CS232957B1 - Způsob přípravy karboxypeptidázy Y - Google Patents
Způsob přípravy karboxypeptidázy Y Download PDFInfo
- Publication number
- CS232957B1 CS232957B1 CS418383A CS418383A CS232957B1 CS 232957 B1 CS232957 B1 CS 232957B1 CS 418383 A CS418383 A CS 418383A CS 418383 A CS418383 A CS 418383A CS 232957 B1 CS232957 B1 CS 232957B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- glycyl
- carboxypeptidase
- mol
- acid
- enzyme
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Způsob přípravy karbokypeptidázy Y afinitní sorpcí a desorpci, vyznačený tím, že se extrakt z droždí uvede do styku s afinitnim sorbentem sestávajícím z makroporézního kopolymeru 2-hydroxyětylmetakrylátu s 10 až 90 % mol ětylendimetakrylátu s kovalentně navázanou glycyl-glycyl-D,L- -p-aminobenzyljantarovou kyselinou promyje a pak se roztokem tlumiče desorbuje. Pro vyloučení desaktivace enzymu kationty těžkých kovů obsahují věechny roztoky používané při procesu podle vynálezu včetně výchozího extraktu droždí přídavek kyseliny etylendiaminotetraoctové (0,002 mol/1). S výhodou lze způsob podle vynálezu realizovat ve sloupcovém uspořádání. Způsobu podle vynálezu lze využít při výrobě enzymu s tou výhodou, že proti známému postupu se zvýěí kvalita produktu s 3 až 3,5krét se zkrátí doba výroby. Uplatněni nachází způsob podle vynálezu v biotechnologii a v biochemii.
Description
Vynález se týká způsobu Izolace proteolytického enzymu karboxypeptidázy Y a nachází využití v oblasti biotechnologie a biochemie. Způsob podle vynálezu může být využit i pro izolaci daláích karboxypeptidáz, které jsou inhibovány benzyljantarovou kyselinou.
Je znám způsob přípravy karboxypeptidázy Y z předem aktivovaného extraktu droždí (J. T. Johaasen, K. Breddam and O. Ottensen: Isolation of carboxypeptidase Y by affinity chromatography; Carlsberg Res. Commun. 41 (1) (1976) 1-14.), spočívající v tom, že se extrakt zavede na kolonu obsahující afinitní sorbent se strukturou:
@ -NH-CH2-CONH-<pH-COOH
CH0 I d fO) CHp-COOH n=»-(O )-ch2-ch-cooh
OH '—' kde^) je matrice na bázi polysacharidu Sepharosy (Pharmacia Uppsala). Kolona se promyje roztokem pufru pH 4,3 obs hujícího 0,01 M NaOAc a 1 M NaCl. Karboxypeptidéza se desorbuje elucí'0,01 M fosfátovým pufrem při pH 7,0.
Citovaný známý způsob má některé nedostatky:
a) Používá se kolony s afinitním sorbentem na bázi měkkého polysacharidového bobtnajícího gelu Sepharosy, který může být štěpen enzymy přítomnými v autolyzátu droždí nebo v jiných mikrobiálních kapalinách. Použití měkkého gelu limituje rychlost průtoku eluentu Autoři známého způsobu uvádějí maximální rychlost průtoku 240 ml/h u kolony s průměrem 50 mm.
b) Popsaný způsob využívá afinitního šorbentu obsahujícího C-terminální aminokyselinu tyrosin. Tento ligand je substrátem karboxypeptidáz, takže dochází k postupnému odštěpování vázaného tyrosinu za současného poklesu kapacity šorbentu. Tyrosin je dále afinitním ligandem proteáz chymotryptického typu, což vede ke znečištění konečného produktu endoproteázami. Přítomnost karboxylové skupiny mimo afinitní centrum vede též k nespecifické sorpci neaktivních doprovázejících bílkovin.
c) Je známo, že karboxypeptidáza Y je rychle a nevratně inaktivována ionty těžkých
3+ 2+ 2+ kovů například Fe , Pb , Hg atd. Stopové množství těchto kationtů ani ve výchozím extraktu droždí ani » tlumivých roztocích není prakticky možno vyloučit. Důsledkem je pak snížená kvalita získaného enzymu.
Cílem způsobu izolace karboxypeptidázy Y podle vynálezu je podstatné zkrácení procesu a zlepSení kvality konečného produktu.
Toho se dosáhne tím, že způsob izolace karboxypeptidázy Y afinitní chromatografií podle vynálezu spočívá v tom, že jako afinitního šorbentu se použije sorbent podle vzorce
-ch2-ch-cooh ch2-cooh kde(p) je rigidní makroporésní hustě zesilovaný kopolymer 2-hydroxyetylmetakrylátu s 10 až 90 % mol etyléndimetakrylátu (Spheron, Separon HEMA).
