CS242609B1 - Production method of an agent for determination of an early pragnancy and pathological statuses in gynaecology - Google Patents
Production method of an agent for determination of an early pragnancy and pathological statuses in gynaecology Download PDFInfo
- Publication number
- CS242609B1 CS242609B1 CS827924A CS792482A CS242609B1 CS 242609 B1 CS242609 B1 CS 242609B1 CS 827924 A CS827924 A CS 827924A CS 792482 A CS792482 A CS 792482A CS 242609 B1 CS242609 B1 CS 242609B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- hormone
- sample
- choriogonadotropic
- antibody
- urine
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Způsob výroby přípravku spočívá v tom, že se nejméně dva druhy zvířat imunizují čistým lidským preparátem choriogonadotropního hormonu,získané protilátky se testují během imunisace sérovými a močovými proteiny netěhotných žen, potom se vyberou zvířata, která produkují protilátky s nejnižším stupněm zkřížené reakce, od kterých získané protilátky se podrobí reakci s močovými a sérovými proteiny netěhotných žen a přečištěné protilátky, získané nejméně od dvou druhů zvířat, se testují v sendvičovém uspořádání se vzorkem s nulovým obsahem choriogonadotropního hormonu a se vzorkem s obsahem nejméně 1 IU choriogonadotropního hormonu na ml vzorku.The way the preparation is made is that that at least two species are immunized pure human choriogonadotropic preparation hormone, the antibodies obtained are tested during serum and urinary immunization non-pregnant women, then they are selected animals that produce the lowest antibody the degree of cross reaction from which the obtained antibodies are reacted with urine and serum proteins of non-pregnant women and purified antibodies obtained at least from two animal species, they are tested in sandwich layout with zero content sample choriogonadotropic hormone and se sample containing at least 1 IU choriogonadotropic hormone per ml sample.
Description
Způsob výroby přípravku pro zjišťování časného těhotenství a patologických stavů v gynekologiiMethod for production of a preparation for the detection of early pregnancy and pathological conditions in gynecology
Způsob výroby přípravku spočívá v tom, že se nejméně dva druhy zvířat imunizují čistým lidským preparátem choriogonadotropního hormonu,získané protilátky se testují během imunisace sérovými a močovými proteiny netěhotných žen, potom se vyberou zvířata, která produkují protilátky s nejnižším stupněm zkřížené reakce, od kterých získané protilátky se podrobí reakci s močovými a sérovými proteiny netěhotných žen a přečištěné protilátky, získané nejméně od dvou druhů zvířat, se testují v sendvičovém uspořádání se vzorkem s nulovým obsahem choriogonadotropního hormonu a se vzorkem s obsahem nejméně 1 IU choriogonadotropního hormonu na ml vzorku.The method of manufacture of the composition comprises immunizing at least two animal species with a pure human preparation of choriogonadotropic hormone, obtaining antibodies obtained during immunization with serum and urine proteins of non-pregnant women, then selecting animals that produce the lowest degree of cross-reaction from which they are obtained. the antibodies are reacted with the urinary and serum proteins of non-pregnant women and the purified antibodies obtained from at least two animal species are tested in a sandwich arrangement with a sample containing zero choriogonadotropic hormone content and a sample containing at least 1 IU choriogonadotropic hormone per ml sample.
242 609242 609
- 2 242 609- 2,242,609
Vynález se týká způsobu výroby specifického přípravku pro zjišťování časného těhoteství a diagnostiky a sledování některých patologických stavů, spojených s výskytem lidského choriového gonadotropinu v tělních těkutinách, k jeho detekci a kvantifikaci v moči, séru či plasmě metodou Enzyme Linked Immunosorbent Aásay sendvičového typu - protilátka, antigen, značená protilátka.The invention relates to a method for the production of a specific composition for the detection of early pregnancy and for the diagnosis and monitoring of certain pathological conditions associated with the presence of human chorionic gonadotropin in body fluid, for its detection and quantification in urine, serum or plasma by the Enzyme Linked Immunosorbent Aásay antigen, labeled antibody.
