CS259289B1 - Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou - Google Patents

Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou Download PDF

Info

Publication number
CS259289B1
CS259289B1 CS8610163A CS1016386A CS259289B1 CS 259289 B1 CS259289 B1 CS 259289B1 CS 8610163 A CS8610163 A CS 8610163A CS 1016386 A CS1016386 A CS 1016386A CS 259289 B1 CS259289 B1 CS 259289B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
autolysate
autolysis
sodium chloride
active
added
Prior art date
Application number
CS8610163A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Other versions
CS1016386A1 (en
Inventor
Ernest Sturdik
Roman Kollar
Maria Mikulasova
Stanislav Krcmar
Sona Huncikova
Original Assignee
Ernest Sturdik
Roman Kollar
Maria Mikulasova
Stanislav Krcmar
Sona Huncikova
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ernest Sturdik, Roman Kollar, Maria Mikulasova, Stanislav Krcmar, Sona Huncikova filed Critical Ernest Sturdik
Priority to CS8610163A priority Critical patent/CS259289B1/cs
Publication of CS1016386A1 publication Critical patent/CS1016386A1/cs
Publication of CS259289B1 publication Critical patent/CS259289B1/cs

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

Vynález sa týká spósobu uvoíňovania cy-toplazmatického obsahu kvasiniek induko-vanou autolýzou za účelom získavania potra-vinářsky a farmaceuticky využitelných buň-kových komponent.
Na rozrušenie bunkovej steny a tým sprí-stupnenie proteínov a ostatných zložiek bio·-masy kvasiniek sa používajú rožne fyzikál-ně, chemické a biochemické spósoby dezin-tegrácie, pričom potřebný stupeň rozruše-nia buňky sa dosahuje často kombinácioutýchto metod.
Jednou z fyzikálnych metod dezintegrácieje balotlnová dezintegrácia, čo je vlastnědrvenie alebo mletie biomasy v zariadeniachs roznymi abrazívami (Mogren, H., Lind-blom, H., Hedenskog, G., Biotechnol. Bioeng.16, 261—274, 1974). Nevýhodou tohto spó-sobu je poměrně velký otěr abrazíva, s čímsúvisí potřeba viacnásobného premývania alokálně zahrievanie susepnzie vyžadujúcechladenie.
Vysokotlaková metoda dezintegrácie(Brookman, J. S., Biotechnol. Bioeng. 17,465—479, 1975} spočívá v tom, že suspenziakvasiniek prechádza z oblasti vysokého tla-ku cez trysky dezintegračného zariadeniado oblasti normálneho tlaku. Rozbitie bu-niek je v priamej závislosti na hodnotě hyd-rostatického tlaku a na rýchlosti změny tla-ku v prostředí, v ktorom sú buňky suspen-dované. Aj pri poměrně vysokých hodnotáchtlaku sa však tento spósob vyznačuje po-měrně nízkou účinnosťou, nesúcou so sebounutnost viacnásobne oipakovať proces, čímvznikajú fragmenty róznych velkostí a pro-blémy pri ich separácii. Navýše zahrievaniepri změnách tlaku může viesť k inaktiváciiintrancelulárnych enzýmov.
Princípom dezintegrácie explozívnou de-kompresiou je nasýtenie suspenzie vhodnýmplynom pod tlakom a rýchle zníženie tlaku(Nesterov, A. I., Stavoroitova, G. A., Prikl.Biochim, Mikrobiol. 11, 593—597, 1975). Ná-sledkom vyrovnávania tlakového rozdielu vovnútri buňky a jej okolí dochádza k rozru-šeniu buňkových stien. Vnútrobunečný ob-sah však zostáva z velkej časti vnútri bu-niek, nakofko rozrušená buňka po krátko-dobom působení dezintegrácie už nie je me-chanicky namáhaná. To si vyžaduje nutnosťviacnásobného opakovania dezintegrácie.
