CS239826B1 - Method of processing of saliva isoenzyme of alpha amylase - Google Patents

Method of processing of saliva isoenzyme of alpha amylase Download PDF

Info

Publication number
CS239826B1
CS239826B1 CS843856A CS385684A CS239826B1 CS 239826 B1 CS239826 B1 CS 239826B1 CS 843856 A CS843856 A CS 843856A CS 385684 A CS385684 A CS 385684A CS 239826 B1 CS239826 B1 CS 239826B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
alpha amylase
isoenzyme
salivary
solution
volume
Prior art date
Application number
CS843856A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Other versions
CS385684A1 (en
Inventor
Jiri Zemek
Ludovit Kuniak
Viera Krajnakova
Original Assignee
Jiri Zemek
Ludovit Kuniak
Viera Krajnakova
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jiri Zemek, Ludovit Kuniak, Viera Krajnakova filed Critical Jiri Zemek
Priority to CS843856A priority Critical patent/CS239826B1/cs
Publication of CS385684A1 publication Critical patent/CS385684A1/cs
Publication of CS239826B1 publication Critical patent/CS239826B1/cs

Links

Landscapes

  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

239826
Vynález sa týlka spós-obu přípravy slin-riého izoenzýmu alfa amylázy.
Popři chromolytických metodách na gé-locli z molekulových sít a ionexov, medzi•techniky separácie a izolácie enzýmov pat-ří metoda afinitnej chromatografie. E. Star-kenstein a O. Holmbergh k izolácii alfa a-mylázy z biologického- materiálu použili n-a-tívny škrob [Έ. Stadkenstein, O. Holmbergh:Biochem. Z. 24, 21-0 (1910); O. Holmbergh:Biochem. Z. 25-8, 134 (1933)]. Natívny škrobako afinant obecného typu bol ďalej použitýaj k izolácii alfa amylázy z Clostridium ace-to-butilicum [D. J. D. Hockenhull, D. Her-bert: Biochem. J. 39, 102 (1945) ] a alfa a-mylázy iz ja-čmeňa [S. Schwimmer, A. K.Balls: J. Biol. Chem. 179, 1063 (1949)]. Ako-afinitný ligand bol použitý a) glyko-gén, via-zaný kovalentnou vazbou na povrch modifi-kovaného dextránu [R. Tkachuk: FEBS Lett.52, ©6 (1975)]. Natív-ny škrobový substrát soh-1'adom na -nehomogenitu partikul a ne-vhodné .hydrodynamické vlastnosti nemá vy-hovujúice vlastnosti ani afinitný ligand a-mylolytických enzýmov [R, M. Sandsted, S.Ueda: Japan Soc. Starch. Sci. 17 215 (1969)].Tento- postup ani použitie dalších afinantovna báze modifikovaných alfa-glukáncv ne-zabezpečoval ochranu amylázového glyko-proteinu slinnej izoamylázy pre-d účink-ombak-teriálnych hydroláz nachádzajúcich -sav dutině ústnej [Μ. P. Silvanovich, R. D.Hill: Anal. Biochem. 73, 430 (1976)]. Opti-málný postup neza-bezpečuje -ani použitieproteinového i-nhibítora alfa amylázy izolo-vaného z frakcie albumínov pšeničných zrna viazaného.-na modifikovaný dextrán kova-lentnou vazbou. Uplatňujú sa totiž vysokénešpeicificlké sorpcie nosné] matrice vočisprievodným proteinom a nízká účinnostafinitného liganda viazaného n-a povrch ma-trice bez pacera, na čo poukazujú výsledkys alfa amylázou slepačieho pankreasu, fu-d-ských stín a alfa -amylázou larvy Tenebriomoli-tor [V. Bu-onocore, E. Poerico, F. Gra-menzi. V. Síláno:. J. Chromatogr. 114, 109(1975)].
