CS259581B1 - Sposob purifikácie extracelulárnej endo-l,4-6-xylanázy kvasiniek Cryptococcus albidus - Google Patents
Sposob purifikácie extracelulárnej endo-l,4-6-xylanázy kvasiniek Cryptococcus albidus Download PDFInfo
- Publication number
- CS259581B1 CS259581B1 CS869951A CS995186A CS259581B1 CS 259581 B1 CS259581 B1 CS 259581B1 CS 869951 A CS869951 A CS 869951A CS 995186 A CS995186 A CS 995186A CS 259581 B1 CS259581 B1 CS 259581B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- enzyme
- xylanase
- yeast
- purification
- column
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Description
239381
Vynález sa týká jednostupňovej purifiká-cie extracelulámej endo-l,4-j3-xylanázy kva-siniek Cryptococcus albidus indukované]'syntetickým induiktorom metyl jS-D-xylopyra-nozidom (P. Biely, Z. Krátký a M. Vršanská,CS AO 206 914).
Endo-l,4-/3-xylanázy (EC 3.2.1.8) mikro-organizmov sú spravidla enzýmy sekretova-né buňkami do prostredia počas rastu narastlinných xylanoeh, celulóze a iiných rast-linných materiáloch obsahujúcich hemi.ce-lulózu. Izolujú a purifikujú sa z pastovýchmédií zbavených buniek producenta. V pr-vom kroku purifikácie sa rastové médiumzahušťuje ultrafiltráciou, vakuovou desti-láciou, lyofilizáciou alebo sušením. Zo za-huštěných preparátov sa bielkoviny zrážajúbuď organickými rozpúšťadlami, alebo síra-nom amonným. Koncentrované extracelu-lárne bielkoviny alebo získané bielkovinnéfrakcie sa frakcioinujú gélovou filtráciouna sieťovaných polyméroch, alebo ionexo-vou chromatografiou na róznych druhochanexov a katexov ako sú například dietyl-amínoetyl a karboxymetyl deriváty celuló-zy a dextránov, a využívá sa tiež hydroxy-apatit a mnohé iné nosiče. Prehlad použi-tých metod purifikácie xylanáz možno nájsťv článku R. F. H. Dekkera a G. N. Richar-da (Adv. Carbohydr. Chem. Biochem. 32,277, 1976). Purifikácia xylanáz z rastovýchmédií, v ktorých sa používá xylan alebo inýrastlinný materiál ako zdroj uhlíka, bývákomplikovaná skutočnosťou, že zdroj uhlí-ka sa mikrooirganizmom nespotřebuje úpl-né a jeho zvyšky v rastovom médiu interfe-rují! s purifikáciiOiu enzýmu v důsledku en-zým-substrátových interakci!. Příklad inter-ferencie zvyšného xylanu možno nájsť i vpřípade purifikácie kvasničnej xylanázy (P.Biely, M. Vršanská, Z. Krátký, Eur. J. Bio-chem. 108, 313, 1980), ktorej je věnovanýtento vynález. Uvedeným ťažkostiam sa dávyhnúí tak, že produkcia enzýmu v buň-kách sa navodí nízkomolekulárnymi látka-mi, ktoré nie sú súčasne jeho substrátom.IJ nieiktorých mikroorganizmov ako sú Strep-tomyces (K. Nakanishi, T. Yasui a T. Kobay-ashi, J. Ferment. Technol. 