CS227392B1 - Method of preparing large amounts of highly physiologically active conidia of microorganism claviceps purpures(fr.)tul. - Google Patents

Method of preparing large amounts of highly physiologically active conidia of microorganism claviceps purpures(fr.)tul. Download PDF

Info

Publication number
CS227392B1
CS227392B1 CS573281A CS573281A CS227392B1 CS 227392 B1 CS227392 B1 CS 227392B1 CS 573281 A CS573281 A CS 573281A CS 573281 A CS573281 A CS 573281A CS 227392 B1 CS227392 B1 CS 227392B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
conidia
medium
tul
stage
physiologically active
Prior art date
Application number
CS573281A
Other languages
Czech (cs)
Inventor
Jan Rndr Csc Kybal
Karin Prom Biol Csc Strnadova
Original Assignee
Jan Rndr Csc Kybal
Karin Prom Biol Csc Strnadova
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jan Rndr Csc Kybal, Karin Prom Biol Csc Strnadova filed Critical Jan Rndr Csc Kybal
Priority to CS573281A priority Critical patent/CS227392B1/en
Publication of CS227392B1 publication Critical patent/CS227392B1/en

Links

Abstract

Vynález chrání způsob přípravy velkého množství vysoce fyziologicky aktivních konidií mikroorganismu Claviceps purpurea (Fr.) Tul. dvoustupňovou stacionární kultivací na hladině kapalného živného media. V prvním stupni, který se očkuje vegetativním submerzním inokulem nebo klidovými konidiemi ve vodné suspenzi, medium obsahuje pouze limitované množství asimilovaného uhlíku, což vede. až k úplnému zastavení prodlužovacího vegetativního nediferenciovaného růstu sfaceliového mycelia. Ve druhém stupni je medium nahrazeno mediem čerstvým, které obsahuje zdroj asimilovatelného uhlíku, s výhodou sacharozu, v koncentraci 25 až 35 % hmot. a kultura se inkubuje až do ukončení fáze odškrcování konidií.The invention protects the preparation process of the large a number of highly physiologically active conidia microorganism Claviceps purpurea (Fr.) Tul. two-stage stationary cultivation on the surface of the liquid nutrient medium. In the first stage, which is inoculated with vegetative submerged inoculum or resting conidia in an aqueous suspension, the medium contains only a limited amount of assimilated carbon, which leads. to a complete stop extension vegetative undifferentiated growth of the spherical mycelium. In the second the medium is replaced by medium fresh, which contains an assimilable source carbon, preferably sucrose, in concentration 25 to 35 wt. and the culture is incubated until the end of conidial throttling.

Description

Vynález se týká způsobu přípravy velkého množství vysoce fyziologicky aktivních konidií mikroorganismu Claviceps purpurea f Fr.) Tul.The invention relates to a process for the preparation of a plurality of highly physiologically active conidia of the microorganism Claviceps purpurea (Fr.) Tul.

Průmyslová kultivace vláknitých hub je zpravidla nepříznivě ovlivňována tím, že pro zaočkování produkční půdy ve velkoobjemových fermentorech je nutno připravovat velké objemy inokula. Příprava velkých objemů inokula vyžaduje pomnožování vegetativních vláken submerzní kultivací v řadě očkovacích tanků postupně vzrůstající velikosti. V průběhu množení narůstá sice stále větší množství biomasy, avšak kvalita inokula se takovým postupem trvale snižuje.Industrial cultivation of filamentous fungi is generally adversely affected by the need to prepare large volumes of inoculum to inoculate the production soil in large-volume fermenters. The preparation of large volumes of inoculum requires the propagation of vegetative fibers by submerged cultivation in a series of seed tanks of gradually increasing size. Increasing amounts of biomass are increasing in the course of propagation, but the quality of the inoculum decreases by such a process.

Účinnou složkou inokula jsou především nejmladší buňky rostoucích konců vláken a jejich větví, zatímco starší již nerostoucí buňky, vzdálenější od apexu, v podmínkách submerzní kultivace zpravidla rychle vakuolizují, odumírají a lyžují. Tzv. „velmi dobře“ narostlé inokulum, tvořené „homogenní“ hustou suspenzí vláken je proto vždy směsí buněk fyziologicky více či méně aktivních s buňkami inaktivními.The youngest cells of the growing fiber ends and their branches are the active components of the inoculum, while the older, non-growing cells, further from the apex, in the conditions of submerged cultivation usually rapidly vacuolize, die and lyse. Tzv. A 'well-grown' inoculum, consisting of a 'homogeneous' dense fiber suspension, is therefore always a mixture of physiologically more or less active cells with inactive cells.

