CS259581B1 - Sposob purifikácie extracelulárnej endo-l,4-6-xylanázy kvasiniek Cryptococcus albidus - Google Patents

Sposob purifikácie extracelulárnej endo-l,4-6-xylanázy kvasiniek Cryptococcus albidus Download PDF

Info

Publication number
CS259581B1
CS259581B1 CS869951A CS995186A CS259581B1 CS 259581 B1 CS259581 B1 CS 259581B1 CS 869951 A CS869951 A CS 869951A CS 995186 A CS995186 A CS 995186A CS 259581 B1 CS259581 B1 CS 259581B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
enzyme
xylanase
yeast
purification
column
Prior art date
Application number
CS869951A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Other versions
CS995186A1 (en
Inventor
Maria Vrsanska
Peter Biely
Original Assignee
Maria Vrsanska
Peter Biely
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Maria Vrsanska, Peter Biely filed Critical Maria Vrsanska
Priority to CS869951A priority Critical patent/CS259581B1/cs
Publication of CS995186A1 publication Critical patent/CS995186A1/cs
Publication of CS259581B1 publication Critical patent/CS259581B1/cs

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

239381
Vynález sa týká jednostupňovej purifiká-cie extracelulámej endo-l,4-j3-xylanázy kva-siniek Cryptococcus albidus indukované]'syntetickým induiktorom metyl jS-D-xylopyra-nozidom (P. Biely, Z. Krátký a M. Vršanská,CS AO 206 914).
Endo-l,4-/3-xylanázy (EC 3.2.1.8) mikro-organizmov sú spravidla enzýmy sekretova-né buňkami do prostredia počas rastu narastlinných xylanoeh, celulóze a iiných rast-linných materiáloch obsahujúcich hemi.ce-lulózu. Izolujú a purifikujú sa z pastovýchmédií zbavených buniek producenta. V pr-vom kroku purifikácie sa rastové médiumzahušťuje ultrafiltráciou, vakuovou desti-láciou, lyofilizáciou alebo sušením. Zo za-huštěných preparátov sa bielkoviny zrážajúbuď organickými rozpúšťadlami, alebo síra-nom amonným. Koncentrované extracelu-lárne bielkoviny alebo získané bielkovinnéfrakcie sa frakcioinujú gélovou filtráciouna sieťovaných polyméroch, alebo ionexo-vou chromatografiou na róznych druhochanexov a katexov ako sú například dietyl-amínoetyl a karboxymetyl deriváty celuló-zy a dextránov, a využívá sa tiež hydroxy-apatit a mnohé iné nosiče. Prehlad použi-tých metod purifikácie xylanáz možno nájsťv článku R. F. H. Dekkera a G. N. Richar-da (Adv. Carbohydr. Chem. Biochem. 32,277, 1976). Purifikácia xylanáz z rastovýchmédií, v ktorých sa používá xylan alebo inýrastlinný materiál ako zdroj uhlíka, bývákomplikovaná skutočnosťou, že zdroj uhlí-ka sa mikrooirganizmom nespotřebuje úpl-né a jeho zvyšky v rastovom médiu interfe-rují! s purifikáciiOiu enzýmu v důsledku en-zým-substrátových interakci!. Příklad inter-ferencie zvyšného xylanu možno nájsť i vpřípade purifikácie kvasničnej xylanázy (P.Biely, M. Vršanská, Z. Krátký, Eur. J. Bio-chem. 108, 313, 1980), ktorej je věnovanýtento vynález. Uvedeným ťažkostiam sa dávyhnúí tak, že produkcia enzýmu v buň-kách sa navodí nízkomolekulárnymi látka-mi, ktoré nie sú súčasne jeho substrátom.IJ nieiktorých mikroorganizmov ako sú Strep-tomyces (K. Nakanishi, T. Yasui a T. Kobay-ashi, J. Ferment. Technol. 34, 801, 1976),kvasinky Cryptococcus albidus (P. Biely, Z.Krátký a M. Vršanská, CS AO 206 914) aCryptococcus flavus (T. Yasui, B. T. Nguyena K. Nakanishi, J. Ferment. Technol. 