CS261027B1 - Způsob přípravy polyakrylamidového gelu zejména pro elektroforezu - Google Patents
Způsob přípravy polyakrylamidového gelu zejména pro elektroforezu Download PDFInfo
- Publication number
- CS261027B1 CS261027B1 CS864391A CS439186A CS261027B1 CS 261027 B1 CS261027 B1 CS 261027B1 CS 864391 A CS864391 A CS 864391A CS 439186 A CS439186 A CS 439186A CS 261027 B1 CS261027 B1 CS 261027B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- solution
- acrylamide
- weight
- polymerization
- parts
- Prior art date
Links
Landscapes
- Addition Polymer Or Copolymer, Post-Treatments, Or Chemical Modifications (AREA)
Abstract
Řešení se týká oboru polymerů a analytické chemie. Je řešen technický problém přípravy polyakrylamidových gelů pro elektroforezu. Podstatou řešení je provedení polymerace 3,5 až 28% roztoku akrylamidu a N,N'-bis-methylenakrylamidu v molárním poměru 1 ku 0,01 až 0,05 v přítomnosti dihydrátu hydrosiřičitanu sodného a methylenové modři působením persíranu draselného nebo amonného. Řešení může být využito při přípravě gelů pro elektroforetická dělení polypeptidů, proteinů a jiných nabitých částic obecně.
Description
Vynález se týká způsobu přípravy polyakrylamidového gelu zejména pro elektroforetická dělení.
V rámci základního i aplikovaného výzkumu biologických systémů nalézá široké použití elektroforetická dělení polypeptidů, bílkovin, enzymů a jiných elektricky nabitých částic. Dělení se provádí obvykle ve vrstvě vodného gelu na bázi agaru, agaroz, škrobů, modifikované celulózy nebo polymerního akrylamidu. Relativně nej lepší výsledky dělení se dosahují zejména na polyakrylamidových gelech sítěných např. Ν,Ν'-bis-methylenakrylamidem. Tento gel se připraví bez větších nesnází i v laboratorních podmínkách, je dostatečně mechanicky pevný a lze na něm dosáhnout vyhovujícího dělicího efektu. Závažným nedostatkem je však kolísavá kvalita gelu připravovaného podle stávajícího stavu metodiky radikálovou polymeraci nejčastěji působením persíranu a sloučenin obsahujících terciární dusík. Částečně lze uvedené potíže snížit užíváním vysoce čistých složek polymeračního systému, ale hlavní příčina nedostatečné reprodukovatelnosti - inhibice polymerace vzdušným kyslíkem - zůstává.
Současný stav techniky nezná způsob dosažení takové reprodukovatelnosti kvality gelu, která je pro elektroforetické dělení nezbytná (vyjma polymerace v, inertním prostředí, která je však technicky velmi náročná).
Na základě experimentálních prací jsme nalezli nový způsob přípravy polyakryamidového gelu, který výše uvedené nedostatky způsobené difúzí vzdušného kyslíku vylučuje a dovoluje připravovat gely pro elektroforetické dělení s velmi dobrou reprodukovatelnosti. Způsob přípravy polyakrylamidového gelu podle vynálezu spočívá v tom, že 3,5 až 28% vodný roztok směsi 100 hmotnostních dílů akrylamidu a Ν,Ν'-methylen-bis-akrylamidu v molárním poměru 1 ku 0,01 až 0,05 se mísí s 1,0 až 10,5 hmotnostními díly 0,5% roztoku methylenové modři a přídavkem pufru obsahujícího 0,1 až 0,4% Ν,Ν,Ν',Ν'-tetramethylethylendiaminu se pH roztoku upraví na 8 až 9, načež se na roztok působí 0,4 až 1,0% roztokem hydrosiřičitanu sodného do odbarveni. K bezbarvému roztoku se přidá 0,2 až 0,6 hmotnostních dílů práškového dihydrátu hydrosiřičitanu sodného, načež se na homogenní roztok působí 500 hmotnostními díly persíranu draselného nebo amonného o koncentraci 0,1 až 0,5%.
