CS245213B1 - Process for producing microbial rennet - Google Patents

Process for producing microbial rennet Download PDF

Info

Publication number
CS245213B1
CS245213B1 CS499383A CS499383A CS245213B1 CS 245213 B1 CS245213 B1 CS 245213B1 CS 499383 A CS499383 A CS 499383A CS 499383 A CS499383 A CS 499383A CS 245213 B1 CS245213 B1 CS 245213B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
rennet
enzyme
rhizomucor
activity
producing microbial
Prior art date
Application number
CS499383A
Other languages
Czech (cs)
Inventor
Josef Fabian
Miroslav Dedek
Original Assignee
Josef Fabian
Miroslav Dedek
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Josef Fabian, Miroslav Dedek filed Critical Josef Fabian
Priority to CS499383A priority Critical patent/CS245213B1/en
Publication of CS245213B1 publication Critical patent/CS245213B1/en

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Vynález řeší způsob výroby mikrobiálního syřidla pro potřeby mlékárenského průmyslu, přičemž podstatou je použití kmene plísně Rhizomucor sp. MX CCF 1863 (Mezinár. federace sbírek č. 182), který je uložen ve Sbírce kultur plísní a hub, katedra botaniky nižších rostlin Karlovy university, Praha 2, Benátská 2, a současně způsob izolace enzymu. Vyšší technický účinek spočívá v náhradě nedostatkového klasického syřidla z telecích žaludků.The invention solves the problem of a method of producing microbial rennet for the needs of the dairy industry, the essence of which is the use of the mold strain Rhizomucor sp. MX CCF 1863 (Mezinár. federation of collections No. 182), which is stored in the Collection of Mold and Fungal Cultures, Department of Botany of Lower Plants, Charles University, Prague 2, Benátská 2, and at the same time a method of isolating the enzyme. The higher technical effect lies in the replacement of the deficient classical rennet from calf stomachs.

Description

Vynález ae týká způsobu výroby mikrobiálního syřidla, prov dukovaného nově izolovaným a popsaným plísnovým kmenem Rhizomucor sp. MX (CCP 1863).The invention relates to a method for producing microbial rennet produced by the newly isolated and described fungal strain Rhizomucor sp. MX (CCP 1863).

Nedostatek přirozených zdrojů klasických syřidel především chymosinového typu (EC 3.4.23.4) vedl k hledání vhodné náhrady mezi proteolytickými enzymy, produkovanými různými mikroorganismy. Až dosud je realizována průmyslová výroba mikrobiálních syřidel nejčastěji pomocí .plísní Rhiiíomucor miehei (Cooney a Emerson) Schipper, Endothia parasitica a Rhizomucor pusillus (Lindt) Schipper.The lack of natural sources of classical rennets, especially of the chymosin type (EC 3.4.23.4), has led to the search for a suitable substitute among proteolytic enzymes produced by various microorganisms. So far, industrial production of microbial rennets has been carried out most often using the fungi Rhizoma miehei (Cooney and Emerson) Schipper, Endothia parasitica and Rhizomucor pusillus (Lindt) Schipper.

Nevýhodou syřidla z plísněEndothia parasitica je jeho poměrně nízká tepelná stabilita, nebot při pokojové teplotě dochází během 10 hodin ke 40 % ztrátě enzymové aktivity, dále nízké rozmezí stability enzymu v poměru k pH a náročnost na purifikaci vzhledem k simultánně produkovaným toxinňm a antibiotikům ve fermentačnim médiu. Nevýhodnost použití plísně Rhizomucor pusillus k výrobě syřidla spočívá v nízké produkci enzymu za podmínek obvyklé submersní kultivace v míchaném fermentoru nebo v kultivačních baňkách na třepacím stroji. M.A.A. SCHIPPER (Studies in Mýcology, No 17, str.61, Centraalbureau voor Schimmelcultures,. Baam, Dec. 1978) s odvoláním na další autory uvádí, že výtěžek syřidlového enzymu u Rhizomucor pusillus činí nejvýše 4 % výtěžků, dosahovaných při použití plísně Rhizomucor miehei.The disadvantage of rennet from the fungus Endothia parasitica is its relatively low thermal stability, since at room temperature there is a 40% loss of enzyme activity within 10 hours, the low stability range of the enzyme in relation to pH and the difficulty of purification due to the simultaneously produced toxins and antibiotics in the fermentation medium. The disadvantage of using the fungus Rhizomucor pusillus for rennet production lies in the low production of the enzyme under the conditions of conventional submerged cultivation in a stirred fermenter or in culture flasks on a shaking machine. M.A.A. SCHIPPER (Studies in Mycology, No 17, p.61, Centraalbureau voor Schimmelcultures, Baam, Dec. 1978) with reference to other authors states that the yield of rennet enzyme from Rhizomucor pusillus is at most 4% of the yields achieved when using the fungus Rhizomucor miehei.

