CS258922B1 - Vaccine against infection induced by taenia crassiceps tapeworm and method of its production - Google Patents
Vaccine against infection induced by taenia crassiceps tapeworm and method of its production Download PDFInfo
- Publication number
- CS258922B1 CS258922B1 CS856552A CS655285A CS258922B1 CS 258922 B1 CS258922 B1 CS 258922B1 CS 856552 A CS856552 A CS 856552A CS 655285 A CS655285 A CS 655285A CS 258922 B1 CS258922 B1 CS 258922B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- larvae
- tapeworm
- saline
- cells
- crassiceps
- Prior art date
Links
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 title claims abstract description 19
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 title claims abstract description 16
- 241000244158 Taenia crassiceps Species 0.000 title claims abstract description 12
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 12
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title abstract description 4
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims abstract description 8
- 244000000013 helminth Species 0.000 claims abstract description 8
- 230000003071 parasitic effect Effects 0.000 claims abstract description 8
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims abstract description 8
- 230000001418 larval effect Effects 0.000 claims abstract description 5
- 241000242722 Cestoda Species 0.000 claims abstract description 4
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 claims abstract description 4
- 108010034145 Helminth Proteins Proteins 0.000 claims abstract description 3
- 239000002184 metal Substances 0.000 claims abstract description 3
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims description 4
- 229910000831 Steel Inorganic materials 0.000 claims description 2
- 239000012530 fluid Substances 0.000 claims description 2
- 239000010959 steel Substances 0.000 claims description 2
- 229910000906 Bronze Inorganic materials 0.000 claims 1
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 claims 1
- 239000010974 bronze Substances 0.000 claims 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 claims 1
- KUNSUQLRTQLHQQ-UHFFFAOYSA-N copper tin Chemical compound [Cu].[Sn] KUNSUQLRTQLHQQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims 1
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K phosphate Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 claims 1
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 claims 1
- 231100000732 tissue residue Toxicity 0.000 claims 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 claims 1
- 241000244155 Taenia Species 0.000 abstract 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 abstract 1
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 21
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 18
- LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I dipotassium trisodium dihydrogen phosphate hydrogen phosphate dichloride Chemical compound P(=O)(O)(O)[O-].[K+].P(=O)(O)([O-])[O-].[Na+].[Na+].[Cl-].[K+].[Cl-].[Na+] LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I 0.000 description 9
- 239000002953 phosphate buffered saline Substances 0.000 description 9
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 8
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 8
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 8
- 241000699666 Mus <mouse, genus> Species 0.000 description 7
- 238000002512 chemotherapy Methods 0.000 description 6
- 244000045947 parasite Species 0.000 description 6
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 description 4
- 238000002255 vaccination Methods 0.000 description 4
- 239000002246 antineoplastic agent Substances 0.000 description 3
- 229940127089 cytotoxic agent Drugs 0.000 description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 3
- 238000002649 immunization Methods 0.000 description 3
- 230000003053 immunization Effects 0.000 description 3
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 3
- 208000003322 Coinfection Diseases 0.000 description 2
- 201000003808 Cystic echinococcosis Diseases 0.000 description 2
- 201000000077 Cysticercosis Diseases 0.000 description 2
- 208000009366 Echinococcosis Diseases 0.000 description 2
- 208000035415 Reinfection Diseases 0.000 description 2
- 244000309466 calf Species 0.000 description 2
- 238000011161 development Methods 0.000 description 2
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 2
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 2
- 230000009545 invasion Effects 0.000 description 2
- 210000003200 peritoneal cavity Anatomy 0.000 description 2
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 2
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 2
- -1 2-cyclohexylcarbonyl Chemical group 0.000 description 1
