CS214443B1 - Method of isolating the enzymes of cholinesteraze type - Google Patents

Method of isolating the enzymes of cholinesteraze type Download PDF

Info

Publication number
CS214443B1
CS214443B1 CS78881A CS78881A CS214443B1 CS 214443 B1 CS214443 B1 CS 214443B1 CS 78881 A CS78881 A CS 78881A CS 78881 A CS78881 A CS 78881A CS 214443 B1 CS214443 B1 CS 214443B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
type
column
enzymes
volume
glycerol
Prior art date
Application number
CS78881A
Other languages
Czech (cs)
Slovak (sk)
Inventor
Juraj Zemek
Ludovit Kuniak
Stefan Kucar
Juraj Zamocky
Original Assignee
Juraj Zemek
Ludovit Kuniak
Stefan Kucar
Juraj Zamocky
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Juraj Zemek, Ludovit Kuniak, Stefan Kucar, Juraj Zamocky filed Critical Juraj Zemek
Priority to CS78881A priority Critical patent/CS214443B1/en
Publication of CS214443B1 publication Critical patent/CS214443B1/en

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

Podstata vynálezu spočívá v tom, že biologický roztok obsahujúci enzym cholínesterázového typu sa zrledi tlmivým roztokom pH 7,5 až 8,5 na 1 % komcentráciou proteinu a nanesie sa na kolonu z pelysacharidového gólu, s výhedou z celulózy obsahujůcej viazanú p-/w aminofenyl/ boronovú kyselinu adjustovanú na pH 7,5 tlmivým roztokom s obsahom 0,5 M glycerolu a přečištěný podiel enzýmu cholíneeterázového typu sa eluuje pri dalšom premývaní dolony tlmivým roztěkám o jH 7,5 s 0,5 M glycerelem.The essence of the invention is that an enzyme-containing biological solution of cholinesterase type are diminished by the attenuation pH 7.5 to 8.5 per 1% concentration protein and loaded onto the column from the pelysaccharide goal, with a view from cellulose containing bound p- / w aminophenyl / boronic acid adjusted to pH 7.5 with a buffer of 0.5 M glycerol and purified enzyme choline etherase type elutes at further washing the dolons with the buffers o jH 7.5 with 0.5 M glycerol.

Description

Vynález ea týká spdeebu izoláeie enzýmov oholíneeterázového typu, a to aoetylcholínesterázy (acetyloholín hydroláza, EC 3,1.1.7) a peeudecholíneeterázy (aoetyloholín acylhydroláza, EC 3.1.1.8).The invention also relates to the isolation of enzymes of the sholeneetherase type, namely, ethyl ethyl choline esterase (acetyloholine hydrolase, EC 3.1.1.7) and peeudecholine etherase (aoethyloholine acyl hydrolase, EC 3.1.1.8).

Pri izoláoll enzýmov oholíneeterázového typu sa vychádza z homogenátu tkaniva (aoetyloholíneeteráza, peeudeoholínoeteráza) alebo krvnej plazmy frakcionevanej etanelom (pseudocholíneateráza), Surgenor P.M., Ellias D.t J Amer. Chem, Sec. 76, 6049, 1954, a následnou chromatograflou na géli z fosforečnanu vápenatého, reep. lonomeniči (Maletrom B.O., Lavin 0., Bomaa H.G.s Aota Chem. Scand., 10, 1077), připadne ďalšou gélovou flltráelou (Dae P.K., Llddell J.t Blochem. <J«, 116, 875, 1970), Rýehlu metodu izoláeie aoetyloholíneaterázy z hovadzíoh erytrocytov afinitnou gélovou chromatograflou na Sepharose a naviazaným d-tubukarinom a elúcii a chloridom sodným popisujú Jung J. a Belleau B.s Mol. Pharmaool., 8, 589, 1972.The isolated enzymes of the sholinneetherase-type are based on tissue homogenate (a-oetloholine etherase, peeudeoholinetherase) or ethanol-fractionated blood plasma (pseudocholino-esterase), Surgenor P.M., Ellias D.t J Amer. Chem., Sec. 76, 6049, 1954, and subsequent chromatography on a calcium phosphate gel, reep. ion exchangers (Maletrom BO, Lavin 0, Bomaa HGs Aota Chem. Scand., 10, 1077), optionally by another gel filter (Dae PK, Llddell Jt Blochem. <RTI ID = 0.0> J, </RTI> 116, 875, 1970). bovine erythrocytes by Sepharose affinity gel chromatography and coupled d-tubucarin and elution and sodium chloride are described by Jung J. and Belleau Bs Mol. Pharmaool., 8, 589, 1972.

