CS225066B1 - Způsob výroby syřidlového enzymového preparátu - Google Patents

Způsob výroby syřidlového enzymového preparátu Download PDF

Info

Publication number
CS225066B1
CS225066B1 CS782880A CS782880A CS225066B1 CS 225066 B1 CS225066 B1 CS 225066B1 CS 782880 A CS782880 A CS 782880A CS 782880 A CS782880 A CS 782880A CS 225066 B1 CS225066 B1 CS 225066B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
rennet
preparation
production
enzyme preparation
lactoflora
Prior art date
Application number
CS782880A
Other languages
English (en)
Inventor
Ludmila Peterkova
Zdenko Vanek
Miroslav Dedek
Prof Ing Drsc Krumphanzl
Original Assignee
Ludmila Peterkova
Zdenko Vanek
Miroslav Dedek
Prof Ing Drsc Krumphanzl
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ludmila Peterkova, Zdenko Vanek, Miroslav Dedek, Prof Ing Drsc Krumphanzl filed Critical Ludmila Peterkova
Priority to CS782880A priority Critical patent/CS225066B1/cs
Publication of CS225066B1 publication Critical patent/CS225066B1/cs

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

(54)
Způsob výroby syřidlového enzymového preparátu
225 066
225 Οββ
Vynález se týká výrooy syřidlového preparátu kultivací vybraných druhů streptomycet.
Dosud se vyrábí přírodní syřidlo z telecích žaludkůj obsahujících převážně jako syřidlový enzym chymosin a z vepřových žaludků, které obsahují převážně pepsin. repsinové syřidlo lze samostatně použít jen k výrobě tvarohů a měkkých sýrů, zatímco chymosinového syřidla stále ubývá pro nedostatek telecích žaludků na trhu. Proto jsou konány pokusy a vyvíjena syřidla mikrobiální, které mají také koagulační schopnost, aniž by se zvyšovala kyselost. K pokusným výrobám mikrobiálního syřidla bylo použito řady různých mikrobů. V m rých případech byl tento vývoj ukončen, použití mikrobiálních druhů a kmenů popsáno, případně patentováno, lak je patentována výrooa syřidla mikrobiálního původu za použití dacillus subtilis, macillus megaterium, tfacillus polymy. a, mucor puscillus, mucor miehei, Dndothia parasitica, některých druhů nub z třídy 8asidiomycetes a dalších. Také u streptomycet oyly konány pokusy se získáním enzymů s koagulační aktivitou.
Nedostatkem mikrobiálních syřidel, vyrobených za použití výše uvedených mikroorganismů, je méně výhodné a převážně vyšší proteolytická aktivita oproti přírodnímu syřidlu chymosinovému, velikož proteolytická i koagulační aktivita jsou pravděpodobně realisovány jedním enzymem, je malá pravděpodODnost isolace takové mutanty, Která by i
-2 225 Οββ vykazovala podstatně zvýšenou koagulační aktivitu a naopak sníženou aktivitu proteolytickou. Nevhodná, popřípadě vysoká proteolytická aktivita, především jsou-li vytvářeny v převaze alkalické proteázy, má při výrobě sýrů za následek hořkost, špatnou konzistenci a rychlé přezrávání v distribuci.
Výše uvedené nedostatky se odstraní použitím způsobu podle vynálezu, jehož podstata spočívá v tom, že se kultivují kmeny Streptomyces rimosus, Laktoflora č. 950 a/nebo Streptomyces albogriseolus, Laktoflora č. 951 v prostředí obsahujícím využitelné zdroje uhlíku a dusíku a živné soli, při teplotě 26 až 28 °c a počátečním pH 6,9 až 7,0, po dobu 24 až 144 hodin, načež se vyprodukovaný syřidlový preparát od kultivačního media oddělí a koncentrace syřidlových enzymů se zvýší například odpařením, vysolením a/nebo membránovými metodami. Případně je možno získat preparát práškový vhodným sušením, například vakuovým, kryodesikačním nebo fluidním.
Výhody způsobu podle vynálezu spočívají v tom, že vyrobený syřidlový preparát má ve vhodném poměru koagulační a proteolytickou aktivitu a zajištuje vhodný rozklad kaseinových. frakcí. Koagulační aktivita získaného syřidlového preparátu i proteolytická vlastnosti jsou podobné vlastnostem přírodního syřidla ohymo sinového, získaného z telecích žaludků. Při výrobě syřidlového preparátu kmenem Streptomyces rimosus, označeným v Československé sír225 066 ce -i.ikroorganiamů Laktoflora č. 950 , a kmenem ^treptomyces albogriseolus, Laktoflora č. 951 , bylo dosaženo překvapivého zvýšeného technického účinku tím, že získaný syřidlový preparát má podobné vlastnosti jako přírodní syřidlo chymosinové a svou koagulační a především proteolytickou aktivitou zajišíuje daleko vhodnější jakost sýrů a tvarohů., než dosud známá mikrobiální syřidla.
Postup výroby syřidlového enzymového preparátu je zřejmý z následujících příkladů.
Příklad 1
a) Příprava laboratorních kultur produkčního mikroorganismu
Kmen Streptonyces rimosus Laktoflora č. 950 byl kultivován 10 dní při teplotě 28 °C na agarové půdě, obsahující ;
