CS214443B1 - Method of isolating the enzymes of cholinesteraze type - Google Patents

Method of isolating the enzymes of cholinesteraze type Download PDF

Info

Publication number
CS214443B1
CS214443B1 CS78881A CS78881A CS214443B1 CS 214443 B1 CS214443 B1 CS 214443B1 CS 78881 A CS78881 A CS 78881A CS 78881 A CS78881 A CS 78881A CS 214443 B1 CS214443 B1 CS 214443B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
type
column
enzymes
volume
glycerol
Prior art date
Application number
CS78881A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Inventor
Juraj Zemek
Ludovit Kuniak
Stefan Kucar
Juraj Zamocky
Original Assignee
Juraj Zemek
Ludovit Kuniak
Stefan Kucar
Juraj Zamocky
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Juraj Zemek, Ludovit Kuniak, Stefan Kucar, Juraj Zamocky filed Critical Juraj Zemek
Priority to CS78881A priority Critical patent/CS214443B1/cs
Publication of CS214443B1 publication Critical patent/CS214443B1/cs

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

214 443 1
Vynález sa týká spdsebu izoláele enzýmov cholínesterázového typu, a to acetylcholl-nosterázy (aeetyloholín hydroláza, EC 3,1«1.7) a psoudocholínesterázy (aoetyloholín acyl-hydroláza, EC 3,1.1,8).
Pri izoláoll enzýmov oholíneeterázevého typu sa vychádza z homogenátu tkaniva(acetylcholínesteráza, pseudeoholínesteráza) alebo krvnej plazmy frakcionevanej etanelom(pseudocholíneateráza), Surgenor P.M., Ellias D.t J Amer. Chea, Sec. 76, 6049, 1954,a následnou chromatograflou na géli z fosforečnanu vápenatého, resp. ienomeniči (MalstromB.O., Levln 0., Bomaa H.G.s Acta Chem. Scand., 10, 1077), připadne ďalšou gélovou filtrá-elou (Oas P.K., Llddell J.t Bioohem. J., 116, 875, 1970), Rýehlu metodu Izoláele acetyl-oholíneaterázy z hovadzíoh erytrocytov aflnltnou gélovou chromatograflou na Sepharosea navlazaným d-tubukarinom a elúcll s chloridom sodným poplsujú Jung J. a Belleau B.sMol, Pharmaool., 8, 589, 1972.
Triraetyl(ť»l-amiaofeayl)amóniura chlorid, hydrochlorld ako aflnitný llgand vlazanýna Bio-Cel A poplsujú Berman J.D. a Young M.s Proč. Nat. Acad. Sel. US 68, 395, 1971.Eevýhodou uvedených postúpov je leh zdíhavoat, připadne nákladná příprava aflnltnýchllgandov a v ďalšoa nle jednoduché vlazanle na nosič.
Uvedené nedostatky rieSi postup pódia vynálezu.
Podstata vynálezu spočívá v tom, že biologický roztok obsahujúcl enzým cholíneste-rázevého typu s výhodou aoetylcholíneateráza alebo pseudocholíneateráza sa zriedi tlmi-vým roztokom pH 7,5 až 8,5 na 1%-nu koncentráclu proteinu a nanesle sa na kolonu z poly-saoharidového gélu, s výhodou z celulózy obsahujúcej viazanú p-(^ -aminofenyl)borónovúkyselinu adjustovanú na pH 7,5 tlmivým roztokem s obsahem 0,5 M glýoerolu v objemovou pe-mere nepresahujúeem 1/20 objemu biologického rozteku k objemu polysaoharldového gélu apřečištěný podiel enzýmu oholínést«rázového typu neinhibovaný organofosfátovýml látkamisa eluuje z kolony pri ďalSom premývaní kolony tlmivým roztokom (50 oM) o pH 7,5 s 0,5 Mglycerolom objemovej frakcle eluátu rovnajúcej se 2 až 4 násobku objemu použitého poly-saoharidového gélu.