Způsob podle vynálezu se odlišuje od známého postupu také tím, že se do všech tlumivých roztoků používaných při izolaci karboxypeptidázy Y přidává 0,002 mol/l kyseliny etylenúiaminotetraoctové, která s kationty těžkých kovů vytváří komplexy. Její přítomnost nemá „vliv na interakci enzymu s afinitním sorbentem ani na aktivitu enzymu. Takto se
dosahuje zvýšení kvality finálního produktu. Způsob podle vynálezu popsaný v příkladu 2 byl za analogických podmínek porovnán se známým postupem podle Johansena.
Použití kopolymerního makroporézního nosiče s kovalentně vázaným afinitním ligandem glycyl-glycyl-D,L-p-aminobenzyljantarovou kyselinou a eluce roztoky obsahujícími přídavek EDTA dovoluje vyloučit nespecifickou sorpci na karboxylových skupinách nepatřících do aktivního centra ligandu a konečně vyloučit i desaktivaci enzymu kationty těžkých kovů, které jsou přítomny v činidlech, případně které se uvolňují z kovových části aparatury.
f Předmět vynálezu je v dalším vysvětlen na příkladech, aniž by však byl jimi jakkoli omezován.
Příklad 1
Příprava autolyzátu droždí byla provedena podle Johansena a spolupracovníků (Carlsberg Res. Commun. 41 (1) (1976)1-14). Z 550 g droždí bylo získáno 975 ml extraktu.
ml autolyzátu bylo aplikováno na kolonu o průměru 0,8 cm o objemu 5 ml obsahující sférický sorbent (velikost částic ,00 až 200 ^) 2-hydroxyetylmetakrylát-co-etylenďimetakry lát s vylučovacím limitem molekulové hmotnosti 10^ daltonů (Separon HEMA 1000) s navázanou gly-gly-aminobenzyljantarovou kyselinou (10 uekv./g suchého nosiče). Kolona byla ekvilibrována 0,01 M octanem sodným obsahujícím 1,0 M NaCl byla karboxypeptidáza Ϊ desorbována 0,01 M fosfátovým pufrem pH 7,0. Bylo získáno 204 jednotek (jednotka je definována jako množství enzymu, které hydrolyzuje 1,0 mikromolu karbobenzoxy-L-fenylalanin-L-alaninu za 1 minutu při 25 °C, pH je 6,7; aktivita byla stanovena podle Johansena a spolupracovníků) což představuje 1,36 mg enzymu o specifické aktivitě ,50 ;j/mg bílkoviny.
P ř i k 1 ad 2
Kolona průměru 5 cm o délce 10 cm byla naplněna afinitním sorbentem podle příkladu 1 a promyta 1 000 ml roztoku pufru (0,05 M murfolinpropansulfokyselina - NaOH) pH 5,0 rychlostí 1 400 ml/h.
Ke 4 000 ml zakoncentrovaného aktivovaného extraktu droždí pH 5,0 se přidá 2 mmol/1 kyseliny etyle'ndiaminotetraoctové (EDTA). Získaný roztok se čerpá kolonou s afinitním sorbentem rychlostí 750 ml/h. Při této operaci dochází k selektivní sorpci karboxypeptidázy Ϊ na afinitním sorbentu. K odstraněni neaktivních balastních bílkovin se kolona promyje 0,01 M acetátovým pufrem pH 4,3 obsahujícím 1 mol/1 NaCl a 2 mmol/1 EDTA. Promývání se provádí tak dlouho, až se dosáhne absorbance menší než 0,005 AUKS při 280 nm.
Karboxypeptidáza Ϊ se desorbuje promytím kolony 0,01 M fosfátovým pufrem pH 7,0 obsahujícím 2 mmol/1 EDTA rychlostí 750 ml/h. Eluát se zkoncentruje ultrafiltrací a skladuje při -20 °C. Aktivita enzymu byla zjištována spektrofometricky podle rychlosti štěpení Z-Phe-Ala-OH při pH 6,75· Specifická aktivita je o 8 % vyšší než aktivita enzymu připraveného známým dříve citovaným způsobem. 2,5 až 5krát vyšší průtoková rychlost činidel umožněná mechanickou stabilitou makroporézního-sorbentu dovoluje zkrátit celkovou dobu procesu 3 až 3,5krát.
