CS246696B1 - Způsob izolace proteolytických enzymů - Google Patents
Způsob izolace proteolytických enzymů Download PDFInfo
- Publication number
- CS246696B1 CS246696B1 CS458385A CS458385A CS246696B1 CS 246696 B1 CS246696 B1 CS 246696B1 CS 458385 A CS458385 A CS 458385A CS 458385 A CS458385 A CS 458385A CS 246696 B1 CS246696 B1 CS 246696B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- proteolytic enzymes
- activity
- eluted
- isolation
- solution
- Prior art date
Links
Landscapes
- General Preparation And Processing Of Foods (AREA)
- Medicines Containing Plant Substances (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Abstract
Izolace se provádí adsorbcí proteolytických enzymů ná částice obilné slámy. Eluce proteinas se provádí roztoky anorganických solí, např. chloridy a sírany sodným, draselným nebo amonným.
Description
Vynález se týká způsobu izolace proteolytických enzymů.
Proteolytické enzymy se v současné době izolují celou řadou metod, jako jě např. srážení síranem amonným nebo síranem sodným, srážení vychlazenými organickými rozpouštědly (aceton, etanol), ionexová chromatografie, gelová chromatografie, afinitní chromatografie nebo ultrafiltrace. Pouze za pomoci afinitní chromoatografie je možno získat značně přečištěný preparát proteinas v jediném izolačním stupni.
Typické sorbenty pro afinitní chromatografii proteinas se připravuji imobilizacl vhodných ligandů (substrát, inhibitor, protilátka) na nerozpustný nosič. Jako typické příklady je možno uvést izolaci pankreatiokého trypsinu na ovomukoid-Spheronu (Turková, J., Seifertová, A.: J. Chromatogr. 148, 293 /1978/), izolaci proteinas z mouky ze sladované pšenice na sloupci hemoglobin-Sepharosy (Chua, G. K., Bushuk, W.: Biochim. Biophys. Res. Commun. 37, 545 /1969/) nebo izolaci pepsinu na sloupci polylysin-Sepharosy 4B (Nevaldine, B., Kessel, B.: Biochim. Biophys. Acta 250, 207 /1971/).
Při přípravě sorbentú pro afinitní chromatografii je často nutno použít několikastupňový proces pro aktivaci nosiče, jsou vyžadovány speciální chemikálie apod.
Způsob izolace proteolytických enzymů z komplexních směsi podle vynálezu spočívá v tom, že se proteinasy obsažené v roztoku adsorbují na částice obilné slámy. Jejich eluce se pro-* vádí roztoky anorganických solí, s výjimkou solí ovlivňujících enzymovou aktivitu, s výhodou sírany a chloridy sodnými, draselnými a amonnými. Výhodou tohoto způsobu je použití velmi dostupné suroviny a rovněž to, že slámu je možno pro izolaci proteolytických enzymů připravit velmi jednoduchým způsobem.
Vynález je dokumentován příklady použiti.
Příprava sorbentú
Obilná sláma byla namleta nebo nastříhána na malé částice. Částice slámy byly povařeny v 1-10% roztoku hydroxidu sodného nebo draselného po dobu 1-10 hodin. Po povaření byly částice slámy převedeny do kolony, byly důkladně promyty vodou, roztokem chloridu sodného nebo síranu amonného (1 mol . I-1) a opět vodou, dokud absorbance vodných a solných promyvů při 280 nm a tlouštce vrstvy 1 cm nebyla menší než 0,01.
Příklad 1
Na sloupec částic pšeničné slámy o rozměrech 130x12 mm bylo aplikováno 10 ml modelového roztoku obsahujícího 10 mg trypsinu a 100 mg enzymového hydrolyzátu kaseinu. Balastní bílkoviny byly z kolony vymyty vodou. Adsorbovaný trypsin byl z kolony eluován zvýšením iontové síly prostředí (elucí roztokem chloridu sodného, 1 mol. 1 ^). Obsah bílkovin byl stanoven Lowryho metodou (Lowry, O.H., Rosebrough, N.J., Farr, A.L., Randall, R.J.: J. Biol. Chem. 193, 265 /1951/) a aktivita proteinasy byla stanovena azokaseinovou metodou (Šafařík, I.: J. Chromatogr. 261, 138 /1983/).
Z celkově aplikované proteolytické aktivity se s balastnimi bílkovinami při elucí vodou vymylo 2 % aktivity, při eluoi roztokem chloridu sodného se v prvých 110 ml roztoku vymylo 70 % aktivity. Specifická aktivita trypsinu se po chromatografii zvýšila 8,5krát.
Příklad 2 za analogických podmínek jako v příkladu 1 byla provedena chromatografie 10 mg komerčního preparátu trypsinu, rozpuštěného v 10 ml vody. Z celkově aplikované proteolytické aktivity se s balastnimi bílkovinami vymylo 5 % aktivity, při eluci roztokem chloridu sodného se v celkovém objemu 96 ml vymylo 66 % aktivity. Specifická aktivita trypsinu se po ohromatoírafii zvýšila 2krát.
