CS236530B1 - Způsob stanovení aktivity enzymu lecitincholesterolacyltransferázy - Google Patents
Způsob stanovení aktivity enzymu lecitincholesterolacyltransferázy Download PDFInfo
- Publication number
- CS236530B1 CS236530B1 CS836473A CS647383A CS236530B1 CS 236530 B1 CS236530 B1 CS 236530B1 CS 836473 A CS836473 A CS 836473A CS 647383 A CS647383 A CS 647383A CS 236530 B1 CS236530 B1 CS 236530B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- cholesterol
- filter paper
- radioactive
- impregnated
- activity
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Řešení se týká způsobu stanovení aktivity enzymu lecitin cholesterol acyltransferázy. Filtrační papír s výhodou tvaru disku o průměru 6 až 9 mm se napustí dávkou 2 až 8 «1 roztoku radioaktivního cholesterolu o koncentraci 0,1 až 2jumol/ml a radioaktivitě 0,36 až 3,6 MBq/ml. Vysušený filtrační papír se vloží do tmavě zbarvených zkumavek, do kterých se napipetuje 150 až 300 /ti zkoušené tělní tekutiny obsahující lipoproteiny například krevní plasmy, krevního sera, lymfy nebo folikulární tekutiny. Nechá se v chladu při teplotě 2 až 8 °C po dobu 12 až 24 hodin hodin a poté se vyjme filtrační papír a odebere se 20 až 50 ul takto označené tělní tekutiny k extrakci a chromatografické a radiometrické analyse podílu volného a exterifikovaného cholesterolu před a po inkubaci. K roztoku radioaktivního cholesterolu, kterým se napustí filtrační papír, lze přidat antioxidant. Vynález lze využít pro diagnostiku poruch lipidního metabolismu.
Description
Vynález se týká způsobu stanovení aktivity lecitincholesterolacyltransferázy.
Lecitincholesterolacyltransferáza, déle jen LCATX je enzym lipidního metabolismu, který zprostředkuje v krevní plasmě i jiných tělních tekutinách esterifikací volného cholesterolu přenosem vyšší mastné kyseliny z lecitinu za vzniku cholesteryl esterů a lysolecitinů viz Glomset J. A., Biochim. Biophys. Acta 1962, 65, 128-135. Aktivita LCAT je měřítkem rychlosti přenosu cholesterolu mezi krevní plasmou a tkáněmi v organismu a podle nejnovějších výzkumů je dynamickým indikátorem poruch lipidního metabolismu zejména u pacientů ohrožených kardiovaskulárním onemocněním viz Dobiášová Μ., 1983,
Advances in Lipid Research, Vol. 20, Academie Press, New York.
Až dosud jsou však metody stanovení aktivity LCAT nejednotné, mezi různými laboratořemi špatně srovnatelné a pro svoji nákladnost a pracnost jen omezeně využitelné v klinické praxi.
Existují tři typy metod na stanovení aktivity LCAT. První z nich je založena na měření aktivity LCAT jednotlivého vzorku na jednotném substrátu, který se připravuje tepelnou inaktivací krevní plasmy nebo sera (které se spojují z více dárců) 8 následujícím značením radioaktivním volným cholesterolem, který se do enzymaticky inaktiVniho sera popřípadě plasmy přidává v emulsi s albuminem. Takto připravený tzv. společný substrát se smísí s enzymaticky aktivním vzorkem, inkubuje a po chromatografickém rozdělení a změření radioaktivity se stanoví podíl esterifikovaného cholesterolu, který je produktem reakce viz Glomset J. A. a Wright J. L., 1964, Biochim. Biophys. Acta, 89, 266-276. Nedostatkem této metody je nehomogenní rozdělení radioaktivního cholesterolu v tepelně inaktivovaném částečně denaturovaném substrátu, rychle klesající stabilita takto připraveného substrátu a závislosti kvality substrátu na individuálních dárcích.
Modifikací tohoto typu metody je příprava společného radioaktivního substrátu z apoproteinu AI, liposomů radioaktivního cholesterolu s lecitinem a albuminu viz Pownall H. J.,
Van Winkle W. Β., Pao Q., Rohde M, a Gotto A. M. Jr. 1982, Biochim. Biophys. Acta 713, 494-503. Tento umělý substrát je neúměrně nákladný, dostupný jen laboratořím, které připravuji apoprotein AI a kromě toho i při nízkých teplotách, -20 °C klesá jeho stabilita.
Další typ metod dle Stokke Κ. T. a No rum K. R., 1971, Scand. J. clin. Lab. Invest.