vin

Uvedené nedostatky odstraňuje způsob podle vynálezu, jehož podstatou je zjištění, že pomocí nově izolovaného a níže popsaného kmene plísně Rhizomucor sp.MX č. CCP 1863 se získá velké množství syřidlového enzymu, který má poměrně nízkou nespecifickou proteolytickou a lipolytickou aktivitu vedle vysoké sýřivé (koagulační) aktivity, viz. tab.1., přmčemž se postupuje tak, že produkční kmen podle vynálezu se kultivuje na vhodném živnémThe above-mentioned shortcomings are eliminated by the method according to the invention, the essence of which is the discovery that using the newly isolated and below described strain of the fungus Rhizomucor sp.MX No. CCP 1863, a large amount of rennet enzyme is obtained, which has a relatively low non-specific proteolytic and lipolytic activity in addition to a high curdling (coagulating) activity, see Table 1., whereby the production strain according to the invention is cultivated on a suitable nutrient medium

- 2 245 213 prostředí a vyprodukovaný enzym se izoluje.- 2,245,213 environment and the produced enzyme is isolated.

vin

Tab·1 Enzymová aktivita plísnového syřidla podle vynálezu ve srovnání s komerčním preparátem Renniíase NOVOTab·1 Enzyme activity of the fungal rennet according to the invention in comparison with the commercial preparation Renniías NOVO

Produkční kmenProduction strain

Rhizomucor sp. MX č.GGP 1863Rhizomucor sp. MX No.GGP 1863

Rhizomucor mieheiRhizomucor miehei

Označení preparátuPreparation designation

MX šarže 3MX batch 3

RenniĚaseRennie's

NOVONEW

Sýřivá (koagulační ) aktivita xSJ.ml“'Curd (coagulation) activity x SJ.ml"'

45.71445,714

58.40058,400

Nespecifická proteolytická aktivita «J.ml T Nonspecific proteolytic activity «J.ml T

290290

310310

LJpolytická aktivitaPolitical activity

154154

286 xxxJ.ml-1 286 xxx J.ml- 1

Soxhletovy jednotky. Mírou sýřivé (koagulační) aktivity, uvedené v tab. 1 a 3 je množství enzymu, které zkoaguluje 1 ml mléka při teplotě 35 °C za 40 minut„ οτ ..π-1 M (ml) 2400 (s) ,„nnSoxhlet units. The measure of curdling (coagulating) activity, given in Tables 1 and 3, is the amount of enzyme that coagulates 1 ml of milk at a temperature of 35 °C in 40 minutes. π -1 M (ml) 2400 (s) , n n

SJ·11 = B · rís) * 1000 SJ· 11 = B· rice) * 1000

M = ml mléka ; E = množství enzymu; T = doba počátku koagulace mléka azokaseinová jednotka = 1 jig rozštěpeného azokaseinu . h”’' při 37 °C jednotky relativní k miliekvivalentům rozštěpeného substrátu (tributyrin)M = ml of milk; E = amount of enzyme; T = time of onset of milk coagulation azocasein unit = 1 jig of digested azocasein. h”’' at 37 °C units relative to milliequivalents of digested substrate (tributyrin)

Kmen plísně Rhizomucor sp. MX byl izolován z bramborových hlíz, napadených hnilobou, a uložen ve JSbírce kultur plísní a hub (Iďezinár. federace sbírek Č.182), katedra botaniky nižších rostlin Karlovy university Praha 2, Benátská 2, pod č. GGP 18£3.The fungus strain Rhizomucor sp. MX was isolated from potato tubers infected with rot and deposited in the Collection of Fungal and Fungal Cultures (Inventory of the Federation of Collections No. 182), Department of Botany of Lower Plants, Charles University Prague 2, Benátská 2, under No. GGP 18£3.

