CS243617B1 - Method ofherpes simplex hsv-2 type specific virus preparation - Google Patents

Method ofherpes simplex hsv-2 type specific virus preparation Download PDF

Info

Publication number
CS243617B1
CS243617B1 CS837818A CS781883A CS243617B1 CS 243617 B1 CS243617 B1 CS 243617B1 CS 837818 A CS837818 A CS 837818A CS 781883 A CS781883 A CS 781883A CS 243617 B1 CS243617 B1 CS 243617B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
hsv
antigen
type
ofherpes
column
Prior art date
Application number
CS837818A
Other languages
Czech (cs)
Other versions
CS781883A1 (en
Inventor
Alena Suchankova
Ivan Hirsch
Vladimir Vonka
Original Assignee
Alena Suchankova
Ivan Hirsch
Vladimir Vonka
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Alena Suchankova, Ivan Hirsch, Vladimir Vonka filed Critical Alena Suchankova
Priority to CS837818A priority Critical patent/CS243617B1/en
Publication of CS781883A1 publication Critical patent/CS781883A1/en
Publication of CS243617B1 publication Critical patent/CS243617B1/en

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Způsob přípravy HSV-2 antigenu, využitelný k detekci typově specifických protilátek HSV-2. Popsaná matoda přípravy HSV-2 antigenu na kolonce lektinu hlemýždě zahradního vázaného na agarosu 4B a vymytím 0,0IM roztoku cukru N-acetylgalaktosaminu umožňuje připravit specificky reagující HSV-2 antigen.A method of preparing an HSV-2 antigen useful to detect type-specific antibodies HSV-2. The described method of preparation of HSV-2 antigen on a garden snail lectin column agarose 4B bound and eluted with 0.0M solution of N-acetylgalactosamine sugar to prepare specifically reacting HSV-2 antigen.

Description

(54) Způsob přípravy typově specifického antigenu viru herpes simplex HSV-2(54) A method for preparing a herpes simplex virus type-specific HSV-2 antigen

Způsob přípravy HSV-2 antigenu, využitelný k detekci typově specifických protilátek HSV-2. Popsaná matoda přípravy HSV-2 antigenu na kolonce lektinu hlemýždě zahradního vázaného na agarosu 4B a vymytím 0,0IM roztoku cukru N-acetylgalaktosaminu umožňuje připravit specificky reagující HSV-2 antigen.A method for preparing HSV-2 antigen useful for detecting type-specific HSV-2 antibodies. The described method of preparation of HSV-2 antigen on agarose 4B snail lectin lectin column and elution of 0.0 M sugar solution of N-acetylgalactosamine allows to prepare specifically reactive HSV-2 antigen.

Vynález se týká přípravy typově specifického antigenu virus herpes simplex typ 2 (HSV-2) k detekci typově specifických protilátek proti· HSV-2.The invention relates to the preparation of a type-specific herpes simplex virus type 2 (HSV-2) antigen for the detection of type-specific antibodies against HSV-2.

Herpes simplex typ 1 (HSV-1) orální a typ 2 (HSV-2) genitální jsou geneticky příbuzné a většina jejich antigenů křížově reaguje. Současně používané metody pro určování přítomnosti specifických protilátek typu HSV-2 v lidských sérech prozatím užívají bu3 metod nepřímých, např. neutralizační test (Rawls a spol., 1970, J. Immunol. 104, 599 až 606), kdy na základě výpočtu poměru hodnot titrů protilátek proti HSV-1 a proti HSV-2 (II/I index) se stanovuje přítomnost HSV-2 protilátek, vysyoováním typově společných protilátek buněčným extraktem (Porghani a spol., 1975, J. Clin. Microbiol. 2, 410 až 418), blokováním křížově reagujících antigenů heterotypickými protilátkami (Vestergaard a spol., 1979, Acta Path. Microbiol.Herpes simplex type 1 (HSV-1) oral and type 2 (HSV-2) genital are genetically related and most of their antigens cross-react. Currently used methods for determining the presence of specific HSV-2 antibodies in human sera use either indirect methods, eg neutralization assay (Rawls et al., 1970, J. Immunol. 104, 599-606), where by calculating the ratio anti-HSV-1 and anti-HSV-2 antibody titers (II / I index) determine the presence of HSV-2 antibodies by screening for type-common antibodies with cell extract (Porghani et al., 1975, J. Clin. Microbiol. 2, 410-418) ), by blocking cross-reacting antigens with heterotypic antibodies (Vestergaard et al., 1979, Acta Path. Microbiol.

Scand. 85, 261 až 263).Scand. 85, 261-263).

Současně používané přímé metody využívají elektroforeticky izolovaný (Dreesman a spol., 1979, Intervirology 12, 115 až 119) nebo radioimunoprecipitačně detekovaný (Eberle a Courtney 1981, Inf. Immun. 31, 1062 až 1070) antigen HSV-2.Current direct methods utilize electrophoretically isolated (Dreesman et al., 1979, Intervirology 12, 115-119) or radioimmunoprecipitated (Eberle and Courtney 1981, Inf. Immun. 31, 1062-1070) antigen HSV-2.

