CS206378B1 - Method of isolation and purification of the lactatedehydrogenasis - Google Patents

Method of isolation and purification of the lactatedehydrogenasis Download PDF

Info

Publication number
CS206378B1
CS206378B1 CS800179A CS800179A CS206378B1 CS 206378 B1 CS206378 B1 CS 206378B1 CS 800179 A CS800179 A CS 800179A CS 800179 A CS800179 A CS 800179A CS 206378 B1 CS206378 B1 CS 206378B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
solution
equilibration
cellulose
negative
lactate dehydrogenase
Prior art date
Application number
CS800179A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Inventor
Danica Mislovicova
Peter Gemeiner
Ludovit Kuniak
Juraj Zemek
Original Assignee
Danica Mislovicova
Peter Gemeiner
Ludovit Kuniak
Juraj Zemek
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Danica Mislovicova, Peter Gemeiner, Ludovit Kuniak, Juraj Zemek filed Critical Danica Mislovicova
Priority to CS800179A priority Critical patent/CS206378B1/cs
Publication of CS206378B1 publication Critical patent/CS206378B1/cs

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

·.
ČESKOSLOVENSKA SOCIALISTICKÁ REPUBLIKA( 1© )
POPIS VYNALEZU 206 378 (wn
K AUTORSKÉMU OSVEDČENIU (61) ' Ί) Výstavná priorita(22) Přihlášené 21 11 79(21) PV 8001-79 (51) Int.Cl? C 08 B 15/00, A 61 K 37/54
ÚŘAD PRO VYNÁLEZY
A OBJEVY (40) Zveřejněné 29 08 80(45) Vydané 15 10 83 (75)
Autor vynálezu MISLOVICOVÓ DANICA ing., QBMEINBR PBTSR ing. CSc., KUNIAK tUDOVÍT ing. CSc.,BRATISLAVA a ZElíSK JURAJ ing, CSc,, LBDNICA (54) SpČsob izoláeie a purifikácie laktátdehydrogenázy 1
Vynález sa týká ipdsobu izoláeie a purifikácie laktátdehydrogenázy pomoeou řarebnýchRamazolových a triazínovýeh derivátov perlovej celulózy.
Triazínové farbivá, a to hlavně Cibacron Blue ř3G-í, kovalentne viazané na vodoneroz-pustné polysacharidy, našli v posledněj době široké možnosti uplatnenie ako generálne afinan-ty v afinitnej chromátografii enzýmov, a to najma zo skupiny dehydrogenáz a kináz. £Ř. S.Beíesner, F. B. Rudolph, J. Chromatogr. 161, 127 /1978/J. Najv&amp;čšie uplatnenie tu našli po-lysaeharidy na báze sieťovanej· agarózy vo formě komerčných preparátov Blue Sepharose® CL-6B (Pharmacia Fine Chemicals, Uppsala; 275»- Sw. Cra. per 25 g) , Af f i-Gel ® Blue (Bio- ·· <* TM TffiT'·'
Rad Laboratories, Munchen; 220,- Dlí.per 100 ml) či Matrex Gel Blue A a Matrex Gel SedA (Amiccn B. V., Oosterhout). Aj iné polysacharidy, napr. sieťované dextrány, vykazujú dob-ré vlastnosti pre tento druh použitia. Nie je tomu tak u celulózy, ktorá sa doteraz javilaako úplné nevhodná (H.-J. Bohme et al., J. Chromatogr. 69, 209 (1972); S. Angal, P. D. G.Dean, Biochem. J. 167, 301 (1977)· Negativnou vlastnosťou tohoto polysacharidu derivatizo-vaného farbivom Cibacron Blue F3G-A boli velmi nízké resorbcie chromátografováných enzýmov·
Ako ame už predtým ukázali, triazínové a Remazolové deriváty perlovej celulózy si za-chovávajú znamenité vlastnosti perlovej celulózy. Navias pri správnéj volbě afinanta jemožné překonat všetky nevýhody doteraz brániace použitiu celulózy na tieto účely.
