CS259289B1 - Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou - Google Patents
Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou Download PDFInfo
- Publication number
- CS259289B1 CS259289B1 CS8610163A CS1016386A CS259289B1 CS 259289 B1 CS259289 B1 CS 259289B1 CS 8610163 A CS8610163 A CS 8610163A CS 1016386 A CS1016386 A CS 1016386A CS 259289 B1 CS259289 B1 CS 259289B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- autolysate
- autolysis
- sodium chloride
- active
- added
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
Vynález sa týká spósobu uvoíňovania cy-toplazmatického obsahu kvasiniek induko-vanou autolýzou za účelom získavania potra-vinářsky a farmaceuticky využitelných buň-kových komponent.
Na rozrušenie bunkovej steny a tým sprí-stupnenie proteínov a ostatných zložiek bio·-masy kvasiniek sa používajú rožne fyzikál-ně, chemické a biochemické spósoby dezin-tegrácie, pričom potřebný stupeň rozruše-nia buňky sa dosahuje často kombinácioutýchto metod.
Jednou z fyzikálnych metod dezintegrácieje balotlnová dezintegrácia, čo je vlastnědrvenie alebo mletie biomasy v zariadeniachs roznymi abrazívami (Mogren, H., Lind-blom, H., Hedenskog, G., Biotechnol. Bioeng.16, 261—274, 1974). Nevýhodou tohto spó-sobu je poměrně velký otěr abrazíva, s čímsúvisí potřeba viacnásobného premývania alokálně zahrievanie susepnzie vyžadujúcechladenie.
Vysokotlaková metoda dezintegrácie(Brookman, J. S., Biotechnol. Bioeng. 17,465—479, 1975} spočívá v tom, že suspenziakvasiniek prechádza z oblasti vysokého tla-ku cez trysky dezintegračného zariadeniado oblasti normálneho tlaku. Rozbitie bu-niek je v priamej závislosti na hodnotě hyd-rostatického tlaku a na rýchlosti změny tla-ku v prostředí, v ktorom sú buňky suspen-dované. Aj pri poměrně vysokých hodnotáchtlaku sa však tento spósob vyznačuje po-měrně nízkou účinnosťou, nesúcou so sebounutnost viacnásobne oipakovať proces, čímvznikajú fragmenty róznych velkostí a pro-blémy pri ich separácii. Navýše zahrievaniepri změnách tlaku může viesť k inaktiváciiintrancelulárnych enzýmov.
Princípom dezintegrácie explozívnou de-kompresiou je nasýtenie suspenzie vhodnýmplynom pod tlakom a rýchle zníženie tlaku(Nesterov, A. I., Stavoroitova, G. A., Prikl.Biochim, Mikrobiol. 11, 593—597, 1975). Ná-sledkom vyrovnávania tlakového rozdielu vovnútri buňky a jej okolí dochádza k rozru-šeniu buňkových stien. Vnútrobunečný ob-sah však zostáva z velkej časti vnútri bu-niek, nakofko rozrušená buňka po krátko-dobom působení dezintegrácie už nie je me-chanicky namáhaná. To si vyžaduje nutnosťviacnásobného opakovania dezintegrácie.
Okrem týchto najznámejších spósobov dez-integrácie sa zriedkavo využívá aj ultraso-nikácia, zmrazovanie, sušenie.
Chemické spósoby spočívajú v pósobeníurčitých látok (napr. tiolov) na zložky bun-kovej steny, čím sa buňková stená labilizu-je až ropzadá (Shetty, J. K., Kinsella, J. E.,Biotechnol. Bioeng. 20, 755—766, 1978).
Biochemické metody sú založené na en- zymatickom pósobení cudzieho alebo vlast- ného lytického aparátu na bunkovú stenu. V experimentálnych podmienkach je hojné rozšířené napma využívanie exogénnych sy- stémov (Phaff, M. J., Adv. Chem. Ser. 160,249—282, 1977) získaných z baktérií Arthro-bacter luteus, Bacillus subtilis, húb Oersko-wia, Albus, Coprinus, Flavus a dalších, ale-bo sa v laboratórnom rozsahu využívá trá-viaca šťava slimáka Helix pomatia.