- 3 245 213- 3,245,213

Použitý kmen Rhizomucor sp. MX CCF 1863 lze charakterizovat takto :The strain Rhizomucor sp. MX CCF 1863 used can be characterized as follows:

při kultivaci na sladinovém agaru při teplotě 37 °C vznikají kolonie 1<<3 πΛ· vysoké, zprvu šedomodré, později hnědošedé až tmavošedé. Rhizoidy slabě vyvinuty, sporangiofory větvené,when cultivated on wort agar at 37 °C, colonies 1<<3 πΛ· high are formed, initially gray-blue, later brown-gray to dark gray. Rhizoids poorly developed, sporangiophores branched,

5,7 až 9,0 jim silné. Sporangia (45-50 jim) s inkrustovanou stěnou ve zralosti praskající, kolumely opakvejčité, někdy až hruš kovitého tvaru (30^35 Jim), sporangiospory široce oválné, většinou téměř kulovité, 2,9 eí 3,9 Jim v průměru. Zygospory nebyly spatřeny, stolony 10 až 20 um silné. Azygospory rovněž nebyly nalezeny. Dobře roste i sporuluje při 30 G, při 37 G je růst rychlý. Použitý kmen podle vynálezu se odlišuje od typové kultury Rhizomucor pusillus (Lindt) Schipper množstvím tvorby a tepelnou stabilitou syřidlového enzymu, hydrolýzou kaseinu a velikostí sporangiío Další znaky, jako nepřítomnost zygospor, azygospor, růstová nezávislost na thlaminu, šířka stolonů, velikost kulumely, růst na sacharóze, brání zařadit kmen podle vynálezu do skupiny druhu Rhizomucor miehei (Cooney et Emerson) Schipper. Souhrn znaků je uveden v tab.č.2.5.7 to 9.0 µm thick. Sporangia (45-50 µm) with encrusted wall cracking at maturity, columella obovate, sometimes pear-shaped (30-35 µm), sporangiospores broadly oval, mostly almost spherical, 2.9 to 3.9 µm in diameter. Zygospores not seen, stolons 10 to 20 µm thick. Azygospores not found either. Grows well and sporulates at 30 G, growth is rapid at 37 G. The strain used according to the invention differs from the type culture Rhizomucor pusillus (Lindt) Schipper in the amount of production and thermal stability of rennet enzyme, hydrolysis of casein and size of sporangia. Other features, such as the absence of zygospores, azygospores, growth independence from thlamin, width of stolons, size of culmela, growth on sucrose, prevent the strain according to the invention from being classified in the group of the species Rhizomucor miehei (Cooney et Emerson) Schipper. A summary of the features is given in Table 2.

Způsob podle vynálezu je blíže objasněn v následujících příkladech fermentace a izolace nového mikrobiálního syřidla, aniž se těmito příklady omezuje rozsah ochrany.The method according to the invention is further illustrated in the following examples of fermentation and isolation of the novel microbial rennet, without limiting the scope of protection by these examples.

Výhody způsobu podle vynálezu spočívají v jednoduchosti provedení, přičemž se získává enzymový preparát neobvyklé čisto ty, s dobrým výtěžkem syřidlové (koagulační) aktivity - viz. tab. 3.The advantages of the method according to the invention lie in the simplicity of implementation, while obtaining an enzyme preparation of unusual purity, with a good yield of rennet (coagulation) activity - see Tab. 3.

Příklad uchovávání produkčního kmene.Example of storing a production strain.

