CS233440B1 - Agar-eggplant for mycobacteria cultivation - Google Patents
Agar-eggplant for mycobacteria cultivation Download PDFInfo
- Publication number
- CS233440B1 CS233440B1 CS836068A CS606883A CS233440B1 CS 233440 B1 CS233440 B1 CS 233440B1 CS 836068 A CS836068 A CS 836068A CS 606883 A CS606883 A CS 606883A CS 233440 B1 CS233440 B1 CS 233440B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- weight
- agar
- egg
- cultivation
- mycobacteria
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Vynález sa týká agarovo-vaječnej pody pre kultiváciu mykobaktérií. Agarovo vaječná pdda podTa vynálezu pozostáva z 0,25 % hmotnostných masového výtažku, 0,43 % hmotnostných peptonu, 1,28 % hmotnostných agaru, 0,33 % hmotnostných chloridu sodného, 2,57 % hmotnostných glycarolu, 81,73 % destilovanej vody, 13,08 % hmotnostných vaječného žítka, 0,33 % hmotnoákAých.2 S-nej malachitovej zetane. Agarovo-vaječná pbda podTa vynálezu je rovnocenná a inýmV vaječnými pOdami používanými pra kultiváciu mykobaktérií a navýše nevyžaduje chemikálie z dovozu. Jej výhodou vSak je, že pri primokultivácii je menej citlivá ku nešpeclfickej mlkroflore, čím sa zvyšuje diagnostická spolehlivost.The invention relates to an agar-egg medium for the cultivation of mycobacteria. The agar-egg medium according to the invention consists of 0.25% by weight of meat extract, 0.43% by weight of peptone, 1.28% by weight of agar, 0.33% by weight of sodium chloride, 2.57% by weight of glycerol, 81.73% by weight of distilled water, 13.08% by weight of egg yolk, 0.33% by weight of malachite zinc. The agar-egg medium according to the invention is equivalent to other egg mediums used for the cultivation of mycobacteria and does not require imported chemicals. However, its advantage is that during primary cultivation it is less sensitive to non-specific microflora, which increases diagnostic reliability.
Description
233440 2233440 2
Vynález sa týká agarovo-vaječnej pfidy pře kultiváciu mykobaktérií.The present invention relates to agar-egg pride culturing mycobacteria.
Kultivačně postupy v mykobakterlológii, vrátane výběru a přípravy kultivačných pfidsú v porovnaní s inými metodikami používanými“ v bakteriologii velmi náročné. Z viacerýohdnes známých živných pfid pre mykobaktérie sú najvhodnejšie pevné vaječné a tekuté pfidys obsahem natťvnej bielkoviny (Sula, 1970). Z nich sa ňajviac uplatňuje Lowensteln-Jense-nova pOda. Výběr kultivačných médii závisí od metodik používaných v tom-ktorom laboratórlu.Laboratorně vyčetrovacie metodiky vo veterinárnej medicíně (1974) určujú pre kultiváciumykobaktérií pfidu Petragnaniho, Stonebrinkovu a šulovu. Standardně metody RVHP pre labora-tórnu diagnostiku tuberkulózy (1980) návrhu jd pre kultiváciu mykobaktérií Lowenstein-Jen-senovu pfidu. Laboratorně metodiky vó veterinárnej mykobakterlológii používané v USA (1975)určujú pre kultiváciu čtyři druhy pfid: LówenstedLn-Jensenova, Heroldova, Ulddlebrookova7 H 10, Stonebrinkova.Cultivation procedures in mycobacterlology, including the selection and preparation of culture media, are very challenging compared to other methods used in bacteriology. Of the several known nutrient pfids for mycobacteria, solid egg and liquid proteins are most suitable in the presence of a proteinaceous protein (Sula, 1970). Of these, Lowensteln-Jensen's pseudonym has been used. The choice of culture media depends on the methodologies used in that laboratory. The laboratory-specific methodologies in veterinary medicine (1974) determine the cultivation of cycobacteria by adding Petragnani, Stonebrink, and Shula. As a standard, RVHP methods for laboratory diagnostics of tuberculosis (1980) design for mycobacterium cultivation Lowenstein-Jennes pfidu. Laboratory methodologies in veterinary mycobacterlology used in the USA (1975) determine four species pfid for cultivation: LówenstedLn-Jensenova, Heroldova, Ulddlebrookova7 H 10, Stonebrinkova.