Uvedené nedostatky rieši tento vynález,ktorého podstatou je, že čerstvý sekrét l'ud-ských slin, ale-bo biologických tekutin ob-sahujúci slinný izoenzým alfa amylázy -sazriedi desatinou objemu acetóno-m a získanýroztok sa centrifuguje pri 2 000 až 3 000 gpo dobu 10 až 20 rninú-t, supernatant sa ad-justuje na pH 7 a pomocou acetonu vychla-deného na teplotu —10 až —-20 °C sa upravípo kvapíkách výsledná kon-centrácia aceto-nu v roztoku -na 40 až 50 θ/o objemových -azískaná suspenzia sa centrifuguje pri 2000až 30-00 g po dobu 10 až 20 minút, načo sazískaný supernatant obsahujúci alfa amy-lázu přečistí afinitnou metodou pomocoulektínu specifického k N-acetyl-D-glukóz-a--mínu a ku kyselině siálovej viaza-nej kova-lentnou vazbou, -na povrch perlovej celuló-zy a následovně sa uvolní enzým alfa amy-láza z komplexu s lektínom účinko-m 0,02 4 až 0,1 mol. 1_1 roztoku N-acetyl-D-glukóza-mínu, alebo 2 až 5 % hmotnostných glyko-gén u v 0,0il až 0,05 mol. I”1 fosfátovom ú-strojnom roztoku a pH až 7,2 a objeme 5 až10 násobné vyššom ako je napúčací objempoužitého afinantu. Výho-dou navrhovaného spós-obu je vyso-ká afinita kóvalentne viazaného lektínu,specifického k N-acetyl-D-gluikózamínu akyseli-ne -siálovej ku enzýmovému glykopro-teinu silného izoenzýmu alfa amylázy atým aj vysoká účinnost in-terakcie, nízké vý-robně náklady a skuto-čnosť, že alfa amylá-za sorbovaná na povrchu nosiča :s koválent-ne viaz-a-ným lektínom .uvedeného typu jestabilizovaná proti inaktivačným vplyvomhydroláz mikroorganizmov, přítomných vdutině ústnej. Přikladl Čerstvý sekrét fudských slin (200 ml) sazriedi 20 ml acetonu a získaný roztok sacentrifuguje pri 2000 g po dobu 20 minút azískaný supernatant sa--adjustuje n-a pH 7pomocou 22-0 ml 0,02 mol. I“1 fosfátovýmpufrom a přidá sa po kvapkách (30 ml zaminutu) 330 ml acetonu vychla-deného nateplotu —10 °C. Vytvořená suspenzia sa cen-trifuguje při 2 000 g po dobu 20 minut a zís-kaný supernatant obsahujúci -alfa amyláz-o-vú aktivitu sa přidá k 40 ml gélu napučanejperlovej celulózy, aktivova-nej pomocou 2--chlórmetyloxiránu -na oxirán celulózy (su-šina 1-3%; stupeň substitúcie celulózy oxi-rámu 0,42 mmol.g"1) s kóvalentne navia-zaným lektínom, specifickým k N-acetyl-D--glulkózamínu a kyselině si-alovej (připra-vený z Triticum vulgarisj o koncentrácii40 -mg . g1_ celulózy. Enzým alfa e-myláza saviaže -na imobilizovaný lektí-n ipo do-bu 1hodiny za miešania pri teplote 20 °C, perlo-vá celulóza s kóvalentne viazaným lektí-nom a -afinttne vi-azan-ou alfa amylázou saoddělí dakantáciou a premyje 500 ml 0,2mol. Γ1 fosfátového ús-tojného roztoku opH 7 a přečištěný enzýmový glykoproteí-nslinnej alfa amylázy sa uvolní 400 ml 0,02mol. I-1 N-acetyl-D-glukózamínu v 0,01 m-oíl. . 1_1 fosfátovom ústojnom roztoku o pH 7.Celková aktivita alfa amylázy 1 mkat o špe-cifickej aktivitě 0,25 pkat, mg"1 -a stuipniprečistenia 14,1. Příklad 2
Postupuje sa ako v příklade 1 s tým roz--dielom, že roztok enzýmu zriedený desa-tinou objemu acetonu sa centrifuguje pri3 000 g po dobu 10 minút, adjustovaný su-pernataňt 0,02 mol. I-1 fosfátovým tlmivýmroztokom na pH 7 sa upravuje s 226 acetó-nuvyichl-adeného na teplotu —20 °C po kvap-kách, získaná suspenzia sa centrifuguje pri3 000 g po dobu 10 minút. K afinitnému pre-čisteniu sa použil obdobný typ lektínu imo-