Claims (3)
- PŘEDMĚT VYNÁLEZU1. Způsob přípravy karboxypeptidázy Y z extraktu, vyznačený tím, že se extrakt z droždí uvede do styku se sorbentem sestávajícím z makroporézniho nosiče na bázi kopolymeru 2-hydroxyetylmetakrylátu s 10 až 90 % mol etyléndimetakrylátu s kovalentně navázaným afinitním ligandem glycyl-glycyl-D,L-p-aminobenzyljantarovou kyselinou, promyje se * a·,pak se desorbuje roztokem tlumiče, přičemž vgechny kapaliny používané při tomto procesu včetně výchozího extraktu obsahují přídavek etyle'ndiaminotetraoctové kyseliny.t
- 2. Způsob podle bodu 1, vyznačený tím, že koncentrace etyléndiaminotetraoctové kyseliny v roztocích používaných při procesu činí 0,002 mol/1.
- 3. Způsob podle bodu 1, vyznačený tím, že se sorpce, promývání a desorpce karboxypeptidázy Y na makroporézním sorbentu na bázi kopolymerů 2-hydroxyetylmetakrylátu s 10 až 90 í mol etyléndimetakrylátu s kovalentně vázanou glycyl-glycyl-D,L-p-aminobenzyljantarovou kyselinou provádí ve sloupcovém uspořádání.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS418383A CS232957B1 (cs) | 1983-06-10 | 1983-06-10 | Způsob přípravy karboxypeptidázy Y |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS418383A CS232957B1 (cs) | 1983-06-10 | 1983-06-10 | Způsob přípravy karboxypeptidázy Y |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS232957B1 true CS232957B1 (cs) | 1985-02-14 |
Family
ID=5383997
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS418383A CS232957B1 (cs) | 1983-06-10 | 1983-06-10 | Způsob přípravy karboxypeptidázy Y |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS232957B1 (cs) |
-
1983
- 1983-06-10 CS CS418383A patent/CS232957B1/cs unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Sundberg et al. | Preparation of adsorbents for biospecific affinity chromatography: I. Attachment of group-containing ligands to insoluble polymers by means of bifunctional oxiranes | |
| Turková et al. | Methacrylate gels with epoxide groups as supports for immobilization of enzymes in pH range 3–12 | |
| Chaga et al. | Immobilized metal ion affinity chromatography on Co2+‐carboxymethylaspartate–agarose Superflow, as demonstrated by one‐step purification of lactate dehydrogenase from chicken breast muscle | |
| JPH11506603A (ja) | 新規因子ix精製法 | |
| US3649456A (en) | Separation of polypeptide substances with macroreticular resins | |
| Funahashi et al. | Preparation of three types of heparin-Sepharose and their binding activities to thrombin and antithrombin III | |
| Nagai et al. | Entrapment of collagen in a polyacrylamide matrix and its application in the purification of animal collagenases | |
| JPS5839513B2 (ja) | 精製したトリプシンおよびトリプシン様酵素の貯蔵法 | |
| Stepanov et al. | Affinity chromatography of proteolytic enzymes on silica-based biospecific sorbents | |
| EP0333474A2 (en) | Process for the selective removal of endotoxin | |
| Bartkowiak et al. | The purification of aminoacyl-tRNA synthetases by affinity chromatography | |
| Wafer et al. | Purification of S-oxynitrilase from Sorghum bicolor by immobilized metal ion affinity chromatography on different carrier materials | |
| AU2001260852B2 (en) | Separation of glyco-containing entities | |
| CS232957B1 (cs) | Způsob přípravy karboxypeptidázy Y | |
| EP0057600A2 (en) | Affinity resins and their use in isolating bacterial luciferase | |
| Clonis et al. | Monosized adsorbents for high-performance affinity chromatography: application to the purification of calf intestinal alkaline phosphatase and human urine urokinase | |
| Karlstam et al. | A simple purification method of squeezed krill for obtaining high levels of hydrolytic enzymes | |
| Purtov et al. | Nanodiamond sorbents: New carriers for column chromatography of proteins. | |
| Turková et al. | Effect of concentration of immobilized inhibitor in the biospecific chromatography of pepsins | |
| Prasanna et al. | Immobilized metal-ion affinity systems for recovery and structure-function studies of proteins at molecular, supramolecular, and cellular levels. | |
| Sokolovsky | [45] Car☐ ypeptidase B | |
| Zhao et al. | Three novel high performance affinity chromatographic media for the separation of antithrombin III from human plasma | |
| US3926730A (en) | Separation and purification of alpha-amylase | |
| Liou et al. | A poly (2-hydroxyethyl methacrylate)-based immobilized metal affinity chromatography adsorbent for protein purification | |
| Turková et al. | Isolation of aminopeptidase from Aspergillus flavus |