- 241000931178 Bunostomum Species 0.000 description 1
- 241000252095 Congridae Species 0.000 description 1
- 241001126268 Cooperia Species 0.000 description 1
- 206010061803 Cyst rupture Diseases 0.000 description 1
- 241000243976 Haemonchus Species 0.000 description 1
- 206010020751 Hypersensitivity Diseases 0.000 description 1
- 206010020772 Hypertension Diseases 0.000 description 1
- HLFSDGLLUJUHTE-SNVBAGLBSA-N Levamisole Chemical compound C1([C@H]2CN3CCSC3=N2)=CC=CC=C1 HLFSDGLLUJUHTE-SNVBAGLBSA-N 0.000 description 1
- 208000007316 Neurocysticercosis Diseases 0.000 description 1
- 241000088844 Nothocestrum Species 0.000 description 1
- 208000030852 Parasitic disease Diseases 0.000 description 1
- 241001672170 Taenia pisiformis Species 0.000 description 1
- 241000244159 Taenia saginata Species 0.000 description 1
- 241000243797 Trichostrongylus Species 0.000 description 1
- 230000000507 anthelmentic effect Effects 0.000 description 1
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 238000011461 current therapy Methods 0.000 description 1
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 1
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 1
- 230000008030 elimination Effects 0.000 description 1
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 description 1
- 206010015037 epilepsy Diseases 0.000 description 1
- IRHZVMHXVHSMKB-UHFFFAOYSA-N fenbendazole Chemical compound [CH]1C2=NC(NC(=O)OC)=NC2=CC=C1SC1=CC=CC=C1 IRHZVMHXVHSMKB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960005473 fenbendazole Drugs 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 1
- 229940124452 immunizing agent Drugs 0.000 description 1
- 230000002163 immunogen Effects 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 229960001614 levamisole Drugs 0.000 description 1
- 244000144972 livestock Species 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 230000005868 ontogenesis Effects 0.000 description 1
- 238000009304 pastoral farming Methods 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 238000012827 research and development Methods 0.000 description 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 1
- 239000007858 starting material Substances 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 1
- 208000024891 symptom Diseases 0.000 description 1
- 208000004441 taeniasis Diseases 0.000 description 1
- 230000001988 toxicity Effects 0.000 description 1
- 231100000419 toxicity Toxicity 0.000 description 1
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Řešení se týká vakcíny proti infekci vyvolané parazitickým helmintem druhu Taenia crassiceps a způsobu její výroby. Tato vakcína obsahuje suspenzi živých buněk larválních stadií této tasemnice ve fyziologickém roztoku v množství 10^ až 10® v 1 ml. Způsob výroby spočívá v tom, že se larvy Taenia crassiceps promývájí minimálně 1:: fyziologickým roztokem, homogenizují se tak, aby larvy praskaly a uvolnila se měchýřková tekutina, potom se larvy dále homogenizují a nebo protlačují kovovým sítem tak, aby se uvolnily jednotlivé buňky, buněčná suspenze se minimálně lx promývá fyziologickým roztokem a koncentrace živých buněk se upraví na 10^ až 10®/ml.The solution relates to a vaccine against infection caused by the parasitic helminth of the Taenia species crassiceps and the method of its production. This the vaccine contains a live larval cell suspension stages of this tapeworm in physiological 10 to 10 ® in 1 ml. The method of manufacture is that the larvae Taenia crassiceps wash at least 1 :: saline, homogenizing that the larvae crack and loose the bladder the liquid, then the larvae are further homogenized or or through a metal screen so as to single cells, cell suspension Wash at least 1X with saline and the living cell concentration is adjusted to 10 to 10 ® / ml.
Description
Vynález se týká vakcíny proti infekci vyvolané tasemnicí Taenia crassiceps a způsobu její přípravy. .The invention relates to a vaccine against Taenia crassiceps infection and a process for its preparation. .
Výzkum terapie infekcí způsobených parazitickými helminty probíhá v několika směrech.Research into the therapy of infections caused by parasitic helminths takes place in several ways.
Za poslední desetiletí byla provedena řada pokusů o vyvinutí účinných a bezpečných vakcín, avšak těžiště současné terapie spočívá stále na chemoterapii. Intenzívní výzkum látek syn- , tetický připravených- vede k postupnému odstraňování vedlejších účinků na hostitele a k stále vyššímu stupni účinnosti.Numerous attempts have been made over the last decade to develop effective and safe vaccines, but the focus of current therapy remains on chemotherapy. Intensive research into the synthetically produced compounds leads to a gradual elimination of host side effects and an increasing degree of efficacy.