Kultura Rhizomucor sp. MX (CCF 1863) se uchovává na šikmém sladinovém agaru nebo ve zkumavkách se sterilními· bramborovými klínky, zalitými 2 3 ml tekuté Czapek - Doxovy půdy. Kultura se nechá narůst a vysporulovat při 30 až 37 °G, potom se uloží do chladímy o teplotě + 5 °C. Přeočkování se provádí po 3 až měsících.The culture of Rhizomucor sp. MX (CCF 1863) is maintained on a slant of wort agar or in tubes with sterile potato wedges, filled with 2-3 ml of liquid Czapek-Dox medium. The culture is allowed to grow and sporulate at 30-37 °C, then stored in a refrigerator at a temperature of + 5 °C. Re-inoculation is carried out after 3-6 months.

- 4 Tab.2 Morfologické a fyziologické znaky typových kultur- 4 Tab.2 Morphological and physiological characteristics of type cultures

Rhizomucor pusillus a Rhizorauoor miehei ve vztahu k vlastnostem kultury Rhizomucor sp. MX (COP 1863)Rhizomucor pusillus and Rhizorauoor miehei in relation to the characteristics of the culture of Rhizomucor sp. MX (COP 1863)

245 213245 213

Morfologické a fyziologické znaky Morphological and physiological characteristics Rhizomucor pusillus (Lindt) Schipper Rhizomucor pusillus (Lindt) Schipper Rhizomucor miehei (Cooney and Emer- son) Schipper Rhizomucor miehei (Cooney and Emer- son) Schipper Rhizomucor sp .MX CCF 1863 Rhizomucor sp.MX CCF 1863 Výška kolonie Colony Height 1 (<2) mm 1 (<2) mm 1 mm 1mm 1 3 mm 1 3mm stolony šířka stolon width •do 17 pm •until 5pm do 9 pm until 9 pm 1Qrf20 pm 1Qrf20 pm rhizoidy rhizoids slabě vyvinuty poorly developed slabě vyvinuty poorly developed slabě vyvinuty poorly developed sporangiofory (velikost) sporangiophores (size) do 11nx(l5)pm until 11nx(l5)pm do 7 pm until 7 pm 5,7«9,O pm 5.7«9.0 pm sporangia (průměr) sporangia (diameter) do 80«a((100)pm up to 80«a((100)pm do 5O(4'6o)pm until 5O(4'6o)pm 45^50 pm 45^50 pm kolumela columella do 45x38 um zřídka vetší up to 45x38 um rarely larger do 28x25 pm zřídka větší up to 28x25 pm rarely larger 30x35 pm 30x35 cm sp o rangi o sp o ry sporangia spores 3»4 pra 3»4 years 3c£4 pm 3c£4pm 2,9áÉ3,9 pm 2.9áÉ3.9 pm zygospory zygospores - - + + - - t hýamin-dep endenc e thiamine-dependence - - + + - - +/hydrolýza kaseinu +/casein hydrolysis ( + ) ( + ) + + +/sacharóza jako C-zdroj +/sucrose as C-source + + + + Tvorba syřidlového enzymu za standardní/.' kultivace /KUNITZ Rennet Units.l“'/ USA pat. 1 ,108.287 Formation of rennet enzyme under standard/.' cultivation /KUNITZ Rennet Units.l“'/ USA Pat. 1 ,108.287 z 300 out of 300 * 10000 * 10000 11.428 I i 11.428 I i Tepelná stabilita syřidlového enzymu Thermal stability of rennet enzyme 4· + ^ Q 15 /65 C 10% aktivity 4· + ^ Q 15 /65 C 10% activity 15*/65°C 50% aktivity 15*/65°C 50% activity i 15 765 °C 53% aktivity i 15,765 °C 53% activity

+ H.J. SCHOLLER, E. MÚLLER : Path.Microbiol. 2£ (1966) 730<i741+ H.J. SCHOLLER, E. MÜLLER : Path.Microbiol. £2 (1966) 730<i741

