CS240342B1 - The method of fermentation production of tylosin - Google Patents
The method of fermentation production of tylosin Download PDFInfo
- Publication number
- CS240342B1 CS240342B1 CS738984A CS738984A CS240342B1 CS 240342 B1 CS240342 B1 CS 240342B1 CS 738984 A CS738984 A CS 738984A CS 738984 A CS738984 A CS 738984A CS 240342 B1 CS240342 B1 CS 240342B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- continuously
- semi
- production
- fermentation
- tylosin
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Riešenie sa týká nového sposobu riadenia fermentačnej výroby tylozínu podía Teologických charakteristik fermentačnej půdy pri aeróbnej kultivácii vysokoprodukčného mikroorganismu Streptomyces fradiae, za intenzívneho miešania v živnej půdě ob· sahujúcej zdroje asimilovatefného dusíka, uhlíka a fosforu a za kontinuálneho alebo semikontinuálneho dávkovania živin a zriedovacieho roztoku. V produkčnej fáze sa kontinuálně alebo semikontinuláne pridávajú NH4+ a NO3- ióny v takom množstve, aby sa udržala koncentrácia amoniakálneho dusíka v rozmedzí 0,02—0,3 % a za účelom udržania optimálnej viskozity sa přidává kontinuálně alebo semikontinuálne sterilná voda a vpriebehu celej kultivácie sa udržuje pH v rozmedzí 6,7—7,1.The solution concerns a new method of controlling the fermentation production of tylosin according to the theological characteristics of the fermentation medium during aerobic cultivation of the high-yielding microorganism Streptomyces fradiae, with intensive mixing in a nutrient medium containing sources of assimilable nitrogen, carbon and phosphorus and with continuous or semi-continuous dosing of nutrients and a diluent. In the production phase, NH4+ and NO3- ions are added continuously or semi-continuously in such an amount as to maintain the concentration of ammonia nitrogen in the range of 0.02—0.3% and, in order to maintain optimal viscosity, sterile water is added continuously or semi-continuously and the pH is maintained in the range of 6.7—7.1 throughout the cultivation.
Description
240342240342
Vynález sa týká spůsobu riadenia výrobytylozínu podlá Teologických charakteristikfermentačnej půdy pri aeróbnej kultiváciivysokoprodukčného mikroorganizmu Strep-tomyces fradiae, za intenzívneho miešaniav živnej půdě obsahujúce] zdroje asimilova-telného dusíka, uhlíka a fosforu, minerál-nych či živných soli, za kontinuálneho ale-bo semikontinuálneho dávkovania živin azrieďovacieho roztoku v produkčnej fázefermentácie.BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The invention relates to a process for controlling the production of tyrosine according to the rheological characteristics of an aerobic cultivation of a high-yielding microorganism Strepytesces fradiae, with intensive mixing of nutrient nitrogen, carbon and phosphorous, mineral or nutrient salts under continuous or semi-continuous dosing. nutrients and dilution solution in the production phase-fermentation.