Jedním z nejmodernějším prostředků pro léčení parazitárních infekci je paraziquantel (2-cyklohexylkarbonyl)-1,2,3,5,7,llb-hexahydro-2-pyrazino(2, la)isoquinolin-4, s nepatrnými vedlejšími účinky (Nash T. E. a kol., Am. J. Trop. Med. Hyg., 1982, 31, 977-982). V krátké době po podání se látka kumuluje v parazitujícím organismu (Xiao, S. H. a kol., Acta Pharmacol Sinica, 1981, 2, 204-211) a její účinnost je téměř 100% prakticky u všech druhů parazitických helmitů.One of the most advanced agents for the treatment of parasitic infections is paraziquantel (2-cyclohexylcarbonyl) -1,2,3,5,7,11b-hexahydro-2-pyrazino (2,1a) isoquinolin-4, with minor side effects (Nash TE and et al., Am. J. Trop. Med. Hyg., 1982, 31, 977-982). In the short time after administration, the substance accumulates in the parasitic organism (Xiao, S. H. et al., Acta Pharmacol Sinica, 1981, 2, 204-211) and has an efficacy of almost 100% in virtually all parasitic helmets.
Množství dalších chemoterapeutik se liší v účinnosti na jednotlivé druhy helmintů a v toxicitě pro hostitelský organismus.A number of other chemotherapeutic agents vary in efficacy on individual helminth species and in toxicity to the host organism.
Přes vysokou účinnost chemoterapie však existuje celá řada důvodů pro výzkum a vývoj vakcín. Nevýhodou chemoterapeutik je, že .lze léčit až v okamžiku, kdy se infekce projeví klinicky. Od okamžiku invaze až po manifestací klinických symptomů onemocnění však uplyne určitá doba, v průběhu které paraziti poškozují hostitelský organismus, snižují užitkovost hospodářských zvířat apod. (Děla Cruz B. a kol., Proč of Symp. Vienna, 29 June - 3 July 1981 (AIEA, FAO, UNEP), International Atomic Agency, Vienna, 1982, 127-133).However, despite the high effectiveness of chemotherapy, there are a number of reasons for research and development of vaccines. The disadvantage of chemotherapeutic agents is that they can only be treated when the infection becomes clinically apparent. However, from the moment of invasion to the manifestation of clinical symptoms of the disease, a certain period of time has elapsed during which the parasites damage the host organism, reduce the livestock performance, etc. (Cannons Cruz B. et al., Proc. Symp. Vienna, 29 June - 3 July 1981 AIEA, FAO, UNEP), International Atomic Agency, Vienna, 1982, 127-133).
Byly popsány případy inoperabilní hydatidosy léčené chemoterapeuticky, kde došlo k prasknutí cysty a k alergické reakci. Rovněž chirurgické zákroky u hydatidosy mnohdy končí fatálně. Pacienti se pomalu zotavují a v některých případech nejsou schopní vykonávat původní práci. Velmi obtížně léčitelné jsou neurocysticerkózy a intraokulární cysticerkózy, doprovázené často komplikacemi - epilepsie, vysoký krevní tlak atd.Cases of inoperable hydatidosis treated with chemotherapy have been reported where cyst rupture and allergic reactions have occurred. Also, surgical procedures in hydatidosis often end fatally. Patients are slowly recovering and in some cases are unable to perform the original work. Neurocysticercosis and intraocular cysticercosis are very difficult to treat, often accompanied by complications - epilepsy, high blood pressure, etc.