62,353, 1984) sa dá produkcia xylanázy indu-kovat metyl (3-D-xylopyranozidom. V přípa-de Streptomyces boili takto, indukované xy-lanázy purifikovamé klasickými chromato-grafickými metodami v kombinácii s pre-paratívnou izoelektrickou fokusáciou (M.Marui, K. Nakanishi a T. Yasui, Agr. Biol.Chem. 49, 3 399, 1985). Výhoda indukciexylanázy nízkomoilekulárnym induktoromsa pri jej purifikácii prvýkrát využila v pří-pade enzýmu kvasiniek Cryptococcus fla-vus. Purifikácia enzýmu sa dosiahla v jed-nom stupni chromatografiou vákuove za- huštěného média na kolóne SP-SephadexuC-25 (K. Nakanishi, H. Arai a T. Yasui, J.Ferment. Technol. 62, 361, 1984). K uvol-neniu enzýmu z uvedeného katexu dochád-za pri relativné nízkej koncentrácii chlo-ridu sodného, (0,05 M), čo kladie poměrněvysoké nároky na odstránenie solí z in-dukčných médií, ktoré by bránili naviaza-niu enzýmu na nosič. Extraceluláma xyla-náza kvasiniek Cryptococcus albidus, patri-aca medzi najlepšie preštudované enzýmytohto druhu (P. Biely, Z. Krátký a M. Vr-šanská, Eur. J. Biochem. 119, 559, 1981). saz indukčných médií s metyl (3-D-xylopyra-nozidom v minulosti nepurifikovala. Sposobpurifikácie takto indukovaného enzýmu jepredmetom tohto vynálezu.
Podstata vynálezu spočívá v tom, že ex-traceulárna eindo-l,4-/3-xylanáza kvasiniekCryptococcus albidus indukovaná metyl-/S--D-xylopyranozidom tak ako sa popisuje vCS AO 206 914 sa z indukčného média kva-siniek získá ako homogénna bielkovina vjednom purifiikačnom stupni ionexovouchromatografiou na kolóne karboxymetylderivátu sletovaného bakteriálneho dextra-nu (CM-Sephadex C-50, Pharmacia Uppsala,Švédsko) ekvilibrovanom v acetátovom puf-ri, pH 4,5 až 5,5 tak, že indukčně médiumzbavené kvasiniek centrifugáciou sa pria-mo, alebo po zahuštění vákuovou destilácioualebo ultrafiltráciou preleje cez pripravenúkolonu nosič a, na ktorom sa enzým zachytía z ktorého sa potom enzým uvolní elúcioulineárnym gradientom chloridu sodného po1,0 až 1,5 M komcentráciu. V případe použi-tia 0,05 M acetátového pufru o pH 5,0 saenzým vytěsní z kolony ako ostrá bielko-vinná frakcia pri 0,45 M koncentrácii chlo-ridu sodného, ktorá sa buď priamo, alebopo zahuštění destiláciou alebo ultrafiltrá-ciou, připadne odsolení dialýzou alebo ul-trafiltráciou použije ako zdroj purifikova-nej xylanázy. Výhodou tohto sposobu purifikácie extra-celulárnej endo-l,4-/3-xylanázy Cryptoco-ccus albidus je to, že — je jednoduchý a rýchly predovšetkýmv porovnaní s postu,porn purifikácie enzýmuz rastových médií obsahujúcich rastlinnéxylany ako zdroj uhlíka, — enzým sa vytěsňuje z ionexového no-siča vysokou koncentráciou soli (0,45 Mchlorid sódny), čo umožňuje enzým viazaťna ionexe priamo prelievaním indukčnýchmédiíí zbavených buniek cez ním náplňenékolony; koncentrácia solí v indukčných mé-diách je nižšia než koncentrácia potřebnána vytesnenie adsorbovaného enzýmu, — enzým sa získá ako elektroforetickyhomogénny preparát, ktorý poskytuje po-čas izoelektricikej foikusácie v rozmedzí pH3 až 7, tri až štyri bielkovinné zóny vyka-zujúce súčasne enzymová aktivitu úměrněk zastúpeniu jednotlivých bielkovín. 259581 Příklad 1