Snahy o.zjednouušenie a skvalitnenie kultivačných médií pokračujú. V našich podmien-kach ide predovšetkýmo hledánie možností náhrady drahých chemikálií z dovozu. Napříkladvýznamem jSaparagínu"a jeho náhradou v Lowenatein-Jensenovej pfidé sa zaoberal Slosareka kol. (1981). V mykobakteriologickej praxi najma pri izolácii mykobaktérií z kontaminovaného materiá-lu sa velmi často vyskytujú případy, že primokultivácia je neúspěšné kvfili nešpecifickejmikroflóre, ktorá kontaminuje použité kultivačně média. V takýchto případech sa používajúsilnejšie dekontaminpčné prostřiedky pře devitalizáciu nešpecifickej mikroflóry, čím savšak usmrtí 70 až 80 % mykobaktérií a teda.diagnostická spolehlivost je nízká. Na druhejstraně je možné použit pfidy menej citlivé k nešpecifickej mikroflóre, ale umožňujúce dobrýrast mykobaktériám. Uvedené vlastnosti majú Speciálně agarove pfidy, ktoré sú však náročnéna přípravu a obsahujú množstvo chemikálií z dovozu.Efforts to simplify and improve culture media continue. In our conditions, it is primarily the search for the possibility of replacing expensive import chemicals. For example, the significance of japaraparin "and its replacement in Lowenatein-Jensen is discussed by Slosarek et al. (1981). In mycobacteriological practice, especially when isolating mycobacteria from contaminated material, there are very frequent cases where primary culture is unsuccessful because of nonspecific microflora that contaminates used culture media In such cases, the more severe decontaminating agents are used to devitalize non-specific microflora, thereby killing 70-80% of mycobacteria and thus diagnosis reliability is low, on the other hand, less susceptible to non-specific microflora can be used, but allow mycobacteria to grow better. agar pfids, which are difficult to prepare and contain a lot of import chemicals.
Uvedené nedostatky možno v podstatnej miere odstránlť agarovo-vaječnou pfidou podlávynálezu, ktorej podstata spočívá v tom, že pozostáva z 0,25 % hm. masového výtažku, 0,43 % hm. peptonu, 1,28 % hm. agaru, 0,33 % hm. chloridu sodného, 2,57 % hm. glycerolu,81,73 % hm. destilovanej vody, 13,08 % hm. vaječného žítka, 0,33 % hm. 2%-nej malachitovejzelene.These drawbacks can be substantially eliminated by the agar-egg addition of the invention, which consists of 0.25 wt. of meat extract, 0.43 wt. of peptone, 1.28 wt. agar, 0.33 wt. sodium chloride, 2.57 wt. glycerol, 81.73 wt. distilled water, 13.08 wt. egg yolk, 0.33 wt. 2% malachite green.
Agarovo-vaječná pfida podlá vynálezu je nepriehladná, sýto zelenej farby s dokonalehladkým a lesklým povrchom, čo umožňuje výrobnú kontrolu jak pri inkubáciť, tak pri odčí-taní rastu mykobaktérií. Pfidu třeba uskladňovat v chlade a tme pri +4 °C, Pri sprévnompostupe přípravy a skladovaní vydrží najmenej 6 týždňov bez zjavného ovplyvnenia jej kva-lity.The agar-egg suspension according to the invention is opaque, deep green in color with a perfectly smooth and shiny surface, which allows for production control in both incubation and mycobacterial growth. It should be stored in a cool and dark place at + 4 ° C. For a preparation and storage process, it will last for at least 6 weeks without any appreciable influence on its quality.