Podstata vynálezu spočívá v tom, že sa na perlovú celulózu a obsahom 50 až 100 pmólov 206 378 -* '·** ' ' 2.· kovalentne viasaného Reaazolového alebo triazínového farbive na 1 g sochej perlovej celuló-zy nechá v prvom stupni pdsobit zriedený roztok hovBdzieho sérového albuminu, prebytočnýalbumin aa odstráni premytím ι 1 I NaCl a po equilibrovahí tlmivým roztokem o pH 6,5 eí 8sa v druhem stupni na takto upravená perlová celulózu nechá pčeobit homogenizovený biolo-gický materiál obsahujáci laktátdehydrogenázu, pričom všeťky sprievodné nežiadúce nízko-a vysokomolekulové látky sa odstránia následnou eláciou rovnakýa equilibračným roztokoma potom equilibračným roztokom obsahujúeim 0,5 ti 1 K nikotíneeid-adenín-dinukleotid vždydovtedy, kým nie je reakcia eluátu na bielkoviny negativna, načo v tretom stupni sa ad-sorbovaný, přečištěný enzým laktátdehydrogenáza vytěsní eláciou e equilibračným roztokomobsahujáci® 0,5 až 1,5 mM redukovaný nikotínamid-adenín-dinukleotid dovtedy, kým nie j®skúška eluátu na katalytická aktivitu laktátdehydrogenázy negativna a nakoniec sa perlovácelulóza připraví na opakované použiti® premytím s 1 M NaCl do negatívnej reakeie premýva-cieho roztoku na bielkoviny.
Perlová celulóza, ako aj jej Remažolové či triazínové deriváty obsahujáce elM NaClnevyaytelný albumin nejavia žiadne nespecifické eorpcie voči laktátdehydrogenáze (1DM).
Pre sfinitná chroaatografiu LDH z biologického materiálu .nie je vhodný Cibaeren Biu®F3G-A. Heci toto farbivo má ekutočne vysoká afinitu ku LDH, jeho derivát perlovej celuló-zy stále prejavuje nízku účinnost* resorbcie. Pře popíaaný jednostupnový vysokoúčinný ižolačný postup je možné použit hrubé homo-genáty z rčznych biologických aateriálov počnúc kvasničnými extraktem! až po Specializova-né orgány cicavcov, napr. sval, pečen, srdce a pod» Nevhodným je vyšší obsah sérovýchbielkovín.
Jefineduchším a lačnějším je pestup, pri ktoroa sa premýva derivatizovená perlová eelu-lóza 99 zachytanou LDH equilibračným tlaivýa roztokom obaahujúeim 1 mM redukovaný niketí-namid-adenín-dinukleotid (NADH). Sluát obsahuje viac než 90 % dávkovanéj LDH s minimálně15-násobným stupnom purifikácie. Naproti tomu keS sa eluuje tlaivýa roztokom sbsahujúeim z1 mM NADH po predchádzajúeej elúeii s 1 mM nikotínaaid-adenín-dinukleetidea (NAD), eluát /obsahuje menšit množstvo enzýau, avšak viac než 25-násobne purifikováného. . · . i . Nakoniec ták, ako Cibacron Blue P3G-A deriváty sieťovaaýeh agaróz a dextránov aj Re-mazolové a triazínové deriváty perlovej celulózy je možné pre popísaaý postup izoláeiea purifikácie LDH použit viacnásobne. Výhodou navrhovaného postupu je, že umožňuje izolovat a purifikovat - LDH poměrně jednoduchým technologickým postupem, -LDH na podstatné lačnějších materiálech ako doteraz, - LDH s vyššou resorbeiou a při vyšších vazbových kapacitách farebnej perlovej celulózynež bole tomu doteraz u známých triazínovýeh derivátev polysaeharidov, - eúčasne viacere enzýmov. Příklad 1 - . 10 ml Remazol Briliant Blue RN derivátu perlovej celulózy obaahujúceho 65 pmólov