Kvasinky Cryptococcus albidus CCY 17-4--1 (CCY, Československá zbierka kvasiniek,Chemický ústav CChV SAV, Bratislava] vy-rastené na tekutej syntetické) pode obsa-hujúcej 0,67 % ikvasničnej dusíkatej bázy,0,2 % L-asparagínu, 0,5 % dihydrogenfosfo-rečnanu draselného, 1,0 % D-xylózy na ro-tačnej trepačke pri 27 °C počas 24—48 ho-din sa odstredia a přenesu do, rovnakéhosyntetického média ako je uvedené vyššieiba s tým rozdielom, že D-xylóza sa na-hradí metyl /3-D-xylopyranozidom v koncen-trácii 0,5 mg/ml. Po 24 až 48 hodinové) in-kubácii na rotačně] trepačke pri 27 °C sasuspenzia kvasiniek centrifuguje a super-natant obsahu júci v 1 ml přibližné 1,4 jed-notiek xylanázy sa zahustí na rotačmej vá-kuovej odparke pri 35 °C na 1/5 až 1/10 pó-vodného objemu, zdialyzuje sa oproti des-tilované) vodě pri 4 °C (20 hodin) a pre- leje sa cez kolonu CM-Sephadexu C-50(1,8 X 20 cm) ekvilibrovaného 0,05 M ace-tátovým pufrom o pH 5,0. Po přetečení ob-jemu vzorky sa kolona eluuje lineárnymgradientom chloridu sárneho v 0,05 M ace-tátovom pufri (240 ml) až po 1,5 M kon-centráciu chloridu sodného. Zachytávajú sa 3,5 ml frakcie, ktoré sa analyzujú na enzý-movú aktivitu a bielkoviny. Na obr. 1 jeznázorněná elúcia xylanázy z kolony CM--Sephadexu C-50. V zachytávaných frak-ciách sa stanovili bielkoviny meraním ab-sorbancie pri 280 mm (bodkovaná čiara),aktivita xylanázy (plná čiara cez body) akoncentrácia chloridu sódneho (přerušova-ná čiara). Aktivně fraikcie sa zlejú, dialy-zujú proti destilovanéj vodě (4 °C, 20 ho-din) a použijú ako enzymový preparát. En-zým sa získá v 35 %-nom výtažku o špeci-fickej aktivitě 42,6 jednotiek na mg bielko-viny (tabulka 1).
Tabulka 1
Purifikácia xylanázy kvasiniek Cryptococcus albidus indukovanej metyl /S-D-xylopyra-nozidom
Stádium purifikácie Objem Celková aktivita Celkové bielkoviny Specifická aktivita Výťažok Indukčně ml jedn.’ mg jedn./mg % médium Koncentrované indukčně 480 816 120 6,8 100 médium 80 760 104 7,3 93 CM-Sephadex 33 290 6,8 42,6 35,5 aStanovenie enzýmovej aktivity a definícia jednotky enzýmovej aktivity je popísané vliteratúre (P. Biely, M. Vršanská a Z. Krátký, Eur. J. Biochem. 108, 313, 1980).
Enzým indukovaný metyl /í-D-xylopyrano-zidom je totožný s enzýmom produkovanýmkvasinkou Cryptococcus albidus počas ras-tu na xylane a purifikovaným podl'a publi-kovaného postupu (P. Biely, M. Vršanská aZ. Krátký, Eur. j. Biochem. 108, 313, 1980).Oba preparáty dávajú jedi-nú a rovnako sapohybu jdou difúznu zónu bielkoviny a en-zýmovej aktivity počas elektroforézy v po-lyakrylamidovom géli. Enzymy sa javia i-dentické počas izoelektrickej fokusácie vtenkej vrstvě polyakrylamidového' gélu vrozmedzí pH 3 až 7. Niekolko foriem bielko-vín detekovaných farbivom Comassie Bril-liant Blue R-250 vykazovalo úměrně kmnožstvu bielkoviny enzýmovú aktivitu,ktorá sa detekovala kovalentne vyfarbenýmxylanom (P. Biely, O. Markovič a D. Mislo-vičová, Anal. Biochem. 144, 147, 1985).Příklad 2
Supernatant s naindukovanou xynalázou získaný centrifugáciou suspenzie kvasiniek inkubovaných s metyl /3-D-xylopyranOzidom tak ako je popísané v příklade 1 sa neza-husťuje, ale priamo prelieva cez kolonuCM-Sephadexu C-50. Zachytená xylanázasa z kolóny vytěsní a ďalej spracuje tak,ako je uvedené v příklade 1. Výťažok astupeň purifikácie enzýmu odpovedá hodno-tám v tabulke 1. Příklad 3
Enzým sa u kvasiniek indukuje tak, akoje popísané v příklade 1 a aplikuje sa nakolónu CM-Sephadexu C-50 tak, ako je uve-dené v příklade 2. Xylanáza sa z kolóny vy-těsní následovně: kolona sa najprv premyje0,25 M roztokám chloridu sódneho v 0,05M acetátovom pufri o pH 5,0 (75 mol) apotom lineárnym gradientom chloridu sód-neho po 1,0 M koncentráciu v rovnakomacetátovom pufri (150 ml). Xylanáza sa i-zoluje zahuštěním a odsolením frakcie vy-tesnenej pri 0,45 M koncentrácii chloridusódneho. Výťažok a stupeň purifikácie en-zýmu odpovedá hodnotám v tabulke 1,