Agarovo-vaječná pfida podlá vynálezu je rovnocenná s inými vaječnými pfidami používanýmipre kultiváciu mykobaktérií. Jej výhodou však je, že pri primokultivácii je menej citliváku nespecificky mikroflóre, najma pri izolácii mykobaktérií zo vzoriek vonkajšieho prostre-dia, čím sa zvyšuje diagnostická spolehlivost. Přikladl Příprava agarovo-vaječnej pfidy 24 g živného agaru č. 1 (SEVAC - t. j. 3,13 g masového výtažku, 5,22 g peptonua 15,65 g agaru) sa po polhodinovom nabobtnaní v destilovanej vodě do celkového objemu £ 1 000 ml dokonale rozvarí so 4 g chloridu sodného a 28 ml glycerolu. Po ochladení na 60 °Cna Up raví pH na 7,5 a autoklavuje sa 25 minút pri 121 °C. Po ochladení na 52 °C sa přidá 8 kusov vaječných žítkov a 4 ml 2%-nej malachitovej zelene. Po dfikladnom zhomogenlzovanísa pfida rozlieva do bakteriologických skúmaviek v šikmej polohe. POda stuhne po 10 minútach. 3 233440The agar-egg pride of the invention is equivalent to other egg yeast used for mycobacterial culture. Its advantage, however, is that in primoculture less microflora is less sensitive, especially when isolating mycobacteria from external environment specimens, thereby increasing diagnostic reliability. Example 1 Preparation of Agar-Egg Paste 24 g Nutrient Agar # 1 (SEVAC - ie 3.13 g meat extract, 5.22 g pepton and 15.65 g agar) is perfectly swollen in distilled water for half an hour. with 4 g of sodium chloride and 28 ml of glycerol. After cooling to 60 ° C, the pH is adjusted to 7.5 and autoclaved at 121 ° C for 25 minutes. After cooling to 52 ° C, 8 pieces of egg yolk and 4 ml of 2% malachite green are added. After homogenization, it is added to the bacteriological tubes at an oblique position. POD solidifies after 10 minutes. 3 233440
Predmet vynálezu bol overený a Statisticky zhodnotený v pokusných podmienkach. I. Porovnánie navrhované;) agarovo-vaječnej p6dy s najviac používanými pevnými pOdamipre mykobaktárie a Statistické hodnotenie výsledkov. Pře testovanie p8dy boli použité referenčně mykobakteriálne kmene zo zbierky IHEv Prahe. 1. M. scrofulaceum 2. M. avium serotyp 2 3. M. intracellulare serotyp 4 4. M. intracellulare serotyp 8 5'. M. fortuitum 6. M. phleiThe subject of the invention was verified and statistically evaluated under experimental conditions. I. Comparison of the proposed agar-egg species with the most widely used mycobacterial solids and statistical evaluation of results. Prior to testing, mycobacterial strains from the IHE collection in Prague were used. 1. M. scrofulaceum 2. M. avium serotype 2 3. M. intracellulare serotype 4 4. M. intracellulare serotype 8 5 '. M. fortuitum 6. M. phlei
Porovnávané kultivačně média; 1. Navrhovaná agarovo-vaječná pčda 2. Stonebrinkova p6da 3. Lowenstein-Jensenova p6da 4. Ogawova p8da 5. Heroldova pčda Při kultivácii bol sledovaný deň, kedy bolo možné prvý raz zaznamenat rast kmeňa aa množstvo narastenej masy kmeňa na 30. deň. Výsledky boli Statisticky spraoované Studen-tovým T-testom, na hladině významnosti = 0,05 (tabulka č. 1). T a b u 1’ k a 1Comparing culture media; 1. Suggested agar-egg puddle 2. Stonebrink peada 3. Lowenstein-Jensen p6da 4. Ogaw p8da 5. Herold's paw The day of cultivation was followed for the first time to record strain and strain growth on day 30. The results were statistically processed by the Stud T-test, at a significance level = 0.05 (Table 1). T a b u 1 'k and 1
Porovnávané p6dy t hodnota = 0,05 MH+ : Lowenstein-Jensenova 0,175 MH+ ; Stonebrinkova 0,049 1,960 MH+ : Ogawova 0,321 MH+ ; Heroldova 0,22 MH+ = navrhovaná agarovo-vaječná pĎda Z porovnania hodnfit je zřejmé, že medzi testovanými médiami nie je Statisticky význam-ný rozdiel a teda agarovo-vaječná p8da podlá vynálezu je pre kultiváciu vybraných mykobak-rteriálnychkmeňov rovnako vhodná ako porovnávané p6dy. II. Předběžné výsledky praktického použitia agarovo-vaječnej p8dy podl’a vynálezu.Comparative values t = 0.05 MH +: Lowenstein-Jensen 0.175 MH +; Stonebrink 0.049 1.960 MH +: Ogaw 0.321 MH +; Herold's 0.22 MH + = proposed agar-egg soil From a comparison, it is evident that there is no statistically significant difference between the test media and thus the agar-egg pdda according to the invention is equally suitable for the cultivation of selected mycobacterial strains as the comparative species. II. Preliminary results of the practical use of the agar-egg soil according to the invention.
