CS251396B1 - Pohotovostní bakteriologická kultivační souprava - Google Patents

Pohotovostní bakteriologická kultivační souprava Download PDF

Info

Publication number
CS251396B1
CS251396B1 CS858336A CS833685A CS251396B1 CS 251396 B1 CS251396 B1 CS 251396B1 CS 858336 A CS858336 A CS 858336A CS 833685 A CS833685 A CS 833685A CS 251396 B1 CS251396 B1 CS 251396B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
soil
dish
sterile
agar
kit
Prior art date
Application number
CS858336A
Other languages
English (en)
Other versions
CS833685A1 (en
Inventor
Ivan Cadersky
Alzbeta Zouharova
Eva Buriankova
Jan Kybal
Jindrich Chromik
Jiri Schindler
Petr Simek
Zdenek Matous
Original Assignee
Ivan Cadersky
Alzbeta Zouharova
Eva Buriankova
Jan Kybal
Jindrich Chromik
Jiri Schindler
Petr Simek
Zdenek Matous
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ivan Cadersky, Alzbeta Zouharova, Eva Buriankova, Jan Kybal, Jindrich Chromik, Jiri Schindler, Petr Simek, Zdenek Matous filed Critical Ivan Cadersky
Priority to CS858336A priority Critical patent/CS251396B1/cs
Publication of CS833685A1 publication Critical patent/CS833685A1/cs
Publication of CS251396B1 publication Critical patent/CS251396B1/cs

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Předmětem řešení je pohotovostní bakteriologická kultivační souprava k balení, distribuci, skladování, přípravě a jednorázovému použití pevných mikrobiologických půd, které sestává z průhledné misky s osazením na svém horním obvodě, ze sterilní kultivační půdy uvnitř misky, z průhledného víčka s úchytkou, do nějž miska se sterilní kultivační půdou volně zapadá a, zcela je vyplňuje a s vícevrstvé krycí folie, uzavírající víčko s miskou se sterilní kultivační půdou uvnitř hermetickým, s výhodou peelovým svarem. Půdy v kultivačních miskách si zachovávají kvalitu a vysokou citlivost pro mikroorganismy po dlouhou dobu skladování. Manipulace s miskami při práci Je velmi jednoduché. Kultivační souprava mé Široký okruh použití v humánní i veterinární medicíně, v potravinářství, vodohospodářství, zemědělství a farmacii.