Claims (4)

  1. 2 S S7 Endo-l,4-/S-xylainázy sú v poslednom ob-dobí predmetom intenzívneho štúdia v sú-vise s narastajúcim záujmom o využitie lig-noeelulózových odpadov ako zdrojov sacíia-ridov pre fermentačný prietmysel. Purififco-vaná xylanáza kvasiniek Cryiptococcus albi-dus sa dá v tomto zmysle využit ako mode-lový enzym. Ďalšie použitie má vo sféře zá-kladného výskumu, hlavně při štrukturál-nych štúdiách xylanov a pri stádiu úlohyxylanáz v procese izolácie celulózových 8 1 8 vlákien z rastlín ako sú konope a lan, ú-činkom komplexných enzýmových prepará-tov, ktorých súčastou sú a] xylanázy. Pun-tíkovaná xylanáza kvasiniek Cryptococcusalbidus sa dá využit na přípravu poměrněvzácných l,4-j3-xyloologisacharidov z aryl β--D-xylopyranozidov transglykozylačnými re-akciami, ktoiré enzým katalyzuje pri vyso-kých koncentráciách aryl xyíozidov (Z.Krátký, P. Biely a M. Vrštanská, CS AO218 624). PREDMET
    1. Sposob purifikácie extracelulárnejendo-l,4-/3-xylanázy kvasiniek Cryiptococcusalbidus indukované] metyl p-D-xylopyrano-zidom vyznačujúci sa týni, že indukčně mé-dium s oibsiahnutým enzýmom sa uvediedo styku s ionexom na báze karboxymetylderivátu sletovaného bakteriálneho dextra-nu, na ktorý sa enzým naadsorbuje a z kto-rého sa potom uvolní stúpajúcim gradien-tom chloridu sodného až do 1,5 M koncen-trácie. VYNÁLEZU
  2. 2. Sposob podlá bodu 1, vyznačujúci satým, že sa nosič na chromatografiu ekvilib-ruje acetátovým pufrom o pH 4,5 až 5,5.
  3. 3. Sposob purifikácie podl'a bodov· 1 a 2vyznačujúci sa tým, že sa použije 0,05 Macetátový pufer o pH 5,0 a enzým sa uvol-ní pri 0,45 M koncentrácií chloridu sodné-ho.
  4. 4. Sposob podlá bodov 1 až 3 vyznačujúcisa tým, že enzymový roztok sa ďalej zbavísolí a zahustí. 1 list výkresov
CS869951A 1986-12-27 1986-12-27 Sposob purifikácie extracelulárnej endo-l,4-6-xylanázy kvasiniek Cryptococcus albidus CS259581B1 (sk)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS869951A CS259581B1 (sk) 1986-12-27 1986-12-27 Sposob purifikácie extracelulárnej endo-l,4-6-xylanázy kvasiniek Cryptococcus albidus