27, 21-27 je záložen na stanovení aktivity LCAT v plasmě nebo seru, které slouží současně jako substrát. Při této metodě se dočasně inhibuje LCAT 5,5-dithiobis-2-nitrobenzoovou kyselinou, pak se plasma označí radioaktivním cholesterolem aplikovaným v emulsi s albuminem. Po určité době inkubace za tepla se enzym reaktivuje přidáním merkaptoetanolu a po reaktivaci se sérum opět inkubuje při 37 °C e potom běžným způsobem stanoví podíl nově vzniklého cholesteryl esteru. Nevýhodou této metody je, že vedle problematického zavádění radioaktivního cholesterolu v emulsi se přidává ještě chemický inhibitor a reaktivátor, které mohou být zdrojem chyb, tak i rozdílů v aktivitě LCAT mezi nativním a chemicky ovlivněným systémem.
Třetím typem metod je stanovení úbytku volného cholesterolu v plasmě po inkubaci nativní plasmy nebo sera buď plynovou chromatografií viz Marcel Y. a Vezinové C. 1973, Biochim. Biophys. Acta 306, 497-504 nebo nezymatickým stanovením koncentrace volného cholesterolu viz Nagasaki T. a Akanuma Y., 1977, Clin. Chim. Acta 75, 371-375;
Dieplinger H. a Kostner C., 1980, Clin. Chim. Acta 106, 319-324. Oba tyto způsoby stanovení úbytku volného cholesterolu, který v LCAT reakci činí pouze 1 až 4 %, v časovém úseku, kdy reakce probíhá lineárně, jsou jako všechna nepřímá měření, zatíženy vysokou metodickou chybou.
Předmětem vynálezu je způsob stanovení aktivity enzymu lecitincholesterolacyltransferázy, jehož podstatou je, že filtrační papír s výhodou tvaru disku o průměru 6 až 9 mm se napustí dávkou 2 až 8jul, roztoku radioaktivního cholesterolu o koncentraci 0,1 až 2yumol/nil a radioaktivitě 0,36 až 3,6 MBq/ml, načež po vysušení se filtrační papír vloží do tmavě zbarvených zkumavek s rovným dnem o obsahu 2 až 5 ml a do těchto zkumavek se napipetuje 150 až 300 jul tělní tekutiny obsahující lipoproteiny s výhodou krevní plasmy, krevního sera, lymfy, folikulérní tekutiny' a nechá se v chladu při teplotě 2 až 8 °C po«dobu 12 až 24 hodin a poté se vyjme filtrační papír a odebere se 20 až 50jul takto označené tělní tekutiny k extrakci a chromatografické a radiometrické analyse podílu volného a esterifikováného cholesterolu před a po inkubaci.
Způsobem dle vynálezu se dosáhne homogenního značení lipoproteinů substrátu např. krevní plasmy, sera a jiných tekutin, obsahujících lipoproteiny, radioaktivním cholesterolem značeným radionuklidy 1^C nebo za chladu. Značení se provádí interakcí jemně dispergovaného radioaktivního cholesterolu na filtračním papíru, případně stabilizovaného meso-2,3-bis (3,4-dihydroxy benzyl)-butanem, s tekutinami obsahujícími lipoproteiny po dobu 12 až 24 hod při teplotách nepřevyšujících 8 °C.
Výhodou uvedeného způsobu značení substrátu je, že je vyloučen negativní vliv chemických látek a denaturace teplem na reaktivitu substrátu. Ve srovnání s metodami měřeni úbytku volného cholesterolu je tímto způsobem zajištěna vysoká citlivost a reprodukovatelnost stanovení. Hodnota korelačního koeficientu pro paralelní měření 62 vzorků LCAT aktivitě je r = 0,973. Dalčí výhodou je ekonomická úspora při nižší spotřebě radioaktivní sloučeniny, která je asi 5 až 10x nižší, časová úspora při stanoveních a možnost okamžitého použití pro stanovení LCAT aktivity jednotlivých vzorků i celých sérií.
Metoda měření aktivity LCAT uvedeným způsobem je rychlá, vysoce citlivá, reprodukovatelná a vzhledem k standardnosti přípravy radioaktivního substrátu srovnatelná mezi laboratořemi a pro svoji jednoduchost použitelná k zjišťování poruch metabolismu cholesterolu v běžné klinické praxi.
Zařízení k provedení způsobu podle vynálezu, sestává z nádoby s víkem a vyjímatelnou vložkou s otvory, ve kterých jsou uloženy tmavě zbarvené uzátkované zkumavky s rovným dnem, Do zkumavek je vložen disk filtračního papíru napuštěný radioaktivním cholesterolem.