TriraetylC&h-amiaofeaylJamóniura chlorid, hydrochlorid ako afinitný ligand viazaný na Bio-Cel A popisujú Berman J.D. a Young M.: Proe. Nat. Acad. Soi. US 68, 395, 1971. Nevýhodou uvedených postúpov je ich zdíhavoat, připadne nákladná příprava afinitnýoh ligandov a v ďalšom nie jednoduché viazanie na nosič.Tri-ethylC &lt; RTI ID = 0.0 &gt; h-amiaofeayl &lt; / RTI &gt; ammonium chloride, hydrochloride as an affinity ligand bound to Bio-Cel A is described by Berman J.D. and Young M. Proe. Nat. Acad. Soi. US 68, 395 (1971). The disadvantages of these processes are that they are wasteful, costly to prepare affinity ligands and, in the following, not simply binding to a carrier.

Uvedené nedostatky rieši postup podía vynálezu.These disadvantages are solved by the process according to the invention.

Podstata vynálezu spočívá v tom, že biologický roztok obsahujúci enzým cholíneeterázového typu s výhodou aoetylcholínesteráza alebo pseudocholíneateráza sa zriedi tlmivým roztokom pH 7,5 až 8,5 na 1%-nu koncentráciu proteinu a nanesie sa na kolonu z polysaoharidového gélu, e výhodou z celulózy obsahujúcej viazanú p-(^ -aminofenyl)borónovú kyselinu adjustovanú na pH 7,5 tlmivým roztokom β obsahom 0,5 M glýoerolu v objemovou poměre: nopresahujúeom 1/20 objemu biologického rozteku k objemu polysaoharldováho gélu a pročištěný podiel enzýmu oholíneeterázového typu neinhibovaný organofosfátovými látkami sa eluuje z kolony pri ďalšom premývaní kolony tlmivým roztokom (50 oM) o pH 7,5 s 0,5 M glycerolom objemovej frakcie eluátu rovnajúcej sa 2 až 4 násobku objemu použitého polysacharidového gélu.SUMMARY OF THE INVENTION The biological solution comprising a choline etherase-type enzyme, preferably α-ethylcholine esterase or pseudocholine esterase, is diluted with a buffer solution of pH 7.5 to 8.5 to a 1% protein concentration and loaded onto a polysaoharide gel column, preferably cellulose. containing bound β- (β-aminophenyl) boronic acid adjusted to pH 7,5 with β buffer containing 0,5 M glycerol in a volume ratio of: not more than 1/20 of the volume of the biological solution to the volume of the polysaohaldic gel and was eluted from the column with a further wash of the column with buffer (50 µM) pH 7.5 with 0.5 M glycerol eluate fraction equal to 2-4 times the volume of polysaccharide gel used.