Dalším problémem spojeným s chemoterapií je opakování infekce. Byla např. sledována reinfekce pasoucích se telat helminty rodu Cooperia, Oesophagostoraum, Haemonchus, Bunostomum, a Trichostrongylus po léčeni tetramisol hydrochloridem a febendazolem a bylo zjištěno, že přibližně po 6 týdnech byl stupeň infekce u léčených telat stejný jako u neléčených (Lima W. a kol., Arquivo Brasileiro de Medicína Veterinaria e Zootecnica, 1983, 35, 101-112). Dalším ze závažných problémů při použití chemoterapie je schopnost helmintů stát se rezistentními na anthelmintika (Dias L. C. a kol., Transaction of the Royal Society of Tropical Medioine and Hygiene, 1982, 76, 652-659).Another problem associated with chemotherapy is recurrence of the infection. For example, re-infection of grazing calves of helminths of the genera Cooperia, Oesophagostoraum, Haemonchus, Bunostomum, and Trichostrongylus after treatment with tetramisole hydrochloride and febendazole was observed, and it was found that after approximately 6 weeks the infection rate in treated calves was the same as untreated et al., Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinaria e Zootecnica, 1983, 35, 101-112). Another major problem in the use of chemotherapy is the ability of helminths to become anthelmintic resistant (Dias L. C. et al., Transaction of the Royal Society of Tropical Medioine and Hygiene, 1982, 76, 652-659).
Další vývoj vakcín, schopných zabránit vývoji parazitů v ranném stádiu má proto svoje opodstatnění. Příprava vakcín je však u helmintů komplikována komplexnosti parazitárního organismu, antigenními změnami v průběhu ontogeneze a také nedostatkem výchozího materiálu. Dosud používané vakcíny lze, podle použitého imunogenu, rozdělit na dvě skupiny:The further development of vaccines capable of preventing the development of parasites at an early stage is therefore justified. However, the preparation of vaccines in helminths is complicated by the complexity of the parasitic organism, by antigenic changes during ontogenesis and also by the lack of starting material. The vaccines used so far can be divided into two groups according to the immunogen used:
1) Vakcinace celým parazitárním organismem a 2) vakcinace antigeny, V prvém případě byly vyzkoušeny vakcíny připravené z živých, a nebo zářením inhibovaných červů. Použití živých, neinhibovaných červů je výhodné z hlediska nezměněných povrchových antigenů a je velmi účinné. Bylo zjištěno např. že myši, kterým byly subkutánně implantovány 3 živé larvy tasemnice Taenia crassiceps až v 99 % případů byly rezistenci proti sekundární infekci (Siebert A. E. Jr a kol., Int. J. Parasitol., 1978, 8, 39-43).1) Vaccination with whole parasitic organism and 2) Vaccination with antigens. In the first case, vaccines prepared from live and / or radiation-inhibited worms were tested. The use of live, non-inhibited worms is advantageous from the standpoint of unchanged surface antigens and is very effective. For example, it has been found that mice in which 3 live Taenia crassiceps larvae were implanted subcutaneously in up to 99% of cases were resistant to secondary infection (Siebert AE Jr et al., Int. J. Parasitol., 1978, 8, 39-43) .
Rovněž byla implantována subkutánně živá vajíčka tasemnice Taenia pisiformis a bylo zjištěno, že sekundární infekce byla likvidována téměř ve 100 % případů. Nevýhoda těchto způsobů vakcinace je, že celé larvy nebo vajíčka helmintů použitá jako imunizační prostředek se vyvíjejí a mohou infikovat celý hostitelský organismus. Z těchto důvodů byli paraziti předem ozařování bud x-paprsky nebo ultrafialovým zářením. Účinnost těchto vakcín je v průměru 80% (Urban J. F. Jr., Tromba F. G., Vet. Immunol. Immunopathol., 1982, 3, 399-409).Also, live eggs of the tapeworm Taenia pisiformis were implanted subcutaneously and it was found that the secondary infection was destroyed in almost 100% of cases. A disadvantage of these methods of vaccination is that whole larvae or helminth eggs used as immunizing agents develop and can infect the entire host organism. For these reasons, the parasites were pre-irradiated with either x-rays or ultraviolet radiation. The efficacy of these vaccines is on average 80% (Urban JF Jr., Tromba F.G., Vet. Immunol. Immunopathol., 1982, 3, 399-409).
