CS248499B1 - Sposob stabilizácie enzýmu galaktózaoxidáza - Google Patents
Sposob stabilizácie enzýmu galaktózaoxidáza Download PDFInfo
- Publication number
- CS248499B1 CS248499B1 CS805985A CS805985A CS248499B1 CS 248499 B1 CS248499 B1 CS 248499B1 CS 805985 A CS805985 A CS 805985A CS 805985 A CS805985 A CS 805985A CS 248499 B1 CS248499 B1 CS 248499B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- enzyme
- galactose oxidase
- stabilizing
- gel
- carrageenan
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Description
248499
Vynález sa týká sposobu stabilizácie en-zymu galaktózaoxidáza (D-galaktóza: oxygen-oxidoreduktáza, EC 1.1.3.9).
Galaktózooxidáza je enzým zo skupiny me-taloproteinov s aíómom médi v prosíeiickejskupině, ktorý katalýzu je oxidáciu primár-né] hydroxylovej skupiny na uhlíku D-ga-laktózy v polohe 6 za vzniku aldehydickejfunkcie. Táto oxidácia prebieha nie len vmolekule volnej D-galaktózy, ale aj v anhyd-rogalaktozylových jednotkách s touto vol-nou hydroxylovou skupinou v o ligo- a biopo-lyméroch.
Jedným z obecne využívaných postupovstabilizácie enzýinových aktivit je prídavokreakčného substrátu k roztoku enzýmu, zvý-šenie hydrof óbnosti prostredia prídavkomorganického rozpúš.adla alebo prídavkomniektorých mono- alebo disacharidov k roz-toku enzýmu [N. Citri: Adv. Enzymol. 37,397 (1937)].
Nevýhodou stabilizácie v roztoku je u vač-šiny enzýmov a to predovšetkým zo skupinytransglykozylačných enzýmov a oxidoreduk-táz nižšia schopnost' perzistencie aktivity priteplotách nad 60 °C. Z toho dóvodu sa ukazu-je ako účelná stabilizácia enzýmov na fázo-vom rozhraní, pripravenom z modifikované-ho polymérneho substrátu [J. Zemek, S. Bau-er, E. Kuniak: Biopolymers 18, 2135 (1979)),alebo afinantov, obecného typu [J. Zemek,E. Kuniak, P. Gemeiner, J. Zámocký, Š. Ku-čár: Enzyme Microb. Technol, 4, 223 (1982)],připadne kompetitívnych inhibítorov reakcie,ktorí sa viažu na aktivně centrum enzýmu,v priebehu interakcie s enzýmom sa všaknerozkladajú. Galaktózaoxidázu sa zatial' nafázovom rozhraní stabilizoval nepodařilo.
Uvedené nevýhody odstraňuje postup po-dlá vynálezu, podstata ktorého spočívá vtom, že enzým galaktózaoxidáza v roztokufosfátového alebo tri (hydroxymetyl) mety 1-amóniumchloridového ústojného roztoku opH 6,5 až 8,0 a koncentrácii 0,01 až 0,05mol. dm-3 sa nanesie na gél připravený zalfa galaktánov ako je karagenan alebo gua-ran alebo ich zmesí sletovaných bifunkčnýmčinidlom 2-chlormetyloxyránom s výsled-ným napúčacím objemom 4 až 10 cm3. g 1a stupeň sieťovania 0,02 sž 0,1 a to tak, abyhmotnost gelu k hmotnosti roztoku enzýmuboli v pomere 0,7 až 1 a mokrý gél sa nako-niec vysuší do teploty 40 °C. Výhodou uvedeného postupu je jeho jed-noduchost1, technická nenáročnost', vysokástabilita enzýmu počas skladovania, ako ajmožnost přípravy enzýmového preparátu vtabletovacej formě, priamym suchým table-továním enzýmu zakotveného na nosiči. Příklad 1