Při pokojové teplotě proběhne polymerace do stadia gelu nejdéle do pěti minut a plné hustoty polymerní sítě dosáhne po 2 až 12 hodinách, závisle na teplotě.
Způsob podle vynálezu poskytuje velmi dobře reprodukovatelnou kvalitu gelů, což lze nejlépe dokázat vlastním elektroforetickým dělením. Aplikace jiných redox systémů polymerace akrylamidu, jako na příklad persíran-siřičitan, persíran-sirnatan atd. se způsobu polymerace podle vynálezu dosaženým technickým účinkem nevyrovnají. Redox systém podle vynálezu je při přípravě vodných gelů vysoce reaktivní a souběžně vylučuje nežádoucí efekt kyslíkové inhibice polymerace, který se v případě ostatních iniciačních systémů nekontrolované a nereprodukovatelně uplatňuje se známými důsledky. Použitý barevný indikátor dovoluje precisní kontrolu redox potenciálu polymeračního prostředí, jehož porušení se okamžitě projeví zmodráním. Význačnou výhodou způsobu podle vynálezu je skutečnost, že po skončení polymerace je v gelu dosažena opět více méně fyziologická hodnota redox potenciálu prostředí vlivem nestability hydrosiřičitanu. Nežádoucí látky (elektricky nabité) se snadno odstraní elektroforezou bez vzorku, tzv. pre-run.
Mezi neméně významné výhody uváděného způsobu patří i dosahované ostřejší dělení látek s velmi dobrou reprodukovatelnosti.
Příklad
Předem se připraví tyto čisté roztoky:
roztok A:
28,0 g akrylamidu a 0,735 g Ν,Ν'-methylen-bis-akrylamidu ve 100 ml deionisované vody, udržuje se při teplotě 0 až 4 °C.
roztok B:
36,6 g tris-(hydroxymethyl)aminomethan a 200 /ll Ν,Ν,Ν',Ν'-tetramethylethylendiaminu se rozpustí v ·40 ml deionisované vody, IN HC1 se pH roztoku upraví na 8,9 a deionisovanou vodou roztok doplní do celkového objemu 100 ml.
roztok C:
200 mg dihydrátu hydrosiřičitanu sodného ve 25 ml deionisované vody.
roztok D:
100 mg persíranu draselného v 50 ml deionisované vody.
Postup:
Smíchá se 6 ml roztoku A se 3 ml roztoku B a ředí se 10 ml deionisované vody. Roztok se obarví 1 kapkou 0,5% roztoku methylenové modři a za míchání.se přikapává roztok C do odbarve ní, načež se k bezbarvému roztoku přidá 7 mg práškového dihydrátu hydrosiřičitanu sodného a po rozpuštění 5 ml roztoku D. Krátce se míchá a reakčni směs se nalévá do prostoru elektro foretické desky či trubičky. Po 2 až 5 minutách roztok přechází do gelu, načež se nechá při 25 °C 12 hodin dozrát.