Uvedené zařízení se dá s výhodou použít zejména pro sériové stanovení. Vyjímatelná vložka s otvory, ve kterých jsou uloženy naplněné tmavě zbarvené uzátkované zkumavky s rovným dnem, se může libovolně přemisťovat při všech popisovaných operacích stanovení enzymu včetně skladování vzorků v chladu.
Vynález je možno využít jednak v experimentálních studiích a dále na klinických pracovištích, které se zabývají diagnostikou poruch lipidního metabolismu.
Přikladl
Na disky filtračního papíru pro analytické účely, o průměru 7 až 9 mm upevněné horizontálně; se nanese přesným dávkovačem 5 /il roztoku 1 ^C-4-cholesterolu v benzenu o koncentraci 0,33 JMOl/“! a radioaktivitě 0,7 MBq/ml. Po vysušení v proudu dusíku se « přenesou disky na dno tmavých 4 ml skleněných zkumavek s rovným dnem, které se uzavřou a skladují v chladničce při 4 °C. Vlastní stanovení aktivity LCAT se provádí tak, že se do těchto zkumavek za chlazení ledem napipetuje 200 /il krevního sera, které * je už od odběru přechováváno v chladu. Zkumavky se uzavřou a ponechají v chladničce 20 hodin při 4 °C. Po této době, kdy dojde k rovnoměrnému značení lipoproteinů sera radioaktivním cholesterolem, se vyjme pinzetou papírový disk, odebere se 30^111 sera pro stanovení aktivity LCAT v čase 0 a uzavřená zkumavka se zbytkem tekutiny se přenese do Dubnoffova inkubátoru k inkubaci při 37 °C po dobu 30 min, kdy probíhá reakce lineárně.
Potom se odebere 30 Jíl vzorek. Vzorky odebírané před a po inkubaci se okamžitě pipetují do 1 ml ethanolu a promíchají na laboratorní míchačce. Promíchání se opakuje ještě 2x po 30 min, sediment se centrifuguje při 2 až 3 000 otáčkách za min po dobu 5 minut a sepernatant se přelije do čistých zkumavek a odpaří k suchu proudem vzduchu při teplotě kolem 50 °C. Odparek se rozpustí několika kapkami chloroform-metanolu v poměru 2:1 a kvantitativně, opakovaným vymytím rozpustidlem, přenese na silikagelovou desku.
Vyvíjí ee v soustavě hexan-diethyletheroctan ethylnatý v poměru 50:50:1,5 obj.
Rp cholesterylesteru jako produktu LCAT reakce je v tomto uspořádání rovno 1, volného cholesterolu = 0,31. Po vysušení desky se cholesterylestery a cholesterol detektují bud autoradiografií, při expozici 2 až 4 dny, s jodovými parami, nebo pouze jodovými parami, přičemž vystoupl hnědé zbarvení cholesterylesterů a velmi světlé zabarvení volného cholesterolu. Plochy odpovídající cholesterolu a cholesterylesterům se vystříhají a přenesou do lahviček pro kapalně scintilační měření. Přidá se po 5 ml scintilátoru XPPO-2,5-dlfenyloxazol 4 g/1, POPOP-1,4-di/2-/5-fenyloxazolyl//-benzen 200 rag/l v toluenu a ponechá v temnu přes noc. Vzorky se měří na přístroji pro beta- kapalnou scintilaci.
Po změřeni se vyjádří procento cholesterylesterů, které po přepočtu na dobu inkubace dává hodnotu frakčni esterifikační rychlosti v >> hod-1 a po vynásobení koncentraci volného cholesterolu v plasmě molární exterifikační rychlost vyjádřenou jakojbmol.1. hod-'.
Přiklad 2
Postupuje ee stejně jako v příkladu 1, ale s tím rozdílem, že papírové disky se před nanášením radioaktivního cholesterolu impregnují ponořením do ethenolického roztoku antioxidantu např. meso-2,3bis/3,4dihydroxybenzyl/-butanu o koncentraci 2ýUmol/ml a rozpuetidlo se odpaří.
Příklad 3
Pro sériové stanovení se vyjme z nádoby vložka se sadou skleněných tmavě zabarvených zkumavek s rovným dnem, obsahující filtrační disky radioaktivního cholesterolu. Vložka se umístí do nádoby s ledovou vodou a dále se použije jako universální stojánek pro celou sadu při všech následujících operacích, jak uvedeno v předchozích příkladech.