Enzým galaktózaoxidáza z Polyporus cir-cinatus o aktivitě 2 ,ukat a špecifickej aktivi-tě 1,2 nkat. mg“1 sa rozpustí v 10 cm3 fosfá- tového ústojného roztoku o pH 6,5 a koncen-trácii 0,01 mol. dm-3 68,5 cm3 dihydrogen-fosforečnanu sodného (27,8 g.dm“3) a 31,5centimetrov krychlových hydrogenfosforeč-nanu sodného (53,65 g.dm“3), doplněné na1 dm3 dest. vodou a nanesie na 10 g gélu,připraveného z karagenanu, sletovaného 2--chlnrometyloxyránom na stupeň sieťovania0,02 a napúčacom objeme 10 cm3. g“1. Získa-ný gél sletovaného karagenanu s galaktóza-oxidázou sa vysuší pri tlaku 5 kPa a podrobítepelne expozičným testom pri teplote 70 až90 °C. Zatial', čo lyofilízovaný enzýmový pre-parát sa dezaktivoval už po 3 dňovej expo-zícii pri teplote 70 °C, enzým stabilizovaný napovrchu gelu sledovaného karagenanu za-znamenal po 3 dňoch expozície pri teplote90 °C len 18 % pokles aktivity. Příklad 2
Enzým galaktózaoxidáza z Dactylium den-droides o aktivitě 1,4 ^kat a špecifickej ak-tivitě 0,95 nkat. mg“1 sa rozpustí v 25 cm3tris (hydroxymetyl jmetylamóniumchlorido-vého ústojného roztoku o koncentrácii 0,05mol. dm“3 50 cm3 roztoku tris (hydroxyme-tyl jmetylamínu (24,2 g . dm-3 kyseliny chlo-rovodíkovej sa doplní vodou do 200 cm3 ananesie sa na 50 g gelu připraveného z gua-ranu, sieťovaného 2-chlormetyloxyránom nastupeň sieťovania 0,1 a o napúčacom objeme4 cm3.g_1. Získaný gél s enzýmom sa vy-suší volné a podrobí tepelne expozičnýmtestom pri teplote 70 až 90 °C. Zatial', čo lyo-filizovaný enzýmový preparát sa dezaktivo-val už po 3 dňovej expozícii při teplote 70 °C,enzým stabilizovaný na povrchu gélu sieťo-vaného garagenanu zaznamenal po 3 dňochexpozície pri teplote 90 °C len 18 % poklesaktivity. Příklad 3
Postupuje sa podlá příkladu 1 s tým roz-dielom, že sa roztok enzýmu nanáša na gélpřipravený zo směsi karagenanu a guaranu vhmotnostných pomeroch 1:1a sieťovaný 2--chlormetyloxyránom na stupeň sieťovania0,05 a o napúčacom objeme 7 cm3. g"1. Za-tial', čo lyofilízovaný enzýmový preparát sadezaktivoval už po 3 dňovej expozícii priteplote 70 °C, enzým stabilizovaný na povr-chu gélu zo zmesi sieťovaného karagenanua guaranu zaznamenal po 3 dňoch expozíciepri teplote 90 °C iba 18 % pokles aktivity.
Vynález mĎže nájsť široké uplatnenie pristabilizácii enzýmu galaktózaoxidáza pri vý-robě diagnostik pre účely klinickej bioché-mie, napr. pri monitorovaní galaktosémie agalaktosúrie, k štruktúrnej analýze oligo-sacharidov a biopolymérov, v potravinárskeja veterinárnej analytike a vo výskume.