Lidský choriový gonadotropin je glykoproteinový hormon fyziologicky produkovaný placentou. Hormon se objevuje v periferním oběhu /sérum, plasma a následně moč/ asi 9 dní po koncepci a jeho hladina postupně stoupá. Průkaz choriového gonadotropinu tedy znamená průkaz těhotenství, přičemž čím citlivější je metoda průkazu, tím dříve lze těhotenství zjistit. Včasné zjištění těhotenství má značný medicínský význam. Krom vlastní informace pro ženu a lékaře je nezbytné u různých těhotenských patologií např. mimodšložního těhotenství a dalších. Kvantitativní stanovení choriového gonadotropinu jě velmi důležité při sledování ohroženého těhotenství a při sledování terapie hCG produkujících nádorů. Včasné a spolehlivé rozpoznání těhotenství je též nutné pro široké zavedení metody tzv. mini-interrupce, tj. indukovaného umělého přerušení těhotenství v nej časnějším stadiu.Human chorionic gonadotropin is a glycoprotein hormone physiologically produced by the placenta. The hormone appears in the peripheral circulation (serum, plasma and then urine) about 9 days after conception and its level gradually rises. Thus, the detection of chorionic gonadotropin means the detection of pregnancy, and the more sensitive the method of detection, the sooner pregnancy can be detected. Early detection of pregnancy is of considerable medical importance. In addition to own information for women and doctors is necessary in various pregnancy pathologies such as ectopic pregnancy and others. Quantitative determination of chorionic gonadotropin is very important in monitoring endangered pregnancy and in monitoring therapy for hCG-producing tumors. Early and reliable recognition of pregnancy is also necessary for the widespread implementation of the so-called mini-abortion method, ie induced abortion at the earliest stage.
V současné době se používají pro stanovení těhotenství zkoušky, které jsou založeny na metodě zábrany hemaglutinace. Nevýhodou těchto testů je především jejich nízká citlivost, umožňující zjištění těhotenství nejdříve v období kolem 40'. dne cyklu, dále jejich použitelnost pouze pro testy v moči a nemožnost přímé kvantifikace choriového gonadotropinu. Kromě těchto testů jsou známé testy na basi latexové, které trpí stejnými nevýhodami a jsou vhod né především pro rychlé orientační vyšetření. Dále existují vysoce citlivé testy na baxi tzv. rádioimunoeseje. Tyto soupravy jsouCurrently, tests based on the method of preventing hemagglutination are used to determine pregnancy. The disadvantage of these tests is their low sensitivity, which allows to detect pregnancy at the earliest in the period of about 40 '. their applicability only for urine tests and the impossibility of direct quantification of chorionic gonadotropin. In addition to these tests, latex-based tests are known which suffer from the same disadvantages and are particularly suitable for rapid orientation examination. Furthermore, there are highly sensitive tests for radioimmunoassay baxi. These kits are
242 609 samy o sobě velmi nákladné, krom toho však vyžadují ještě nákladné vyhodnocovací zařízení, tj. počítač impulsů. Soupravy mají vel mi krátký čas použitelnosti a práce s radioaktivním materiálem představuje zdravotní riziko.242 609 in themselves very expensive, but they also require an expensive evaluation device, i.e. a pulse counter. The kits have a very short shelf life and work with radioactive material poses a health risk.
Možnost použití imunoenzymatické metody pro zjištění choriového gonadotropinu je již déle známa. Princip sendvičové metody spočívá v tom, že prvá protilátka se váže na imunosorbent, napřík lad na stěnu polystyrénové zkumavky. Poté se zkumavka promyje, odstraní se všechny nenavázané molekuly protilátky. Přidá se vzorek s obsahem choriogonadotropního hormonu - antigenu, který se váže na imobilizovanou protilátku. Zkumavka se opět promyje. Přidá se druhá, enzymem značená protilátka, která se váže na antigen z druhé strany molekuly a zkumavka se promyje. Přidá se substrát s bezbarvým chromogenem - dochází k rozkladu substrátu enzymem, což způsobí zbarvení chromogenu. Reakce se po určité době zastaví Barevná reakce ve zkumavce tedy znamená, že byl přítomen vyšetřovaný antigen. Nezbarveny obsah svědčí o nepřítomnosti antigenu. Intenzita zbarvení koresponduje s koncentrací antigenu. Závislost absorbance na koncentraci antigenu lze vyjádřit kalibrační křivkou, z níž je možno zpětně odečítat z naměřené absorbance hledané množství antigenu. Základní principy zpracovali v hrubé formě B.K.Van Weemen a A.H.W.M. Schuurs /Van Weemen, B.K. Schuurs,The possibility of using an immunoenzymatic method to detect chorionic gonadotropin has been known for some time. The principle of the sandwich method is that the first antibody binds to an immunosorbent, e.g., ice on the wall of a polystyrene tube. The tube is then washed, removing any unbound antibody molecules. Add a sample containing choriogonadotropic