M.A.A. SCHIPPER.: Studies in Mycology, No 17-, Dec. 1978, Baam, str. 53<7O ++ G.A. SOMKUTI, F.J. BABEL: J.Bacteriol. 9£ (1968) 1407«1414M.A.A. SCHIPPER.: Studies in Mycology, No 17-, Dec. 1978, Baam, pp. 53<7O ++ G.A. SOMKUTI, F.J. BABEL: J.Bacteriol. £9 (1968) 1407«1414

245 213 fl245,213 fl

OO

váného z kultu: from the cult: o about £ £ r—1 O r—1 O 1 1 N •H N •H o H o H 03 03 tu here i—i i—i w w úd member o about •H >fd •H >fd £ £ ra ra a> a> o about -P tí -Five x! x! X X 'g r—í 'g r—í p p 'Cj Ή 'Cj Ή >; >; X X O About ><L> ><L> Pi Fri ε ε X X •g •g > > í>= í>= 'Φ > 'Φ > X o X o 8 8 -P -P o about ra ra •H •H •H >O •H >O Ή I > fl > fl O O O O <D <D ε ε ft ft o about 3 3 -P m -P m aJ aJ kO CO to what ek ek V“ In" >N >N O About >o >about O About -P -P > > řP-H řP-H

σ5σ5

- 6 245 213- 6,245,213

Příklad přípravy inokula 1Example of inoculum preparation 1

Příprava inokula pro 1. stupeň submersní fermentace (100 l) se provede tím způsobem, že bramborové kostky, připravené z pečlivě umytých, loupaných brambor se vpraví do 1 1 Erlenmayerových baněk se širokým hrdlem a zvlhčí Czapek-Doxovým médiem.The inoculum for the 1st stage of submerged fermentation (100 l) is prepared by placing potato cubes, prepared from carefully washed, peeled potatoes, into 1 l wide-necked Erlenmeyer flasks and moistening them with Czapek-Dox medium.

Sterilizace 30 min. při 121 °C v autoklávu. Po sterilizaci se baňky zaočkují suspenzí spor a kultivují 34 5 dnů při 3Q«37OC.Sterilization 30 min. at 121 °C in an autoclave. After sterilization, the flasks are inoculated with a spore suspension and cultured for 34 5 days at 3Q«37 O C.

Příklad přípravy inokula 2Example of inoculum preparation 2

Příprava inokula submersní kultivací na rotačním třepacím stroji v 500 ml varných bankách s obsahem 100 ml živného média, následujícího složení :Preparation of inoculum by submerged cultivation on a rotary shaker in 500 ml boiling flasks containing 100 ml of nutrient medium, with the following composition:

sójová mouka 1% bramborová moučka 1% ječný šrot 1% melasové výpalky (60% suš.) 1%soy flour 1% potato flour 1% barley groats 1% molasses pellets (60% dry matter) 1%

KH2P04 0,5%KH 2 P0 4 0.5%

CaCO^ 0,5%CaCO^ 0.5%

K přípravě se použije vodovodní voda asi 50 °C teplá, v níž se rozpustí 0,1% bakteriální amylasy (B.subtilis). Po cca 30^45 min. hydrolýze se živná půda rozplní a sterilizuje 30 min při 121 C v autoklávu. Po zaočkování vychlazených baněk suspensí spor a kultivaci po dobu 108 hodin vzrostl obsah syřidlového enzymu — 1 v kultivačním médiu na 3636 SJ.mlFor preparation, tap water about 50 °C warm is used, in which 0.1% bacterial amylase (B.subtilis) is dissolved. After about 30-45 min. hydrolysis, the nutrient medium is filled and sterilized for 30 min at 121 C in an autoclave. After inoculation of the cooled flasks with a spore suspension and cultivation for 108 hours, the content of rennet enzyme — 1 in the culture medium increased to 3636 SJ.ml

