči, jako je perlová nebo vláknitá celulóza, polysacharidy, poresní sklo, keramika, syntetické polymery atd. a po promytí se sorbované amylolytické enzymy eluují roztokem cyklodextrinu o koncentraci 5 až 25 mM.Method for separating amylolytic enzymes from a solution obtained by cultivating fungi or bacteria, or from a solution obtained from the extraction of plant or animal tissues or other solutions containing these enzymes, characterized in that the enzyme solution is sorbed, in batch or column, to cyclodextrins bound to insoluble carriers such as pearl or fibrous cellulose, polysaccharides, porous glass, ceramics, synthetic polymers, etc., and after washing, the sorbed amylolytic enzymes are eluted with a 5-25 mM cyclodextrin solution.
CS876175A 1987-08-21 1987-08-21 A method of separating amylolytic enzymes CS261324B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS876175A CS261324B1 (en) 1987-08-21 1987-08-21 A method of separating amylolytic enzymes

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS876175A CS261324B1 (en) 1987-08-21 1987-08-21 A method of separating amylolytic enzymes

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS617587A1 CS617587A1 (en) 1988-06-15
CS261324B1 true CS261324B1 (en) 1989-01-12

Family

ID=5408184

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS876175A CS261324B1 (en) 1987-08-21 1987-08-21 A method of separating amylolytic enzymes

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS261324B1 (en)

Also Published As

Publication number Publication date
CS617587A1 (en) 1988-06-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
FI61718C (en) FOERFARANDE FOER FRAMSTAELLNING AV XYLOS GENOM ENZYMATISK HYDROLYS AV XYLANER
US4264738A (en) Process for purification of proteolytic enzymes
DE2703615C2 (en)
Whistler et al. Enzymatic hydrolysis of Xylan1
Tanaka et al. α-Amylase isozymes in gibberellic acid-treated barley half-seeds
Berger et al. Cocoonase: III. Purification, preliminary characterization, and activation of the zymogen of an insect protease
Rippa et al. Purification and properties of two forms of 6‐phosphogluconate dehydrogenase from Candida utilis
Sison Jr et al. On the mechanism of enzyme action. LXV. A cellulolytic enzyme from the mold Poria vaillantii
US3431175A (en) Method for the preparation of a lipoprotein lipase by cultivating organisms
Synge et al. Bound amino acids in protein-free extracts of Italian ryegrass
MacGregor Isolation, purification and electrophoretic properties of an α‐amylase from malted barley
CS261324B1 (en) A method of separating amylolytic enzymes
Coles et al. Purification, properties and mechanism of action of a staphylolytic enzyme produced by Aeromonas hydrophila
Chaga et al. Isolation and characterization of catalase from Penicillium chrysogenum
US4027012A (en) Process for the extraction of components having anticoagulant activity "in vivo" from snake venoms and products obtained
Nummi et al. Immunoelectrophoretic detection of cellulases
Burger et al. Stabilization, partial purification and characterization of peptidyl peptide hydrolases from germinated barley
US4100028A (en) Method for purification of proteolytic enzymes
US3623955A (en) Purification and recovery of alkaline protease using cationic-exchange resin
Sternberg The separation of proteins with heteropolyacids
US4581332A (en) Novel alkaline protease
Shioi et al. A simple purification method for the preparation of solubilized chlorophyllase from Chlorella protothecoides
SU664967A1 (en) Method of obtaining pectin
Tatsuoka et al. Purification of lipase produced by Rhizopus
Deleyn et al. Immobilised β‐amylase in the production of maltose syrups