hormone - an antigen that binds to the immobilized antibody. Wash the tube again. Add a second enzyme-labeled antibody that binds to the antigen from the other side of the molecule and washes the tube. A substrate with a colorless chromogen is added - the substrate is degraded by the enzyme, causing the chromogen to stain. The reaction stops after a period of time A colored reaction in the tube therefore indicates that the antigen under test has been present. Unstained contents indicate the absence of antigen. The color intensity corresponds to the antigen concentration. The dependence of absorbance on antigen concentration can be expressed by a calibration curve, from which the desired amount of antigen can be read back from the measured absorbance. The basic principles were elaborated in a rough form by B.K.Van Weemen and A.H.W.M. Schuurs / Van Weemen, B.K. Schuurs,
A. H.W.M., FEBS Letters 15 /3/, 1971, s. 252 až 256; Van Weemen,A. H. W. M., FEBS Letters 15 (3), 1971, pp. 252-256; Van Weemen,
B. K., Schuurs, A.H.W.M., FEBS Letters 45 /2/, 1974, s. 215 až 218/. Řada novějších, vysoce kvalitních experimentálních prací též není vhodná pro praktické rutinní použití /Hamada, K. et al., Endocrinol. Japon. 25 /5/, 1978, s. 515 až 517; Iwasa, S. et al., J. Biochem. 89 /4/, 1981, s. 1091 až 1099; Tomoda, S. et al., Endocrinol. Japon. 27 /6/, 1980, s. 785 až 788; T. et al., Acta Endocrinol. /KbH/, 97, 1981, s. 562 až 568/. Kompetitivní ELISA test uvedený U.M. Joshi /Joshi, U.M. et al., Obstet. Gynec., 57 /2/, 1981, s. 252 až 254/ je vhodný pro rutinní použití, má však poměrně nízkou citlivost a není blíže precizována specifita testu. Kvalitní imunoenzymatický test /Mohta, H.C., MacDonald, D.J., Glin, Chim. Acta 121, 1982, s. 245 až 250/, který používákomerční protilátku proti beta podjednotce choriového gonadotropinu, je vysoce specifický, ale příprava protilátky proti beta podjed-A 242 609 notce je poměrně složitá, což by se projevilo v případě komerční výroby ve zvýšených nákladech na jedno vyšetření.B. K., Schuurs, A. H. W. M., FEBS Letters 45 (2), 1974, pp. 215-218. Also, many recent, high quality experimental works are not suitable for practical routine use / Hamada, K. et al., Endocrinol. Japanese. 25 (5), 1978, pp. 515-517; Iwasa, S. et al., J. Biochem. 89 (4), 1981, pp. 1091-1099; Tomoda, S. et al., Endocrinol. Japanese. 27 (6), 1980, pp. 785-788; T. et al., Acta Endocrinol. (KbH), 97, 1981, pp. 562-568. Competitive ELISA assay reported by U.M. Joshi / Joshi, U.M. et al., Obstet. Gynec., 57 (2), 1981, pp. 252-254, is suitable for routine use, but has a relatively low sensitivity and the specificity of the assay is not further specified. Quality immunoenzymatic test / Mohta, H.C., MacDonald, D.J., Glin, Chim. Acta 121, 1982, pp. 245-250), which uses a commercial antibody against the beta subunit of chorionic gonadotropin, is highly specific, but the preparation of the anti-beta subunit antibody A-242 609 is relatively complex, which would be manifested in commercial production in increased the cost of one examination.
Lidský choriový gonadotropin se skládá ze dvou neidentických podjednotek, nazvaných alfa a beta, přičemž alfa podjednotka je téměř identická s alfa podjednotkami dalších hormonů, především s luteinisačním hormonem, zatímco beta podjednotka je pro choriogonadotropní hormon specifická. Imunizace celou molekulou choriogonadotropinu je sice velmi jednoduchá a levná, neboť preparát není třeba speciálně upravovat, vede však k téměř úplné zkřížené reakci protilátek s luteinisačním hormonem. Zatímco choriogonadotropní hormon je specificky těhotenský, vyskytuje se luteinisační hormon v poměrně vysokých hladinách u netěhotných. Test využívající takovouto protilátku pak není vhodný pro průkaz těhotenství - a to alespoň ne v časném stadiu, kdy hladiny choriogonadotropinu nepřevyšují hladiny luteinisačního hormonu. Těhotenství je mož no určit až v pozdějším stadiu, kdy již hladiny choriogonadotropinu jsou již dostatečně vysoké.Human chorionic gonadotropin is composed of two non-identical subunits, called alpha and beta, the alpha subunit being almost identical to the alpha subunits of other hormones, especially the luteinising hormone, while the beta subunit is specific for the choriogonadotropic hormone. Immunization with the whole molecule of choriogonadotropin is very simple and inexpensive as the preparation does not need to be specially treated, but it leads to an almost complete cross-reaction of the antibodies with the luteinizing hormone. While choriogonadotropic hormone is specifically pregnancy, luteinizing hormone occurs at relatively high levels in non-pregnant women. A test using such an antibody is then not suitable for proving pregnancy - at least not at an early stage when choriogonadotropin levels do not exceed luteinizing hormone levels. Pregnancy can only be determined at a later stage when choriogonadotropin levels are already high enough.