Příklad fermentace v objemu 100 1 Příprava fermentace se provede tak, že do 100 1 vodovodní vody.;, °C teplé, ve fermentoru, se přidá asi 100 g bakteriální amylasy (B.subtilis-BOLAIÍYLASA - Slov. škrobáme, n.p, Trnava) a za míchání se dodají další živiny :Example of fermentation in a volume of 100 l. The fermentation is prepared by adding about 100 g of bacterial amylase (B.subtilis-BOLAIÍYLASA - Slovak starch, n.p, Trnava) to 100 l of tap water at 100 °C in a fermenter and adding additional nutrients while stirring:

kg sójová mouka kg ovesná mouka kgt sladový výtažek o sušině 65 %kg soy flour kg oat flour kg t malt extract with dry matter 65%

0,5 kg plavený CaCO-j0.5 kg floated CaCO-j

0,3 kg KH2P04 0.3 kg KH 2 P0 4

Po 60 minutách hydrolýzy se přidá 25^50 ml sojového oleje a-půda se sterilizuje 1 hodinu při 121<n 123 0. Po ochlazení fermentoru na 37 40 °C se provede zaočkování kulturou MX na hrám- 7 245 213 borových kostkách podle výše uvedeného příkladu. Do 6 baněk s dobře narostlou kulturou se nalévá po 500 ml sterilní vody tak, aby se zabránilo prášení spor. Obsah 6 baněk se asepticky promíchá a převede do fermentoru. Po zaočkování se nastaví intenzívni vzdušnění média (0,05 min“ ) a v případě nutnosti přidává odpěnovací tuk. Eermentační teplota se udržuje při 35 C.After 60 minutes of hydrolysis, 25-50 ml of soybean oil is added and the medium is sterilized for 1 hour at 121°C. After cooling the fermenter to 37-40°C, inoculation is carried out with the MX culture on raspberry cubes according to the example above. 500 ml of sterile water is poured into 6 flasks with a well-grown culture in such a way as to prevent dusting of spores. The contents of the 6 flasks are mixed aseptically and transferred to the fermenter. After inoculation, intensive aeration of the medium is set (0.05 min) and, if necessary, defoaming fat is added. The fermentation temperature is maintained at 35°C.

Po dosažení maximální produkce enzymu se fermentace ukončí.Once maximum enzyme production is reached, fermentation is terminated.

V 1 litru prokvašeného média z laboratorního fermentoru byl zjištěn obsah syřidlového enzymu v rozmezí hodnot 4700 až 6480 SJsffll1aIn 1 liter of fermented medium from a laboratory fermenter, the content of rennet enzyme was found to be in the range of 4700 to 6480 SJ with ffll 1 and

Příklad izolace syřidlového enzymu 1Rennet enzyme isolation example 1

K izolaci syřidlového (koagulačního) enzymu z fermentačního média se použije vsádkový způsob iontoměnné soi^pce na slabý katex 0STI0MM (OTICHEM, n.p. Ústí n.lj (Amberlit XE 64), 0,315 mesh, připravený v H+cyklu„ K 2400 ml filtrátu fermentačního média, zbaveného my celu, se přidá 500 ml vlhkého iontoměniče.To isolate the rennet (coagulation) enzyme from the fermentation medium, a batch method of ion exchange with a weak cation exchange resin OSTI0MM (OTICHEM, np Ústí n.lj (Amberlit XE 64), 0.315 mesh, prepared in the H + cycle is used. 500 ml of wet ion exchanger is added to 2400 ml of the filtrate of the fermentation medium, freed from mycelium.