34, 801, 1976),kvasinky Cryptococcus albidus (P. Biely, Z.Krátký a M. Vršanská, CS AO 206 914) aCryptococcus flavus (T. Yasui, B. T. Nguyena K. Nakanishi, J. Ferment. Technol. 62,353, 1984) sa dá produkcia xylanázy indu-kovat metyl (3-D-xylopyranozidom. V přípa-de Streptomyces boili takto, indukované xy-lanázy purifikovamé klasickými chromato-grafickými metodami v kombinácii s pre-paratívnou izoelektrickou fokusáciou (M.Marui, K. Nakanishi a T. Yasui, Agr. Biol.Chem. 49, 3 399, 1985). Výhoda indukciexylanázy nízkomoilekulárnym induktoromsa pri jej purifikácii prvýkrát využila v pří-pade enzýmu kvasiniek Cryptococcus fla-vus. Purifikácia enzýmu sa dosiahla v jed-nom stupni chromatografiou vákuove za- huštěného média na kolóne SP-SephadexuC-25 (K. Nakanishi, H. Arai a T. Yasui, J.Ferment. Technol. 62, 361, 1984). K uvol-neniu enzýmu z uvedeného katexu dochád-za pri relativné nízkej koncentrácii chlo-ridu sodného, (0,05 M), čo kladie poměrněvysoké nároky na odstránenie solí z in-dukčných médií, ktoré by bránili naviaza-niu enzýmu na nosič. Extraceluláma xyla-náza kvasiniek Cryptococcus albidus, patri-aca medzi najlepšie preštudované enzýmytohto druhu (P. Biely, Z. Krátký a M. Vr-šanská, Eur. J. Biochem. 119, 559, 1981). saz indukčných médií s metyl (3-D-xylopyra-nozidom v minulosti nepurifikovala. Sposobpurifikácie takto indukovaného enzýmu jepredmetom tohto vynálezu.
Podstata vynálezu spočívá v tom, že ex-traceulárna eindo-l,4-/3-xylanáza kvasiniekCryptococcus albidus indukovaná metyl-/S--D-xylopyranozidom tak ako sa popisuje vCS AO 206 914 sa z indukčného média kva-siniek získá ako homogénna bielkovina vjednom purifiikačnom stupni ionexovouchromatografiou na kolóne karboxymetylderivátu sletovaného bakteriálneho dextra-nu (CM-Sephadex C-50, Pharmacia Uppsala,Švédsko) ekvilibrovanom v acetátovom puf-ri, pH 4,5 až 5,5 tak, že indukčně médiumzbavené kvasiniek centrifugáciou sa pria-mo, alebo po zahuštění vákuovou destilácioualebo ultrafiltráciou preleje cez pripravenúkolonu nosič a, na ktorom sa enzým zachytía z ktorého sa potom enzým uvolní elúcioulineárnym gradientom chloridu sodného po1,0 až 1,5 M komcentráciu. V případe použi-tia 0,05 M acetátového pufru o pH 5,0 saenzým vytěsní z kolony ako ostrá bielko-vinná frakcia pri 0,45 M koncentrácii chlo-ridu sodného, ktorá sa buď priamo, alebopo zahuštění destiláciou alebo ultrafiltrá-ciou, připadne odsolení dialýzou alebo ul-trafiltráciou použije ako zdroj purifikova-nej xylanázy. Výhodou tohto sposobu purifikácie extra-celulárnej endo-l,4-/3-xylanázy Cryptoco-ccus albidus je to, že — je jednoduchý a rýchly predovšetkýmv porovnaní s postu,porn purifikácie enzýmuz rastových médií obsahujúcich rastlinnéxylany ako zdroj uhlíka, — enzým sa vytěsňuje z ionexového no-siča