CS239035B1 - Method of controlling histamine in mackerel fish - Google Patents
Method of controlling histamine in mackerel fish Download PDFInfo
- Publication number
- CS239035B1 CS239035B1 CS836838A CS683883A CS239035B1 CS 239035 B1 CS239035 B1 CS 239035B1 CS 836838 A CS836838 A CS 836838A CS 683883 A CS683883 A CS 683883A CS 239035 B1 CS239035 B1 CS 239035B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- fish
- histamine
- muscle
- raw material
- hours
- Prior art date
Links
Landscapes
- Meat, Egg Or Seafood Products (AREA)
Abstract
Podstata testu histidindekarboxylační aktivity spočívá v dvojím stanoveni nlstaminu ve svalovině makrelovitých ryb metodou tenkovratvé ehromatografie. Prvé stanoveni se provádí ihned po rozmražení ryb, druhé po 24 hodinovém uložení téže rybí svaloviny při teplotě 20 až 22 °C. V případě nárůstů histaminu u rybí suroviny uložené 24 hodiny při 20 az 22 °C nad koncentraci 200 mg v kg svaloviny se jedná o ryby s potenciální schopností tvorby histaminu, nevhodné pro další zpracováni uzením, fiešení lze využit především v mrazírensko - rybném průmyslu, dále v konzervárnách zpracovávajících rybí surovinu, popř, je možno využít testu histidindekarboxylační aktivity i při vyšetřování zdravotní nezávadnosti krmiv živočišného původu.The essence of the histidine decarboxylation activity test consists in a double determination of histamine in the muscle of mackerel fish using the thin-layer chromatography method. The first determination is carried out immediately after thawing the fish, the second after 24 hours of storage of the same fish muscle at a temperature of 20 to 22 °C. In the case of increases in histamine in fish raw material stored for 24 hours at 20 to 22 °C above a concentration of 200 mg per kg of muscle, these are fish with a potential ability to produce histamine, unsuitable for further processing by smoking. The solution can be used primarily in the freezing and fishing industry, as well as in canneries processing fish raw material. Alternatively, the histidine decarboxylation activity test can also be used to investigate the health safety of animal feed.
Description
Výnález se týká způsebu kentrely histaminu a makře lev 1tých ryb. Dosud se prováděla kontrola dovážené rybí suroviny ihned po dodání do ČSSR a pak až u finálních výrobků - uzených ryb.The invention relates to a method of histamine centre and lion fish macro. Up to now, the imported fish raw material was inspected immediately after its delivery to Czechoslovakia and then only for the final products - smoked fish.
V případě zjištění přítomnosti histaminu byly takové ryby, at již syrové nebo uzené, zpracovávány na rybí moučky. Toho času, jak vyplývá z provedené rešerše v odborné literatuře i z patentové třídy G 01 N 33/12, běžně používané metody neumožňují identifikaci partií ryb s t.zv. potenciální schopností tvorby histaminu, t.zn. ryb, u nichž dochází k nárůstu histaminu teprve v procesu uzení nebo nevhodného skladování.When histamine was found, such fish, whether raw or smoked, were processed into fish meal. At that time, as is clear from the literature search and the patent class G01N 33/12, the commonly used methods do not allow identification of fish lots with the so-called " potential histamine-forming capacity; fish which only increase histamine in the process of smoking or improper storage.