fíacto-yeast-extract ......... ...... 4,0 g
8acto malt-extract ........ 10,0 g glukosa ........... 4,0 g agar Oxoid No. 3..... 30,0 g destilovaná voda.............. .1 000,0 ml pH půdy oylo před sterilisací upraveno na 7,3 .
225 Οββ
Vyrostlé kultury byly uchovávány při 4 °C a používány pro přípravu vegetativního inokula nejdéle po dobu 2 měsíců.
Dvoustupňová submersní kultivace kmene byla provedena na reciprokém třepacím stroji s frekvencí lt6 Hz, tj. s 96 kyvy/min a délkou kyvu 10 cm, při 28 °C v 500 ml varných buňkách, obsahujících 80 ml tekutého živného prostředí následujícího složení:
glukosa........................10,0 g škrob rozpustný....................15,Og cornsteep /suš./ ................... 5,0g /NH4/2So4 :......................3,5 g
NaCl.........................5,0 g
CaC03.........................5,0 g destilovaná voda . ................ 1 000,0 ml pH půdy před sterilizací bylo upraveno na 6,95.
První vegetativní generace, očkovaná inokulem z agarové kultury, byla kultivována 26 h. Druhá generace, očkovaná 4 ml kultury 1. vegetativní generace, byla kultivována 96 h.
b/ Příprava syřidlového enzymového preparátu fermentační tekutiny, získané spojením 90 paralelních submerzních kultur 2. generace, starých 96 h, bylo centrifugováno 20 min při 5 000 g. Syřidlový enzymový preparát byl isolován ze supernatantu trojstupňovou frakcionací síranem amonným p.a.:
1. stupeň: balastní bílkoviny, nemající požadovanou koagulační aktivitu, byly odstraněny vysolením síranem amonným p.a. do stupně nasycení 50 % za stálého míchání. Sraženina byla po ústa
- 5225 066 vení rovnovážného stavu, tj. po 4 h stání při 4 °C, oddělena centrifugací 20 min při 5 000 2·
2. stupeň: supernatant, zbavený v předchozím stupni balastního bílkovinného podílu, byl dále frakcionován síranem amonným do stupně nasycení 75 %. Po ustavení rovnovážného stavu byla sraženina oddělena centrifugací 20 min při 5 000 2· Získaná bílkovinná frakce byla rozpuštěna v destilované vodě, jejíž množství odpovídalo 1/50 původnímu objemu fermentační tekutiny, a roztok byl dialysován proti destilované vodě 12 h při 4 °C.
Čistý syřidlový enzymový preparát, získaný ve stupni 2, vykazoval koagulační aktivitu 6 000 Hansenových jednotek.
3. stupeň: k supernatantu, získanému předchozí frakcionací, byl přidán za stálého míchání síran amonný p.a. do stupně nasycení 100 %. Další postup byl stejný jako ve stupni 2. Výsledný čistý syřidlový enzymový preparát vykazoval koagulační aktivitu 8 300 Hans nových jednotek.
Takto připravené syřidlové enzymové preparáty po 2. a 3. stupni frakcionace, obsahující převážně kyselé a neutrální proteasy /stanoveno metodou dle Turkové a sp. Biochim.Biophys.Acta, 173: 100-111, 1969/ lze přímo použít pro výrobu sýrů.
Příklad 2 a/ Příprava kultur produkčního mikroorganismu
Kmen Streptomyces albogriseolus Laktoflora č. 951 byl kulti- : vován 10 dní při teplotě 28 °C na aaarové půdě stejného složení jako v příkladu 1.
225 Οββ
Dvoustupňová submersní kultivace kmene probíhala při 28 °C na rotačním třepacím stroji při 220 otáčkách za jednu minutu s 5 cm excentritou v 500 ml varných baňkách, obsahujících 80 ml Z 3 produkčního živného media, a ve fermentoru 50 dm . Fermentor byl vybaven membránovým distributorem vzduchu, lopatkovým míchadlem a mechanickým odpěňovačem. Vzdušnění bylo nařízeno na 0,5 až 0,75 WM a počet obrátek v počáteční fázi na 150, později na 300 za 1 minutu. U obou stupňů kultivace mělo produkční živné medium následující složení:
sacharóza ................ 55,0 g corn steep 55 %........ 8,4 g melasa.......................2,5 g sojová mouka.................... 34,0 g
NaCl..... 2,5 g
CaC03....... 9,0 g /NH4/2SO4 ....... ............... 6,5 g
MnS04 . 4 H20 . . ....... 30,0 mg
ZnSO4 . 7 H20 . . . . .... . . . . ... . . . . . 20,0 mg
MgSO4 . 7 H20 .... . . .............. 50,0 mg
CoCl2 . 6 H20 . . ................. 3,0 mg destilovaná voda .................1 000,0 ml pH půdy před sterilizací bylo upraveno na 6,9.
První vegetativní generace, očkovaná inokulem z agarové kultury, byla kultivována 24 hodin, druhá 96 hodin.
b/ Příprava syřidlového enzymového preparátu
Fermentační tekutina, získaná z fermentoru 50 dm , byla ihned po 96 hodinové kultivaci odstředěna na odstředivce při
-1225 086
000 2 P° dobu 30 minut. Získaný supernatant byl zahuštěn v odparce na jednu pětinu svého původního objemu.
Získaný syřidlový enzymový preparát obsahoval koagulační aktivitu 6 000 Hansenových jednotek.