vysokou koncentráciou soli (0,45 Mchlorid sódny), čo umožňuje enzým viazaťna ionexe priamo prelievaním indukčnýchmédiíí zbavených buniek cez ním náplňenékolony; koncentrácia solí v indukčných mé-diách je nižšia než koncentrácia potřebnána vytesnenie adsorbovaného enzýmu, — enzým sa získá ako elektroforetickyhomogénny preparát, ktorý poskytuje po-čas izoelektricikej foikusácie v rozmedzí pH3 až 7, tri až štyri bielkovinné zóny vyka-zujúce súčasne enzymová aktivitu úměrněk zastúpeniu jednotlivých bielkovín. 259581 Příklad 1
Kvasinky Cryptococcus albidus CCY 17-4--1 (CCY, Československá zbierka kvasiniek,Chemický ústav CChV SAV, Bratislava] vy-rastené na tekutej syntetické) pode obsa-hujúcej 0,67 % ikvasničnej dusíkatej bázy,0,2 % L-asparagínu, 0,5 % dihydrogenfosfo-rečnanu draselného, 1,0 % D-xylózy na ro-tačnej trepačke pri 27 °C počas 24—48 ho-din sa odstredia a přenesu do, rovnakéhosyntetického média ako je uvedené vyššieiba s tým rozdielom, že D-xylóza sa na-hradí metyl /3-D-xylopyranozidom v koncen-trácii 0,5 mg/ml. Po 24 až 48 hodinové) in-kubácii na rotačně] trepačke pri 27 °C sasuspenzia kvasiniek centrifuguje a super-natant obsahu júci v 1 ml přibližné 1,4 jed-notiek xylanázy sa zahustí na rotačmej vá-kuovej odparke pri 35 °C na 1/5 až 1/10 pó-vodného objemu, zdialyzuje sa oproti des-tilované) vodě pri 4 °C (20 hodin) a pre- leje sa cez kolonu CM-Sephadexu C-50(1,8 X 20 cm) ekvilibrovaného 0,05 M ace-tátovým pufrom o pH 5,0. Po přetečení ob-jemu vzorky sa kolona eluuje lineárnymgradientom chloridu sárneho v 0,05 M ace-tátovom pufri (240 ml) až po 1,5 M kon-centráciu chloridu sodného. Zachytávajú sa 3,5 ml frakcie, ktoré sa analyzujú na enzý-movú aktivitu a bielkoviny. Na obr. 1 jeznázorněná elúcia xylanázy z kolony CM--Sephadexu C-50. V zachytávaných frak-ciách sa stanovili bielkoviny meraním ab-sorbancie pri 280 mm (bodkovaná čiara),aktivita xylanázy (plná čiara cez body) akoncentrácia chloridu sódneho (přerušova-ná čiara). Aktivně fraikcie sa zlejú, dialy-zujú proti destilovanéj vodě (4 °C, 20 ho-din) a použijú ako enzymový preparát. En-zým sa získá v 35 %-nom výtažku o špeci-fickej aktivitě 42,6 jednotiek na mg bielko-viny (tabulka 1).
Tabulka 1
Purifikácia xylanázy kvasiniek Cryptococcus albidus indukovanej metyl /S-D-xylopyra-nozidom
Stádium purifikácie Objem Celková aktivita Celkové bielkoviny Specifická aktivita Výťažok Indukčně ml jedn.’ mg jedn./mg % médium Koncentrované indukčně 480 816 120 6,8 100 médium 80 760 104 7,3 93 CM-Sephadex 33 290 6,8 42,6 35,5 aStanovenie enzýmovej aktivity a definícia jednotky enzýmovej aktivity je popísané vliteratúre (P. Biely, M. Vršanská a Z. Krátký, Eur. J. Biochem. 108, 313, 1980).