Description

Předmět·· vynálezu je pohotovostní bakteriologická kultivační souprava, obsahující sterilní pevnou mikrobiologickou půdu, určená k balení, distribuci, skladování, přípravě a jednorázovému použití pevných mikrobiologických půd.
Pro mikrobiologické hodkocení kvalitativního i kvantitativního charakteru se využívá růstových vlastností mikroorganismů na mikrobiologických živných půdách o různém složení, závislém ne vlastnostech mikroorganismů.
Mikrobiologická půdy jsou citlivým biologickým materiálem, u něhož dochází snadno ke znehodnocení. Půdy připravované a skladovaná běžným způsobem rychle vysýchají a snadno se během skladování kontaminují. Proto se hledá řeěení jak zajistit jejich standartní kvalitu při skladování, přepravě a manipulaci.
V mikrobiologické praxi je velice rozšířené používání tzv. pevných mikrobiologických živných půd různého složení, tj. půd, které po zchladnutí ztuhnou do gélovltého stavu v důsledku přídavku určitého množství ageru do živné půdy.
Příprava těchto pevných mikrobiologických živných půd se provádí rozvařením určitého množství suchá půdy obvykle v práškovém nebo granulovaném stavu ve vodě, sterilizací takto získaného roztoku a jeho rozlitím do předem vysterilizovených, nejčastěji skleněných, ale i plastových - polystyrénových či polyetylenových Petriho misek za aseptických podmínek. Po ochlazení a ztuhnutí roztoku živné půdy v Petriho misce a jejím zakrytí volně loženým víčkem je pevná mikrobiologická živná půda připravena k využití při mikrobiologickém hodnocení.
Uvedený způsob ukládání a přechovávání mikrobiologických půd ve skleněných nebo plas tových Petriho miskách má některé závažné nedostatky. Pevné mikrobiologické živné půdy v Petriho miskách vyžadují časově a materiálově náročnou přípravu, projevující se negativně zejmána tam, kde se neprovádí hromadně mikrobiologická vyšetření, jejich uchování je časově omezená na dobu jednoho až dvou týdnů zpravidla při snížená teplotě a při jejich skladování a transportu ne místo očkování vzniká reálná nebezpečí jejich kontaminace případným oddělením víčka od Petriho mlsky s půdou.
Ve snaze zabránit zejmána posledně uvedenému nedostatku se Petriho misky naplněná půdou balí do obalů z plastických hmot. Tím se sice zabrání nežádoucímu oddělení spodní čáotl a víčka, ale nezamezí se unikání vlhkosti, která podporuje růst mikroorganismů a plísní vně misky. Tím ja ohrožene 1 sterilita vnitřního obsahu mlsky.
Selži vývoj se ubíral k použití plastických misek, jejichž víčko je se spodní částí pevně spojeno pojidlem. 1 v tomto případě dochází k dehydrataci a po několika týdnech skladování i ke kontaminaci.
Oelěí možností je přechovávání půd v několika nádobkách se Šroubovacím víčkem či v zatavených skleněných ampulích. Nevýhodou tohoto řeěení jsou v prvém případě relativně zvýžsné náklady řešení a va druhém případě snadné rozbitelnost ampulí*.
Pojení misek lepicími páskami se ukázalo rovněž jako nedostatečné. Pásky časem křehnou, přestávají lapit a tím 1 bránit dehydrataci půdy.
Dalším z možných řeěení, popsaným v ÚSP 3 532 604, je potahování hotových naplněných misek nebo zkumavek a půdami filmem kopolymerů. Tento způsob uchovávání půd ae jeví jako velmi pracný a ekonomicky náročný.
Příbuzná řežení problému, popisovaná rovněž zejména v US - patentové literatuře, zahrnují fyzikální nebo chemické změny biologického materiálu, jako je například lyofilizace, hluboké zmrazení nebo přídavek chemikálií. Tyto postupy však mění povahu biologického materiálu a navíc vyžadují drahého vybavení.
K odstraněni shora uvedených nedostatků směřuje pohotovostní bakteriologická kultivační souprava, obsahující sterilní pevnou mikrobiologickou půdu, určená k balení, distribuci, skladování, přípravě a jednorázovému použití pevných mikrobiologických půd, podle vynálezu, jehož podstata spočívá v tom, že souprava sestává z průhledná, plochá, například kulatá misky s osazením na svém horním obvodě, ze sterilní kultivační půdy u uvnitř misky, z průhledného víčka s úchytkou, do nějž miska se sterilní kultivační půdou volně zapadá a zcela je vyplňuje a z vícevrstvé krycí folie, uzavírající víčko 8 miskou se sterilní kultivační půdou uvnitř hermetickým, s výhodou peelovým svarem.