Poměrně menej sa využívá endogénny ly-tický systém kvasiniek (Chrenova, N. M.,Bezrukov, M. G., Kogan, A. S., Sergejev, W.A., NahíFung 25-, 837—844, 1981). Buňka zaurčitých okolností (vyčerpáme živin, ne-vhodná teplota, Ph) produkuje lytické en-zýmy — andopeptidázy, karboxypeptidázy,aminopeptidázy, kyslú fosfatázu, /3-(l,3)gIu-kanázu, které pósobie na vlastnú bunkovústenu a rozkladajú ju. Tento proces — auto-lýza priebeha v konečnom důsledku až doroaloženia buniek na základné zložky akosú aminokyseliny, patidy, nukleotidy, nízko-molekulové sacharidy, vitamíny atď. Ak savšak vedle len do určitého požadovanéhostupňa, móže slúžif ako vhodný prostriedokna dezintegráciu buňky a uvoíňovanie pro-teínov a iných vnútrobunečných zložiek doprostredia. Doba prirodzeného autolytickéhoprocesu je poměrně dlhá (niekolko dní),čo vyvolává riziko bakteriálnej kontaminá-cie.
Tento nedostatok v podstanej miere od-straňuje spósob podlá vynálezu, ktoréhopodstata spočívá v tom, že na vstupnú suro-vinu o sušině 5 až 30 % hmot. sa působíaktívnym autolyzátom v objemovom pomere1 : 3 až 1 : 12, zmes sa lyžuje za miešaniapri teplote 45 až 55 °C počas 5 až 30 hodin.Na vstupnú surovinu sa súčasne s autoly-zátom móže pósobiť etanolom v hmotnost-nom pomere 1 : 99 až 1 : 9 a/alebo- chlo-ridem sodným v hmotnostnom pomere 1 ku999, až; 1 : 9.
Spósob podlá vynálezu rozšiřuje paletudoposiaf používaných iniciačných faktorovautolýzy. Spočívá v iniciácii autolýzy přidá-ním. vhodného množstva už zhyzovanej sus-penzie tohoistého mikroorganizmu. V pridá-vanom lyzáte sú už neprodukované a uvol-něné lytické enzýmy, ktoré můžu hned ata-kovat buňkové steny,, tieto sa stávajú prí-stupnejšie vlastnému lytickému systému,ktorý sa zatial’ utvoří a proces rozloženiabuňky sa takto podstatné skráti na 5 až 30hodin.
Kombináciou s inými iniciačnými faktor-mi, ako je chlorid sodný a etanol sa eštezefektivni pósobenie autolytického systému.Ak ako kritérium autolytickej dezintegráciebuniek používáme množstvo uvolněných pro-teínov, tak potom sa týmto spósobom, t. j.prídavkom etanolu, chloridu sodného a ak-tívneho autolyzátu k suspenzii za niekolkohodin z buňky uvolní 50—80 % z celkovýchproteínov, stanovených Lowryho metodou.
Vhodný poměr přidávaného aktívneho au- tolyzátu k biomase zabezpečuje, že sa k mikrobiálnej suspenzii přidá dostatočné 5 239289 množstvo lytických enzýmov a přitom čo ných spOsoboch iniciácie autolýzy udává ta-najmenej ulitizovatefných živin. bulka 1.