*
Příklad 3
Na sloupci ječné slámy o rozměrech 105x12 mm byla provedena izolace bakteriálních proteinas produkovaných kmenem Bacillus sp., který byl izolován z půdy. Po aplikaci 10 ml odstře děného kultivačního média byly balastní bílkoviny vymyty vodou a adsorbované proteinasy byly vymyty roztokem síranu amonného (1 mol. i-1). Z celkově aplikované proteolytické aktivity se s balastními bílkovinami při eluci vodou vymylo 30 % aktivity, při eluci roztokem soli se v objemu 130 ml vymylo 65 % aktivity. Specifická aktivita proteinas se po chromatografii zvýšila 20krát.
Příklad 4
Za analogických podmínek jako v příkladu 1 byla provedena chromatografie kyselého vyčeřeného hovězího pankreatického extraktu. Extrakt byl před aplikací na kolonu 24 h dialyzován proti tekuci vodě a poté nechán 24 h při laboratorní teplotě, aby byla umožněna konverze trypsinogenu a chymotrypsinogenu na aktivní proteinasy. Bylo aplikováno 6 ml roztoku, z celkově aplikované proteolytické aktivity se s balastními bílkovinami při eluci vodou vymylo 15 % aktivity, při eluci roztokem chloridu sodného (1 mol. i-1) se v objemu 150 ml vymylo 70 % aktivity. Specifická aktivita proteas se po chromatografii zvýšila 4krát.
Příklad 5
Za analogických podmínek jako v příkladu 1 byla provedena chromatografie modelové směsi obsahující trypsin. Jako sorbent byly použity částice pšeničné, ječné, žitné a ovesné slámy. Mezi jednotlivými druhy slámy nebyly výrazné rozdíly.
Příklad 6
Za analogických podmínek jako v příkladu 2 byla provedena chromatografie trypsinu.
K eluci aktivní proteasy bylo rovněž možno použit roztok chloridu draselného (1 mol.l-1).
Claims (1)
- Způsob izolace proteolytických enzymů, vyznačující se tím, že se proteolytické enzymy obsažené v roztoku adsorbuji na částice obilné slámy, jejich eluce se provádí roztoky anorganických solí s výjimkou soli, které ovlivňují enzymovou aktivitu, s výhodou sírany a chloridy sodnými, draselnými a amonnými.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS458385A CS246696B1 (cs) | 1985-06-21 | 1985-06-21 | Způsob izolace proteolytických enzymů |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS458385A CS246696B1 (cs) | 1985-06-21 | 1985-06-21 | Způsob izolace proteolytických enzymů |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS246696B1 true CS246696B1 (cs) | 1986-10-16 |
Family
ID=5388935
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS458385A CS246696B1 (cs) | 1985-06-21 | 1985-06-21 | Způsob izolace proteolytických enzymů |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS246696B1 (cs) |
-
1985
- 1985-06-21 CS CS458385A patent/CS246696B1/cs unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Sopanen et al. | Purification and partial characterization of barley leucine aminopeptidase | |
| US3649456A (en) | Separation of polypeptide substances with macroreticular resins | |
| Howard et al. | Studies of the physicochemical and enzymatic properties of papaya lysozyme | |
| Wingard et al. | Myxobacter AL-1 protease II: specific peptide bond cleavage on the amino side of lysine | |
| Liao | Reversible inactivation of pancreatic deoxyribonuclease A by sodium dodecyl sulfate. Removal of COOH-terminal residues from the denatured protein by carboxypeptidase A. | |
| Voytek et al. | Studies of an anionic trypsinogen and its active enzyme from porcine pancreas | |
| Brito et al. | Purification and peptidase activity of a bacteriolytic extracellular enzyme from Pseudomonas aeruginosa | |
| Stepanov et al. | Affinity chromatography of proteolytic enzymes on silica-based biospecific sorbents | |
| Burger | Multiple forms of acidic endopeptidase from germinated barley | |
| CS246696B1 (cs) | Způsob izolace proteolytických enzymů | |
| Karlstam et al. | A simple purification method of squeezed krill for obtaining high levels of hydrolytic enzymes | |
| US4035234A (en) | Process for the preparation of the kallikrein-trypsin inhibitor | |
| Roy et al. | Purification of adouble-headed'inhibitor of α-amylase/Proteinase K from wheat germ by expanded bed chromatography | |
| Herion et al. | Purification of urokinase by monoclonal antibody affinity chromatography | |
| US4510248A (en) | Process for concentrating and purifying human urinary kallikrein | |
| Polanowski et al. | Non-conventional affinity chromatography of serine proteinases and their inhibitors. | |
| US3623955A (en) | Purification and recovery of alkaline protease using cationic-exchange resin | |
| Shivaraj et al. | Natural plant enzyme inhibitors. Isolation of a trypsin/α‐amylase inhibitor and a chymotrypsin/trypsin inhibitor from ragi (Eleusine coracana) grains by affinity chromatography and study of their properties | |
| Sampath et al. | Extracellular proteases from Streptomyces spp. G157: purification and characterization | |
| RU2008353C1 (ru) | Способ получения препарата коллагеназы | |
| US4390629A (en) | Polypeptide degrading enzymes | |
| CS243322B1 (cs) | Způsob izolace proteolytických enzymů | |
| US4780209A (en) | Process for concentrating and separating trypsin inhibitor and kallidinogenase in human urine | |
| Nagatsu et al. | [7] Tyrosine 3-monooxygenase from bovine adrenal medulla | |
| ABDEL-FATTAH et al. | Purification and proteolytic action of milk-clotting enzyme produced by Penicillium citrinum |