Claims (2)
1. Způsob stanovení aktivity enzymu lecitinoholesterolacyltransferázy, vyznačený tím, že filtrační papír například tvaru disku o průměrní 6 až 9 mm se napustí dávkou 2 až 8/il i roztoku radioaktivního cholesterolu o koncentraci 0,1 až 2jumol/ml a radioaktivitě
0,36 až 3,6 MBq/ml, načež po vysušení se filtrační papír vloží do tmavě zabarvených zkumavek s rovným dnem o obsahu 2 až 5 ml a do těchto zkumavek se napipetuje 150 až 300 ul tělní tekutiny obsahující llpoproteiny například krevní plasmy, krevního sera, lymfy, J folikulární tekutiny a nechá se v chladu při teplotě 2 až 8 °C po dobu ,2 až 24 hodin a poté se vyjme filtrační papír a odebere se'20 až 50J&1 takto označené tělní tekutiny k extrakci a chromatografické a radiometrické analyse podílu volného a esterifikovaného cholesterolu před a po inkubaci.
2. Způsob stanoveni podle bodu 1, vyznačený tím, že k roztoku radioaktivního .
cholesterolu, kterým se napustí filtrační papír, se přidá antioxidant například meso-2,3 bis(3,4-dihydroxybenzyl)-butan o koncentraci 1 až lOjumol/ml nebo se uvedeným antioxi- dantem impregnuje filtrační papír před napuštěním radioaktivním cholesterolem. »
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS836473A CS236530B1 (cs) | 1983-09-06 | 1983-09-06 | Způsob stanovení aktivity enzymu lecitincholesterolacyltransferázy |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS836473A CS236530B1 (cs) | 1983-09-06 | 1983-09-06 | Způsob stanovení aktivity enzymu lecitincholesterolacyltransferázy |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS647383A1 CS647383A1 (en) | 1984-06-18 |
| CS236530B1 true CS236530B1 (cs) | 1985-05-15 |
Family
ID=5411875
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS836473A CS236530B1 (cs) | 1983-09-06 | 1983-09-06 | Způsob stanovení aktivity enzymu lecitincholesterolacyltransferázy |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS236530B1 (cs) |
-
1983
- 1983-09-06 CS CS836473A patent/CS236530B1/cs unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS647383A1 (en) | 1984-06-18 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US4568647A (en) | Method and element for albumin assay | |
| CN110470852A (zh) | 用于分离试验样品中包含的干扰物质的实验室系统和方法 | |
| Lewin et al. | [3H] Phorbol 12, 13-dibutyrate binding assay for protein kinase C and related proteins | |
| Kessler et al. | Measurement of urea in human serum by isotope dilution mass spectrometry: a reference procedure | |
| Moore et al. | ADAMTS13 activity measurement by ELISA and fluorescence resonance energy transfer assay | |
| EP0188372B1 (en) | Analytical element, composition, kit and method for determination of theophylline by enzyme inhibition | |
| US3884638A (en) | Method of determining cholesterol | |
| Dobiasova et al. | Measurement of fractional esterification rate of cholesterol in plasma depleted of apoprotein B containing lipoprotein: methods and normal values | |
| CS236530B1 (cs) | Způsob stanovení aktivity enzymu lecitincholesterolacyltransferázy | |
| KR960010696B1 (ko) | 2개의 표식물을 이용한 분석물질의 농도 검정방법 및 기기 | |
| Alcindor et al. | A Rapid Method for Lecithin: Cholesterol Actyltransferase Estimation in Human Serum | |
| Willis et al. | Solid phase immunoassay for the detection of anticardiolipin antibodies | |
| Romel et al. | Detection of serum alkaline phosphatase isoenzymes with phenolphthalein monophosphate following cellulose acetate electrophoresis | |
| Lantz et al. | Evaluation of serum gentamicin assay procedures for a clinical microbiology laboratory | |
| Omega | Instruction Manual | |
| Kit | Instruction Manual | |
| Skjold et al. | New dip-and-read test for determining leukocytes in urine. | |
| CN109959655A (zh) | 一种缺血修饰白蛋白检测试剂盒 | |
| Giclas | Classical pathway evaluation | |
| Reeder et al. | o-Phthalaldehyde for the fluorometric assay of nonprotein amino compounds | |
| Ambus et al. | Evaluation of the Beckman Synchron CX4 clinical chemistry analyzer in a hospital laboratory | |
| Gadsden et al. | Analytical evaluation of methods for serum creatine kinase-MB. Electrophoresis, immunoinhibition and solid phase separation | |
| James et al. | Reflotron assays of alanine aminotransferase and gamma-glutamyltransferase in whole-blood samples evaluated. | |
| Human | Instruction manual | |
| Teunissen et al. | Pre-Analytical Processing and Biobanking Protocol for CSF Samples |