Tuto nevýhodu lze obejít imunizací pouze specifickou beta podjednotkou hormonu. Vzniklá antiséra pak jsou schopna částečně specifické reakce s choriogonadotropinem v přítomnosti luteinisačního hormonu - tj. preferenčně reagují. Stupeň specifické reakce se u různých antisér individuálně liší. Problém tohoto postupu spočívá ve velice náročné izolaci beta podjednotky choriového gonadotropinu, která je značně nákladná, a dále v tom, že imunizace zvířat vede pouze zřídka k tvorbě specifické protilátky.This disadvantage can be overcome by immunization with only the specific beta subunit of the hormone. The resulting antisera are then capable of partially specific reactions with choriogonadotropin in the presence of luteinizing hormone - i.e. they preferentially react. The degree of specific reaction varies between antisera individually. The problem with this procedure lies in the very difficult isolation of the chorionic gonadotropin beta subunit, which is very costly, and that immunization of animals rarely leads to the production of a specific antibody.
Uvedené nevýhody odstraňuje způsob výroby přípravku, který spočívá v tom, Že se nejméně dva druhy zvířat imunizují čistým lidským preparátem choriogonadotropního hormonu, získané protilátky se testují během imunisace se sérovými a močovými proteiny netěhotných žen, načež se vyberou zvířata, která produkují protilátky s nejnižším stupněm zkřížené reakce, od nichž získané protilátky se podrobí reakci s močovými a sérovými proteiny netěhotných žen a přečištěné protilátky reagující především s choriogonadotropním hormonem se získané nejméně od dvou druhů zvířat testují v sendvičovém uspořádání se vzorkem s nulovým obsahem chorioThese disadvantages are overcome by a method of making the composition comprising immunizing at least two animal species with a pure human chorionic gonadotropic hormone preparation, obtaining antibodies obtained during immunization with serum and urine proteins of non-pregnant women, and selecting animals that produce the lowest grade antibodies. cross-reactions from which the obtained antibodies are reacted with the urine and serum proteins of non-pregnant women and purified antibodies reacting primarily with choriogonadotropic hormone are obtained from at least two species of animals in a sandwich arrangement with a zero chorio content
242 809 gonadotropního hormonu a se vzorkem s obsahem nejméně 1HJ choriogonadotropního hormonu na 1 ml vzorku.242 809 gonadotropic hormone and containing a sample containing at least 1HJ of choriogonadotropic hormone per ml of sample.
Účinek dle vynálezu spočívá v jednodušším způsobu přípravy specifických protilátek a jejich následné optimalizaci pro specifické zjištění nízkých hladin choriogonadotropního hormonu.The effect of the invention lies in a simpler method of preparing specific antibodies and then optimizing them for specific detection of low levels of choriogonadotropic hormone.
Výhodou uvedeného imunoenzymatického testu pro stanovení choriogonadotropního hormonu je jeho vysoká citlivost a specifita, srovnatelná s dováženými testovacími soupravami na basi radioimunoeseje, přičemž náklady na jedno stanovení jsou podstatně nižší, test má též delší .dobu upotřebitelnosti, řádově měsíce oproti týdnům, není nutné nákladné vyhodnocovací zařízení, postačí běžný spektrofotometr a odpadá riziko práce s radioizotopem. Uvedený imunoenzymatický test lze provádět v moči, kvalitativní stanovení a orientační kvantifikace, séru i plasmě, kvalitativní stanovení a kvantifikace, přičemž test lze provádět ve zdravotnických zařízeních všech stupňů a je proveditelný během jedné pracovní směny. Stanovení lze provádět nejen ve zkumavkách, ale též na mikrotitračních destičkách.The advantage of the immunoenzymatic test for the determination of choriogonadotropic hormone is its high sensitivity and specificity, comparable to imported radioimmunoassay test kits, with the cost of one test being considerably lower, the test also having a longer shelf-life, of months compared to weeks, no costly evaluation required. a conventional spectrophotometer is sufficient and there is no risk of working with the radioisotope. Said immunoenzymatic test can be performed in urine, qualitative determination and indicative quantification, serum and plasma, qualitative determination and quantification, and can be performed in healthcare facilities of all stages and is feasible in a single work shift. The assay can be performed not only in tubes but also on microtiter plates.