Postup možno aplikovat v koloně, nakoiko enzým cholínesterázového typu je v desled-ku špecifickej interakcie Specificky zadržiavaný oproti ostatným sprievodným proteinemvo formě komplexu s imobilizovaným borátom oez svoje esteratioké centrum na kolona. Uve-dený postup je vhodné použit v kombinácii s afinitnen metodou izoláele enzýmov cholínes-terázového typu založenéj na interakoli v anionickom centre, kedy možno dosiahnut vysokýstupeň prečistenia enzýmu, a to aj v přítomnosti dalžích enzýmov serínevého typu. Uvedenýpostup je vhadný pro izoláoiu aktívnych enzýmov cholínesterázového typu z homogenátu tka-niva, z erytrocytov alebo krvnej plazmy, nakoiko podiel enzýmu inhibovaný organefosfáto-vými látkami s uvedeným afinitným ligandom neintoraguje. Výhodou uvedeného postupu jet - jednoduchá příprava afinitného liganda - umožňuje Speoifiekú purifikáciu podielu enzýmov cholínesterázového typu, neinhi- 2 214 443 bovanéhe organofosfátovými látkami - afinitný ligand je stály a možno ho použit mnohonásobné - umožňuje dosahovat jednoduchým sposobom mnohonásobná purifikáciu aktívnych cho-líneateráz. Příklad 1
Na stípeo připravený z exirámu sietovanej celulózy s 50/mol naviazanej kyselinyp-(w -aminofenyl)boronovej (20 ml) o veíkosti častíe 0,1 až 0,3 mm, adjustovanej 50mMfosfátovým pufrom o pH 7,5 s obsahom 0,5 M glycerolu sa nanieslo 0,25 ml koňskéj plaz-*my zriedenej 1 ml fosfátového tlmivého roztoku o pH 8, Prakcia aktívnej pseudocholínes-terázy (6,5 jednotiek) sa vymyla elúeiou 50mlí fosfátovým pufrom s 0,5 U glycerolom, ato v podielí medzi 52 až 95 ml, s maximom aktivity v 32 ml.
Vytěsněná frakcia obsahovala 0,68 mg proteinu čím sa dosiahol stupeň prečistenia 10,5. Příklad 2
Tak ako je uvedené v příklade 1, s tým rozdielom, že na stípec sa naniesol nariedě-ný roztok plazmy obsahujúcej pseudocholínesterázu čiastočne inhibovanu malatinom. Afini-tnou chromátografieu na uvedenoj koloně sa zdržal podiel aktívnej pseudocholínesterázy(4,3 jednotky), ktorý sa vymyl 50 mM a 0,5 M glycerolom.
Stupeň purifikácie pseudocholínesterázy bol rovnaký ako v příklade 1. Příklad 3 K izolácii acetylcholínesterázy sa použil extrakt z hovadzích erytrocytov, připra-vený z Tritenu-X-100 postupom podía Ciliv G. a Ozand P.T.: Biochem. Biophys. Acta 234,136, 1972 a pe odcentrifugovaní (lO.OOOg, 30 minút) sa uvedený extrakt (0,5 ml) adjusto-val na pH 7,5 fosfátovým pufrom (l,5 ml, 50 mM) s obsahom 0,5 M glycerolu a naniesol sana stípec připravený zo sietovanej kyseliny pektovej 40 ml, (napúčací objem 6 ml/g) s na-viazanou kyselinou p-(w -aminofenyl)boronovou (62/umol/g), adjustovanou na pH 7,5, 50 mMfosfátovým pufrom s 0,5 M glycerolom.
Aktívna acetylcholínesteráza (l6,5 jednotky) sa uvolnila zo stlpca elúeiou 80 až 165 mlhoře uvedeného fosfátového pufru a 0,5 M glycerolom o celkovom obsahu proteinu 1,95 mg,čo představuje 37,2 násobné prečistenie enzýmu.
Vynález možno uplatnit všade tam, kde je potřebné přečistit aktivně enzýmy cholínesterá-zového typu a to či už v priemyslovej praxi alebo vo výskume a izolovat ich tak od po-dielu inhibevanéhe organofosfátovými látkami.