Ve výhodném provedení vynálezu jsou miska i víčko vytvořeny z průhledného, néměkčeného, hlubokotažného plastu o tlouělce 0,20 až 0,50 mm, například z neměkčeného polyvinyl chloridu, vhodného pro blistrová balení.
Konstrukce a materiálové složení vícevrstvé krycí folie, volené s hlavním aspektem k jejím funkčním vlastnostem, mohou být různé. V ověřovací praxi výhodně obstály zejména folie z vrstvy viskózy nebo biaxiálně orientovaného polypropylénu, opatřené za své vnějěí strany polyvinylidénchloridovým lakem, vrstvy polyetylénu nebo polyvinylidenchloridu, folie hliníku o tlouělce 0,01 až 0,04 mm a peelové vrstvy v uvedeném pořadí a folia z vrstvy papíru o ploěné hmotnosti 45 až 100 g.m”2, vrstvy polyetylénu o tlouělce 0,03 až 0,09 mm a hustotě v rozmezí 918 až 923 kg.m”^, folie hliníku a tlouělce 0,01 až 0,04 mm a peelové vrstvy v uvedeném pořadí.
Chemické složení peelové vrstvy, umožňující hermetické uzavření jednotlivých částí soupravy ae sterilní půdou v jeden celek, může být taká různá. K danému účelu vyhovuje zejména nitrocelulóza nebo kopolymer typu etylen - vinylkarboxylová kyselina, etylen - ; vinylecetát, vinylchlorid - vinylacetát.
Materiály, z nichž jsou vytvořeny miska a víčkem a vícevrstvá krycí folie, vynikají vedla vlastnosti, vyplývajících již z jejich výěe uvedené charakteristiky, zvláště nízkou propustností pro vodní páru. Zhledlske požadavků kladených na pohotovostní bakteriologickou kultivační soupravu a vytýčeného cíle vynálezu, tj. zamazaní unikání vlhkosti z půdy a vzniku.nežádoucí kontaminace, je tato vlastnost materiálu prvořadou.
Materiál, z něhož je miska a vlčkem vytvořena, je pevný, lehký, amedmo tvarovatelný, lze jej sterilizovat běžnými metodami, je nepropustný pro mikroorganismy, nebrání věak růstu žádoucích mikroorganismů. Jeho použití je praktické i z toho důvodu, io joj lze popisovat laboratorní tužkou na sklo.
Z výrobních důvodů jo výhodná, aby miska i víčko byly zhotoveny z téhož materiálu. Není to věak podmínkou. Důležitá je, aby víčko bylo transparentní a umožňovalo vizuálně sledovat a vyhodnocovat chování studovaného mikroorganismu a průběh kultivace nn naočkované půdě, aniž by bylo z misky snímáno. Neměkčený hlubokotažný polyvinylchlorid tuto podmínku splňuje. Je-li taká miska zhotovena z transparentního materiálu, pak je možné sledování i hodnocení provádět táž v pohledu ze spodu misky.
Pohotovostní bakteriologická kultivační souprava podle vynálezu uspokojuje komplexně všechny vysoké nároky, které souvisejí jednak s jejím praktickým využitím, jednak v vlastním řešením technického problému. Řadí se k nim zejména nepropustnost pro mikroorganizmy, minimální propustnost pro vodní páru, inertnost vůči pevné mikrobiologické půdě, atorilizovatelnost gama nebo UV zářením, tepelná odolnost při kultivačních teplotách, možnost vizuální kontroly sterility půdy a průběhu kultivace při využití soupravy, schopnost uchovávat funkční vlastnosti půdy v průběhu dlouhodobého skladování - alespoň jedem rok, operativní použitelnost - souprava obsahuje všechny nezbytné funkční součásti včetně mikrobiologické půdy k přímému použití, snadná manipulovatelnost při funkčním využití, materiálová dostupnost a ekonomická výhodnost ve srovnání a dosud používanými systémy misksvíčko.
Zavedením pohotovostní bakteriologické kultivační soupravy pro jednorázové použití pevných mikrobiologických půd podle vynálezu na specializovaném pracovišti, zabývajícím se mikrobiologickou diagnostikou, odpadá řada úkonů spojených se separátní přípravou živné půdy bezprostředné před použitím. Jsou jím odstrsněny operace naveževéní příslušných složek půdy, jejich rozpouštšní a rozvažování, sterilizace půdy a laboratorního skla - Petriho mlsek pipet, rozlití sterilní půdy do misek a podobni. Uvedené operace jsou nejen časově náročné, ale vyžadují i investiční a energeticky náročné přístroj·, zejména horkovzdušné sušárny a sterilizační autoklévy.