Předmět vynálezu blíže osvětluje následující příklad.The following example illustrates the invention in more detail.
Příklad 1Example 1
Protilátky byly připraveny imunisací prasat a ovcí čištěným choriovým gonadotropinem o aktivitě 10 000 IU choriogonadotropního hormonu/mg. Jako adjuvans při imunizaci zvířat byla použita suspense hydroxidu hlinitého s parafinovým- olejem a sorbitan trioleatem. Získané protilátky byly testovány imunodifusí na stupeň zkřížené reakce zkříženě reagujícími hormony, především s luteini sačním hormonem a dále na stupeň reakce s močovými a sérovými bil kovinami a byla vybírána antiséra s nejnižším stupněm zkřížené reakce. Tyto testy byly prováděny již během imunizace a nevyhovující zvířata byla vyřazována. Získaná kvalitní antiséra byla vysycena na kolonách obsahujících s výhodou agarosum gel s navázanými močovými proteiny, které byly izolovány z velkého počtu mužské moče - 500 dárců a moče žen v postmenopause. Takto se zbavila antiséra molekul protilátek zkříženě reagujících s močovými pro- 6 242 609 teiny, které vznikly imunitní reakcí proti malému množství kontaminujícího materiálu, přítomného i ve vysoce čistém preparátu. Protože zkříženě reagující luteinisační hormony jsou v moči přítomny, dojde použitým postupem, nejen k potlačení nespecifických interakcí, ale i zkřížené reakce proti těmto hormonům. Antiséra byla dále vysyco.vána na koloně obsahující na pevné fázi na CNBr Sepharosu 4B navázané proteiny získané ze séra a moče netěhotných žen.Antibodies were prepared by immunizing pigs and sheep with purified chorionic gonadotropin with an activity of 10,000 IU choriogonadotropic hormone / mg. A suspension of aluminum hydroxide with paraffin oil and sorbitan trioleate was used as an adjuvant in animal immunization. The antibodies obtained were tested by immunodiffusion for the degree of cross-reaction with cross-reacting hormones, in particular with luteinating hormone, and for the degree of reaction with urinary and serum proteins, and the antisera with the lowest degree of cross-reaction were selected. These tests were already performed during immunization and non-compliant animals were discarded. The obtained high-quality antisera were loaded on columns containing preferably urine-coupled agarose gel, which were isolated from a large number of male urine - 500 donors and female urine in postmenopause. In this way, the antiserum of antibody molecules cross-reacting with urine pro- ducts, which arose from an immune reaction against a small amount of contaminating material present in a highly pure preparation, was freed. Since cross-reacting luteinizing hormones are present in the urine, the procedure used not only suppresses non-specific interactions, but also cross-reactions against these hormones. The antisera were further grown on a column containing solid-bound CNBr Sepharose 4B bound proteins obtained from the serum and urine of non-pregnant women.
Získaná přečištěná séra obsahující především protilátky reagující s choříogonadotropním hormonem se vzájemně kombinovala společně se vzorky neobsahujícími choriogonadotropní hormon a se vzorky s obsahem 1 U chořiogonadotropinu/ml. Byly vybrány kombinace protilátek, které měly absorbanci se vzorkem s nulovým obsahem choriogonadotropinu nižší než 0,2 jednotky a se vzorkem s obsahem 1 IU choriogonadotropinu/ml vyšší než 1,0 jednotka absorbance. Jako protilátka I byla vybrána prasečí protilátka, která vykazovala citlivost 6m IU choriogonadotropinu/ml. Ovčí protilátka byla testována se vzorkem obsahujícím 20 mlU choriogonadotropinu/ml a 20 mlU luteinisačního hormonu/ml a vykazovala 4krát vyšší citlivost vůči choriogonadotropinu oproti luteinisačnímu hormonu.The obtained purified sera containing mainly antibodies reacting with choriogonadotropin hormone were combined with samples containing no choriogonadotropin hormone and with samples containing 1 U of choriogonadotropin / ml. Antibody combinations were selected that had an absorbance with a sample having a choriogonadotropin zero content of less than 0.2 units and a sample having a choriogonadotropin content of 1 IU greater than 1.0 absorbance unit. Pig antibody was selected as antibody I and showed a sensitivity of 6m IU choriogonadotropin / ml. The sheep antibody was tested with a sample containing 20 mlU choriogonadotropin / ml and 20 mlU luteinizing hormone / ml and showed a 4-fold higher sensitivity to choriogonadotropin than luteinizing hormone.