Podobných výsledků bylo dosaženo použitím antigenů at už ve formě hrubého homogenátu parazitárního organismu a nebo antigenů purifikovaných. Poměrně vysoké účinnosti, kolem 80%, bylo dosaženo aplikací antigenů uvolňovaných do kultivačního média a při in vitro kultivaci ^onkosfér T. ovi-s a larev T. saginata (Rickard M. D., Fourth. Inter. Congr. Parasit., Section C 1978, 134-135).Similar results were obtained by using antigens either in the form of a coarse homogenate of the parasitic organism or purified antigens. Relatively high efficacy, about 80%, was achieved by the application of antigens released into the culture medium and in vitro culture of T. ovis-oncospheres and T. saginata larvae (Rickard MD, Fourth. Inter. Congr. Parasit., Section C 1978, 134-135).
Nevýhody dosud používaných způsobů terapie lze shrnout takto:The disadvantages of the therapies used so far can be summarized as follows:
A. Chemoterapie.A. Chemotherapy.
1) Vedlejší účinky chemoterapeutik na hostitele.1) Side effects of chemotherapeutic agents on the host.
2) Poškození hostitele způsobené vyvíjejícími se parazity.2) Host damage caused by developing parasites.
3) Opakující se infekce.3) Recurrent infection.
B. Vakcinace.B. Vaccination.
1) Při použití živých neinhibovaných vajíček nebo larev dochází k jejich vývoji de facto infekci.1) The use of live, non-inhibited eggs or larvae develops de facto infection.
2) Při použití ozářených vajíček nebo larev pro imunizaci je vakcína méně účinná.2) When using irradiated eggs or larvae for immunization, the vaccine is less effective.
3) Při použití antigenů je účinnost také nižší.3) The efficacy of antigens is also lower.
Tyto nevýhody odstraňuje vakcína proti infekcím vyvolaným tasemnicí Taenia crassiceps, jejíž podstatou je, že obsahuje suspenzi živých buněk larválních stádií tasemnice ve fyzio4 6 logickém roztoku v množství 10 až 10 buněk v 1 ml. Suspenze buněk ve fyziologickém roztoku se aplikuje injekčně do peritoneální dutiny nebo intramuskulárně, nebo subkutánně.These drawbacks are overcome by a vaccine against Taenia crassiceps infections caused by the suspension of live larvae of the larvae of the tapeworm in physiological logic solution in an amount of 10 to 10 cells per ml. The suspension of cells in saline is injected into the peritoneal cavity or intramuscularly or subcutaneously.
Podstatou způsobu přípravy je, že se larvy nebo dospělí jedinci Taenia crassiceps promývají minimálně lx fyziologickým roztokem, protlačují kovovým sítem tak, aby se uvolnily jednot livé buňky, buněčná suspenze se minimálně lx promývá fyziologickým roztokem a koncentraceThe principle of the preparation is that the larvae or adults of Taenia crassiceps are washed at least 1X with saline, pushed through a metal sieve to release individual cells, the cell suspension is washed at least 1X with saline, and the concentration
6 živých buněk se upravuje na 10 až 10 buněk na mililitr.6 viable cells are adjusted to 10 to 10 cells per milliliter.
Výhody navrhovaného postupu jsou zejména tyto:In particular, the advantages of the proposed procedure are:
1) Antigeny na povrchu buněk jsou v nezměněné podobě.1) Cell surface antigens are unchanged.
2) Nemůže dojít k infekci, protože z těchto .buněk se paraziti nemohou vyvinout.2) Infection cannot occur because parasites cannot develop from these cells.
3) Odpadají nároky na ozařovací zařízení.3) No need for irradiation equipment.
4) Odpadají nároky na zařízení pro purifikaci antigenů.4) No need for antigen purification equipment.
5) Buňky lze využít také pro diagnostiku.5) Cells can also be used for diagnostics.
Dále je uveden příklad způsobu výroby a použití prostředku dle vynálezu.The following is an example of a method of making and using the composition of the invention.