Po 30 min. míchání směsi dojde k poklesu pH z hodnoty 5,4 na 3,5 a k ukončení sorpce. Matečný roztok se odfiltruje nebo odstraní dekantací, 1x promyje destilovanou vodou a k sorbentu se naleje 250 ml 0,5 mol roztoku Nad. Hodnota pH se upraví z 3,0 na 5»5ajě 6,0 roztokem 30 %> NaOH a směs se 30 min míchá. Katex se oddělí filtrací přes nuč. Vzhledem k tomu, že enzym je stabilní v širokém rozmezí pH (3,0^ 7,0), upraví se eluát pouze přídavkem 0,05 mol CaClg a pH se nastaví pomocí HG1 na hodnotu 4,0 4,2. Enzymový koncentrát se konzervuje 10 % NaCl a 0, 1 0,2 % benzoanu sodného. Výsledky znázorňuje tab.č.3.After 30 min. of stirring the mixture, the pH drops from 5.4 to 3.5 and sorption is terminated. The mother liquor is filtered or removed by decantation, washed once with distilled water and 250 ml of 0.5 mol NaD solution is poured onto the sorbent. The pH is adjusted from 3.0 to 5.5 to 6.0 with a 30% NaOH solution and the mixture is stirred for 30 min. The cation exchange resin is separated by filtration through a filter. Since the enzyme is stable in a wide pH range (3.0 to 7.0), the eluate is adjusted only by adding 0.05 mol CaCl and the pH is adjusted to 4.0 to 4.2 using HG1. The enzyme concentrate is preserved with 10% NaCl and 0.1 to 0.2% sodium benzoate. The results are shown in Table 3.

Příklad izolace syřidlového enzymu 2Rennet enzyme isolation example 2

Živné médium se po fermentaci plísně zbaví suspenzních podílů s mycelem filtrací nebo odstředěním. Za míchání se pH filtrátu sníží z hodnoty 5,5 na 4,0 pomocí zředěné kyseliny chlorovodíkové. K ,2400 mí filtrátu (5217 SJ.ml“^ ) se dále přidají 3 g zesítěné polyakrylové kyseliny, např. Carbopol 934 (GOODRICH) . a v míchání se pokračuje. Po 30 minutách se vytvořená sraženina odstředí a supernatant dekantuje. Aktivní sediment se resuspen245 213After the fermentation of the fungus, the nutrient medium is freed from suspensions with mycelium by filtration or centrifugation. While stirring, the pH of the filtrate is reduced from 5.5 to 4.0 using dilute hydrochloric acid. 3 g of cross-linked polyacrylic acid, e.g. Carbopol 934 (GOODRICH), are added to 2400 ml of filtrate (5217 SJ.ml) and stirring is continued. After 30 minutes, the precipitate formed is centrifuged and the supernatant is decanted. The active sediment is resuspended245 213

- 8 duje ve 200 ml destilované vody. Po dokonalé homogenizaci se do roztoku nasype 30 g plaveného CaGO^ a směs se míchá dalších 30 minut. Vytvořený komplex nerozpustné vápenaté soli kyseliny polyakrylové se odstraní filtrací nebo centrifugací. Sirý, koncentrováný roztok enzymu se konzervuje přídavkem 10 % kuchyňské soli a 0,25 % Na-benzoanu po snížení hodnoty pH na 4,0 až 4,5 zředěnou kyselinou chlorovodíkovou. Výsledný koncentrát obsahoval 86 % původní sýřivé (koagulační) aktivity.- 8 is dissolved in 200 ml of distilled water. After complete homogenization, 30 g of floated CaGO^ is added to the solution and the mixture is stirred for another 30 minutes. The formed complex of insoluble calcium salt of polyacrylic acid is removed by filtration or centrifugation. The sour, concentrated enzyme solution is preserved by adding 10% table salt and 0.25% Na-benzoate after reducing the pH value to 4.0 to 4.5 with diluted hydrochloric acid. The resulting concentrate contained 86% of the original curdling (coagulant) activity.

Enzym je možné z fermentačního média oddělit také použitím sorbentu DEAE-celulosy. V tom případě však se na iontoměnič „ váže i větší podíl pigmentu, takže výsledný koncentrát obsahuje více nečistot. Rovněž ztráty v důsledku ireverzibilní vazby na DEAE-celulóze jsou vyšší než na sorbentu Ostion KM.The enzyme can also be separated from the fermentation medium using a DEAE-cellulose sorbent. However, in this case, a larger proportion of the pigment binds to the ion exchanger, so the resulting concentrate contains more impurities. Also, losses due to irreversible binding to DEAE-cellulose are higher than on the Ostion KM sorbent.