Okrem týchto najznámejších spósobov dez-integrácie sa zriedkavo využívá aj ultraso-nikácia, zmrazovanie, sušenie.
Chemické spósoby spočívajú v pósobeníurčitých látok (napr. tiolov) na zložky bun-kovej steny, čím sa buňková stená labilizu-je až ropzadá (Shetty, J. K., Kinsella, J. E.,Biotechnol. Bioeng. 20, 755—766, 1978).
Biochemické metody sú založené na en- zymatickom pósobení cudzieho alebo vlast- ného lytického aparátu na bunkovú stenu. V experimentálnych podmienkach je hojné rozšířené napma využívanie exogénnych sy- stémov (Phaff, M. J., Adv. Chem. Ser. 160,249—282, 1977) získaných z baktérií Arthro-bacter luteus, Bacillus subtilis, húb Oersko-wia, Albus, Coprinus, Flavus a dalších, ale-bo sa v laboratórnom rozsahu využívá trá-viaca šťava slimáka Helix pomatia.
Poměrně menej sa využívá endogénny ly-tický systém kvasiniek (Chrenova, N. M.,Bezrukov, M. G., Kogan, A. S., Sergejev, W.A., NahíFung 25-, 837—844, 1981). Buňka zaurčitých okolností (vyčerpáme živin, ne-vhodná teplota, Ph) produkuje lytické en-zýmy — andopeptidázy, karboxypeptidázy,aminopeptidázy, kyslú fosfatázu, /3-(l,3)gIu-kanázu, které pósobie na vlastnú bunkovústenu a rozkladajú ju. Tento proces — auto-lýza priebeha v konečnom důsledku až doroaloženia buniek na základné zložky akosú aminokyseliny, patidy, nukleotidy, nízko-molekulové sacharidy, vitamíny atď. Ak savšak vedle len do určitého požadovanéhostupňa, móže slúžif ako vhodný prostriedokna dezintegráciu buňky a uvoíňovanie pro-teínov a iných vnútrobunečných zložiek doprostredia. Doba prirodzeného autolytickéhoprocesu je poměrně dlhá (niekolko dní),čo vyvolává riziko bakteriálnej kontaminá-cie.
Tento nedostatok v podstanej miere od-straňuje spósob podlá vynálezu, ktoréhopodstata spočívá v tom, že na vstupnú suro-vinu o sušině 5 až 30 % hmot. sa působíaktívnym autolyzátom v objemovom pomere1 : 3 až 1 : 12, zmes sa lyžuje za miešaniapri teplote 45 až 55 °C počas 5 až 30 hodin.Na vstupnú surovinu sa súčasne s autoly-zátom móže pósobiť etanolom v hmotnost-nom pomere 1 : 99 až 1 : 9 a/alebo- chlo-ridem sodným v hmotnostnom pomere 1 ku999, až; 1 : 9.
Spósob podlá vynálezu rozšiřuje paletudoposiaf používaných iniciačných faktorovautolýzy. Spočívá v iniciácii autolýzy přidá-ním. vhodného množstva už zhyzovanej sus-penzie tohoistého mikroorganizmu. V pridá-vanom lyzáte sú už neprodukované a uvol-něné lytické enzýmy, ktoré můžu hned ata-kovat buňkové steny,, tieto sa stávajú prí-stupnejšie vlastnému lytickému systému,ktorý sa zatial’ utvoří a proces rozloženiabuňky sa takto podstatné skráti na 5 až 30hodin.
Kombináciou s inými iniciačnými faktor-mi, ako je chlorid sodný a etanol sa eštezefektivni pósobenie autolytického systému.Ak ako kritérium autolytickej dezintegráciebuniek používáme množstvo uvolněných pro-teínov, tak potom sa týmto spósobom, t. j.prídavkom etanolu, chloridu sodného a ak-tívneho autolyzátu k suspenzii za niekolkohodin z buňky uvolní 50—80 % z celkovýchproteínov, stanovených Lowryho metodou.