Tělesné vytvoření a uspořádání jednotlivých částí pohotovostní bakteriologické kultivační soupravy podle vynálezu v adjustovaném stavu ja znázorněno na obr. 1 v pohledu shora a na obr. 2 v řezu. Obr. 3 představuje detail jednoho z možných provedení uspořádání b složení vícevrstvé, v daném případě čtyřvrstvé krycí folia podle vynálezu.
Plochá, v daném případě kulatá mlska 1, opatřená oeasením g ne sván horním obvodě a obsahující sterilní kultivační půdu £ uvnitř je uložena v průhledném víčku £ a úchytkou £. Miska £ s osazením g a víčko £ jsou vytvarovány tak, aby miska do víčka při adjustaci soupravy volně sapadla a současně, aby při použití soupravy, po otevření soupravy odloupnutím krycí folia £ naočkování půdy £, vyjmutí resp. vytanutí mlsky £ s víčka £ nejlépe jeho nakloněním, a sakrytí misky víčko £ k misce £ dobře přiléhalo a tím plnilo při kultivaci svou funkci. Úchytka £ slouží k snazšímu odloupnutí krycí folia £.
Vyěrafovená plocha na obr. 1 a plná čára na obr. 2 znázorňují pealový svar £, který hermeticky apojuje vícevrstvou krycí folii £ s obvodovou plochou vlčka £. Aby sa při otevírání soupravy bezprostředně před jejím použitím působením tahové síly na volnou, nepřiváženou část krycí folia £ při vnějším okraji úchytky £ dosáhlo shadného, plynulého a úplného odloupnutí krycí folie £, zasahuje peelový svar £ svým postupně se zužujícím výběžkem z kruhového obvodu do úchytky £.
Obr. 3 znázorňuje uspořádání a složení vícevrstvé krycí folie, popsené v bodě £ předmětu vynálezu.
Podle charakteru laboratorních testů, prováděných rutinně k diagnostichým a kontrolním účelům při sledování sterility a nezávadnosti a založených na hodnocení mikroflory, kultivované na definovaných diagnostických živných půdách, používají se v praxi různé živné půdy, sestavené s ohledem na specifičnost zkoušky a ne očekávanou odpověS, například zkoušení vody, mléka a mléčných výrobků, potravin, reziduji toxických látek, obalového materiálu, filtrační technika, lékařská diagnostika, stanovení aktivit antibiotik, zkouěky sterility, zkoušení farmaceutických surovin a produktů, biochemické testy a podobně.
Z živných půd tuzemské provenience přicházejí v úvahu zejména živný agar č. 1 a č. 2, Endove půda, MacCohkey agar β Saboureudův agar známého standertnlho složení. Živný agar č. 1 je mírně alkalická živná půda, určená pro všeobecná laboratorní použití ke kultivaci růstově nenáročných bakterií, hlavně pro bakteriologické vyšetření pitných a odpadních vod
Živný agar č. 2 se hodí rovněž ku všeobecnému použití » bakteriologii. Déle je určený pro aubkultury různých bakterii a na jejich krátkodobé uchovávání ve sbírce. Endove půda je určená k rozlišení laktózu zkvaěujících a nezkvaěujících mikroorganismů, pocházejících převážně ze sažlvacího traktu. Používá sa především v diagnostické humánní či veterinární bakteriologii, ale též v hygienické bakteriologii k izolaci S. coli z vody, potravin Či jiného prostředí.
MacConkey agar ja určen k izolaci a diferenciaci grsnnegativních červených tyčinek. Velmi dobře se hodí k důkazu přítomnosti a počtu E. coli, jakož 1 důkazu a izolaci salmonel a shogel.
Sabouraudův agar je určen k Izolaci a kultivaci kvasinek a kožních patogenních plísní.
Ze shora uvedeného je zřejmá, Se pohotovostní bakteriologická kultivační souprava podle vynálezu má Široký okruh použití nejen v humánní a veterinární medicíně, ale i ▼ potravinářství, vodohospodářetví, zemědělství a farmacii. Sortiment takto připravovaných pevných živných p&d lze dle potřeby obměňovat e centrálně distribuovat. Výrobek je Vhodný i pro práci v terénu bez nákladného laboratorního vybavení. P&dy v kultivačních nlakáeh sl zachovávají kvalitu a vysokou citlivost pro mikroorganismy po dlouhou dobu skladování. Manipulace a mlskami při práci je velmi jednoduchá.
Přikladyprovedenl
Příklad I
Sladovaná p&da: 2lvný agar č. 1
Sterilizace obalu: vnějěl a vnitřní mlska i krycí materiál byly ozářeny na gama zdroji dávkou 25 kQy.
Plnění půd: Sivný agar byl připraven dle návodu a sterilizován v autoklávu 20 minut při 121 °C. Po zchlazení půdy na cca 45 °C byla půda za aaeptických podmínek v boxu a lamlnáraín proudánín vzduchu rozpínána po 15 ml do vnitřních misek. Po zatuhnutí půdycca 5 minutách - byla no vičku a miskami navařena sterilní krycí folie.