Množstvo uvolněných proteínov pri růz-
Tabulka 1
Množstvo proteínov uvolněných do super-natantu (v %) z pdvodného obsahu proteí-nov v intaktnom droždí, pri roznych dobácha spósoboch iniciácie autolýzy. Etanol, res-pektive chlorid sodný přidávaný vo· výsled-
Čas 50 °C 50 °C (hj NaCl 1 0,7 0,9 5 4,6 5,6 10 9,0 12,1 24 36,3 46,3 Příklad 1 te 3 1 kvasničnej suspenzie o sušině 10 %a obsahu proteínov 32,8 mg/ml sa přidá600 ml štandardného autolyzátu, 30 g chlo-ridu sodného, 150 g etanolu a zmes sa inku-buje za miešania pri 50 °C. Po 5 hodináchsa suspenzia scentrifuguje, pričom sa získá730 g sedimentu, využitelného na izoláciunapříklad ergosterolu a 2 812 ml supernatan-tu o sušině 4,1 % a obsahu proteínov 15,5 mg/ml využitelného na izoláciu pro-teínov. Příklad 2
Postup rovnaký ako v příklade 1, lýza savšak nepřeruší po 5. hodině, ale po 24. ho-dině. Po centrifugách sa z rovnakého množ-stva suspenzie získá 639 g sedimentu a3 044 ml supernatantu o sušině 6 % a obsa-hu proteínov 25 mg/ml. Příklad 3
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidása však 1 000 ml aktívneho autolyzátu a 60 gchloridu sodného. Získaný supernatant másušinu 9,1 % a obsah proteínov 48,5 mg/ml.Příklad 4
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidása však 3 g chloridu sodného a 30 g etyl-alkoholu. Získaný supernatant má sušinu 7,4 % a obsah proteínov 43,0 mg/ml. Příklad 5
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidá sa však 150 g chloridu sodného a 300 g etylalkoholu. Získaný supernatant má sušinu 11 % a obsah proteínov 44 mg/ml. nej koncentrácii 5 % hmot., autolyzát vmnožstve zodpovedajúcom 1/6 objemu, vstup- nej suroviny10 %}. (kvasničné mlieko o sušině 50 °C 50 °C 50 °C etylalkohol autolyzát etylalkohol NaCl autolyzát 1,9 17,5 18,2 7,1 26,6 37,2 16,0 45,3 68,5 50,9 Příklad 6 64,7 78,8
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidása 500 ml aktívneho autolyzátu, 60 g chlo-ridu sodného a 30 g etylalkoholu. Získanýsupernatant má sušinu 8,2 % a obsah pro-teínov 44 mg/ml. Příklad 7
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidása však 150 g chloridu sodného a 500 ml ak-tívneho autolyzátu, získaný supernatant másušinu 11,2 % a obsah proteínov 41,5 mg/ml.Příklad 8
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidása však 500 ml aktívneho autolyzátu, 3 gchloridu sodného a 300 g etylalkoholu. Zís-kaný supernatant má sušinu 6,9 % a obsahproteínov 46,2 mg/ml. Příklad ‘9
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidása však 100 ml aktívneho autolyzátu, 150 gchloridu sodného^ a 30 g etylalkoholu, Zís-kaný supernatant má sušinu 10,7 % a obsahproteínov 46,2 mg/ml. Příklad 10
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidása však 100 ml aktívneho autolyzátu, 3 gchloridu sodného. Získaný supernatant másušinu 6,2 % a obsah proteínov 36,2 mg/ml.Příklad 11
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidá sa však 100 ml aktívneho autolyzátu, 60 g chloridu sodného a 300 g etylalkoholu. Zís- kaný supernatant má sušinu 7,0 % a obsah proteínov 40,5 mg/ml.