Enzým indukovaný metyl /í-D-xylopyrano-zidom je totožný s enzýmom produkovanýmkvasinkou Cryptococcus albidus počas ras-tu na xylane a purifikovaným podl'a publi-kovaného postupu (P. Biely, M. Vršanská aZ. Krátký, Eur. j. Biochem. 108, 313, 1980).Oba preparáty dávajú jedi-nú a rovnako sapohybu jdou difúznu zónu bielkoviny a en-zýmovej aktivity počas elektroforézy v po-lyakrylamidovom géli. Enzymy sa javia i-dentické počas izoelektrickej fokusácie vtenkej vrstvě polyakrylamidového' gélu vrozmedzí pH 3 až 7. Niekolko foriem bielko-vín detekovaných farbivom Comassie Bril-liant Blue R-250 vykazovalo úměrně kmnožstvu bielkoviny enzýmovú aktivitu,ktorá sa detekovala kovalentne vyfarbenýmxylanom (P. Biely, O. Markovič a D. Mislo-vičová, Anal. Biochem. 144, 147, 1985).Příklad 2
Supernatant s naindukovanou xynalázou získaný centrifugáciou suspenzie kvasiniek inkubovaných s metyl /3-D-xylopyranOzidom tak ako je popísané v příklade 1 sa neza-husťuje, ale priamo prelieva cez kolonuCM-Sephadexu C-50. Zachytená xylanázasa z kolóny vytěsní a ďalej spracuje tak,ako je uvedené v příklade 1. Výťažok astupeň purifikácie enzýmu odpovedá hodno-tám v tabulke 1. Příklad 3
Enzým sa u kvasiniek indukuje tak, akoje popísané v příklade 1 a aplikuje sa nakolónu CM-Sephadexu C-50 tak, ako je uve-dené v příklade 2. Xylanáza sa z kolóny vy-těsní následovně: kolona sa najprv premyje0,25 M roztokám chloridu sódneho v 0,05M acetátovom pufri o pH 5,0 (75 mol) apotom lineárnym gradientom chloridu sód-neho po 1,0 M koncentráciu v rovnakomacetátovom pufri (150 ml). Xylanáza sa i-zoluje zahuštěním a odsolením frakcie vy-tesnenej pri 0,45 M koncentrácii chloridusódneho. Výťažok a stupeň purifikácie en-zýmu odpovedá hodnotám v tabulke 1,
Claims (4)
- 2 S S7 Endo-l,4-/S-xylainázy sú v poslednom ob-dobí predmetom intenzívneho štúdia v sú-vise s narastajúcim záujmom o využitie lig-noeelulózových odpadov ako zdrojov sacíia-ridov pre fermentačný prietmysel. Purififco-vaná xylanáza kvasiniek Cryiptococcus albi-dus sa dá v tomto zmysle využit ako mode-lový enzym. Ďalšie použitie má vo sféře zá-kladného výskumu, hlavně při štrukturál-nych štúdiách xylanov a pri stádiu úlohyxylanáz v procese izolácie celulózových 8 1 8 vlákien z rastlín ako sú konope a lan, ú-činkom komplexných enzýmových prepará-tov, ktorých súčastou sú a] xylanázy. Pun-tíkovaná xylanáza kvasiniek Cryptococcusalbidus sa dá využit na přípravu poměrněvzácných l,4-j3-xyloologisacharidov z aryl β--D-xylopyranozidov transglykozylačnými re-akciami, ktoiré enzým katalyzuje pri vyso-kých koncentráciách aryl xyíozidov (Z.Krátký, P. Biely a M. Vrštanská, CS AO218 624). PREDMET1. Sposob purifikácie extracelulárnejendo-l,4-/3-xylanázy kvasiniek Cryiptococcusalbidus indukované] metyl p-D-xylopyrano-zidom vyznačujúci sa týni, že indukčně mé-dium s oibsiahnutým enzýmom sa uvediedo styku s ionexom na báze karboxymetylderivátu sletovaného bakteriálneho dextra-nu, na ktorý sa enzým naadsorbuje a z kto-rého sa potom uvolní stúpajúcim gradien-tom chloridu sodného až do 1,5 M koncen-trácie. VYNÁLEZU
- 2. Sposob podlá bodu 1, vyznačujúci satým, že sa nosič na chromatografiu ekvilib-ruje acetátovým pufrom o pH 4,5 až 5,5.
- 3. Sposob purifikácie podl'a bodov· 1 a 2vyznačujúci sa tým, že sa použije 0,05 Macetátový pufer o pH 5,0 a enzým sa uvol-ní pri 0,45 M koncentrácií chloridu sodné-ho.