Zvýšenie priemyselnej výroby tylozínu jemožné dosiahnuť zvýšením výrobnej kapaci-ty, alebo zvyšováním produkcie pri jeho bio-syntéze. Druhý spůsob nevyžaduje na roz-diel od prvého velké investičně náklady. Jezaložený na lepšej produkčnej schopnostikmeňa používaného pre biosyntézu, alebona lepších fermentačných podmienkach,ktoré sa zabezpečujú dokonalejším riadenímfermentácie. Z týchto dovodov sa pomocoumutagénov získavajú nové mutanty mikro-organizmu Streptomyces fradiae a vypraco-vávají! sa nové sposoby blosyntézy tylozí-nu. K základným podmienkam pre vysoko -produkčnú fermentáciu patria — množstvoa vzájomný poměr živin vo fermentačnejpůdě, udržovanie niektorých fyzikálnych,chemických a biochemických veličin na op-timálnej úrovni, vzdušnenie a miešanie fer-mentačného média a pod. V praxi sa častostává, že z technických alebo iných důvo-dov nie je možné změnit niektoré podmien-ky pre optimálny priebeh biosyntézy. Takýmneměnným faktorom může byť napříkladintenzita miešania fermentačnej půdy. V poslednom období v důsledku energe-tickej krízy je snaha predlžovať dobu kulti-vácie, aby sa znížil počet nasadzovanýchfermentácií, čím sa ušetří na energiách asurovinách pri biosyntéze a pri chemickejizolácii do finálneho produktu. Z tohto dů-vodu pri vývoji dlhodobej fermentácie sle-dujúcej zvyšovanie výťažnosti směroval vý-voj ku stále vyššej koncentrácii hlavnýchzložiek půdy. Zvyšovanie koncentrácie živinje však limitované tým, že nadměrný nárastbiomasy spůsobuje porušenie optima látko-vej výměny. V takom případe dochádza vdůsledku nedostatočného miešania k limi-tách kyslíkom. Limitujúcim faktorom můžebyť v niektorých prípadoch aj nepriaznivývplyv zvýšeného osmotického tlaku.Increasing the industrial production of tylosin can be achieved by increasing production capacity or by increasing production in its bio-synthesis. The second method does not require a major investment cost for the difference. Incorporated on a better production capability used for biosynthesis, or better fermentation conditions, which ensure better management of fermentation. From these sources, new mutants of the microorganism Streptomyces fradiae are obtained by mutagenesis and developed! new methods of blosynthesis of thylogen. The basic conditions for high-production fermentation include - the amount of nutrients in the fermentation broth, the maintenance of some physical, chemical and biochemical quantities at the optimum level, aeration and mixing of the fermentation medium, and the like. In practice, it is often the case that for technical or other reasons it is not possible to change some of the conditions for the optimal course of biosynthesis. Such a variable factor may be, for example, the intensity of the fermentation broth mixing. Recently, as a result of the energy crisis, efforts have been made to prolong the cultivation time in order to reduce the amount of fermentation deployments, thereby saving the energy of the asuria in biosynthesis and chemical isolation into the final product. For this reason, in the development of long-term fermentation, following the increase in yield, the development led to an increasing concentration of the main soil components. However, increasing the nutrient concentration is limited by the fact that excessive growth of the biomass causes disruption of the metabolism optimum. In this case, due to insufficient mixing, oxygen levels are limited. The limiting factor in some cases may be the adverse effect of increased osmotic pressure.
Zvyšováním koncentrácie živin můžedůjsť k prekročeniu hraničnej koncentrá-cie škodlivých faktorov u jednej alebo via-cerých zložiek živného prostredia. Táto sku-točnosť bola dokázaná aj u biosyntézy ty-lozínu, a to inhibícia produkcie antibiotika—NH4+ iónmi pri rýchlej spotrebe dusíka-tých zdrojov (S. Omura: Control of ammo-nium ion level in antibiotic fermentation,Fifth Internattional Symposium on Actino-mycetes Biology, Oaxtepec, Morelos, Mexi-co, August 16—19, 1982, Abstracts pp. 71až 72).By increasing the concentration of nutrients, the concentration limit of the harmful factors may be exceeded in one or more components of the culture medium. This fact has also been demonstrated in the tyrosine biosynthesis, namely the inhibition of antibiotic-NH4 + production by ions in fast nitrogen consumption (S. Omura: Control of Ammonium Ion Level in Antibiotic Fermentation, Fifth Internattional Symposium on Actin- mycetes Biology, Oaxtepec, Morelos, Mexi-co, August 16—19, 1982, Abstracts pp. 71 to 72).