Tyto nepříznivé výsledky postupného stárnutí části populace množených buněk jsou nadto zpravidla doprovázeny i degenerativními změnami, k nimž dochází vždy v průběhu opakovaného pasážování vegetativních vláken produkčních kmenů, ať už jde o degeneraci na úrovni změn fyziologických nebo na úrovni změn genetické informace.Moreover, these unfavorable results of the gradual aging of a portion of the population of propagated cells are usually accompanied by degenerative changes that always occur during repeated passage of the vegetative fibers of the production strains, be it degeneration at the level of physiological changes or at the level of genetic information changes.

Hlavním důvodem, proč je nutno připravovat velké objemy inokula postupným pomnožováním biomasy rostoucích vegetativních hyf jsou obtíže, spojené s přípravou velkého množství sporového materiálu. Spory vláknitých hub jsou totiž zpravidla připravovány na šikmených agarových půdách ve zkumavkách nebo na sypaných půdách v malých Erlenmayerových baňkách v množství, postačujícím k přípravě jen malého množství inokula v baňkách na třepacích strojích, či v malých předočkovacích tancích.The main reason why it is necessary to prepare large volumes of inoculum by the gradual propagation of biomass of growing vegetative hyphae is the difficulties associated with the preparation of large amounts of spore material. Spore filamentous fungi are usually prepared on sloped agar soils in test tubes or on loose soils in small Erlenmeyer flasks in quantities sufficient to prepare only a small amount of inoculum in flasks on shaking machines or in small pre-seed tanks.

Vegetativní promycelium, připravené synchronním vyklíčením spor v submerzní kultuře, představuje na rozdíl od vláken, získávaných jeho dalším postupným množením, skutečně homogenní populaci fyziologicky maximálně aktivních buněk. Proto je také ideální formou inokula.Vegetative promycelium, prepared by synchronous germination of spores in submerged culture, represents a truly homogeneous population of physiologically maximally active cells, unlike the fibers obtained by its successive multiplication. Therefore, it is also an ideal form of inoculum.

Vedle přípravy sporového materiálu stacionární kultivací na povrchu agarem ztužených či sypaných sporulačních půd je možno v mnoha případech připravovat i velká množství spor submerzní kultivací. Kvalita těchto spoř však nikdy nedosahuje kvality spor, odškrcených v povrchové stacionární kultuře. To se projevuje zpravidla nejen značnou nehomogenitou morfologickou (tvar, velikost), ale i fyziologickou. Submerzní spory jsou vždy více či méně vakuolizované a mají proti sporám stacionárním vždy více či méně sníženou klíčivost. Insuficience submerzních spor se také velmi nepříznivě projevuje tím, že při uchovávání i při snížené teplotě relativně rychle odumírají a špatně snášejí jakýkoliv způsob konzervace.In addition to the preparation of spore material by stationary cultivation on the surface of agar-hardened or loose sporulation soils, it is in many cases possible to prepare large amounts of spores by submerged cultivation. However, the quality of these spores never reaches the quality of spores throttled in surface stationary culture. This is usually manifested not only by considerable inhomogeneity in morphology (shape, size), but also in physiology. Submerged spores are always more or less vacuolized and have more or less reduced germination compared to stationary spores. Insufficiency of submerged spores also has a very unfavorable effect in that, even when stored at a low temperature, they die relatively quickly and are difficult to tolerate any kind of preservation.

Typickým průmyslovým mikroorganismem, pro který platí vše, co bylo dosud řečeno, je druh Claviceps purpurea (Fr.) Tul. Produkční kmeny této houby jsou používány jednak pří polní produkci námele a jednak při fermentační přípravě námelových alkaloidů. Pro úspěšné zajištění obou těchto výrob je nezbytným předpokladem příprava velkého množství vysoce virulentních konídií.Claviceps purpurea (Fr.) Tul is a typical industrial micro-organism to which everything has been said so far. The production strains of this fungus are used both in the field production of ergot and in the fermentation preparation of ergot alkaloids. The preparation of large quantities of highly virulent conidia is a prerequisite for the successful provision of both of these products.