Claims (1)

  1. 214 443 3 PREDMET VYNÁLEZU Sposob izolácie enzýmov cholíneeterázového typu 8 výhodou acetyloholínesterázy alebepseudecholínesterázy vyznačený tým* že zriedený biologický roztek obsahujúci enzymy cho-líneeterázového typu o pH 7,5 a obsahem proteíaov nie vyššom ake 1 % hmotnosti sa nane-sie na kolonu připraveni z polyaaoharidu sletovaného 2-ohlormetylexiránom* a výhodou ce-lulózy, obsahujúceho kovalentne viazanú p-(£*v-aminofeayl)boronovú kyselinu adjuetevanúna pH 7,5 tlmivým roztokou a obsahom 0,5 U glycerolu v objemovom pomere nepresahujúcom1/20 objemu biologického roztoku k objemu polyaaoharidového gélu a pročištěný podlelenzýmu oholínesterázevého typu neinhibovaný ergaaofosfátovými látkami sa eluuje z kolonydalším premývaním kolony tlmivým roztokem o pH 7,5 obsahujúceho 0*3 U glyeerolu v obje-movej frakcii eluátu rovnajúcej sa 2 až 4 násobku objemu použitého gélu sletovaného poly-sacharidu. Cena: 2,40 KCs Vytiskly Moravské tiskařské závody, provoz 12, Leninova 21, Olomouc
CS78881A 1981-02-03 1981-02-03 Method of isolating the enzymes of cholinesteraze type CS214443B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS78881A CS214443B1 (en) 1981-02-03 1981-02-03 Method of isolating the enzymes of cholinesteraze type

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS78881A CS214443B1 (en) 1981-02-03 1981-02-03 Method of isolating the enzymes of cholinesteraze type

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS214443B1 true CS214443B1 (en) 1982-04-09

Family

ID=5340644

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS78881A CS214443B1 (en) 1981-02-03 1981-02-03 Method of isolating the enzymes of cholinesteraze type

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS214443B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Miyagi et al. Biochemical and immunological studies on two distinct ganglioside-hydrolyzing sialidases from the particulate fraction of rat brain
Chubb et al. The enkephalins are amongst the peptides hydrolyzed by purified acetylcholinesterase
Weissmann et al. Mammalian α-acetylglucosaminidase. Enzymic properties, tissue distribution, and intracellular localization
Farooqui et al. Isolation, characterization and the role of rabbit testicular arysulphatase A in fertilization
Dieter et al. Partial purification of plant NAD kinase by calmodulin-Sepharose affinity chromatography
CZ154794A3 (en) Isolation method of a precipitation factor ix for preparing a pharmaceutical preparation
Mackness et al. Partial purification and properties of sheep serum ‘A’-esterases
Golmanesh et al. Simple procedures for purification and stabilization of human serum paraoxonase-1
FI96211C (fi) Menetelmä yksisäikeisen kudosplasminogeeniaktivaattorin (tPA) ja kaksisäikeisen tPA:n puhdistamiseksi ja eristämiseksi
Robinson et al. Affinity chromatography of human liver α-D-mannosidase
Geiger et al. Purification of human hexosaminidases A and B affinity chromatography
US5352601A (en) Method for recovering purified 52,000 dalton fraction of human pancreatic cholesterol esterase using deae-cellulose, hydroxyapatite and heparin-sepharose
Mukhopadhyay et al. Bee venom Phospholipase A2Is recognized by the Macrophage Mannose receptor
Reimann et al. [54] Purification of plant peroxidases by affinity chromatography
Stults et al. Immobilization of proteins on partially hydrolyzed agarose beads
CS214443B1 (en) Method of isolating the enzymes of cholinesteraze type
TAGUCHI et al. Properties of bovine erythrocyte acetylcholinesterase solubilized by phosphatidylinositol-specific phospholipase C
US5272080A (en) Production of butyrylcholinesterase
Vician et al. Purification of human blood clotting factor X by blue dextran agarose affinity chromatography
Dixon et al. Hydrophobic esters of cellulose: properties and applications in biochemical technology
Boivin et al. Purification and characterization of an adenosine cyclic 3′: 5′ monophosphate-dependent protein kinase from human erythrocyte membrane
Johnson et al. Purification to homogeneity of the human skin chymotryptic proteinase “chymase”
Pogell et al. [32] Specific elution with substrate
IIO et al. Purification and some properties of erythrocyte acid phospho-monoesterase
Patton Immobilized pancreatic lipase and colipase for purification and binding studies