Ryby s potenciální schopností tvorby histaminu v mraženém stavu neobsahují vyšší hladinu histaminu a nevykazuji senzorické změny proti rybám nezávadným, takže je nelze smyslově ani analyticky stanovením histaminu zjistit. Vznik histaminu -je vázán na přítomnost kontaminující mikroflóry, která za určitých podmínekjběhem technologie uzení, popř. nevhodného skladování, produkuje enzym histidindekarboxylázu, který dekarboxyluje přítomný histidin v rybí svalovině na toxický histamin. Dekarboxylace probíhá podle následujícího schématu:Fish with a potential for the formation of histamine in the frozen state do not contain a higher level of histamine and do not show sensory changes against harmless fish, so they cannot be detected sensitively or analytically by histamine determination. The formation of histamine is linked to the presence of contaminating microflora, which under certain conditions during the smoking process, respectively. Inadequate storage, it produces the enzyme histidine decarboxylase, which decarboxylates the present histidine in fish muscle to toxic histamine. The decarboxylation proceeds according to the following scheme:
- CH- CH - COOH , «= - CH - CH_ - NHO + CO- CH - CH - COOH, - = CH - CH - NH O + CO
II 2 I —- ι I 2 2 2 řU ZMH NH2 ’%zNH histidin histamin /6-4-imidazolyl/«tZ- aminopropionová ^-4-imidazolyletylamin/ kyselinaII I 2 - I 2 2 ι 2 Ru 2 NH z MH '% of NH histamine histidine / 6-4-imidazolyl / «^ -4 TZ-aminopropionic imidazolyletylamin acid /
- 2 239 035- 2 239 035
U partií ryb s potenciální schopností tvorby histaminu pak dochází ke zvýšení obsahu histaminu z několika jednotek, popř. desítek miligramů, během uzení nebo skladování až na toxické dávky, t.j. několik set miligramů v kg rybí svalovin y. Způsob stanovení histidindekarboxylační aktivity /dále jen HDA/ umožňuje ještě před zahájením uzení spolehlivě určit surovinu, ze které by po technologickém zpracování vznikl hygienicky závadný výrobek· Podstata navrhovaného způsobu kontroly HDA. spočívá ve dvojím stanovení histaminu v rybí suroví ně metodou tenkovrstvé chromatografie. Stanovení HDA se provádí podle následujícího pracovního postupu: analyzovaná rybí svalovina se ihned po rozmražení zhomogenizuje, homogenát roz dělí na dvě části, při čemž v první části se stanoví' obsah histaminu, druhá část se uloží při teplotě 20 až 22°C na dobu 24 hodin do termostatu a po této době se stanoví obsah histaminu v druhé části, při čemž nárůst obsahu histaminu v druhé 'In fish species with potential histamine production the histamine content is increased from several units. tens of milligrams during smoking or storage up to toxic doses, i.e. several hundred milligrams per kg of fish muscle. The method of determining histidine decarboxylation activity (hereinafter HDA) allows to determine reliably the raw material that would produce a hygienically harmful product after technological processing before the smoking process. consists of two determinations of histamine in fish raw material by thin-layer chromatography. The HDA determination is carried out according to the following procedure: the fish muscle analyzed is homogenized immediately after thawing, the homogenate is divided into two parts, the first part determining the histamine content, the second part stored at 20 to 22 ° C for 24 hours. hours into the thermostat and thereafter the histamine content of the second portion is determined, with an increase in the histamine content of the second portion.
-i části o více než 200 mg · kg , ve srovnání s první částí, určuje makrelovité ryby s potenciální schopností tvorby hista minu.-i portions of more than 200 mg · kg, compared to the first portion, identify mackerel fish with a potential for histamine formation.