Soustavným experimentálním výzkumem regulace konidiace druhu C. purpurea se podařilo postupně vytypovat a optimalizovat kultivační podmínky tak, že umožňují prakticky synchronní konidiaci za vzniku překvapivě velkého množství morfologicky jednotných a fyziologicky maximálně aktivních spor, a to i u tzv. oligosporogenních kmenů.Through continuous experimental research on the control of conidation of C. purpurea, we have been able to gradually identify and optimize cultivation conditions by allowing virtually synchronous conidation to produce a surprisingly large number of morphologically uniform and physiologically maximally active spores, even in so-called oligosporogenic strains.

Bylo zjištěno, že konidiaci podmiňují dva následné signály, přijímané z prostředí. První z nich je adresován rostoucí sfacelii, která na něj reaguje ukončením polárního růstu. Ukončení růstu sfacelie je nutným předpokladem iniciace konidiačni fáze. Druhý signál, podmíněný další změnou prostředí, je přijímán již nerostoucí sfacelii a rozhoduje o experzi konidiace. Exprese konidiace je pochodem nevratným. Proto buňky sfacelie, které v reakci na první signál přerušily vrcholový růst, mají již jen dvě alternativy: jsou-li vystaveny druhému signálu začínají odškrcovat konidie, v opačném případě postupně odumírají.Two consecutive signals received from the environment were found to be conditional. The first one is addressed to the growing spacelet that responds to it by terminating polar growth. Ending the growth of the sphellia is a prerequisite for initiating the conidation phase. The second signal, conditioned by further environmental change, is received by the already growing sphacell and decides on the conidiation experiment. The expression of conidiation is irreversible. Therefore, the sphellia cells, which, in response to the first signal, interrupted peak growth, have only two alternatives: when exposed to the second signal they start to constrict conidia, otherwise they gradually die.

Vlastní experimentální průkaz významu obou signálů byl proveden dvoustupňovou povrchovou kultivací sfacelie metodou výměny kultivačního media. První stupeň byl inokulován mladým vegetativním inokulem reprezentovaným sfacelii v počátku logaritmické fáze růstu, vykultivovanou submerzně z konídií, v mediu obsahujícím 3 % hmot. sacharozy. Ukončení apikálního růstu sfacelie bylo v prvním stupni dosaženo tím, že z kultivačního media byla zcela vypuštěna cukerná složka. Růst umožnila zbytková sacharoza, vnesená spolu s inokulem. Alternativně byl první stupeň inokulován klidovými konidiemi, suspendovanými v destilované vodě. V tomto případě byly do media pro kultivaci prvního stupně přidány stopy cukerné složky, umožňující minimální nárůst souvislé plenky sfacelie. V průběhu sedmidenní inkubace prvního stupně vyrostla tedy na hladině media jen tenká plenka mycelia, jejíž růst se ke konci inkubace zcela zastavil. Ve druhém stupni bylo medium nahrazeno mediem stejným, avšak obsahujícím navíc 30 % hmot. sacharozy. Přídavek sacharozy vedl k diferenciaci sfacelie do fáze konidiace a projevil se intenzivní tvorbou spor. Nebylo-li medium prvního stupně nahrazeno, vytvářely se konidie jen ojediněle právě tak, jako když bylo pro výměnu použito media nezměněného. Velmi slabá konidiace byla zaznamenána i po čtrnáctidenní kultivaci v jednom stupni na msdiu se 30 % hmot. sacharozy.The experimental demonstration of the significance of both signals was carried out by two-stage surface cultivation of sphingia by the method of culture medium exchange. The first stage was inoculated with a young vegetative inoculum represented by a sphellia at the beginning of the logarithmic growth phase, cultivated submerged from conidia, in a medium containing 3% by weight. sucrose. In the first step, the ending of the apical growth of sphellia was achieved by completely draining the sugar component from the culture medium. Growth was made possible by the residual sucrose introduced with the inoculum. Alternatively, the first stage was inoculated with resting conidia suspended in distilled water. In this case, traces of the sugar component were added to the first stage culture medium to allow a minimal increase in the continuous diaphragm diaphragm. Thus, during the first-day seven-day incubation, only a thin mycelium diaper grew at the medium level, the growth of which stopped completely at the end of the incubation. In the second step, the medium was replaced with the same medium but containing an additional 30 wt. sucrose. The addition of sucrose led to the differentiation of sphinga into the conidation phase and was manifested by intense spore formation. If the medium of the first stage was not replaced, conidia were created only sporadically, just as when unchanged medium was used for replacement. Very weak conidation was observed even after 14 days of cultivation in one stage on a medium with 30% by weight. sucrose.