Na tuto II. protilátku byla navázána peroxidása.On this II. the peroxidase was bound to the antibody.
Sestrojená kalibrační křivka vyjadřovala lineární závislost absorbance na koncentraci v rozmezí 10 až 1 000 mlU choriogonadotropinu/ml. Obdobně byla připravena kombinace protilátek imunisací králíků a ovcí.The constructed calibration curve expressed a linear dependence of absorbance on a concentration ranging from 10 to 1000 mlU of choriogonadotropin / ml. Similarly, a combination of antibodies was prepared by immunizing rabbits and sheep.
Protilátky byly součástí soupravy na detekci a kvantifikaci hCG. Souprava obsahovala 5x20 ml lyofilizované protilátky I a 1 dávku koncentrované specifické protilátky II značené peroxidazou, 5x1 ml lyofilizováného srovnávacího přípravku choriogonadotropinu jako standard, 15 ml vazebního roztoku lOOx koncentrovaného, kterým je bikarbonátový pufr alkalického pH, 100 ml promývacího roztoku 20x koncentrovaného, který obsahuje detergent, lx 50 ml ředicího roztoku I k ředění protilátky II a 250 ml ředicího roztoku II k ředění vzorků, 60 ml substrátového roztoku a 6x10 mg 0-fenylendiaminu v homogenní směsi s 90 mg síranu draselného.Antibodies were included in the hCG detection and quantification kit. The kit contained 5x20 ml lyophilized antibody I and 1 dose of peroxidase labeled specific specific antibody II, 5x1 ml lyophilized comparator choriogonadotropin as standard, 15 ml of 100x binding buffer solution, alkaline pH bicarbonate buffer, 100 ml 20x concentrated washing solution containing detergent 1x 50 ml of diluent I for dilution of antibody II and 250 ml of diluent II for dilution of samples, 60 ml of substrate solution and 6x10 mg of O-phenylenediamine in homogeneous mixture with 90 mg of potassium sulphate.
- 7 242 609- 7 242 609
Jako nosič bylo dodáno 5 kusů polystyrénových destiček s 96 jamkami na každé destičce. Možno též použít polystyrénové zkumavky.Five 96-well polystyrene plates per plate were delivered as carrier. Polystyrene tubes can also be used.
Souprava je určena k detekci a semikvantitativnímu stanovení lidského choriového gonadotropinu v moči a kvantitativnímu stanovení v séru. Vyšetření je založeno na principu Enzyme Linked Immunosorbent Assay. Na stěny jamek se naváže prasečí protilátka I a po vypláchnutí se do jamek aplikují standardní a vyšetřované vzorky. Je-li ve vzorcích přítomen choriogonadotropin, váže se během inkubace na navázanou protilátku. Po vymytí se aplikuje peroxidázou značená ovčí protilátka II. Značené protilátka se naváže na antigen - choriogonadotropní hormon. Po vymytí se provede detekce peroxidázové aktivity, která je úměrná koncentraci antigenu ve vzorku. Výsledky zkoušky jsou známy asi za 6 hodin.The kit is intended for the detection and semi-quantitative determination of human chorionic gonadotropin in urine and quantitative determination in serum. The examination is based on the principle of Enzyme Linked Immunosorbent Assay. Pig antibody I is bound to the walls of the wells and, after rinsing, the standard and test samples are applied to the wells. Choriogonadotropin, if present, binds to bound antibody during incubation. After washing, peroxidase-labeled sheep antibody II is applied. The labeled antibody binds to the antigen - choriogonadotropic hormone. After washing, peroxidase activity is detected, which is proportional to the antigen concentration in the sample. The test results are known in about 6 hours.
Pro zjištění stupně zkřížené reakce bylo použito sto vzorků ranních močí zdravých žen v menopause ve věku od 45 do 60 let.One hundred morning urine samples from healthy menopause women aged 45 to 60 years were used to determine the degree of cross-reaction.