Postup možno aplikovat v koloně, nakoíko enzým oholíneeterázového typu je v dosledku špecifickej interakcie špecificky zadržiavaný oproti ostatným sprievodným proteinem vo formo komplexu s imobilizovaným borátom oez svoje esterotické centrum na kolono. Uvedený postup je vhodné použit v kombinácil s afinitnou metodou izoláeie enzýmov eholínesterázového typu založenoj na intorakoli v anionickom centre, kedy možno dosiahnut vysoký stupeň prečistonia enzýmu, a to aj v přítomnosti dalších enzýmov sorínového typu. Uvedený postup je vhadný prs izoláoiu aktívnych enzýmov cholínesterázsváho typu z homogonátu tkaniva, z erytrocytov alebo krvnej plazmy, nakoíko podiel enzýmu inhibovaný organofosfátovými látkami s uvedeným afinitnýa ligandom neintoraguje.The procedure can be applied in a column, because the enzyme hololine etherase type is specifically retained relative to other accompanying proteins in the formo complex with immobilized borate due to its specific interaction and its esterotic center per column. Said process is useful in combination with an affinity method for isolating Eholine esterase-type enzymes based on at least any other anionic center where a high degree of purification of the enzyme can be achieved, even in the presence of other sorine-type enzymes. This procedure is a peculiar breast isolation of the active cholinesterase-type enzymes from tissue homogonate, erythrocytes or blood plasma, since the enzyme portion inhibited by organophosphate substances does not interact with said affinity ligand.

Výhodou uvedeného postupu jetThe advantage of this procedure is to go

- jednoduchá příprava afinitnéhe liganda- simple preparation of affinity ligand

- umožňuje špeoifiokú purifikáoiu podielu enzýmov oholíneeterázového typu, neinhi2- allows the purification of the fraction of the enzymes of the holiethereterase type, neinhi2

214 443 bovanéhe organofosfátovými látkami214 443 with organophosphate substances

- afinitný ligaad je stály a možno ho použit mnohonásobné- the affinity league is stable and can be used multiple times

- umožňuje dosahovat jednoduchým sposoboa mnohonásobná purifikáciu aktívnych cholínesteráz.- allows multiple purifications of the active cholinesterases to be achieved in a simple manner.

Příklad 1Example 1

Na stípeo připravený z exirámu sietovanej celulózy a 50/mol naviazanej kyseliny p-(w -aminofenyl)boronovej (20 ml) o veíkosti častíe 0,1 až 0,3 mm, adjustovanej 50mM fosfátovým pufrom o pH 7,5 s obsahoa 0,5 M glycerolu sa nanieslo 0,25 ml koňskéj plazmy zriedenej 1 ml fosfátového tlmivého roztoku o pH 8, Prakcia aktívnej pseudocholínesterázy (6,5 jednotiok) sa vymyla elúeiou 50mlí fosfátovým pufrom s 0,5 M glyoerolom, a to v podieli medzi 52 až 95 ml, s maximom aktivity v 82 ml.Prepared in a column made of cross-linked cellulose formate and 50 / mol bound p- (n-aminophenyl) boronic acid (20 ml), 0.1 to 0.3 mm in size, adjusted with 50 mM phosphate buffer pH 7.5 containing 0, 5 M glycerol was loaded with 0.25 ml of horse plasma diluted with 1 ml of phosphate buffer pH 8. The active pseudocholinesterase (6.5 units) was eluted by eluting with 50 ml of phosphate buffer with 0.5 M glyoerol, ranging from 52 to 52 ml. 95 ml, with a maximum activity in 82 ml.

Vytěsněná frakcia obsahovala 0,68 mg proteinu čím sa dosiahol stupeň prečistenia 10,5.The displaced fraction contained 0.68 mg of protein to achieve a degree of purification of 10.5.

Příklad 2Example 2

Tak ako je uvedené v přiklade 1, s tým rozdielom, že na stípec sa naniesol narieděný roztok plazmy obsahujúcej pseudocholínesterázu čiastočne inhibovanu malatinom. Afinitnou chromátografieu na uvedenoj koloně sa zdržal podiel aktívnej pseudocholínesterázy (4,3 jednotky), ktorý sa vymyl 50 mM e 0,5 M glyoerolom.As in Example 1, except that a diluted plasma solution containing pseudocholine esterase partially inhibited by malatine was applied to the column. Affinity chromatography on said column refrained the proportion of active pseudocholinesterase (4.3 units), which was eluted with 50 mM e 0.5 M glyoerol.