Vhodný poměr přidávaného aktívneho au- tolyzátu k biomase zabezpečuje, že sa k mikrobiálnej suspenzii přidá dostatočné 5 239289 množstvo lytických enzýmov a přitom čo ných spOsoboch iniciácie autolýzy udává ta-najmenej ulitizovatefných živin. bulka 1.
Množstvo uvolněných proteínov pri růz-
Tabulka 1
Množstvo proteínov uvolněných do super-natantu (v %) z pdvodného obsahu proteí-nov v intaktnom droždí, pri roznych dobácha spósoboch iniciácie autolýzy. Etanol, res-pektive chlorid sodný přidávaný vo· výsled-
Čas 50 °C 50 °C (hj NaCl 1 0,7 0,9 5 4,6 5,6 10 9,0 12,1 24 36,3 46,3 Příklad 1 te 3 1 kvasničnej suspenzie o sušině 10 %a obsahu proteínov 32,8 mg/ml sa přidá600 ml štandardného autolyzátu, 30 g chlo-ridu sodného, 150 g etanolu a zmes sa inku-buje za miešania pri 50 °C. Po 5 hodináchsa suspenzia scentrifuguje, pričom sa získá730 g sedimentu, využitelného na izoláciunapříklad ergosterolu a 2 812 ml supernatan-tu o sušině 4,1 % a obsahu proteínov 15,5 mg/ml využitelného na izoláciu pro-teínov. Příklad 2
Postup rovnaký ako v příklade 1, lýza savšak nepřeruší po 5. hodině, ale po 24. ho-dině. Po centrifugách sa z rovnakého množ-stva suspenzie získá 639 g sedimentu a3 044 ml supernatantu o sušině 6 % a obsa-hu proteínov 25 mg/ml. Příklad 3
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidása však 1 000 ml aktívneho autolyzátu a 60 gchloridu sodného. Získaný supernatant másušinu 9,1 % a obsah proteínov 48,5 mg/ml.Příklad 4
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidása však 3 g chloridu sodného a 30 g etyl-alkoholu. Získaný supernatant má sušinu 7,4 % a obsah proteínov 43,0 mg/ml. Příklad 5
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidá sa však 150 g chloridu sodného a 300 g etylalkoholu. Získaný supernatant má sušinu 11 % a obsah proteínov 44 mg/ml. nej koncentrácii 5 % hmot., autolyzát vmnožstve zodpovedajúcom 1/6 objemu, vstup- nej suroviny10 %}. (kvasničné mlieko o sušině 50 °C 50 °C 50 °C etylalkohol autolyzát etylalkohol NaCl autolyzát 1,9 17,5 18,2 7,1 26,6 37,2 16,0 45,3 68,5 50,9 Příklad 6 64,7 78,8
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidása 500 ml aktívneho autolyzátu, 60 g chlo-ridu sodného a 30 g etylalkoholu. Získanýsupernatant má sušinu 8,2 % a obsah pro-teínov 44 mg/ml. Příklad 7
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidása však 150 g chloridu sodného a 500 ml ak-tívneho autolyzátu, získaný supernatant másušinu 11,2 % a obsah proteínov 41,5 mg/ml.Příklad 8
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidása však 500 ml aktívneho autolyzátu, 3 gchloridu sodného a 300 g etylalkoholu. Zís-kaný supernatant má sušinu 6,9 % a obsahproteínov 46,2 mg/ml. Příklad ‘9
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidása však 100 ml aktívneho autolyzátu, 150 gchloridu sodného^ a 30 g etylalkoholu, Zís-kaný supernatant má sušinu 10,7 % a obsahproteínov 46,2 mg/ml. Příklad 10
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidása však 100 ml aktívneho autolyzátu, 3 gchloridu sodného. Získaný supernatant másušinu 6,2 % a obsah proteínov 36,2 mg/ml.Příklad 11
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidá sa však 100 ml aktívneho autolyzátu, 60 g chloridu sodného a 300 g etylalkoholu. Zís- kaný supernatant má sušinu 7,0 % a obsah proteínov 40,5 mg/ml.