Claims (1)

  1. PŘEDMĚT VYNÁLEZU
    225 OBB
    Způsob výroby syřidlového preparátu, vyznačený tím, že se kultivují kmeny Streptomyces rimosus, Laktoflora č. 950 a/nebo Streptomyces albogriseolus, Laktoflora č. 951 v prostředí, obsahujícím využitelné zdroje uhlíku a dusíku' a živné soli, za aerace, při teplotě 26 až 28 °C a počátečním pH 6,0 až 7,0 po dobu 24 až 144 hodin, načež se vyprodukovaný syřidlový preparát od kultivačního media oddělí a koncentrace syřidlových enzymů se zvýší, například odpařením, vysolením a/nebo membránovými metodami.
CS782880A 1980-11-18 1980-11-18 Způsob výroby syřidlového enzymového preparátu CS225066B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS782880A CS225066B1 (cs) 1980-11-18 1980-11-18 Způsob výroby syřidlového enzymového preparátu

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS782880A CS225066B1 (cs) 1980-11-18 1980-11-18 Způsob výroby syřidlového enzymového preparátu

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS225066B1 true CS225066B1 (cs) 1984-02-13

Family

ID=5428125

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS782880A CS225066B1 (cs) 1980-11-18 1980-11-18 Způsob výroby syřidlového enzymového preparátu

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS225066B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4158607A (en) Enzymatic preparation for ripening of milk protein products
US4136201A (en) Microbial rennin
US3857967A (en) Preparation of food and beverages with peptidoglutaminase
Bailey et al. Production of microbial rennin
US3151039A (en) Milk coagulating enzyme "microbial rennet" and method of preparation thereof
US3796633A (en) Peptidoglutaminase
US3212905A (en) Process for making cheese
US3616233A (en) Removing esterase from microbial rennin
US3275453A (en) Milk-curdling enzyme elaborated by endothia parasitica
CS225066B1 (cs) Způsob výroby syřidlového enzymového preparátu
US3661594A (en) Production of bacterial rennet for making cheese
US3482997A (en) Making cheese using a modified bacterial enzyme complex from the genus bacillus
US3507750A (en) Process for preparing milk coagulating enzyme complex
US4929558A (en) Culture of strain of bacillus bacteria for producing soybean protein clotting enzyme
US3763010A (en) Stabilized microbial rennet
USRE30669E (en) Microbial rennin
US3852478A (en) Milk-clotting enzyme
RU2207019C1 (ru) Биологически активная добавка к пище и способ ее приготовления
RU2112035C1 (ru) Способ получения протеолитических ферментов из бактерий рода bacillus
IL29621A (en) Process for preparing a microbial rennin
Wang et al. Milk-clotting activity of proteinases produced by Rhizopus
SU471380A1 (ru) Способ получени ферментного препарата дл свертывани молока
OKAMURA-MATSUI et al. Fermented soybean with thrombosis preventing activity using mushroom mycelia as microbial source
US4929453A (en) Soybean protein clotting enzyme produced by microorganism FERM BP-1778
US3692631A (en) Method for bacterial proteinase