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS869951A CS259581B1 (sk) 1986-12-27 1986-12-27 Sposob purifikácie extracelulárnej endo-l,4-6-xylanázy kvasiniek Cryptococcus albidus

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS995186A1 CS995186A1 (en) 1988-03-15
CS259581B1 true CS259581B1 (sk) 1988-10-14

Family

ID=5447293

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS869951A CS259581B1 (sk) 1986-12-27 1986-12-27 Sposob purifikácie extracelulárnej endo-l,4-6-xylanázy kvasiniek Cryptococcus albidus

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS259581B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS995186A1 (en) 1988-03-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Kahn et al. Phosphofructokinase (PFK) isozymes in man: I. Studies of adult human tissues
Gazdar et al. Continuous, clonal, insulin-and somatostatin-secreting cell lines established from a transplantable rat islet cell tumor.
Schnaitman Examination of the protein composition of the cell envelope of Escherichia coli by polyacrylamide gel electrophoresis
Panbangred et al. Purification and properties of endoxylanase produced by Bacillus pumilus
Fujimoto et al. Purification of a nuclease from Penicillium citrinum
US5275944A (en) Thermostable purified endoglucanas from acidothermus cellulolyticus ATCC 43068
Capaccio et al. The enzymes of polyphosphate metabolism in vesicular‐arbuscular mycorrhizas
MacConnell et al. The activity of the acidic phosphoproteins from the 80 S rat liver ribosome.
Lee et al. Cellulase production by a thermophilic Clostridium species
Bhushan et al. Isolation, purification and properties of a thermostable chitinase from an alkalophilic Bacillus sp. BG-11
WO1991005039A1 (en) Thermostable purified endoglucanases from thermophilic bacterium acidothermus cellulolyticus
Nagai et al. Entrapment of collagen in a polyacrylamide matrix and its application in the purification of animal collagenases
Wadström et al. Bacteriolytic enzymes from Staphylococcus aureus. Purification of an endo-β-N-acetylglucosaminidase
Boucek Jr et al. Purification by affinity chromatography and preliminary characterization of ornithine decarboxylase from simian virus 40-transformed 3T3 mouse fibroblasts
EP0133694B1 (en) Process for producing neuraminidase and method and reagent for the quantitative determination of a sialic acid-containing substance using neuraminidase
Fukumoto et al. Effects of carbon sources and base analogues of nucleic acid on the formation of bacterial amylase
Sodek et al. Large-scale preparation and some properties of penicillopepsin, the acid proteinase of Penicillium janthinellum
Yonezawa et al. Electrophoretic studies on the phosphorylase isozymes.
Chien et al. Purification and properties of two forms of human α-l-fucosidase
James et al. Purification and properties of the L-cysteinyl ribonucleic acid synthetase of bakers' yeast
CS259581B1 (sk) Sposob purifikácie extracelulárnej endo-l,4-6-xylanázy kvasiniek Cryptococcus albidus
Nummi et al. Immunoelectrophoretic detection of cellulases
Comp et al. Properties of an extracellular β-galactosidase secreted by Neurospora crassa
Simon et al. Allosteric and non-allosteric phosphofructokinases from lactobacilli purification and properties of phosphofructokinases from L. Plantarum and L. Acidophilus
ADAM et al. Carbohydrate utilization by the soil amoeba Hartmannella castellanii