Sledování sterility a záchytnosti půd: soupravy byly akledovány po dobu 12 máaíců při pokojová teplete 20 až 25 °C. Běhen táto doby bylo sledováno zachování sterility a každý něeíc byla testována záchytnost půd pro organismy. Ke sledování citlivosti půdy byla používána B. coli CCU 185. Výsledky záchytnosti byly srovnány s výsledky získanými ma čerstvá připraveném žlvnán agaru č. 1 v Petriho miskách. Živný agar 6. 1 si zachoval i po 12 másících skladování záchytnost na stejná úrovni jako čerstvá připravená půda.
Ma sledovaných kultivačních miskách nebyla po celou dobu skladování zjiátána kontaminace. Viecbny vzorky si uchovaly sterilitu.
Příklad 2
Slááovaná půda: živný agar č. 2
Sterilizace obalu a plnění půd jako v příkladu 1.
Sledování sterility a záchytnosti půd: skladování vzorků i metodika testování jako v příkladu 1, testovací mikroorganismus Staphyeoccus aureua. Sterilita zůstala zachována u váech vzorků po dobu 1. roku sladování. Záchytnost pro Stephylococcus aureua zůstala po celý rok na úrovni čerstvá připravená půdy.
Příklad 3
Sledovaná půda: Bndova půda
Sterilizace obalu a plnání půdy jako v příkladu 1.
Sledování sterility půdy: váechny vzorky si uchovaly sterilitu po dobu 12 misíců.
Sledování záchytnosti půdy: skladování vzorků i metodika testování jako v přikládá 1.
Testovací mikroorganismy: směs B. coli a Shigella sonnei,
Záchytnost se v prních dvou másících sledování snížila, v dalěích měsících až do doby 1 roku se řádově rovnala čerstvě připravená půdě.
Příkladě
Sledovaná půda: MncConkey agar
Sterilizace obalu a plnění půdy jako v přikladu 1.
Sledování sterility půdy:váechny vzorky ai uchovaly sterilitu po dobu 12 měsíců.
Sledování záchytnosti půdy: skladování vzorků i metodika testování jako v příkladě 1.
Testovací mikroorganismy: směs E. coli a Shlgelle sonnei.
Záchytnost pro uvedenou směs mikroorganismů zůstala po celý rok na úrovni čerstvě připraveně půdy.
Přiklad 5
Sladovaná půda: Sabouraudův agar
Sterilizace obalů a plnění půdy jako v příkladě 1.
Sladování atarility půdy: během 12 měsíců skladování byl zjiětin Jeden kontaminovaný vaorak.
Sladování záchytnosti půdy: skladování vzorků i metodika testování jako v příkladě 1
Testovací mikroorganismus: Candia albicans
Záchytnoat pro uvodozý mikroorganismus: zůstale po celou dobu sledování na úrovni čerstvě připravená půdy.
Přiklad 6
Sledovaná půda: Sabouraudův agar * Sterilizace obalu: Kombinace otylalkohol + UV záření
Platní půdy: Soboursůdův agar byl připraven dle návodu a sterilizován v autoklávu 20 minut při 121 *C. Po zchlazení na cca 45 °C byl v boxu o laninárním prouděním vzduchu rozpínám po 15 ml do předem vyaterlllzovaných alaok. Po zatuhnutí půdy - cca 5,5 minut byl· na vláká a nitkami navařona sterilní krycí folio.
Sledování sterility a šáchytnosti půdy: soupravy byly skladovány po dobu 18 měsíců při pokojová teplotě a bylo u nich sledováno zachování atarility a záchytnosti pro mikroorganismy. Testování citlivosti bylo prováděno každý měsíc kmenem Candida albicans a srovnáno o čerstvě připraveným Sabouraudovým agaram na Potriho miskách. Sledovaná půda al šachovala po celou dobu skladování záchytnoat srovnatelnou a čerstvě připravenou půdou
U skladovaných vzorků byla v 7 · nalezena nežádoucí kontaminace, což bylo zřejmě způsobeno zlebýn zdrojem UV zářením a tudíž nedostatečnou eliminací kontaminace na obalován notoriálu.
Příklad 7
Sladovaná půda: Sndova půda
Sterilizace obalu a plnění půdy jako v příkladě 6.
Sladování sterility půdy: během 8 měsíčního skladování nebyla zjiětěna kontaminace.
Sledování záchytnoati půdy: skladování vzorků i metodika testování jako v příkladě 6, testovací nikroorgeniaky jako v příkladě 3. V prvních dvou měsících byl zazmemenán pogloa záchytnosti, v deláích měsících sa záchytnoat vyrovnala čerstvě připravená půdě.
Příklade
Sledovaná půda: Mac Conkay agar
Sterilizace obalu a plnění půd jako v příkladě 6.
Sladování sterility půdy: během 8 měsíčního skladování byla zjištěna kontaminace a 2 I vzorků.
Sledování záchytnosti půdy: metodika i testovací mikroorganismy jako v příkladě 4. Záchytnoat pro uvedený mikroorganismus zůstala po dobu 8 měsíců na úrovni čerstvě připravená půdy.