Ak na začiatku kultivácie bola zvýšenákoncentrácie —NH4+ iónov, dochádzalo pri fermentácií tylozínu kmeňom Streptomycesfradiae k nadměrnému rastu biomasy v pro-dukčnej fáze a tým k limitách kyslíkom.Zároveň sa znížila produkcia tylozínu v živ-nom médiu,If, at the start of the culture, the concentration of -NH4 + ions was increased, the fermentation of tylosin by Streptomycesfradiae resulted in excessive growth of biomass at the production phase and thus by oxygen limits. At the same time, the production of tylosin in nutrient medium was reduced,
Zistili sine, že nadměrnému nárastu bio-masy, a tým vysokej viskozite možno zabrá-nit tak, že po ukončení rastovej fázy sa doživného prostredia kontinuálně alebo semi-konttinuálne dávkuje sterilná voda. Tým saudržuje viskozita, pri ktorej nedochádža klimitách kyslíkom. Zároveň sa vytvárajúpodmienky pře kontinuálně alebo' semikon-tinuálne pridávanie — NH4+ iónov a —NCb~iónov v produkčnej fáze fermentácie. Dáv-kováním —NH4+ a —NOS“ iónov, ktoré savyužívajú pri. metabolizme a kontinuálnymalebo semikontinuálnym udržováním pH vv rozmedzí hodnůt 6,8—7,1 sa udržuje dob-rý fyziologický stav kultúry.It has been found that excessive growth of bio-mass, and thus high viscosity, can be prevented by the sterile water being continuously or semi-continuously dispensed at the end of the growth phase. This maintains the viscosity at which no oxygen climates occur. At the same time, conditions for continuous or semicontinuous addition of NH4 + ions and —NCb-ions in the production phase of the fermentation are formed. By dosing —NH4 + and —NOS “ions that use at. the metabolism and continuous or semi-continuous maintenance of pH in the 6.8-7.1 range maintains a good physiological state of the culture.
Udržovanie optimálnej viskozity a opti-málneho pH a dávkovanie —NHi+ a —NO3"iónov v produkčnej časti fermentácie vedienielen k vysokej výťažnosti tylozínu, ale ajk potlačeniu tvorby desmykozínu a dalšíchrozkladných produktov tylozínu. P r í k 1 ad 1Maintaining optimum viscosity and optimum pH and dosing —NHi + and —NO3 “ions in the production portion of the fermentation resulted in a high yield of tylosin, but also in the suppression of desmicosine and other decomposition products of tylosin.
Fermentácia v laboratórnych fermentač-ných tankoch.Fermentation in laboratory fermentation tanks.
Vegetativně inokulum bolo připravenésubmerzne v 500 ml varných bankách plně-ných 60 ml inokulačnej půdy (kukuřičnýextrakt, kvasničný extrakt, sójová muka, só-jový olej a CaCCU). Živná půda po vysterili-zovaní bola naočkovaná kťučkou spor zošikmého agaru a inkubovaná na rotačnomtrepacom stroji 48 hodin. Takto připrave-ným vegetatívnym inokulom bol naočkova-ný laboratórny fermentor s vysterilizovanouživnou půdou rovnakého zloženia, ako bolapoužitá v 500 ml varných baničkách. Labo-ratórny fermentor o celkovom objeme 20 1bol plněný 10 1 živnej půdy. Kultivácia pre-biehala pri teplote 29 °C, za vzdušnenia 6 1sterilného vzduchu/min. Nárast vegetatívne-ho inokula v laboratórnom fermentore trval28 hodin. Připraveným inokulom bolo naočkované10 1 produkčnej půdy v laboratórnom fer-mentore o celkovom obsahu 20 1. Produkčnápůda obsahovala repnú melasu, sójový olej,rybiu muku, kukuričnú muku, kukuřičnýglutén, anorganické soli a CaCOí. Fermen-tácia prebiehala 9 dní za dodržanla kulti-vačnej teploty 28 °C a s prídavkom vzduchudo 40. hodiny kultivácie 6 1/min. a od 40.hodiny kultivácie 8 1/min.Vegetatively inoculum was prepared in 500 ml boiling flasks filled with 60 ml of inoculum (corn extract, yeast extract, soybean oil, soybean oil and CaCCU). The nutrient broth after inoculation was inoculated with a spherical agar spore and incubated on a rotary shaker for 48 hours. The vegetative inoculum thus prepared was inoculated with a laboratory fermenter with sterilized soil of the same composition as used in 500 ml boiling flasks. Labo-rat fermentor with a total volume of 20 lbol filled with 10 l of nutrient broth. Cultivation was run at 29 ° C, with 6 lsterile air / min. The growth of the vegetative inoculum in the laboratory fermentor took 28 hours. The prepared inoculum was seeded with 10 L of production soil in a laboratory fermentor with a total volume of 20 L. The production soil contained beet molasses, soybean oil, fish crust, corn torture, corn gluten, inorganic salts and CaCO 3. The fermentation was carried out for 9 days with a culture temperature of 28 ° C and with an additional air of 40 hours of culture of 6 1 / min. and from 40 hour of culture 8 1 / min.