Claims (1)

  1. 239826 5 bilizovaného za ro-vnakýeh podmienok akov příklade 1, izolovaný bol však zo zemiakov(Solárium). Vytesnenie enzymu alfa amylá-zy z komplexu s imobilizovanýim lektínomsa previedlo- 400 ml 0,05 mol. I-1 fosfátovýmústrojným roztokom o pH 7,2, 'obsahujúcom0,1 mol. k J N-acetyl-D-glukózamín. Výta-žek alfa amylázy a stupeň prečistenia boltaký alko je uvedené v příklade 1. P r í k 1 a d 3 Postupuje sa alko v příklade 1 s tým roz-dielom, že k vytesneniu enzýmu alfa amylá-zy z komplexu s lektínom sa použilo 200 mlroztoku 2 % hmotnostných glýkogénu (z ipe-čene zajacaj. Výťažok alfa amylázy bol 1,04mkat o špecifickej aktivitě 0,24 jukat.mg-1a stupni prečistenia rovnakom ako v příkla-de 1. Přikládá Postupuje se ako v přiklade 2 s tým roz- dielom, že ik vytesneniu enzymu alfa amy-lázy sa použije 200 ml rozteku 5 θ/o hmot-nostných glýkogénu (z kvasiniek Saccharo-myces cerevisiaej. Získala sa alfa amyláza*o celkovej aktivitě 1,08 mkat a sípecifičkejaktivitě 0,25 ,ukat. mg-1. Stupeň prečisteniabol 13,8. Výnález može nájsť široké uplatnenie vmedicíně a klinickej biochemii pri prípraveenzýmových štandardov glyfcozylovanýchalfa amyláz o vysokej čistotě, pre účely kon-troly správnosti a přesnosti metod použí-vaných v rutinnej analýze tělových tekutin,predovšetikým pri diferenciálnej biochemic-kej diagnostike poruch pankreasu a paro-tis. Slinný izoenzým -alfa amylázu možnoďalej použit v základnom biochemickom aenzymo-logickom výskume a pre přípravuvzácných oligosacharidOv maltózového typu. r R E D Μ E T Sposob přípravy stinného izoenzýmu alfaamylázy vyznačený tým, že čerstvý sekret1'udských slin, alebo biologických tekutinohs-ahujúci stinný izoenzým alfa amylázy sazriedl desatinou objemu acetónom a získa-ný roztok sa oentrifdguje pri 2 000 až 3 000gramov po dobu 10 až 20 minút, supernatantsa adjustuje na pH 7 a pomocou acetonuvychladeného na teplotu —10 až —20 °C saupraví po kvapkách výsledná koncentráciaacetonu v roztoku na 40 až 50 % objemo-vých a získaná suspenzia sa centrifugujepri 2 000 až 3 000 g po dobu 10 až 20 minút, VYNÁLEZU nač-ο sa získaný supernatant obsahujúci alfaamylázu přečistí afinitnou metodou pomo-cou lektínu specifického k N-a-cetyl-D-glu-kózamínu a ku kyse-line sialovej viazanejkov-alentnou vazlbou na povrch perlovej ce-lulózy a následovně sa uvolni enzým alfaz komplexu s lektínom účinkom 0,02 až 0,1mol. I-1 roztokom N-acetyl-D-gluikózamínu,alebo 2 až 5 % hmotnostných glýkogénu v0,01 až 0,05 mol. I-1 fosfátovom ús-tojnomroztoku a pH 7 až 7,2 a objeme 5 až 10 ná-sobné vyššom alko je n-apúčací objem použi-tého -afinantu.
CS843856A 1984-05-23 1984-05-23 Method of processing of saliva isoenzyme of alpha amylase CS239826B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS843856A CS239826B1 (en) 1984-05-23 1984-05-23 Method of processing of saliva isoenzyme of alpha amylase