Claims (2)

  1. farbiva na 1 g suchej celulózy sa premyl.o s 25 ml 0,1 % roztoku hovádzieho sérového albu-minu, 100 ml 10 mM Tris-HOl pufru pH 7,5 e přídavkem 1 mM Chelatonu 3 a 2 mM 2-merkapto-etanolu (roztok 1), Sálej 100 ml 1 M NaCl a nakoniec 200 ml roztoku 1. Na takto připrave-ný štipec sa nanieslo 25 ml homogenátu z krysých pečení obsahujúceho 310 mg bielkovín Λ a 473 jednotiek LDH a premylo 130 ml roztoku 1. Naviazaná LDH sa jvytesnila 110 ml rozteku1 s přídavkem 1 mM NADH (roztok 2). NADH-frakeia obsahovala 16-násobne prečistenú LDH v množstve 430 jednotiek, čo před-stavuje 98 % na štipec nanesenej LDH. Příklad
  2. 2 Postup podlá příkladu 1 s tým rozdielom, Že sa použil Ostazín červen St5B derivátperlovej celulózy obsahujúci 80 pmólov farbiva na 1 g autíhej celulózy. NADH-frakcia obsahovala 14,5-náaobne prečistenú LDH v množstve 468 jednotiek, čopředstavuje 99 % na stípec nanesenej LDH. Příklad'3 Postup podl’a příkladu 1 s tým rozdielom, že sa použil Prócion Biu® MX-B derivát per-lovej celulózy obsahujúci 67 pmólov farbiva na 1 g suchéj celulózy. liADH-frakcia obsahovala 10,5-násobne prečistenú LDH v množstve 416 jednotiek, čo čini-lo 88 % na stípec nanesenej LDH. Příklad 4 Postup podlá příkladu 1 s tým rozdielom, Že po nanesení homogenátu (320 mg bielkovín,452 jednotiek) sa stípec premýval 250 ml roztoku 1, 100 ml roztoku 1 s prídavkom 1 mM NADa nakoniec 140 ml roztoku 2. NADH-frakcia obsahovala 23,5-náeobne prečistenú LDH v množstve 266 jednotiek (8 mgbielkovín), čo zodpovědělo‘60 % na stípec nanesenej LDH. Příklad 5 ' ' Postup podlá příkladu 1 s tým rozdielom, že sa použilo 15 ml čiastočne přečištěnéhopreparátu LDH z králičieho svalu obsahujúceho 11 mg bielkovín a 440 jednotiek LDH. ' NADH-frakcia obsahovala 100 % na stípec nanesenej LDH. Vynález má uplatnenie všade, kde je potřebné izolovať alebo přečistit laktátdehydroge-názu z rčzneho biologického materiálu od Salších bielkovín, resp. enzýmov, a to v priemy-selnej praxi alebo vo výskume. PREDMST VYNÁLEZU. Spdsob izolácie a purifikácie laktátdehydrogenázy vyznačujúci sa tým, že sa na perlo-vá celulózu a obsahem 50 až 100 pmólov kovalentne viazaného Remazolového alebo triazíno-vého farbiva na 1 g suchej perlovej celulózy nechá v prvom stupni pdsobiť zriedený roztokhovfidzieho sérového albuminu, přebytečný albumin sa odstráni premytim s 1 II NaCl a po 4 equilibrovaní tlaivýa roztokem o pH 6,5 aí 8 íi » druhom stupni na takto upravená perlovácelulózu nechá pOsobiť homogenizovaný biologický materiál obsahujáci laktátdehydrogenázu,pričom váetky sprievodné nežiadáce nízko- a vysokomolekulové látky sa odetránia následnoueláciou s rovnakým equilibračným roztokom a potom equilibračným roztokom obsahujácim 0,5až 1 mE jiikotínamid-adenín-dinukleotid vždy dovtedy, kým nie je reakcia eluátu na bielko-viny negativna, načo v treťom stupni sa adsorbovaný, přečištěný'enzým laktátdehydrogenázavytěsní eláciou s equilibračným roztokom obsahujácim 0,5 až 1,5 mM redukovaný nikotínamid- . -adenín-dinukleotid dovtedy, kým nie je skáška eluátu na katalytická aktivitu laktátde-( hydrogenázy negativna a nakoniee sa perlová celulóza připraví na opakované použitie premy- t ‘ _ tím s 1 M KaCl do negatívnej reakcie premývacieho roztoku na bielkoviny. j
CS800179A 1979-11-21 1979-11-21 Method of isolation and purification of the lactatedehydrogenasis CS206378B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS800179A CS206378B1 (en) 1979-11-21 1979-11-21 Method of isolation and purification of the lactatedehydrogenasis