Claims (2)

Předmět vynálezu.Object of the invention. 245 213245 213 1. Způsob výroby mikrobiálního syřidla, vyznačený tím, že se na živném médiu, obsahujícím jako C - zdroj 0,5 až 6,0 %W, cukrů, s výhodou hydrolyzovaného škrobu, 0,2 až 3,1 % Ittwt. zdroje organických dusíkatých látek, s výhodou sladového výtažku a sójové mouky, kultivuje submerzním nebo povrchovým způsobem při teplotě 25 až 40 °C a pH 4,8 až 7,2 plív sen Rhizomucor sp. MX CG? 1863, a vyprodukovaný enzym se izoluje.Process for the production of microbial rennet, characterized in that on a nutrient medium containing as a C source 0.5 to 6.0% W, sugars, preferably hydrolyzed starch, 0.2 to 3.1% Ittwt. a source of organic nitrogen substances, preferably malt extract and soy flour, is cultivated by submerged or surface method at 25 to 40 ° C and pH 4.8 to 7.2 of the rhizomes of Rhizomucor sp. MX CG? 1863, and the enzyme produced is isolated. 2. Způsob podle bodu 1, vyznačený tím, že se syřidlový enzym oddělí z fermentačního média iontoměnnou sorpcí (výlukou) na slabém katexu z iontoměnné pryskyřice vsádkovým způsobem nebo sloupcovou chromatografii.2. A process according to claim 1, wherein the rennet enzyme is separated from the fermentation broth by ion exchange sorption (exclusion) on a weak cation exchange resin from the ion exchange resin in a batch process or by column chromatography.
CS499383A 1983-07-01 1983-07-01 Process for producing microbial rennet CS245213B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS499383A CS245213B1 (en) 1983-07-01 1983-07-01 Process for producing microbial rennet

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS499383A CS245213B1 (en) 1983-07-01 1983-07-01 Process for producing microbial rennet

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS245213B1 true CS245213B1 (en) 1986-09-18

Family

ID=5393911

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS499383A CS245213B1 (en) 1983-07-01 1983-07-01 Process for producing microbial rennet

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS245213B1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN105199969B (en) The Aspergillus niger strain and its liquid fermentation enzyme producing method of one plant height production acid protease
Sathya et al. Production of milk clotting protease by a local isolate of Mucor circinelloides under SSF using agro-industrial wastes
US4136201A (en) Microbial rennin
US4518697A (en) Acid stable protease from mutants of genus Aspergillus
CN101407800B (en) Neuter protease produced by using Paenibacillus polymyxa from sea and method thereof
CN113817652B (en) A strain of Bacillus licheniformis CPL618 and its screening and application
Bailey et al. Production of microbial rennin
CN114874942A (en) Bacillus cereus producing protease and application thereof in yeast for making hard liquor
US3988207A (en) Preparation of a milk-coagulating enzyme
CA1163939A (en) Process for the production of the enzyme alpha- galactosidase and for the hydrolysis of raffinose by employing such enzyme
CN103937717B (en) A kind of method of efficient raising bacillus subtilis bud ratio
CN1325635C (en) Endogenetic polymexa bacillus of plant for prophyiaxis and promoting growth and application thereof
CN101696394A (en) Method for fermenting high-activity bacillus bacillus and fermented product
CN107488615A (en) The pseudomonad of one plant height yielding lipase and its enzymatic production method
KR100459239B1 (en) Novel Aspergillus oryzae GB-106 mutant and method for producing soybean enzymatic food-stuff using thereof
Alessandro et al. Partial purification and characterization of a yeast extracellular acid protease
US4473644A (en) Acid stable protease from mutants of genus Rhizopus
Moschopoulou Microbial milk coagulants
CN104911106B (en) A kind of method that thermophilic loose penicillium bacterial strain and its bacterial strain prepare dextranase
CS245213B1 (en) Process for producing microbial rennet
CN101993846B (en) A strain of Bacillus subtilis and method for fermenting and producing chymosin with the strain
CN114958623B (en) A high-yield cellulase Trichoderma strain and its application
CN107446904A (en) A kind of lipase and its production method and application
CA1222713A (en) Strains of microorganisms and the use thereof
USRE30669E (en) Microbial rennin