Za 9 dní sa dosiahla produkcia 5 500 mcgna mililiter. Příklad 2After 9 days, a production of 5,500 mcg milliliter was achieved. Example 2
Fermentácia v laboratórnych fermentač-ných tankoch s reguláciou podmienok fer-mentácieFermentation in laboratory fermentation tanks with regulation of fermentation conditions
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS738984A CS240342B1 (en) | 1984-09-29 | 1984-09-29 | The method of fermentation production of tylosin |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS738984A CS240342B1 (en) | 1984-09-29 | 1984-09-29 | The method of fermentation production of tylosin |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS240342B1 true CS240342B1 (en) | 1986-02-13 |
Family
ID=5422937
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS738984A CS240342B1 (en) | 1984-09-29 | 1984-09-29 | The method of fermentation production of tylosin |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS240342B1 (en) |
-
1984
- 1984-09-29 CS CS738984A patent/CS240342B1/en unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| FI72138C (en) | Process for the preparation of a non-spore-forming strain of Clostridi um acetobutylicum. | |
| Hosler et al. | Penicillin from chemically defined media | |
| Guevarra et al. | Production of 2-hydroxyparaconic and itatartaric acids by Ustilago cynodontis and simple recovery process of the acids | |
| Yoon et al. | Phosphate effects in the fermentation of α-amylase by Bacillus amyloliquefaciens | |
| CS240342B1 (en) | The method of fermentation production of tylosin | |
| Ahmed et al. | Growth rate dependence of solventogenesis and solvents produced by Clostridium beijerinckii | |
| US4985355A (en) | Ethanol production by zymomonas cultured in yeast-conditioned media | |
| Yang et al. | Effect of culture media on protease and oxytetracycline production with mycelium and protoplasts of Streptomyces rimosus | |
| SK902006A3 (en) | A method for fermentation of polymyxin B by means of productive microorganism Bacillus polymyxa. | |
| CN116478865A (en) | Fermentation medium and fermentation method for increasing yield of avermectin | |
| Tanaka et al. | Enhancement and cultural characteristics of leucomycin production by Streptomyces kitasatoensis in the presence of magnesium phosphate | |
| Oura et al. | Biotin‐active compounds, their existence in nature and the biotin requirements of yeasts | |
| RU1314667C (en) | Method for cultivating of methanol oxidizing bacteria | |
| Jingying et al. | Optimization of fermentation conditions for protease production from Bacillus subtilis | |
| Matsumoto et al. | Studies on dl-alanine formation by thermophilic bacteria | |
| KR930008973B1 (en) | Media for photobacteria | |
| FI74995B (en) | FOERFARANDE FOER MICROBIOLOGICAL FRAMSTAELLNING AV FERMENTERINGSMEDIA, SOM INNEHAOLLER ANTINGEN NEBRAMYCIN-5 'ELLER EN BLANDNING AV NEBRAMYCIN-2, NEBRAMYCIN-4 AND NEBRAMYCIN-5'. | |
| Chen et al. | Optimization of fermentation conditions for protease production from Bacillus subtilis | |
| SU1479513A1 (en) | Method of producing formate dehydrogenase | |
| Vu-Trong et al. | Stimulation of enzymes involved in tylosin biosynthesis by cyclic feeding profiles in fed batch cultures | |
| KR920009511B1 (en) | Method for producing l-lysine | |
| SU675980A1 (en) | Method of producing l-lysine | |
| RU2081175C1 (en) | Strain of bacillus subtilis - a producer of riboflavin (variants) | |
| KR880001945B1 (en) | Process for preparing l-glutamic acid by microorganism | |
| CN112725245A (en) | Composite flora culture medium |