Stupeň purifikácie pseudocholínesterázy bol rovnaký ako v příklade 1.The degree of purification of the pseudocholine esterase was the same as in Example 1.

Příklad 3Example 3

K izolácii aeetylcholínesterázy sa použil extrakt z hovadzích erytrocytov, připravený z Tritenu-X-100 postupom podía Ciliv G. a Ozand P.T.: Biochem. Biophys. Acta 284, 136, 1972 a pe odcentrifugovaní (lO.OOOg, 30 minút) sa uvedený extrakt (0,5 ml) adjustoval na pH 7,5 fosfátovým pufrom (l,5 ml, 50 mM) s obsahom 0,5 M glycerolu a naniesol sa na stípec pripravený zo sietovanej kyseliny pektovej 40 ml, (napúčací objem 6 ml/g) s naviazanou kyselinou p-(w -aminofenyl)boronovou (62/umol/g), adjustovanou na pH 7,5, 50 mM fosfátovým pufrom s 0,5 M glyoerolom.The bovine erythrocyte extract prepared from Triten-X-100 according to the procedure of Ciliv G. and Ozand PT: Biochem was used to isolate ateetylcholinesterase. Biophys. Acta 284, 136, 1972 and after centrifugation (100,000g, 30 minutes), said extract (0.5 ml) was adjusted to pH 7.5 with phosphate buffer (1.5 ml, 50 mM) containing 0.5 M glycerol and applied to the prepared with the mesh of silice pectic acid 40 ml, (swelling volume of 6 ml / g) of p-bound (w aminophenyl) boronic acid (62 / ol / g), adjusted to pH 7.5, 50 mM phosphate buffer with 0.5 M glyoerol.

Aktívna acetylcholínesteráza (l6,5 jednotky) sa uvolnila zo stlpca elúeiou 80 až 165 ml hoře uvedeného fosfátového pufru s 0,5 M glyoerolom o celkovom obsahu proteinu 1,95 mg, čo představuje 37,2 násobné prečistenie enzýmu.Active acetylcholinesterase (16.5 units) was released from the column by elution with 80-165 ml of the above phosphate buffer with 0.5 M glyoerol with a total protein content of 1.95 mg, representing a 37.2-fold purification of the enzyme.

Vynález možno uplatnit všade tam, kde je potřebné přečistit aktivně enzýmy cholínesterázového typu a to či už v priemyslevej praxi alebo vo výskume a izolovat ich tak od podielu inhibevaného organofosfátovými látkami.The invention can be applied wherever it is necessary to purify the cholinesterase-type enzymes actively, either in industrial practice or in research, and to isolate them from the organophosphate-inhibited fraction.

Claims (1)