Předcházející rozbor problematiky sporulace vláknitých hub a konkrétní objasnění konidiace u druhu C. purpurea umožňují pochopit i obecně známou skutečnost, že konidie vláknitých hub vznikají mnohem snáze ve stacionárních kulturách na svrchní straně myceliální kolonie než v míchané kultuře submerzní. Příčinou je zřejmě polarizovaný charakter stacionární kolonie a její podstatně pomalejší průběh stárnutí na rozdíl od rychle stárnoucího nepolárního submerzního mycelia.The foregoing analysis of filamentous fungal sporulation and the specific clarification of conidia in C. purpurea allow us to understand the well-known fact that filamentous fungal conidia are much easier to produce in stationary cultures on the top of mycelial colony than in submerged mixed cultures. This is probably due to the polarized nature of the stationary colony and its substantially slower aging process, as opposed to the rapidly aging non-polar submerged mycelium.

Uvedených poznatků bylo využito při vypracování způsobu přípravy velkého množství vysoce fyziologicky aktivních konidií mikroorganismu Claviceps purpurea (Fr.) Tul. stacionární kultivací tohoto mikroorganismu na hladině kapalného živného media, obsahujícího zdroje asimilovatelného uhlíku a dusíku a minerální živné sole, při teplotě 20 až 30 °C, podle vynálezu, jehož podstata spočívá v tom, že se kultivace provádí ve dvou stupních, přičemž v prvním stupni kapalné živné medium obsahuje zdroje asimilovatelného dusíku, minerální živné sole a zdroj asimilovatelného uhlíku, s výhodou sacharozu, v koncentraci 0,02 až 0,2, s výhodou 0,05 až 0,1 % hmot. a ve druhém stupni kapalné živné medium obsahuje zdroj asimilovatelného uhlíku, s výhodou sacharozu, v koncentraci 25 až 35 % hmot., s výhodou 30 % hmot., a inkubace kultury se vede až do ukončení fáze odškrcování konidií.These findings have been used in the development of a large number of highly physiologically active conidia of Claviceps purpurea (Fr.) Tul. by stationary cultivation of the microorganism on the surface of a liquid nutrient medium containing sources of assimilable carbon and nitrogen and a mineral nutrient salt at a temperature of 20 to 30 ° C according to the invention, which consists in that the cultivation is carried out in two stages, the liquid nutrient medium comprises assimilable nitrogen sources, mineral nutrient salts, and an assimilable carbon source, preferably sucrose, at a concentration of 0.02 to 0.2, preferably 0.05 to 0.1% by weight. and in a second step, the liquid nutrient medium comprises an assimilable carbon source, preferably sucrose, at a concentration of 25 to 35 wt%, preferably 30 wt%, and incubating the culture until the conidia constriction phase is complete.

Účelně se kapalné živné medium v prvním stupni inokuluje submerzním vegetativním inokulem produkčního mikroorganismu v logaritmické fázi růstu nebo klidovými sporami ve vodné suspenzi.Suitably, the liquid nutrient medium in the first step is inoculated with the submerged vegetative inoculum of the producing microorganism in the logarithmic growth phase or by resting spores in an aqueous suspension.

Podle pracovních podmínek trvají oba stupně kultivace zpravidla stejně dlouhou dobu, obvykle 6 až 8 dní.Depending on the operating conditions, the two cultivation steps usually take the same duration, usually 6 to 8 days.

Způsob podle vynálezu umožňuje běžnými jednoduchými prostředky získávat materiál pro očkovací látku, používanou při infekci žita v polních podmínkách, s několikanásobně zvýšenou produkcí námele. Stejně tak lze konidií, získaných způsobem podle vynálezu, použít pro přípravu velkých objemů inokula k zaočkování produkční půdy pří fermentační výrobě námelových alkaloidů.The method according to the invention makes it possible, by conventional simple means, to obtain a material for a vaccine used in the infection of rye under field conditions, with a multiple increase in ergot production. Likewise, the conidia obtained by the process of the invention can be used to prepare large volumes of inoculum to inoculate the production soil in the fermentative production of ergot alkaloids.