Zavedením vynálezu do praxe lze vyloučit zpracování partií makrelovitých ryb s potenciální schopností tvorby histaminu, t.j. ryb, ze kterých by byla vyrobena hygienicky závadná potravina s vysokým obsahem histaminu. Vzhledem k tomu, že ryby s potenciální schopností tvorby histaminu ve zmraženém stavu nevykazují vysoké hladiny histaminu /vzniká teprve v procesu uzení/ a nejsou hygienicky nebo senzoricky jinak závadné, lze doporučit takovouto surovinu ke zpracování marinací, popř. na konzervy typu ryby v tomatě, kdy změnou technologických podmínek zpracování rybí suroviny dojde k za- 3 239 035 mezení vzniku histaminu ovlivněním činnosti histidindekarboxylačních enzymů, produkovaných kontaminujícími mikroorganizmy. Takto zpracovaná rybí surovina s potenciální schopností tvorby histaminu poskytne plnohodnotný potravinářský výrobek bez nežádoucích ekonomických ztrát a ohrožení zdraví konzumentů.By practicing the invention, processing of mackerel fish with a potential for histamine formation, i.e., fish, from which a high-histamine hygienically objectionable foodstuff would be produced, can be avoided. Given that fish with a potential for histamine formation in the frozen state do not show high levels of histamine (they arise only in the smoking process) and are not otherwise hygienically or sensoryly defective, it is recommended to use such a raw material for processing marinations, respectively. to fish-based cans in tomato, when changes in the technological conditions of processing fish raw material will reduce the production of histamine by affecting the activity of histidine decarboxylation enzymes produced by contaminating microorganisms. Fish processed in this way with a potential histamine-forming capacity will provide a full-fledged food product without undesirable economic losses and endangering the health of consumers.
PříkladExample
Způsob stanovení HDA je následující: svalovinu vyšetřovaných ryb bezprostředně po rozmražení zhomogenizovat a rozdělit na část I. a H. Část I. vzít ihned k rozboru, část II uložit při teplotě 20 až 22°C po dobu 24 h. v termostatu.The method of HDA determination is as follows: homogenise the muscle of the examined fish immediately after thawing and divide it into parts I and H. Take part I immediately for analysis, store part II at 20 to 22 ° C for 24 h. In a thermostat.
Z Části I. navážit 10 g svaloviny, přidat 25 ml destilované vody a 5 ml HC1, c / HC1 / » 6 mol . l”\ Vzniklou směs homogenizovat 120 sec. v laboratorním mixeru, zfiltrovat a tak to získaný filtrát 1. uložit do chladničky. Stejným způsobem zpracovat následující dan i svalovinu II., uloženou 24 hod. při 20 až 22°C v termostatu - získáme filtrát II. Z filtrátuFrom Part I weigh 10 g of muscle, add 25 ml of distilled water and 5 ml of HCl, c / HCl / 6 mol. Homogenize the resulting mixture for 120 sec. in a laboratory mixer, filter and so collect the obtained filtrate in a refrigerator. In the same way, process the following dan and muscle II, stored 24 hours at 20 to 22 ° C in a thermostat - we obtain filtrate II. From the filtrate
I. a II. nanést na chromatografickou desku silufol po 10 jul a současně nanést i standart histaminu, který svou koncentra cí odpovídá 200 mg histaminu · kg svaloviny /návrh hygienického požadavku na obsah histaminu u makrelovitých ryb/, t.j. 0,5Jag histaminu. Po zaschnutí nanesených skvrn dát des ku vyvíjet do směsi aceton - amoniak 95 : 5. Jakmile čelo vy víjecí směsi dosáhne vzdálenosti asi 100 mm desku vyjmout, usušit. Následuje postřik roztokem ninhydrinu v etanolu c / ninhydrinu / » 0,2 g . 100 g . Zviditelnění skvrn se provede zahřátím v laboratorní sušárně při 60°C po dobu 300 sec. Skvrna histaminu je červenofialové barvy. Histidin zůstává na startu. V případě zvýšení obsahu histaminu u rybí suroviny uložené 24 hodin při 20 až 22°C nad 200 mg 0 kg se jedná o surovinu s histidindekarboxylační aktivitou.I. and II. apply 10 ml of silufol to the chromatographic plate and at the same time apply a histamine standard corresponding to a concentration of 200 mg of histamine · kg of muscle (draft hygienic requirement for histamine content in mackerel fish), ie 0.5 µg of histamine. After the spots have dried, allow the plate to develop into an acetone-ammonia 95: 5 mixture. Once the face of the winding mixture reaches a distance of about 100 mm, remove the plate, dry. This is followed by spraying with a solution of ninhydrin in ethanol (ninhydrin) »0.2 g. 100 g. Spot visualization is performed by heating in a laboratory oven at 60 ° C for 300 sec. The histamine stain is red-violet. Histidine remains at the start. In the case of an increase in the histamine content of a fish raw material stored for 24 hours at 20-22 ° C above 200 mg of 0 kg, it is a raw material with histidine decarboxylation activity.