Claims (1)
- Způsob přípravy polyakrylamidového gelu, zejména pro elektrofořezu, redoxní polymeraci akrylamidu a Ν,Ν'-bis-methylenakrylamidu ve vodném prostředí v přítomnosti pufru vyznačený tím, že 3,5 až 28% vodný roztok směsi 100 hmotnostních dílů akrylamidu a Ν,Ν'-bis-methylenakrylamidu v molárním poměru 1 ku 0,01 až 0,05 se mísí s 1,0 až 10,5 hmotnostními díly 0,5% roztoku methylenové modři a přídavkem pufru obsahujícího 0,1 až 0,4% Ν,Ν,Ν',N'-tetramethylethylendiaminu se pH roztoku upraví na 8 až 9, načež se na roztok působí 0,4 až 1,0% roztokem hydrosiřičitanu sodného do odbarvení, k bezbarvému roztoku se přidá 0,2 až 0,6 hmotnostních dílů práškového dihydrátu hydrosiřičitanu sodného, načež se na homogenní roztok působí 500 hmotnostními díly persíranu draselného nebo amonného o koncentraci 0,1 až 0,5% do ukončení polymerace.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS864391A CS261027B1 (cs) | 1986-06-13 | 1986-06-13 | Způsob přípravy polyakrylamidového gelu zejména pro elektroforezu |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS864391A CS261027B1 (cs) | 1986-06-13 | 1986-06-13 | Způsob přípravy polyakrylamidového gelu zejména pro elektroforezu |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS439186A1 CS439186A1 (en) | 1988-06-15 |
| CS261027B1 true CS261027B1 (cs) | 1989-01-12 |
Family
ID=5386551
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS864391A CS261027B1 (cs) | 1986-06-13 | 1986-06-13 | Způsob přípravy polyakrylamidového gelu zejména pro elektroforezu |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS261027B1 (cs) |
-
1986
- 1986-06-13 CS CS864391A patent/CS261027B1/cs unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS439186A1 (en) | 1988-06-15 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Sebald et al. | Products of Mitochondrial Protein Synthesis in Neurospora crassa: Determination of Equimolar Amounts of Three Products in Cytochrome Oxidase on the Basis of Amino‐Acid Analysis | |
| Lovrić et al. | Square-wave voltammetry of an adsorbed reactant | |
| Castellote et al. | Oxygen and chloride diffusion in cement pastes as a validation of chloride diffusion coefficients obtained by steady-state migration tests | |
| DE2655361A1 (de) | Dextranderivat-gel | |
| Rawjee et al. | Efficiency optimization in capillary electrophoretic chiral separations using dynamic mobility matching | |
| Lobert et al. | Binding of Vinblastine to Phosphocellulose-Purified and. alpha.. beta.-Class III Tubulins: The Role of Nucleotides and. beta.-Tubulin Isotypes | |
| US5785832A (en) | Covalently cross-linked, mixed-bed agarose-polyacrylamide matrices for electrophoresis and chromatography | |
| Shatkay | Individual activity of calcium ions in pure solutions of CaCl2 and in mixtures | |
| Allen | The binding of sodium dodecyl sulphate to bovine serum albumin at high binding ratios | |
| FR2445525A1 (fr) | Electrode electrochimique sensible a la presence d'un ion halogenure x- en solution, et son procede de realisation | |
| Shelton et al. | In vitro oxidation of intrinsic sulfhydryl groups yields polymers of the two predominant polypeptides in the nuclear envelope fraction | |
| Haydon et al. | An estimation of the surface ionogenic groups of the human erythrocyte and of Escherichia coli | |
| Hoppe et al. | Horizontal polyacrylamide electrophoresis for the determination of serum protein (haptoglobin) and red cell enzyme polymorphisms | |
| CS261027B1 (cs) | Způsob přípravy polyakrylamidového gelu zejména pro elektroforezu | |
| Leifheit et al. | Analysis of the genetic polymorphism of coagulation factor XIIIB (FXIIIB) by isoelectric focusing | |
| Barbarié et al. | Purification and evidence for heterogeneity of acid phosphatase from Saccharomycescerevisiae | |
| Laurell | Determination of the haptoglobin group | |
| Cole | Reversible gels for electrophoresis and isolation of DNA | |
| Terayama | Surface electric charge of ascites hepatomas and the dissociation of islands of tumor cells | |
| Lewin et al. | Use of 1-anilino-8-naphthalene-sulfonate as a probe of gastric vesicle transport | |
| Parchman et al. | Basic amino acids stimulate the activation of the glucocorticoid—receptor complex | |
| US4994161A (en) | Apparatus and method for macromolecular charge determination | |
| Ficklin et al. | Potentiometric Measurements in Non-Aqueous Media Using Bromide and Iodide Ion Selective Membrane Electrodes | |
| Hill et al. | Errors in pH measurements in dilute or sulfhydryl-containing buffers | |
| Acevedo et al. | Electrophoretic size separation of proteins treated with sodium dodecyl sulfate in 1% agarose gels |