Nevýhodou těchto metod je zdlouhavost, pracnost, nízká účinnost. Olofsson se spolupracovníky (1981, J. Virol. 38, 564 až 570) navázali glykoprotein C viru HSV-1 na lectin hlemýždě zhradniho kovalentně navázaného na agarosu a z tohoto jej vymyli roztokem N-acetylgalaktosaminu .The disadvantage of these methods is lengthy, laborious, low efficiency. Olofsson and co-workers (1981, J. Virol. 38, 564-570) bound HSV-1 glycoprotein C to lectin of the glandular snail covalently bound to agarose and eluted with N-acetylgalactosamine solution.

Okolem vynálezu je vyřešit odstranění typově společných antigenů viru herpes simplex typ 1 (HSV-1) a herpes simplex typ 2 (HSV-2), a tím umožnit zjištění přítomnosti HSV-2 protilátek u jedinců infikovaných rovněž HSV-1 virem.It is an object of the present invention to remove the type-common antigens of herpes simplex virus type 1 (HSV-1) and herpes simplex type 2 (HSV-2), thereby allowing detection of HSV-2 antibodies in individuals infected with HSV-1 virus.

Vynález řeší úkol tím, že používá afinitní chromátografie na lectinu hlemýždě zahradního k přípravě typově specifického HSV-2 antigenu. Suspenze infikovaných buněk HSV-2 virem se nanese na kolonku lectinu vázaného na agarosu 4B. Po promytí kolonky 10 objemy 1% Tritonu v roztoku pufru TRIS-HC1 (0,15M NaCl, 0,02M TRIS-HC1 pH = 7,5) se antigen uvolní přidáním 0,01M roztoku N-acetylgalaktosaminu v pufru TRIS-HC1 obohaceném 1% Tritonem X-100. Takto izolovaný antigen je využitelný přímo béz dalšího čištění v nejrůznějších serologických testech (radioimunostanovení-RIA, enzymatické imunostanovení-ELISA, radioimunostanovení-RIPA).The invention solves the problem by using affinity chromatography on the snail lectin lectin to prepare a type-specific HSV-2 antigen. A suspension of infected HSV-2 cells with virus is applied to a column of lectin bound to agarose 4B. After washing the column with 10 volumes of 1% Triton in TRIS-HCl buffer solution (0.15M NaCl, 0.02M TRIS-HCl pH = 7.5), the antigen is released by adding a 0.01 M solution of N-acetylgalactosamine in TRIS-HCl buffer supplemented with 1 % Triton X-100. The antigen thus isolated can be used directly without further purification in a variety of serological tests (radioimmunoassay-RIA, enzymatic immunoassay-ELISA, radioimmunoassay-RIPA).

Popis konkrétního provedení.Description of a particular embodiment.

Suspenze buněk, infikovaných HSV-2 virem při vysoké multiplicitě infekce se po promytí fyziologickým fosfátovým pufrem se smíchají se směsí 1% deoxycholátu sodného a 1% Tweenu 80, ponechají se 1 hod. při 37 °C. Centrifugací (100 OOOxg) 1 hod. se odstraní nerozpustné složky a supernatant se nanese na kolonku lecitinu, vázaného na agarosu 4B. (Výhodný je poměr 4x10? buněk na 0,1 ml objemu kolonky).Suspensions of HSV-2 virus infected cells at high multiplicity of infection are mixed with a mixture of 1% sodium deoxycholate and 1% Tween 80 after washing with physiological phosphate buffer, and left at 37 ° C for 1 hour. The insoluble components were removed by centrifugation (100,000xg) for 1 hour and the supernatant was applied to a column of lecithin bound to agarose 4B. (A ratio of 4x10 6 cells per 0.1 ml column volume is preferred).

Po promytí kolonky 10 objemy 1% Tritonu v roztoku pufru TRIS-HC1 (0,15M NaCl, 0,02M TRIS-HC1 pH = 7,5) se antigen uvolní přidáním 0,01M roztoku N-acetylgalaktosaminu opět v pufru TRIS-HC1 obohaceném 1% Tritonem X-100. K detekci typově specifických protilátek je výhodné použít takto připravený HSV-2 antigen bez dalšího opracování v metodě RIA nebo ELISA.After washing the column with 10 volumes of 1% Triton in TRIS-HCl buffer solution (0.15M NaCl, 0.02M TRIS-HCl pH = 7.5), the antigen is released by adding 0.01M N-acetylgalactosamine solution again in TRIS-HCl-enriched buffer 1% Triton X-100. To detect type-specific antibodies, it is preferable to use the HSV-2 antigen thus prepared without further processing in the RIA or ELISA method.

243617 .243617.