Claims (7)

1. Pohotovostní bakteriologické kultivační souprava, obsahující sterilní pevnou mikrobiologickou půdu, určené k balení, distribuci, skladování, připraví a jednorázovému použití pevných mikrobiologických půd, vyznačené tím, že sestává z průhledné, ploché', například kulaté misky (1) a osazením (2) na svém horním obvodě, ze sterilní kultivační půdy (3) uvnitř misky (1), z průhledného vlčka (4) s úchytkou (5), áo ni ji miska (1) se sterilní kultivační půdou (3) volné zapadá a zcela je vyplňuje a z vícevrstvé krycí folie (6), uzavírající víčko (4) s miskou (1) se sterilní kultivační půdou (3) uvnitř hermetickým, s výhodou peelovým svarem (7).
2. Souprava podle bodu 1, vyznačená tím, že miska (1) je vytvořena z průhledného, nemékčeného, hlubokotažného plastu o tlouělce 0,20 ež 0,50 mm, například z něměkčeného pólyvinylchloridu, vhodného pro blistrové balení.
3. Souprava podle bodů-1 a 2, vyznačená tím, že víčko (4) je vytvořeno z téhož materiálu jako miska (I).
4. Souprava podle bodů 1 až 3, vyznačená tím, že vícevrstvá krycí folie (6) sestává z vrstvy viskózy nebo biaxiálně orientovaného polypropylénu, opatřené ze své svějéí strany polyvinylidenchloridovým lakem, vrstvy polyetylénu nebo polyvinylidenchloridu, folie hliníku o tlouělce 0,01 až 0,04 mm a peelové vrstvy v uvedeném pořadí.
5. Souprava podle bodů 1 až 3, vyznačená tím, že vícevrstvá krycí folie (6) sestává z vrstvy papíru o plošné hmotnosti 45 až 100 g.m”z vrstvy polyetylénu o tloušlce 0,03 až 0,09 mm a hustotš v rozmezí 918 až 923 kg.m-^, folie hliníku o tloušlce 0,01 až 0,04 nn a peelové vrstvy v uvedeném pořadí.
6, Souprava podle bodů 1 až 5, vyznačená tím, že peelové vrstva sestává z nltrocelu lózy nebo kopolymeru typu etylen - vinylkarboxylová kyselíme, etylen - vinylacetát, vinylchlorid - vinylacetát.
7. Souprava podle bodů 1 až 6, vyznačená tím, že obsahuje sterilní kultivační půdu s agarem, jeko Živný agar č. 1, živný agar č. 2, Endovu půdu, MaeConkey agar nebo Sabouraudův agar.
CS858336A 1985-11-19 1985-11-19 Pohotovostní bakteriologická kultivační souprava CS251396B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS858336A CS251396B1 (cs) 1985-11-19 1985-11-19 Pohotovostní bakteriologická kultivační souprava