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS843856A CS239826B1 (en) 1984-05-23 1984-05-23 Method of processing of saliva isoenzyme of alpha amylase

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS385684A1 CS385684A1 (en) 1985-06-13
CS239826B1 true CS239826B1 (en) 1986-01-16

Family

ID=5379876

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS843856A CS239826B1 (en) 1984-05-23 1984-05-23 Method of processing of saliva isoenzyme of alpha amylase

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS239826B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS385684A1 (en) 1985-06-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Jameson et al. Inhibition of microtubule assembly by phosphorylation of microtubule-associated proteins
Tamura et al. Purification to homogeneity and properties of two D-alanine carboxypeptidases I From Escherichia coli.
Collett et al. Protein kinase activity associated with the avian sarcoma virus src gene product.
Watkins Enzymes of Trichomonas foetus. The action of cell-free extracts on blood-group substances and low-molecular-weight glycosides
Rauvala et al. Studies on cell adhesion and recognition. III. The occurrence of α-mannosidase at the fibroblast cell surface, and its possible role in cell recognition
Lebherz et al. A Class I (Schiff Base) fructose diphosphate aldolase of prokaryotic origin: Purification and properties of Micrococcus aerogenes aldolase
Nishikawa et al. High expression of an N-acetylglucosaminyltransferase III in 3′-methyl DAB-induced hepatoma and ascites hepatoma
Karn et al. Evidence for post-transcriptional modification of human salivary amylase (Amy1) isozymes
Kiyohara et al. Purification and characterization of β-N-acetylhexosaminidases and β-galactosidase from Streptococcus 6646 K
Dey Characteristic features of an α‐galactosidase from mung beans
FURUTA et al. Purification and characterization of glucosyltransferases from Streptococcus mutans 6715
Fushuku et al. A new endo-beta-galactosidase releasing Gal alpha 1—3Gal from carbohydrate moieties of glycoproteins and from a glycolipid.
Wagner et al. Glycoprotein metabolism: A UDP-galactose: Glycoprotein galactosyltransferase of rat serum
Kitto et al. Studies on malate dehydrogenases and aspartate aminotransferases from Neurospora crassa
CS239826B1 (en) Method of processing of saliva isoenzyme of alpha amylase
Von Nicolai et al. A newly discovered sialidase from Gardnerella vaginalis
Yagi et al. Glycosidases of ehrlich ascites tumor cells and ascitic fluid—Purification and substrate specificity of α-N-Acetylgalactosaminidase and α-galactosidase: Comparison with coffee bean α-galactosidase
Roon et al. [37a] ATP: Urea amidolyase (ADP)(Candida utilis)
Rossi et al. A general method of purification of adenosine deaminase by affinity chromatography
Balsamo et al. An N-acetylgalactosaminyltransferase and its acceptor in embryonic chick neural retina exist in interconvertible particulate forms depending on their cellular location.
US3702804A (en) Hydrolytic enzymes chemically coupled to cellulose ethers
Patt et al. Ectoglycosyltransferase activity in suspensions and monolayers of cultured fibroblasts
Marmor et al. Studies on methyl-deficient methionine transfer ribonucleic acid from Escherichia coli
DiCioccio et al. Rapid procedures for determination of endo-N-acetyl-α-d-galactosaminidase in Clostridium perfringens, and of the substrate specificity of exo-β-d-galactosidases
Hüttermann Studies on a bacteriolytic enzyme of Archangium violaceum (Myxobacteriales) II. Partial purification and properties of the enzyme