Claims (2)

  1. 259289 PREDMET
    1. Spůsob uvolňovania cytoplazmatickéhoobsahu kvasiniek indukovanou autolýzou vy-značujúci sa tým, že na vstupnú surovinuo sušině 5 až 30 % hmot. sa působí aktív-nym autolyzátom v objemovom pomere 1 ku3 až 1 : 12, zmes sa lyžuje za miešania priteplote 45 až 55 °C počas 5 až 30 hodin. VYNALEZU
  2. 2. Spůsob uvolňovania cytoplazmatickéhoobsahu kvasiniek podlá bodu 1 vyznačujúcisa tým, že na vstupnú surovinu sa súčasnes autolyzátom působí etanolom v hmotnost-nom pomere 1 : 99 až 1 : 9 a/alebo chlori-dom sodným v hmotnostnom pomere 1 : 999až 1 : 9. Severografia, n. p. závod 7, Most Cena 2,40 Kčs
CS8610163A 1986-12-29 1986-12-29 Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou CS259289B1 (sk)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS8610163A CS259289B1 (sk) 1986-12-29 1986-12-29 Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS8610163A CS259289B1 (sk) 1986-12-29 1986-12-29 Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS1016386A1 CS1016386A1 (en) 1988-02-15
CS259289B1 true CS259289B1 (sk) 1988-10-14

Family

ID=5448195

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS8610163A CS259289B1 (sk) 1986-12-29 1986-12-29 Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS259289B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS1016386A1 (en) 1988-02-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
John et al. Purification and some properties of five endo-1, 4-β-D-xylanases and β-D-xylosidase produced by a strain of Aspergillus niger
Malamy et al. Release of alkaline phosphatase from cells of Escherichia coli upon lysozyme spheroplast formation
Neu et al. The release of enzymes from Escherichia coli by osmotic shock and during the formation of spheroplasts
Harrison Bacterial cell disruption: a key unit operation in the recovery of intracellular products
Shimosaka et al. Chitosanase from the plant pathogenic fungus, Fusarium solani f. sp. phaseoli: purification and some properties
US5306637A (en) Method for recovery of intracellular material by disruption of microbial cells with carbon dioxide under pressure
Knorr et al. Enzymatic lysis of yeast cell walls
Johnson et al. Simple method for the isolation of astaxanthin from the basidiomycetous yeast Phaffia rhodozyma
KR970043056A (ko) 균사체의 함유 배양지에서의 유용성분의 추출방법
Bartnicki-Garcia et al. Chitosomes from the wall-less “slime” mutant of Neurospora crassa
Kawata et al. Autolytic formation of spheroplasts and autolysis of cell walls in Clostridium botulinum type A
US3862112A (en) Alkali extraction of microbial cellular proteins at high temperature
Li et al. Unit operations applied to cell disruption of microalgae
CS259289B1 (sk) Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou
US3996104A (en) Process for preparing from a microbial cell mass a protein concentrate having a low nucleic acid content, and the protein concentrate thus obtained
Satomura et al. Studies on the Glucanase of Sclerotinia Libertiana: Part I. Activity of the Glucanase on Glucans of Yeast and Sclerotia of the Fungus
Kobayashi et al. Preparation and evaluation of an enzyme which degrades yeast cell walls
Domínguez et al. Stimulation of novel thermostable extracellular lipolytic enzyme in cultures of Thermus sp.
Subramanyam et al. An enzymic method for the determination of chitin and chitosan in fungal cell walls
Shetty et al. Effect of thiol reagents on extractability of protein from yeast
Beluhan et al. Partial purification and biochemical characterization of alkaline 5′-phosphodiesterase from barley malt sprouts
Lindblom Properties of intracellular ribonuclease utilized for RNA reduction in disintegrated cells of Saccharomyces cerevisiae
Yano et al. Purification and characterization of a novel α-L-fucosidase from Fusarium oxysporum grown on sludge
Bhattacharya et al. Induction and repression of L-arabinose isomerase in Salmonella typhimurium
US3645845A (en) Recovery of nitrogenous material from micro-organisms