Agarovo-vaječná p8da (MH) bola použitá pre primokultiváciu mykobaktéril zo vzoriekvonkajSieho prostredia pri paralelnom hodnotení s Heroldovou (H) a Lowenstein-Jensenovou(LJ) p6dou.Agar-egg p8da (MH) was used to directly cultivate mycobacteria from an external environment in parallel with Herold (H) and Lowenstein-Jensen (LJ) p6da.
Celkom bolo izolovaných 35 mykobakteriálnych izolátov II., III. a IV. skupiny Bunyonorvej klasifikácie z 11 vyšetřených vzoriek vody a p6dy z močaristej lokality ako aj tekutého,hnoja ošípaných, makkýšov a podobné. Hodnotenie p8d bolo založené na sledovaní absolátnehopočtu izolátov, počtu pozitlvnych kultivácii, počtu kontaminovaných p8d nespecifickou mikro-flórou, počtu p8d bez nárastu mykobaktéril (tabulka č. 2). Vztah počtu kontaminácil a počtup8d bez nárastu mykobaktéril bol hodnotený "Chi-kvadrat" testom (tabulka č. 3).35 mycobacterial isolates II., III. and IV. Bunyonorvej group classification from 11 examined water and soil samples from the wetland as well as the liquid, manure of pigs, molluscs and the like. The p8d evaluation was based on monitoring the absolute number of isolates, the number of positive cultures, the number of contaminated p8d non-specific micro flora, the number of p8d without mycobacterial growth (Table 2). The relationship of the number of contaminants and the number of mycobacterial growths was not exceeded by the "Chi-quadrat" test (Table 3).
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS836068A CS233440B1 (en) | 1983-07-19 | 1983-07-19 | Agar-eggplant for mycobacteria cultivation |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS836068A CS233440B1 (en) | 1983-07-19 | 1983-07-19 | Agar-eggplant for mycobacteria cultivation |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS606883A1 CS606883A1 (en) | 1984-06-18 |
CS233440B1 true CS233440B1 (en) | 1985-03-14 |
Family
ID=5406894
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS836068A CS233440B1 (en) | 1983-07-19 | 1983-07-19 | Agar-eggplant for mycobacteria cultivation |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CS (1) | CS233440B1 (en) |
-
1983
- 1983-07-19 CS CS836068A patent/CS233440B1/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CS606883A1 (en) | 1984-06-18 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Collins | Diagnosis of paratuberculosis | |
JP3725164B2 (en) | Bacteria detection method | |
Goslee et al. | Water as a source of potentially pathogenic mycobacteria | |
DE3687232T3 (en) | Detection of microbes in a sample. | |
DE69931892T2 (en) | Test for antibiotic sensitivity | |
Zobell et al. | Studies on the thermal sensitivity of marine bacteria | |
Hoadley | Fecal streptococci: indicators of pollution | |
US6461833B1 (en) | Method to detect bacteria | |
DE69333305T2 (en) | CULTURAL MEDIUM TO DETECT SALMONELLA AND PROCESS FOR USE THEREOF | |
Bennett et al. | Identification of fusobacteria in a routine diagnostic laboratory | |
Ascenzi et al. | Evaluation of carriers used in the test methods of the Association of Official Analytical Chemists | |
Brooks et al. | Evaluation of the serological response of sheep in one flock to Mycobacterium paratuberculosis by crossed immunoelectrophoresis | |
CS233440B1 (en) | Agar-eggplant for mycobacteria cultivation | |
Dunn et al. | ‘Atypical’mycobacteria in milk | |
Hows et al. | In vitro stability of cyclosporin A | |
DE2521460C2 (en) | Method for the detection of antibodies against Brucella canis and antigen reagent | |
Barnham et al. | Identification of clinical isolates of Neisseria gonorrhoeae by a coagglutination test. | |
Ridge | Cultivation of Mycobacterium paratuberculosis from bovine fecal samples by using elements of the Roche MB Check system | |
Portaels et al. | Cultivable mycobacteria isolated from organs of armadillos uninoculated and inoculated with Mycobacterium leprae | |
Karlson et al. | Mycobacterium avium in tuberculous adenitis of swine | |
EP0143107B1 (en) | Method for the detection of viruses in pure cultures of microscopic organisms, as well as in foodstuffs and in technological products | |
JPH0662833A (en) | Medium for separating salmonella bacterium | |
Quan et al. | Evaluation of a qualitative isocitrate lyase assay for rapid presumptive identification of Yersinia pestis cultures | |
Reuter | Culture media for enterococci and group D-streptococci | |
Thoen et al. | Micromethod for serotyping strains of Mycobacterium avium |