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS858336A CS251396B1 (cs) 1985-11-19 1985-11-19 Pohotovostní bakteriologická kultivační souprava

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS833685A1 CS833685A1 (en) 1986-11-13
CS251396B1 true CS251396B1 (cs) 1987-07-16

Family

ID=5433774

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS858336A CS251396B1 (cs) 1985-11-19 1985-11-19 Pohotovostní bakteriologická kultivační souprava

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS251396B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS833685A1 (en) 1986-11-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4775628A (en) Petri dish for cultivating bacteria and method of inspecting drug susceptibility
Moorer et al. Evidence for antibacterial activity of endodontic gutta-percha cones
JPS62228147A (ja) 殺菌工程用生物学的インジケ−タ
EP1331953B1 (en) Indicator systems for determining the effectiveness of a sterilization procedure
US20020058296A1 (en) Contained indicators for determining sterilization
CN105008917B (zh) 设计成接收生物样品的设备
CN104685047A (zh) 微生物培养器、微生物检验试剂盒、透析液的检验方法、微生物的培养方法、微生物的检验方法及微生物培养器的制造方法
Rutala et al. Decontamination of laboratory microbiological waste by steam sterilization
US6060266A (en) Self-contained incubator for growth of microorganism
EP0093920B1 (de) Bioindikator
DE2027604B2 (de) Vorrichtung zur Anzeige des Grades der biologischen Wirksamkeit eines Desinfektionsmittels oder -Verfahrens
US4766063A (en) Process and device for detecting the activity of a substance on a micro-organism or on a mixture of micro-organisms
US8541195B2 (en) Method for testing a sterilization packaging unit
US2954327A (en) Container for nutrient media
JP2006087391A (ja) 微生物の胞子または細胞の調製方法、これらの胞子または細胞の水性懸濁液の調製方法、この微生物を培養するための培養片、この培養片から得られる培養済みの培養片および培養装置
Panigrahi et al. Stability study of Bhringraj Vati &Triphala Gugulu-With respect to baseline microbial diagnostic modalities
Bahri et al. Comparison of The Effectiveness Antibacterial Test of Natural Ingredients and Antibiotic in Salmonella typhi Isolated from Hospital Waste and Household Waste
US20240279587A1 (en) Portable testing device for testing susceptibility of a biological probe to one or more bioactive substances
Pienpatanakij et al. Comparing the results of microbiological sterilization by autoclaving in different waste packaging formats
Antohe et al. Aspects of Testing the Biological Characteristics of Alginic Impression Materials
Gauridutt et al. Stability study of coarse powder of Shunthi (Zingiber officinale), used in treatment of Sama stage (Acute stage) of Amavata (Rheumatoid arthritis) along with castor oil-with respect to baseline microbial diagnostic modalities
Harding The Lab: Quality Control in Microbiology
da Silva et al. Microbiological analysis of absorbent paper points employed by undergraduate students from a dental school in south of Brazil
Manohari et al. EVALUATE THE STABILITY OF MEDHYA CHURNA (AN AYURVEDIC POLY HERBAL DRUG) BY MICROBIOLOGICAL MEASURES IN THE MANAGEMENT OF ATTENTION-DEFICIT/HYPERACTIVITY DISORDER (ADHD) IN CHILDREN
Baume et al. Methods for achieving soft tissue scaffold sterility