Příklad LExample L
Larvy tasemnice Taenia crassiceps byly vymyty z peritoneální dutiny fosfátovým fyziologickým roztokem (PBS) a homogenizovány ve skleněném homogenizátoru tak, že larvy popraskaly a uvolnila se z nich měchýřková tekutina. Suspenze byla 5x promyta PBS, zbytky larev byly protlačeny ocelovým sítem (100 mesh). Uvolněné buňky byly 3x promyty PBS a jejich koncen5 trace upravena na 10 živých buněk/ml.Taenia crassiceps larvae were washed out of the peritoneal cavity with phosphate buffered saline (PBS) and homogenized in a glass homogenizer so that the larvae cracked and released the bladder fluid. The suspension was washed 5 times with PBS, the larvae were passed through a 100 mesh steel sieve. The released cells were washed 3 times with PBS and their concentration adjusted to 10 viable cells / ml.
Tento vzorek byl použit u myší kmene NIH ve stáří 6 až 10 týdnů (samice), které byly imunizovány intraperitoneálně. V nultý den byly myši kontrolní skupiny injikovány pouze PBS.This sample was used in 6-10 week old NIH mice (female) immunized intraperitoneally. On day 0, control group mice were injected with PBS only.
„ 4'4
Další dvě skupiny myší byly imunizovány živými buňkami v koncentraci 10 /myš.The other two groups of mice were immunized with live cells at a concentration of 10 / mouse.
Po 14 dnech byly kontrolní myši injikovány PBS a dále jedna z experimentálních skupinAfter 14 days, control mice were injected with PBS and one of the experimental groups
- 4 5 byla imunizována živými buňkami v koncentraci 10 a druhá 10 buněk na myš. 28. den byly všechny myši všech tří skupin infikovány 3 larvami tasemnice Taenia crassiceps. Počty larev- 4-5 were immunized with 10 cells in live cells and the other 10 cells in mice. On day 28, all mice of all three groups were infected with 3 Taenia crassiceps larvae. Numbers of larvae
a - počty larevand - larval counts
PBS - kontroly injikované pouze PBS a poté infikovány 3 larvamiPBS - Controls injected with PBS only and then infected with 3 larvae
44
- myši imunizované 10 bunek/myš.- mice immunized with 10 cells / mouse.
55
- myši imunizované 10 buněk/myš.- mice immunized with 10 cells / mouse.
Z tabulky je patrno, že zvýšenou dávkou živých buněk se zvyšuje účinnost vakcíny.The table shows that increasing the dose of viable cells increases the efficacy of the vaccine.
V tabulce 2 jsou shrnuty výsledky experimentů, ve kterých byly imunizovány myši proti infekci Taenia crassiceps. Vzhledem k použitému kmeni myši (outbrední ICR myši, samice, ve stáří 6 až 10 týdnů) a jejich vyšší odolnosti proti infekci, byly počty larev kontrolovány až 3 měsice po infekci. Myši skupiny 3 a 4 byly imunizovány stejně jako v prvním experimentu (viz. text k první tabulce), myši skupiny 2 byly imunizovány antigenem z larev T. crassiceps (hrubý homogenát, lyofilizovaný) a myši skupin 5 až 7 byly injikovány zvýšenou dávkou 5x 10^ a 10 buněk/myš. Kromě toho byly myši skupiny 6 imunizovány subkutánně a myši skupiny 7 intraskulárně.Table 2 summarizes the results of experiments in which mice were immunized against Taenia crassiceps infection. Due to the strain of mice used (outbred ICR mice, female, 6-10 weeks of age) and their higher resistance to infection, larval counts were checked up to 3 months post infection. Group 3 and 4 mice were immunized as in the first experiment (see text in the first table), group 2 mice were immunized with T. crassiceps larvae (coarse homogenate, lyophilized), and group 5 to 7 mice were injected with an increased dose of 5x10 and 10 cells / mouse. In addition, group 6 mice were immunized subcutaneously and group 7 mice intrascularly.
Tabulka 2Table 2
Z výseldků vyplývá, že imunizační postup použitý u skupin 5 až 7 je optimální, neboř 100 % myší bylo úplně rezistentních proti infekci.As a result, the immunization procedure used in groups 5-7 is optimal since 100% of the mice were completely resistant to infection.