Příklad 1Example 1

a) Vegetativní inokulum(a) Vegetative inoculum

Submerzní vegetativní inokulum bylo připraveno ve varných baňkách obsahu 500 ml, plněných po 80 ml inokulační půdy tohoto složení (v % hmot.): sacharoza 3, kukuřičný výluh 0,4, kryst. síran hořečnatý 0,1, dihydrogenfosforečnan draselný 0,04, kryst. dusičnan vápenatý 0,144, terč. citran amonný 1, pH 5,8 (upraveno amoniakem]. Po naplnění byla půda sterilizována v autoklávu 20 minut při 0,1 MPa. Vychladlá půda byla naočkována suspenzí konidií připravenou z kultur sporové generace, narostlých na agarem ztužené sporulační půdě tohoto složení: pivovarská sladina 5° Bé, kyselý hydrolyzát kaseinu 1 % hmot., kryst. síran hořečnatý 0,1 % hmot., agar 3 % hmot., pH 6,3 (upraveno hydroxidem draselným). K přípravě suspenze bylo použito sterilní inokulační půdy. Suspenze konidií, získaná setřením s povrchu sporové generace, byla zfiltrována nasátím do sterilní dělené pipety (10 ml) s mírně odříznutou špičkou, přetaženou dvěma vrstvami gázy. Tím byla ze suspenze odstraněna vlákna a kousky mycelia a zabráněno vzniku pelet srůstáním růstových center, popřípadě nárůstu nežádoucího kuličkového mycelia.. Hustota takto připravené suspenze konidií byla orientačně kontrolována odečtením na Bůrkerově komůrce, popřípadě nefelometricky. Každá baňka byla zaočkována množstvím asi 0,3 X 109 konidií. Vegetativní submerzní inokulum bylo inkubováno na třepacím stroji při teplotě 24 °C po dobu 30 hodin.Submerged vegetative inoculum was prepared in 500 ml beakers filled with 80 ml inoculum broth of the following composition (in% by weight): sucrose 3, corn steep liquor 0.4, crystals. magnesium sulfate 0.1, potassium dihydrogen phosphate 0.04, crystal. calcium nitrate 0.144, target. Ammonium citrate 1, pH 5.8 (adjusted with ammonia) After filling, the soil was sterilized in an autoclave for 20 minutes at 0.1 MPa, and the cooled soil was inoculated with a conidial suspension prepared from spore-generation cultures grown on agar-hardened sporulation soil of the following composition: wort 5 ° Bé, casein acid hydrolyzate 1% w / w, crystalline magnesium sulfate 0.1% w / w, agar 3% w / w, pH 6.3 (adjusted with potassium hydroxide) Sterile inoculum broth was used to prepare the suspension. The conidia obtained by wiping off the surface of the spore generation was filtered by sucking into a sterile 10 ml pipette with a slightly cut tip overlaid with two layers of gauze to remove fibers and mycelium from the suspension and to prevent pellets from growing through the growth centers The density of the conidia suspension thus prepared was tentatively checked by subtraction to Bo. Each flask was inoculated with about 0.3 X 10 9 conidia. The vegetative submerged inoculum was incubated on a shaker at 24 ° C for 30 hours.

bj První stupeňbj First stage

V prvním stupni došlo k růstu vegetativního vzdušného bílého mycelia (sfacelie) ve stacionární kultuře na hladině půdy bez sacharozy tohoto složení (v % hmot.); kukuřičný výluh 0,4, kryst. síran hořečnatý 0,1, dihydrogenfosforečnan draselný 0,04, kryst. dusičnan vápenatý 0,144, terč. citran amonný 1, pH 5,8 (upraveno amoniakem). Půda byla plněna do Blackeových baněk (5,5 cm) po 30 ml a sterilizována v autoklávu 20 minut pří 0,1 MPa. Vychladlá půda byla inokulována po 1 ml vegetativního submerzního inokula. Po zamíchání zaočkované půdy bylo inkubováno v klidu při teplotě 24 °C po dobu 7 dnů.In the first stage, vegetative airy white mycelium (sphcelia) was grown in stationary culture at the level of sucrose-free soil of this composition (in% by weight); corn steep liquor 0.4, crystal. magnesium sulfate 0.1, potassium dihydrogen phosphate 0.04, crystal. calcium nitrate 0.144, target. ammonium citrate 1, pH 5.8 (adjusted with ammonia). The soil was filled into Blacke flasks (5.5 cm) of 30 ml and sterilized in an autoclave at 20 psi for 20 minutes. The cold soil was inoculated with 1 ml of vegetative submerged inoculum. After mixing the inoculated soil, it was incubated at rest at 24 ° C for 7 days.