Moč těchto žen obsahuje zvýšené množství zkřížené reagujících hormonů, které by mohly v neznámém vzorku způsobit chybnou interpretaci výsledku testu ve smyslu falešné pozitivity. Po statistickém. zhodnocení celého souboru testovaného imunoenzymatickou metodou je určena hladina, kterou již zkříženě reagující hormony nemohou s vysokou pravděpodobností překročit, přičemž zjištění hladin vyšších v neznámém vzorku lze již považovat za specifické” zjištění choriogonadotropinu. Tato hladina odpovídá v séru, plasmě i moči 200 mlU choriogonadotropinu/ml vzorku, přičemž hladiny mezi 50 až 200 mlU ch®riogonadotropinu/ml lze považovat za možné těhotenství, proto je označujeme jako přechodné a test následující den opakujeme. Uvedená specifická hladina pokrývá i preovulační vzestup zkříženě reagujících hormonů v menstruačním cyklu.The urine of these women contains an increased amount of cross-reacting hormones, which in an unknown sample could misinterpret the test result in terms of false positivity. After statistical. the evaluation of the whole immunoenzymatic assay is determined by a level that cross-reacting hormones are no longer likely to exceed, and the detection of higher levels in an unknown sample can already be considered a specific ”finding of choriogonadotropin. This level corresponds in serum, plasma and urine to 200 mlU of choriogonadotropin / ml sample, and levels between 50 and 200 mlU of chriogonadotropin / ml can be considered as a possible pregnancy and are therefore considered transient and the test is repeated the following day. This specific level also covers the preovulatory increase in cross-reacting hormones in the menstrual cycle.
K provedení testu se používá běžné laboratorní vybavení vodní či motorové vývěvy a běžných spektrofotometrů, schopných měřit 1 ml vzorku při 492 nm s přesností na dvě desetinná místa, například Spekol 10.Conventional water or motor vacuum pump equipment and conventional spectrophotometers capable of measuring 1 ml of the sample at 492 nm to two decimal places, such as Spekol 10, are used to perform the test.
IAND
-|δ Příklad provedení testu; 242 609 - | δ Test example; 242 609
Vzorky ranních močí zdravé 281eté ženy, která plánovala otěhotnění byly testovány v průběhu menstruačního cyklu. Menstruační cyklus byl pravidelný - 29 dní, žena již porodila jedno zdravé dítě. Vzorky močí byly testovány následovně:Morning urine samples from a healthy 281 year old woman who planned to become pregnant were tested during the menstrual cycle. The menstrual cycle was regular - 29 days, the woman had already delivered one healthy baby. Urine samples were tested as follows:
lyofilizovaná protilátka proti hCG byla rozpuštěna ve vazebním roztoku, kterým je bikarbonátový pufr alkalického pH. Do polystyrénových zkumavek o objemu 3 cm5 bylo pipetováno vždy 0,3 ml rozpuštěné protilátky do jedné zkumavky. Za 20 hodin při teplotě +4 °C, inkubace do druhého dne v lednici, bylo ukončeno navázání protilátek na stěny zkumavek.the lyophilized anti-hCG antibody was dissolved in the binding solution, which is an alkaline pH bicarbonate buffer. 0.3 ml of dissolved antibody was pipetted into one tube into 3 cm5 polystyrene tubes. After 20 hours at +4 ° C, incubation until the next day in the refrigerator, the binding of the antibodies to the tube walls was terminated.
Roztok byl vysát ze zkumavek a každá zkumavka 3* promyta vazebným pufrem. Poté byly do zkumavek aplikovány standardní a vyšetřované vzorky močí, vždy 0,2 ml., a zkumavky byly uloženy na 2,5 hod. do termostatu vyhřátého na 37 °C.The solution was aspirated from the tubes and each tube washed 3 times with binding buffer. Standard and test urine samples, 0.2 ml each, were then applied to the tubes and stored in a thermostat at 37 ° C for 2.5 hours.
Obsah zkumavek byl odsát, zkumavky 2x promyty roztokem obsahujícím' detergent, aby se zablokovaly zbylé volné vazebné skupiny.The contents of the tubes were aspirated, the tubes washed twice with a detergent-containing solution to block the remaining free binding groups.
Do každé zkumavky bylo aplikováno 0,2 ml roztoku druhé protilátky, která je značena enzymem. Zkumavky byly inkubovány v termostatu při 37 °C 1,5 hod.0.2 ml of enzyme labeled second antibody solution was applied to each tube. The tubes were incubated in a thermostat at 37 ° C for 1.5 hours.