Claims (1)
- 248499 S 6 PREDMET Spósob stabilizácie enzýmu galaktózaoxi-dáza EC 1.1.9.9 vyznačený tým, že enzýmgalaktózaoxidáza v roztoku fosfátového ale-bo tris( hydroxymetyl )metylamóniumchlori-dového ústojného roztoku o pH 6,5 až 8,0a koncentrácii 0,01 až 0,05 mol. dm-3 sa na-nesie na gél připravený z alfa galaktánovako je karagenan aiebo guaran alebo ich VYNÁLEZU zmesí sletovaných bifunkčným činidlom 2--chlormetyloxyránom na stupeň sieťovania0,02 až 0,1 s výsledným napúčacím objemom4 až 10 cm3.g_1 tak, aby hmotnost gelu khmotnosti roztoku enzýmu boli v pomere 0,7až 1,0 a mokrý gél sa nakoniec vysuší doteploty 40 °C.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS805985A CS248499B1 (sk) | 1985-11-08 | 1985-11-08 | Sposob stabilizácie enzýmu galaktózaoxidáza |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS805985A CS248499B1 (sk) | 1985-11-08 | 1985-11-08 | Sposob stabilizácie enzýmu galaktózaoxidáza |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS248499B1 true CS248499B1 (sk) | 1987-02-12 |
Family
ID=5430681
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS805985A CS248499B1 (sk) | 1985-11-08 | 1985-11-08 | Sposob stabilizácie enzýmu galaktózaoxidáza |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS248499B1 (cs) |
-
1985
- 1985-11-08 CS CS805985A patent/CS248499B1/cs unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US3959080A (en) | Carrier matrix for the fixation of biochemically effective substances and process for the preparation thereof | |
| US4767706A (en) | Fixation of enzymes with bis-dithioesters | |
| US3860484A (en) | Enzyme stabilization | |
| EP0523130B2 (en) | Enzyme stabilisation | |
| IL43054A (en) | Reagent and process for the enzymatic determination of glucose | |
| Azevedo et al. | Thermal and operational stabilities of Hansenula polymorpha alcohol oxidase | |
| JPS58899A (ja) | H↓2o↓2又はh↓2o↓2供与系を検出するための安定化された試薬 | |
| Guilbault et al. | Immobilization of cholinesterase and urease | |
| US4371611A (en) | Enzymatic diagnostic composition | |
| Berberich et al. | A stable three-enzyme creatinine biosensor. 3. Immobilization of creatinine amidohydrolase and sensor development | |
| CS248499B1 (sk) | Sposob stabilizácie enzýmu galaktózaoxidáza | |
| US4278761A (en) | Enzyme assay and kit therefor | |
| US5374546A (en) | Process for stabilizing 1-methylhydantoinase, use and method of it for determining an analyte and agents suitable for this | |
| Lukachova et al. | The improvement of polyaniline glucose biosensor stability using enzyme immobilization from water–organic mixtures with a high content of organic solvent | |
| US5190872A (en) | Immobilized alcohol utidase for use in an alcohol measuring apparatus | |
| Ooshima et al. | Characteristics of immobilized invertase | |
| Everse et al. | Immobilized enzymes in biochemical analysis | |
| JPH0332357B2 (cs) | ||
| US4247633A (en) | Reagent for colorimetric determination of creative phosphokinase | |
| JP3143050B2 (ja) | 安定化されたグルコース6リン酸脱水素酵素 | |
| Cantarella et al. | Stability and activity of immobilized hydrolytic enzymes in two-liquid-phase systems: Acid phosphatase, β-glucosidase, and β-fructofuranosidase entrapped in poly (2-hydroxyethyl methacrylate) matrices | |
| Hozumi | Reaction of the carcinogen 4-hydroxyaminoquinoline 1-oxide with sulfhydryl groups of proteins | |
| EP0083582A1 (en) | PREPARATIONS OF IMMOBILIZED CHOLINESTERASE ENZYMES AND THEIR PREPARATION METHOD. | |
| US4219645A (en) | Stabilized nicotinamide-adenine dinucleotides and process for their preparation | |
| Lobmaier et al. | Photostructurized electrochemical biosensors for biorector control and measurement in body fluids |