Claims (1)

PŘEDMĚT VYNÁLEZUSUBJECT OF THE INVENTION Způsob přípravy typově specifického antigenu viru herpes simplex HSV-2, vyznačený tím, že se suspenze infikovaných buněk HSV-2 virem nanese na kolonku lecitinu hlemýždě zahradního vázaného na agarosu, po promytí- kolonky 10 objemy fyziologicky přijatelného pufru při pH = = 7,5, s výhodou v 0,15M NaCl, 0,02M tris-hydroxymethyl-aminomethanu, doplněném neiontovým detergentem, s výhodou 1% oktylfenol-polyethylenglycoletheru, se antigen uvolní přidáním 0,01M roztoku N-acetylgalaktosaminu ve fyziologicky přijatelném pufru při pH = 7,5 doplněném neiontovým detergentem.Method for preparing a herpes simplex HSV-2 type-specific antigen, characterized in that a suspension of infected HSV-2 cells with the virus is applied to a column of agarose-bound snail lecithin after washing the column with 10 volumes of physiologically acceptable buffer at pH = 7.5 , preferably in 0.15M NaCl, 0.02M tris-hydroxymethyl-aminomethane supplemented with a non-ionic detergent, preferably 1% octylphenol-polyethylene glycol ether, the antigen is released by adding a 0.01M solution of N-acetylgalactosamine in a physiologically acceptable buffer at pH = 7, 5 supplemented with a nonionic detergent.
CS837818A 1983-10-25 1983-10-25 Method ofherpes simplex hsv-2 type specific virus preparation CS243617B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS837818A CS243617B1 (en) 1983-10-25 1983-10-25 Method ofherpes simplex hsv-2 type specific virus preparation

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS837818A CS243617B1 (en) 1983-10-25 1983-10-25 Method ofherpes simplex hsv-2 type specific virus preparation

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS781883A1 CS781883A1 (en) 1985-09-17
CS243617B1 true CS243617B1 (en) 1986-06-12

Family

ID=5428011

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS837818A CS243617B1 (en) 1983-10-25 1983-10-25 Method ofherpes simplex hsv-2 type specific virus preparation

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS243617B1 (en)

Also Published As

Publication number Publication date
CS781883A1 (en) 1985-09-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Magnius Characterization of a new antigen-antibody system associated with hepatitis B.
Svennerholm et al. Herpes simplex virus type-selective enzyme-linked immunosorbent assay with Helix pomatia lectin-purified antigens
Schutzer et al. Sequestration of antibody to Borrelia burgdorferi in immune complexes in seronegative Lyme disease
Katz et al. ELISA for detection of group-common and virus-specific antibodies in human and simian sera induced by herpes simplex and related simian viruses
Lee et al. A novel glycoprotein for detection of herpes simplex virus type 1-specific antibodies
Vandvik et al. Long-term persistence of intrathecal virus-specific antibody responses after herpes simplex virus encephalitis
Heilman Jr et al. Isolation of a nucleocapsid polypeptide of herpes simplex virus types 1 and 2 possessing immunologically type-specific and cross-reactive determinants
Forghani et al. Antigen requirements, sensitivity, and specificity of enzyme immunoassays for measles and rubella viral antibodies
LaRussa et al. Determination of immunity to varicella-zoster virus by means of an intradermal skin test
Landini et al. Serum antibodies to individual cytomegalovirus structural polypeptides in renal transplant recipients during viral infection
Bernstein et al. Antibody response to type‐common and type‐unique epitopes of herpes simplex virus polypeptides
Arvin et al. Detection of type-specific antibody to herpes simplex virus type 1 by radioimmunoassay with herpes simplex virus type 1 glycoprotein C purified with monoclonal antibody
Panjwani et al. Virological and serological diagnosis of cytomegalovirus infection in bone marrow allograft recipients
Zweerink et al. Virus-specific antibodies in sera from patients with genital herpes simplex virus infection
Joo et al. A microneutralization test for the assay of porcine parvovirus antibody
Denoyel et al. Enzyme immunoassay for measurement of antibodies to herpes simplex virus infection: comparison with complement fixation, immunofluorescent-antibody, and neutralization techniques
Tuokko Comparison of nonspecific reactivity in indirect and reverse immunoassays for measles and mumps immunoglobulin M antibodies
Horodniceanu et al. Assessment of human cytomegalovirus antibody detection techniques
Levy et al. Determination of iga antibodies to human cytomegalovirus by enzyme‐linked immunosorbent assay (elisa)
CS243617B1 (en) Method ofherpes simplex hsv-2 type specific virus preparation
Bernstein et al. Comparison of western blot analysis to microneutralization for the detection of type‐specific herpes simplex virus antibodies
Vuorinen et al. Enzyme immunoassays for detection of IgG and IgM antibodies to parainfluenza types 1, 2 and 3
Kasempimolporn et al. Polyacrylamide gel electrophoresis and silver staining for detection of rotavirus in stools from diarrheic patients in Thailand
Kühn et al. HSV-1 gB and VZV gp-II crossreactive antibodies in human sera
Keysary et al. Use of enzyme-linked immunosorbent assay techniques with cross-reacting human sera in diagnosis of murine typhus and spotted fever