Obsah zkumavek byl odsát a zkumavky 4x promyty roztokem obsahujícím detergent. Do zkumavek bylo aplikováno 0,2 ml 0,1% roztoku o-fenylendiaminu v pufru obsahujícím peroxid vodíku a zkumavky byly inkubovány 40 min. při 37 °C. U pozitivních vzorků dojde k rozkladu peroxidu vodíku enzymem, což se projeví barevnou reakcí. Reakce byla zastavena přidáním 1 ml 0,5 N kyseliny sírové do každé zkumavky. Výsledek se určuje fotometričky stanovením absorbance standardních a neznámých vzorků a vyhodnocuje, jak uvedeno výše.The contents of the tubes were aspirated and the tubes were washed 4 times with detergent-containing solution. 0.2 ml of a 0.1% solution of o-phenylenediamine in a buffer containing hydrogen peroxide was applied to the tubes and incubated for 40 min. at 37 ° C. Positive samples decompose hydrogen peroxide by the enzyme, which results in a color reaction. The reaction was stopped by adding 1 mL of 0.5 N sulfuric acid to each tube. The result is determined by photometry by determining the absorbance of standard and unknown samples and evaluated as above.
Ve sledovaném cyklu bylo těhotenství zachyceno 29. den cyklu, kdy se hladina chořiogonadotropinu pohybovala v oblasti přechodných” výsledků a těhotenství bylo následně verifikováno 30. den cyklu, kdy byl již výsledek pozitivní.In the follow-up cycle, pregnancy was detected on day 29 of the cycle, when the level of chooriogonadotropin was in the area of transient results and the pregnancy was subsequently verified on day 30 of the cycle, when the result was already positive.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS827924A CS242609B1 (en) | 1982-11-08 | 1982-11-08 | Production method of an agent for determination of an early pragnancy and pathological statuses in gynaecology |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS827924A CS242609B1 (en) | 1982-11-08 | 1982-11-08 | Production method of an agent for determination of an early pragnancy and pathological statuses in gynaecology |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS792482A1 CS792482A1 (en) | 1985-08-15 |
CS242609B1 true CS242609B1 (en) | 1986-05-15 |
Family
ID=5429205
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS827924A CS242609B1 (en) | 1982-11-08 | 1982-11-08 | Production method of an agent for determination of an early pragnancy and pathological statuses in gynaecology |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CS (1) | CS242609B1 (en) |
-
1982
- 1982-11-08 CS CS827924A patent/CS242609B1/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CS792482A1 (en) | 1985-08-15 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US5096830A (en) | Preterm labor and membrane rupture test | |
US5554504A (en) | Diagnostic method for detecting the rupture of fetal membranes | |
US4874693A (en) | Method for assessing placental dysfunction | |
US5281522A (en) | Reagents and kits for determination of fetal fibronectin in a vaginal sample | |
US7892774B2 (en) | Diagnostic method for determining the susceptibility to delivery and reagent kit for use therefor | |
EP0316919B1 (en) | Vaginal sample test and reagents | |
EP1419384B1 (en) | Methods for detecting pregnancy | |
US5223440A (en) | Ex vivo product of conception test to determine abortion | |
US20140024057A1 (en) | Systems and methods for detecting animal pregnancy | |
US5198366A (en) | Method for the detection of pregnancy disorders | |
CN101750501A (en) | Protein chip for female infertility detection and kit thereof | |
US5185270A (en) | Fetal fibronectin pregnancy test | |
US5236846A (en) | Ectopic pregnancy test | |
US4693969A (en) | Reagent for use in a sandwich solid-phase enzyme-immunoassay and process for employing same | |
Alfthan et al. | Specificity and detection limit of ten pregnancy tests | |
US20050148096A1 (en) | Methods for detecting pregnancy | |
CS242609B1 (en) | Production method of an agent for determination of an early pragnancy and pathological statuses in gynaecology | |
JP2550454B2 (en) | Total gonadotropin alpha peptide chain assay | |
JP7085950B2 (en) | Method for determining preterm birth risk, preterm birth risk determination device | |
Feldkamp et al. | The measurement of human chorionic gonadotropin for pregnancy testing | |
Class et al. | Patent application title: SYSTEMS AND METHODS FOR DETECTING ANIMAL PREGNANCY Inventors: Charles W. Passavant (Mosco, ID, US) Joshua R. Branen (Mosco, ID, US) Robert Garth Sasser (Mosco, ID, US) Jeremy Michael Howard (Moscow, ID, US) Assignees: BIOTRACKING, LLC | |
JPH1194831A (en) | Detection of cancer by measurement of autoimmune to hormone receptor | |
Pledger | The assay of oncodevelopmental proteins: Their use in foetoplacental function monitoring and in the diagnosis and monitoring of malignant disease | |
JP2612915C (en) |