- 4. Sposob podlá bodov 1 až 3 vyznačujúcisa tým, že enzymový roztok sa ďalej zbavísolí a zahustí. 1 list výkresov
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS869951A CS259581B1 (sk) | 1986-12-27 | 1986-12-27 | Sposob purifikácie extracelulárnej endo-l,4-6-xylanázy kvasiniek Cryptococcus albidus |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS869951A CS259581B1 (sk) | 1986-12-27 | 1986-12-27 | Sposob purifikácie extracelulárnej endo-l,4-6-xylanázy kvasiniek Cryptococcus albidus |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS995186A1 CS995186A1 (en) | 1988-03-15 |
| CS259581B1 true CS259581B1 (sk) | 1988-10-14 |
Family
ID=5447293
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS869951A CS259581B1 (sk) | 1986-12-27 | 1986-12-27 | Sposob purifikácie extracelulárnej endo-l,4-6-xylanázy kvasiniek Cryptococcus albidus |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS259581B1 (cs) |
-
1986
- 1986-12-27 CS CS869951A patent/CS259581B1/cs unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS995186A1 (en) | 1988-03-15 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Kahn et al. | Phosphofructokinase (PFK) isozymes in man: I. Studies of adult human tissues | |
| Gazdar et al. | Continuous, clonal, insulin-and somatostatin-secreting cell lines established from a transplantable rat islet cell tumor. | |
| Schnaitman | Examination of the protein composition of the cell envelope of Escherichia coli by polyacrylamide gel electrophoresis | |
| Panbangred et al. | Purification and properties of endoxylanase produced by Bacillus pumilus | |
| Fujimoto et al. | Purification of a nuclease from Penicillium citrinum | |
| US5275944A (en) | Thermostable purified endoglucanas from acidothermus cellulolyticus ATCC 43068 | |
| Capaccio et al. | The enzymes of polyphosphate metabolism in vesicular‐arbuscular mycorrhizas | |
| MacConnell et al. | The activity of the acidic phosphoproteins from the 80 S rat liver ribosome. | |
| Lee et al. | Cellulase production by a thermophilic Clostridium species | |
| Bhushan et al. | Isolation, purification and properties of a thermostable chitinase from an alkalophilic Bacillus sp. BG-11 | |
| WO1991005039A1 (en) | Thermostable purified endoglucanases from thermophilic bacterium acidothermus cellulolyticus | |
| Nagai et al. | Entrapment of collagen in a polyacrylamide matrix and its application in the purification of animal collagenases | |
| Wadström et al. | Bacteriolytic enzymes from Staphylococcus aureus. Purification of an endo-β-N-acetylglucosaminidase | |
| Boucek Jr et al. | Purification by affinity chromatography and preliminary characterization of ornithine decarboxylase from simian virus 40-transformed 3T3 mouse fibroblasts | |
| EP0133694B1 (en) | Process for producing neuraminidase and method and reagent for the quantitative determination of a sialic acid-containing substance using neuraminidase | |
| Fukumoto et al. | Effects of carbon sources and base analogues of nucleic acid on the formation of bacterial amylase | |
| Sodek et al. | Large-scale preparation and some properties of penicillopepsin, the acid proteinase of Penicillium janthinellum | |
| Yonezawa et al. | Electrophoretic studies on the phosphorylase isozymes. | |
| Chien et al. | Purification and properties of two forms of human α-l-fucosidase | |
| James et al. | Purification and properties of the L-cysteinyl ribonucleic acid synthetase of bakers' yeast | |
| CS259581B1 (sk) | Sposob purifikácie extracelulárnej endo-l,4-6-xylanázy kvasiniek Cryptococcus albidus | |
| Nummi et al. | Immunoelectrophoretic detection of cellulases | |
| Comp et al. | Properties of an extracellular β-galactosidase secreted by Neurospora crassa | |
| Simon et al. | Allosteric and non-allosteric phosphofructokinases from lactobacilli purification and properties of phosphofructokinases from L. Plantarum and L. Acidophilus | |
| ADAM et al. | Carbohydrate utilization by the soil amoeba Hartmannella castellanii |