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS800179A CS206378B1 (en) 1979-11-21 1979-11-21 Method of isolation and purification of the lactatedehydrogenasis

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS206378B1 true CS206378B1 (en) 1981-06-30

Family

ID=5430048

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS800179A CS206378B1 (en) 1979-11-21 1979-11-21 Method of isolation and purification of the lactatedehydrogenasis

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS206378B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Horio et al. Preparation of crystalline Pseudomonas cytochrome c-551 and its general properties
Findlay The receptor proteins for concanavalin A and Lens culinaris phytohemagglutinin in the membrane of the human erythrocyte
Murad et al. A simple, sensitive protein-binding assay for guanosine 3′: 5′-monophosphate
Dean et al. Protein purification using immobilised triazine dyes
Schwartz et al. Biosynthesis of chondroitin sulfate. Purification of UDP-D-xylose: core protein β-D-xylosyltransferase by affinity chromatography
Mulder The effect of phenobarbital on the submicrosomal distribution of uridine diphosphate glucuronyltransferase from rat liver
MacDonald et al. [40] Isolation of cytokinins by immunoaffinity chromatography and analysis by high-performance liquid chromatography radioimmunoassay
EP0374778A2 (de) Verfahren zur Proteinimmobilisierung an einer Festphase, so hergestellte Protein tragende Festphase sowie deren Verwendung
Laurell et al. Haptoglobins
Yamamoto et al. Selective inhibition of two soluble adenosine cyclic 3', 5'-phosphate phosphodiesterases partially purified from calf liver
Kuwabara et al. Protein and carbohydrate moieties of a preparation of β-lactamase II
Jefferson et al. Studies on ornithine decarboxylase activity in the isolated perfused rat liver
CS206378B1 (en) Method of isolation and purification of the lactatedehydrogenasis
Kahn et al. Heat lability of glucose-6-phosphate dehydrogenase in some senescent human cultured cells. Evidence for its postsynthetic nature
Reagan et al. Development of polyclonal antibodies against angiotensin type 2 receptors.
US4634763A (en) Amylase inhibitor and preparation and use thereof
Takahashi et al. Purification and characteristics of RNase inhibitor from pig cerebral cortex
Roux Chemical evidence for conformational differences between the red-and far-red-absorbing forms of oat phytochrome
Doley et al. The potential of Ultrogel®, an agarose-polyacrylamide copolymer, as a matrix for affinity chromatography
Miribel et al. The use of dye-ligand affinity chromatography for the purification of non-enzymatic human plasma proteins
Sponholtz et al. Preparation of cytochrome c2 from Rhodospirillum rubrum
Kroviarski et al. New strategies for the screening of a large number of immobilized dyes for the purification of enzymes: Application to the purification of enzymes from human haemolysate
Magnani et al. Hexokinase type I multiplicity in human erythrocytes
Mintz et al. Glycoprotein purification on a high-capacity wheat germ lectin affinity column
Ford et al. Characterization of NADPH: protochlorophyllide oxidoreductase in the y-7 and pc-1 y-7 mutants of Chlamydomonas reinhardtii