Claims (2)
- 259289 PREDMET1. Spůsob uvolňovania cytoplazmatickéhoobsahu kvasiniek indukovanou autolýzou vy-značujúci sa tým, že na vstupnú surovinuo sušině 5 až 30 % hmot. sa působí aktív-nym autolyzátom v objemovom pomere 1 ku3 až 1 : 12, zmes sa lyžuje za miešania priteplote 45 až 55 °C počas 5 až 30 hodin. VYNALEZU
- 2. Spůsob uvolňovania cytoplazmatickéhoobsahu kvasiniek podlá bodu 1 vyznačujúcisa tým, že na vstupnú surovinu sa súčasnes autolyzátom působí etanolom v hmotnost-nom pomere 1 : 99 až 1 : 9 a/alebo chlori-dom sodným v hmotnostnom pomere 1 : 999až 1 : 9. Severografia, n. p. závod 7, Most Cena 2,40 Kčs
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS8610163A CS259289B1 (sk) | 1986-12-29 | 1986-12-29 | Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS8610163A CS259289B1 (sk) | 1986-12-29 | 1986-12-29 | Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS1016386A1 CS1016386A1 (en) | 1988-02-15 |
| CS259289B1 true CS259289B1 (sk) | 1988-10-14 |
Family
ID=5448195
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS8610163A CS259289B1 (sk) | 1986-12-29 | 1986-12-29 | Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS259289B1 (cs) |
-
1986
- 1986-12-29 CS CS8610163A patent/CS259289B1/cs unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS1016386A1 (en) | 1988-02-15 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| John et al. | Purification and some properties of five endo-1, 4-β-D-xylanases and β-D-xylosidase produced by a strain of Aspergillus niger | |
| Malamy et al. | Release of alkaline phosphatase from cells of Escherichia coli upon lysozyme spheroplast formation | |
| Neu et al. | The release of enzymes from Escherichia coli by osmotic shock and during the formation of spheroplasts | |
| Harrison | Bacterial cell disruption: a key unit operation in the recovery of intracellular products | |
| Shimosaka et al. | Chitosanase from the plant pathogenic fungus, Fusarium solani f. sp. phaseoli: purification and some properties | |
| US5306637A (en) | Method for recovery of intracellular material by disruption of microbial cells with carbon dioxide under pressure | |
| Knorr et al. | Enzymatic lysis of yeast cell walls | |
| Johnson et al. | Simple method for the isolation of astaxanthin from the basidiomycetous yeast Phaffia rhodozyma | |
| KR970043056A (ko) | 균사체의 함유 배양지에서의 유용성분의 추출방법 | |
| Bartnicki-Garcia et al. | Chitosomes from the wall-less “slime” mutant of Neurospora crassa | |
| Kawata et al. | Autolytic formation of spheroplasts and autolysis of cell walls in Clostridium botulinum type A | |
| US3862112A (en) | Alkali extraction of microbial cellular proteins at high temperature | |
| Li et al. | Unit operations applied to cell disruption of microalgae | |
| CS259289B1 (sk) | Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou | |
| US3996104A (en) | Process for preparing from a microbial cell mass a protein concentrate having a low nucleic acid content, and the protein concentrate thus obtained | |
| Satomura et al. | Studies on the Glucanase of Sclerotinia Libertiana: Part I. Activity of the Glucanase on Glucans of Yeast and Sclerotia of the Fungus | |
| Kobayashi et al. | Preparation and evaluation of an enzyme which degrades yeast cell walls | |
| Domínguez et al. | Stimulation of novel thermostable extracellular lipolytic enzyme in cultures of Thermus sp. | |
| Subramanyam et al. | An enzymic method for the determination of chitin and chitosan in fungal cell walls | |
| Shetty et al. | Effect of thiol reagents on extractability of protein from yeast | |
| Beluhan et al. | Partial purification and biochemical characterization of alkaline 5′-phosphodiesterase from barley malt sprouts | |
| Lindblom | Properties of intracellular ribonuclease utilized for RNA reduction in disintegrated cells of Saccharomyces cerevisiae | |
| Yano et al. | Purification and characterization of a novel α-L-fucosidase from Fusarium oxysporum grown on sludge | |
| Bhattacharya et al. | Induction and repression of L-arabinose isomerase in Salmonella typhimurium | |
| US3645845A (en) | Recovery of nitrogenous material from micro-organisms |