Sposob izolácle enzýmov cholínesterázového typu 8 výhodou acetyloholínesterázy alebo pseudecholínesterézy vyznačený tým, že zriedený biologický roztok obsahujúci enzýmy oholí neeterázového typu o pH 7,5 a obsahom proteínov nio vyššom ako 1 % hmotnosti sa naneslo na kolonu připraveni z polysacharidu sletovaného 2-ohlormetyloxiránom, s výhodou celulózy, obsahujúceho kovalentno viazanú p-(^-aminofenyl)boronovú kyselinu adjustovanú na pH 7,5 tlmivým roztokou a obsahom 0,5 M glycerolu v objemovom pomere nepresahujúcem 1/20 objemu biologického roztoku k objemu polysacharidového gélu a pročištěný podlel enzýmu cholínesterázového typu neinhibovaný organofosfátovými látkami aa eluuje z kolony dalším promývaním kolony tlmivým roztokom o pH 7,5 obsahujúceho 0,5 M glyeerolu v objemovej frakoii eluátu rovnajúcej sa 2 až 4 násobku objemu použitého gélu sletovaného pólysacharidu·A method of isolating cholinesterase-type 8 enzymes, preferably acetyloholinesterase or pseudecholinesterase, characterized in that a dilute biological solution containing enzymes shaves a non-esterase type of pH 7.5 and a protein content of nio greater than 1% by weight is applied to a column prepared from polysaccharide crosslinked. cellulose containing covalently bound β - (β-aminophenyl) boronic acid adjusted to pH 7,5 with a buffer and containing 0,5 M glycerol in a volume ratio not exceeding 1/20 of the volume of the biological solution to the volume of polysaccharide gel and purified by cholinesterase type enzyme not inhibited and eluting from the column by further washing the column with a pH 7.5 buffer containing 0.5 M glyeerol in an eluate fraction equal to 2-4 times the volume of the gelled polysaccharide gel used.
CS78881A 1981-02-03 1981-02-03 Method of isolating the enzymes of cholinesteraze type CS214443B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS78881A CS214443B1 (en) 1981-02-03 1981-02-03 Method of isolating the enzymes of cholinesteraze type

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS78881A CS214443B1 (en) 1981-02-03 1981-02-03 Method of isolating the enzymes of cholinesteraze type

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS214443B1 true CS214443B1 (en) 1982-04-09

Family

ID=5340644

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS78881A CS214443B1 (en) 1981-02-03 1981-02-03 Method of isolating the enzymes of cholinesteraze type

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS214443B1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Miyagi et al. Biochemical and immunological studies on two distinct ganglioside-hydrolyzing sialidases from the particulate fraction of rat brain
Chubb et al. The enkephalins are amongst the peptides hydrolyzed by purified acetylcholinesterase
Weissmann et al. Mammalian α-acetylglucosaminidase. Enzymic properties, tissue distribution, and intracellular localization
Rebecchi et al. Purification of a phosphoinositide-specific phospholipase C from bovine brain.
CZ154794A3 (en) Isolation method of a precipitation factor ix for preparing a pharmaceutical preparation
Mackness et al. Partial purification and properties of sheep serum ‘A’-esterases
Golmanesh et al. Simple procedures for purification and stabilization of human serum paraoxonase-1
Robinson et al. Affinity chromatography of human liver α-D-mannosidase
Geiger et al. Purification of human hexosaminidases A and B affinity chromatography
US5352601A (en) Method for recovering purified 52,000 dalton fraction of human pancreatic cholesterol esterase using deae-cellulose, hydroxyapatite and heparin-sepharose
Mukhopadhyay et al. Bee venom Phospholipase A2Is recognized by the Macrophage Mannose receptor
Reimann et al. [54] Purification of plant peroxidases by affinity chromatography
Stults et al. Immobilization of proteins on partially hydrolyzed agarose beads
CS214443B1 (en) Method of isolating the enzymes of cholinesteraze type
TAGUCHI et al. Properties of bovine erythrocyte acetylcholinesterase solubilized by phosphatidylinositol-specific phospholipase C
US5272080A (en) Production of butyrylcholinesterase
Vician et al. Purification of human blood clotting factor X by blue dextran agarose affinity chromatography
Dixon et al. Hydrophobic esters of cellulose: properties and applications in biochemical technology
Boivin et al. Purification and characterization of an adenosine cyclic 3′: 5′ monophosphate-dependent protein kinase from human erythrocyte membrane
Johnson et al. Purification to homogeneity of the human skin chymotryptic proteinase “chymase”
Pogell et al. [32] Specific elution with substrate
IIO et al. Purification and some properties of erythrocyte acid phospho-monoesterase
Patton Immobilized pancreatic lipase and colipase for purification and binding studies
Kornfeld et al. The identification and partial characterization of lysosomes in human reticulocytes
Harpaz et al. [33] α-Galactosidase