c) Druhý stupeň(c) Second stage

Ve druhém stupni došlo k diferenciaci sfaceliového mycelia, narostlého v průběhu prvního stupně, do fáze sporulace a k odškrcování konidií. Toho bylo dosaženo tak, že vyčerpaná půda prvního stupně byla za sterilních kautel odlita a mycelium opět opatrně podvrstveno 30 ml sporulační půdy tohoto složení (v % hmot.]: sacharoza 30, kukuřičný výloh 0,4, kryst. síran hořečnatý 0,1, dihydrogenfosforečnan draselný 0,04, kryst. dusičnan vápenatý 0,144, terč. citran amonný 1, pH 6,2 (upraveno amoniakem). Sporulační půda byla sterilizována ve zku4 mavkách po 30 ml. Po podvrstvení mycelia byly baňky opět zazátkovány a dále inkubováno znovu 7 dní při teplotě 24 °C. Z jedné baňky (kultivační plocha hladiny půdy byla 25 cm2) bylo získáno průměrně 18 X 109 konidií.In the second stage, the spacellia mycelium, grown during the first stage, was differentiated into a sporulation phase and conidia constricted. This was accomplished by pouring the spent first-stage soil under sterile cautious sutures and again carefully layering the mycelium with 30 ml of sporulated soil of the following composition (in% by weight): sucrose 30, maize display 0.4, crystallized magnesium sulfate 0.1, potassium dihydrogen phosphate 0.04, crystalline calcium nitrate 0.144, target ammonium citrate 1, pH 6.2 (treated with ammonia) Sporulation broth was sterilized in 30 ml tubes After the mycelium was layered, the flasks were stoppered and incubated again 7 days at 24 [deg.] C. On average, 18 * 10 < 9 > 9 conidia were obtained from one flask (soil surface area was 25 cm < 2 > ).

Příklad 2Example 2

Kultivace byla provedena obdobně jako je uvedeno v příkladě 1 s tím rozdílem, že k inokulaci prvního stupně bylo použito vodné suspenze konidií, obsahující v 1 ml 0,03 X X 109 klidových konidií a do media pro kultivaci prvního stupně bylo přidáno 0,075 % hmot. sacharozy. Z jedné baňky bylo získáno průměrně 21 X 109 konidií.The cultivation was performed as in Example 1, except that an aqueous conidia suspension containing 0.03 XX 10 9 resting conidia in 1 ml was used to inoculate the first stage and 0.075% w / w was added to the first stage culture medium. sucrose. On average, 21 X 10 9 conidia were obtained per flask.

Získané konidie byly použity k infekci žita v polním pokuse ve srovnání s konidiemi, připravenými dosavadní rutinní metodou submerzní kultivací. Koncentrace konidií v obou srovnávaných očkovacích látkách byla nastavena shodně na hodnotu 20 X 109 živých konidií (stanoveno metodou vitálního barvení erythrosinem) v 10 1 očkovací látky. Tímto množstvím očkovací látky obou typů byla infikována vždy plocha 1 aru žita opakovaně na třech různých lokalitách. Po infekci, provedené kontrolní očkovací látkou, bylo sklizeno v průměru 1,84 kg námele, zatímco při použití očkovací látky, připravené z konidií způsobem podle vynálezu, bylo získáno v průměru 4,12 kg námele.The conidia obtained were used to infect rye in a field trial as compared to conidia prepared by the routine submerged culture method. The conidia concentration in both comparisons was set equal to 20 X 10 9 live conidia (as determined by the vital erythrosine staining method) in 10 L of the vaccine. With this amount of vaccine of both types, the area of 1 ore was repeatedly infected at three different sites. An average of 1.84 kg of ergot was harvested after infection with the control vaccine, while an average of 4.12 kg of ergot was obtained using a vaccine prepared from conidia according to the invention.