Claims (7)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS856552A CS258922B1 (en) | 1985-09-16 | 1985-09-16 | Vaccine against infection induced by taenia crassiceps tapeworm and method of its production |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS856552A CS258922B1 (en) | 1985-09-16 | 1985-09-16 | Vaccine against infection induced by taenia crassiceps tapeworm and method of its production |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS655285A1 CS655285A1 (en) | 1988-02-15 |
| CS258922B1 true CS258922B1 (en) | 1988-09-16 |
Family
ID=5412849
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS856552A CS258922B1 (en) | 1985-09-16 | 1985-09-16 | Vaccine against infection induced by taenia crassiceps tapeworm and method of its production |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS258922B1 (en) |
-
1985
- 1985-09-16 CS CS856552A patent/CS258922B1/en unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS655285A1 (en) | 1988-02-15 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Oothuman et al. | Successful vaccination of cats against Brugia pahangi with larvae attenuated by irradiation with 10 krad cobalt 60 | |
| Woolridge et al. | Field trial of a monovalent and of a bivalent mineral oil adjuvant trachoma vaccine in Taiwan school children | |
| Dineen et al. | The cellular transfer of immunity to Trichostrongylus colubriformis in an isogenic strain of guinea-pig: II. The relative susceptibility of the larval and adult stages of the parasite to immunological attack | |
| BLAIR et al. | Immunization of ferrets against Diroflaria immitis by means of chemically abbreviated infections | |
| Ottesen | Description, mechanisms and control of reactions to treatment in the human filariases | |
| Abraham et al. | Active and passive immunization of mice against larval Dirofilaria immitis | |
| Taffs | Immunological studies on experimental infection of pigs with Ascaris suum Goeze, 1782. VI. The histopathology of the liver and lung | |
| Bell et al. | Studies on the inhibition of rapid expulsion of Trichinella spiralis in rats | |
| Hellmann et al. | Antilymphocytic serum and tumour dissemination | |
| CS258922B1 (en) | Vaccine against infection induced by taenia crassiceps tapeworm and method of its production | |
| Niederkorn et al. | Trichinella pseudospiralis larvae express natural killer (NK) cell-associated asialo-GM1 antigen and stimulate pulmonary NK activity | |
| Behnke et al. | Transfer of immunity to Nematospiroides dubius: co‐operation between lymphoid cells and antibodies in mediating worm expulsion | |
| AGNEW et al. | Specific cross‐protection between Schistosoma bovis and S. haematobium induced by highly irradiated infections in mice | |
| Behnke | Immune expulsion of the nematode Aspiculur1s tetraptera from mice given primary and challenge infections | |
| Hurley et al. | Eosinophilia and acquisition of resistance to Nematospiroides dubius in mice sensitized with adult worms | |
| Taylor | Schistosome vaccines | |
| Weiss et al. | Immunogenicity of the surface of filarial larvae (Dipetalonema viteae) | |
| Wakelin et al. | Genetic control of immunity to Trichinella spiralis in mice. Response of rapid‐and slow‐responder strains to immunization with parasite antigens | |
| Askenase et al. | Cutaneous basophil hypersensitivity and inhibited macrophage migration in guinea-pigs with schistosomiasis | |
| Kazacos et al. | Cross-resistance between Nippostrongylus brasiliensis and Strongyloides ratti in rats | |
| Briggs | The effects of cortisone treatment on natural resistance and acquired responses of the white rat to infection with Litomosoides carinii | |
| Jarrett et al. | Potentiation of rat reaginic (IgE) antibody by Nippostrongylus brasiliensis infection: effect of modification of life cycle of the parasite in the host | |
| Robinson et al. | Immunity to adult Heligmosomoides polygyrus (Nematospiroides dubius): survival or rejection of adult worms following transplantation to mice refractory to larval challenge | |
| Scott et al. | The vaccine potential of cell surface glycoproteins from Trypanosoma cruzi | |
| Abdel-Monaem et al. | Evaluation of Echinostoma liei worm, metacercaria and redia antigens for schistosomiasis control |