239 033239 033
Metodu lze použít pro mezioperační a vstupní kontrolu ve všech výrobnách a závodech zpracovávajících nebo skladujících rybí surovinu.The method can be used for in-process and initial control in all factories and plants processing or storing fish raw material.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS836838A CS239035B1 (en) | 1983-09-12 | 1983-09-12 | Method of controlling histamine in mackerel fish |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS836838A CS239035B1 (en) | 1983-09-12 | 1983-09-12 | Method of controlling histamine in mackerel fish |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS683883A1 CS683883A1 (en) | 1985-05-15 |
CS239035B1 true CS239035B1 (en) | 1985-12-16 |
Family
ID=5416326
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS836838A CS239035B1 (en) | 1983-09-12 | 1983-09-12 | Method of controlling histamine in mackerel fish |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CS (1) | CS239035B1 (en) |
-
1983
- 1983-09-12 CS CS836838A patent/CS239035B1/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CS683883A1 (en) | 1985-05-15 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Vadez et al. | Asparagine and ureide accumulation in nodules and shoots as feedback inhibitors of N2 fixation in soybean | |
Vidal-Carou et al. | Histamine and tyramine in Spanish wines: their formation during the winemaking process | |
Afshari et al. | Quality evaluation of Iranian honey collected from Khorasan province, Iran | |
Warriss et al. | Reduction of carcass yield in transported pigs | |
Bal-Prylypko et al. | Influence of starter cultures on microbiological and physicalchemical parameters of dry-cured products. | |
Tomasevic et al. | The use and control of nitrites in Serbian meat industry and the influence of mandatory HACCP implementation | |
Frylinck et al. | The beef tenderness model | |
CS239035B1 (en) | Method of controlling histamine in mackerel fish | |
Scholz | Radiation pasteurized shrimp and crabmeat | |
Huang et al. | Use of HPLC and FTIR as a tool for analysis of lactic acid in restructured fish products | |
Vasconi et al. | Histamine formation in a dry salted twaite shad (Alosa fallax lacustris) product | |
Pavlović et al. | Histamine levels in fish samples collected from Serbian market in 2018 | |
Duqué et al. | Quantitative approach to assess the compliance to a performance objective (PO) of Campylobacter jejuni in poultry meat in France | |
Ramos et al. | Phenotypic correlations among quality traits of fresh and dry-cured hams | |
Daszkiewicz et al. | Quality of meat from young bulls in relation to its ultimate pH value. | |
Ahmed et al. | Aflatoxicosis in dairy cow: A review | |
Orina | Quality and safety characteristics of honey produced in different regions of Kenya | |
Muir et al. | Effects of growth pathway on beef quality in 18-month-old Angus and South Devon✕ Angus pasture-fed steers | |
US11185083B2 (en) | Methods of reducing or eliminating pathogenic bacteria | |
Tuytschaever et al. | Enhancing water efficiency in the processing of leafy greens: Efficacy of inline chlorine and pH control systems in reducing microbial contamination and limiting DBP formation | |
Ribeiro | Advancing the Science of Dry-Aged Beef | |
US3993784A (en) | Controlled fermentation acidity of brined cucumbers | |
Milićević et al. | The presence of ochratoxin A residue in blood plasma of slaughtered swine | |
Karamah et al. | The influence of ozone dosage, exposure time and contact temperature of ozone in controlling food quality (case study: tofu) | |
Wang | Spread of Escherichia coli O157: H7 during flume washing and drying of fresh-cut romaine lettuce |