Claims (1)

PŘEDMĚTSUBJECT Způsob přípravy velkého množství vysoce fyziologicky aktivních konidií mikroorganismu Claviceps purpurea (Fr.) Tul. stacionární kultivací tohoto mikroorganismu na hladině kapalného živného media, obsahujícího zdroje asimilovatelného uhlíku a dusíku a minerální živné sole, při teplotě 20 až 30 °C, vyznačující se tím, že se kultivace provádí ve dvou stupních, přičemž v prvním stupni kapalné živné medium obsahuje zdroje asiVYNÁLEZU milovatelného dusíku, minerální živné sole a zdroj asimilovatelného uhlíku, s výhodou sacharozu, v koncentraci 0,02 až 0,2, s výhodou 0,05 až 0,1 % hmot., a ve druhém stupni kapalné živné medium obsahuje zdroj asimilovatelného uhlíku, s výhodou sacharozu, v koncentraci 25 až 35 % hmot., s výhodou 30 % hmot. a inkubace kultury se vede až do ukončení fáze odškrcování konidií.Process for the preparation of a large number of highly physiologically active conidia of the microorganism Claviceps purpurea (Fr.) Tul. by stationary cultivation of the microorganism on the surface of a liquid nutrient medium containing assimilable carbon and nitrogen sources and a mineral nutrient salt at a temperature of 20 to 30 ° C, characterized in that the cultivation is carried out in two stages, OF THE INVENTION of a lovable nitrogen, a mineral nutrient salt and an assimilable carbon source, preferably sucrose, at a concentration of 0.02 to 0.2, preferably 0.05 to 0.1 wt%, and in a second stage the liquid nutrient medium comprises an assimilable carbon source %, preferably sucrose, in a concentration of 25 to 35 wt.%, preferably 30 wt. and incubating the culture until the conidia constriction phase is complete.
CS573281A 1982-04-28 1982-04-28 Method of preparing large amounts of highly physiologically active conidia of microorganism claviceps purpures(fr.)tul. CS227392B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS573281A CS227392B1 (en) 1982-04-28 1982-04-28 Method of preparing large amounts of highly physiologically active conidia of microorganism claviceps purpures(fr.)tul.

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS573281A CS227392B1 (en) 1982-04-28 1982-04-28 Method of preparing large amounts of highly physiologically active conidia of microorganism claviceps purpures(fr.)tul.

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS227392B1 true CS227392B1 (en) 1984-04-16

Family

ID=5402773

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS573281A CS227392B1 (en) 1982-04-28 1982-04-28 Method of preparing large amounts of highly physiologically active conidia of microorganism claviceps purpures(fr.)tul.

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS227392B1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2008054688A (en) Osmotically controlled fermentation process for preparation of acarbose
US3892629A (en) Process for growing a fungus
Kuek Shake-flask culture of Laccaria laccata, an ectomycorrhizal basidiomycete
CN114292757B (en) Culture medium for purifying and culturing conidium of Eurotium cristatum, and preparation method and application thereof
CN109371093A (en) A kind of method of streptomyces aureus fermenting and producing tetracycline
US2843527A (en) Production of griseofulvin in low nitrogen level medium
CS227392B1 (en) Method of preparing large amounts of highly physiologically active conidia of microorganism claviceps purpures(fr.)tul.
US20030036177A1 (en) Single colonies of myxobacteria cells
US4369252A (en) Fermentation process for the preparation of ergot alkaloids, primarily ergocornine and β-ergocryptine
US3654080A (en) Process for isomerizing glucose to fructose
CN108849240A (en) A kind of edible fungi liquid strain precision fermentation medium and application
SI9600120A (en) New and improved fermentative procedure for the production of clavulanic acid and its salts
RU2001949C1 (en) Strain of fungus trichoderma reesei - a producer of cellulolytic enzymes
RU1549227C (en) Method for producing a complex of lytic enzymes
RU2233324C1 (en) Method for preparing lipoxygenase enzyme preparation
RU1797624C (en) Method for preparation protein fodder
SU430154A1 (en) METHOD OF OBTAINING MICROSCLEROCIA
US3069329A (en) Production of griseofulvin
RU2032412C1 (en) Process for manufacture of "balise" medicinal preparation
SU911765A1 (en) Method of cultivating entomopathogenic bacteria
SU1097673A1 (en) Method for preparing gluocamylase from protein fodder
SU1411336A1 (en) Method of producing hydrocortisone
RU2038381C1 (en) Method for cultivating producer of hydrolytic ferments for saccharification of starch-containing raw materials
AU636112B2 (en) Method for cultivating microorganisms, particularly of the frankia group, and preparation of bacterial inoculums
RU2092557C1 (en) Method of preparing the sowing material for citric acid production