CS200720B1 - Mucidermin determination method - Google Patents

Mucidermin determination method Download PDF

Info

Publication number
CS200720B1
CS200720B1 CS291478A CS291478A CS200720B1 CS 200720 B1 CS200720 B1 CS 200720B1 CS 291478 A CS291478 A CS 291478A CS 291478 A CS291478 A CS 291478A CS 200720 B1 CS200720 B1 CS 200720B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
mucidermin
methanol
calculated
absorbance
extinction coefficient
Prior art date
Application number
CS291478A
Other languages
Czech (cs)
Inventor
Bohumil Trtik
Original Assignee
Bohumil Trtik
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Bohumil Trtik filed Critical Bohumil Trtik
Priority to CS291478A priority Critical patent/CS200720B1/en
Publication of CS200720B1 publication Critical patent/CS200720B1/en

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analyzing Non-Biological Materials By The Use Of Chemical Means (AREA)

Description

Vynález se týká způsobu stanoveni muciderminu, protihoubového antibiotika, získaného z produkčního kmene Oudemansiella mucida fermentacním procesem, v meziproduktech výroby nebo ve finální substanci. Chemicky je muoidermin methylester kyseliny 6-fenyl^3-methyl2-methoxymethylen 3,5-hexandienové. V meziproduktech přípravy čisté látky muciderminu I bývají ještě přítomny další látky podobných fyzikálně chemických vlastností, např. muoidermin II, rozkladné produkty, doprovodné látky apod. Znalost přesného obsahu muciderminu v meziproduktech přípravy čisté látky je důležitá z technologického hlediska i při přesném nastavení obsahu muciderminu v konečných lékových formách.The invention relates to a method for the determination of mucidermin, an antifungal antibiotic obtained from a production strain of Oudemansiella mucida by a fermentation process, in intermediate products or in the final substance. Chemically, muoidermine is 6-phenyl-3-methyl-2-methoxymethylene 3,5-hexanedioic acid methyl ester. Other substances with similar physico-chemical properties, eg muoidermine II, decomposition products, accompanying substances, etc. are still present in the mucidermin I preparation intermediates. Knowledge of the exact mucidermin content of the pure mucidermin preparation intermediates is important from a technological point of view, final dosage forms.

Stanovení muciderminu je prováděno, mimo méně přesné a časově náročné biologické metody /til % rel./ stanovující pouze sumu biologicky účinných látek, metodou spektrofotometrickou, denzitometrickou a metodou plynové chromatografie. Metoda přímé spektrofotoraetrie, bez oddělování balastních látek, je možná prakticky pouze u Čisté substance. U meziproduktů nebo nedostatečně čisté látky muciderminu I se stanoví vlastně suma látek absorbujících při měřeném maximu /mucidermin II, štěpné produkty, balastní látky apod./. Metoda denzitometrioká, po chromatografii na tenké vrstvě, je proveditelná u všech meziproduktů, vyžaduje však pečlivou přípravu chromatogramu, použití standardní substance a v neposlední řadě drahé speciální zařízení. Chyba stanovení při doržení všech podmínek činí až 110 % rel. Stanovení pomocí plynové chromatografie je založeno na kvantitativníThe mucidermin determination is carried out, in addition to the less accurate and time-consuming biological method (til% rel./), which determines only the sum of biologically active substances, by the spectrophotometric, densitometric method and the gas chromatography method. The method of direct spectrophotometry, without separation of ballasts, is practically only possible for pure substances. The sum of the substances absorbing at the measured maximum (mucidermin II, fission products, ballast substances, etc.) is actually determined for intermediates or poorly pure mucidermin I substances. The densitometry method, after thin layer chromatography, is feasible for all intermediates, but requires careful preparation of the chromatogram, use of a standard substance and, last but not least, expensive special equipment. The determination error at all conditions is up to 110% rel. Determination by gas chromatography is quantitative

200 720 destrukcí muciderminu vysokou teplotou /220 °C/ na methylester kyseliny 5-fenyl-2-methylbenzoové. Touto metodou však pravděpodobně nelze odlišit muoidermin I od muciderminu II.200,720 by the destruction of mucidermin by high temperature (220 ° C) to 5-phenyl-2-methylbenzoic acid methyl ester. However, it is probably not possible to distinguish muoidermin I from mucidermin II by this method.

Nově byla vypracována jednoduchá, přístrojově nenáročná metoda, jejíž podstata spočívá v rozdělení muciderminu I a II a jejich oddělení od balastníoh látek, průvodních metabolitů, barevných pigmentů nebo rozkladných produktů, ohromatografií na tenké vrstvě silikagelu s fluorescenčním indikátorem UV 254 am, s výhodou na Silufolu UV 254, s použitím spolehlivě dělící eluční soustavy benzen - octan ethylnatý 95 : 5, v detekci zo'n muciderminů pod UV 254 nm, jejich extrakci do organického rozpouštědla, s výhodou do methanolu, oddělení rozptýleného ailikagelu, např. filtrací přes skelnou vatu, a změření absorbancí takto získaných roztoků na vhodném spektrofotometru v maximu absorpce muciderminu I při 293 nm, proti roztoku připravenému stejným sledem operací ze stejné plochy slepého pruhu. Pomocí známého extinkčního koeficientu muciderminu I se potom, s výhodou bez použití etandardu, vypočte obsah muciderminu I nebo XI v procentech.Recently, a simple, instrument-less method has been developed based on the separation of mucidermin I and II and their separation from ballast substances, accompanying metabolites, color pigments or decomposition products, by thin layer silica gel chromatography with UV 254 am fluorescence indicator, preferably Silufol UV 254, using a reliable 95: 5 benzene-ethyl acetate eluent, in detecting the z'n mucidermins below UV 254 nm, extracting them into an organic solvent, preferably methanol, separating the dispersed ailica gel, eg by filtration through glass wool, and measuring the absorbances of the thus obtained solutions on a suitable spectrophotometer at the maximum absorption of mucidermin I at 293 nm, against a solution prepared by the same sequence of operations from the same blank band area. Using the known mucidermin I extinction coefficient I, the mucidermin I or XI content is then calculated, preferably without the use of a standard, in percent.

Výhodou způsobu stanovení podle vynálezu je rychlé oddělení balastů, štěpných produktů, barevných pigmentů apod. od muoiderminů pomocí chromátografie na tenké vrstvě, jednoduchá a účinná extrakce do organického rozpouštědla /methanolu/ a rychlé spektrofotometrioké vyhodnocení získaných roztoků, s výhodou bez používání standardního muciderminu. Obzvláště výhodné je použití hotových folií se eilikagelem s fluorescenčním indikátorem /např.: Silufol UV 254 - silikagel s fluor, indikátorem UV 254 nm na hliníkové podložce/, jakožto nosiče, neboť zdetekované a dále zpracovávané zo'ny lze jednoduše z chromatogramu vystřihnout a vzhledem k tomu, že silikagel velmi pevně lpí na hliníkové podložce, je znečištění extraktu získaného z těchto zon, uvolněnými částečkami silikagelu velmi malé. Stanovení lze provést nejen u muciderminu I, ale stejně přesně i u muciderminu II, popřípadě rozkladných produktů ohromatografioky oddělitelných, v konečném výpočtu počítaných jako muoidermin I.Advantages of the assay method of the invention are the rapid separation of ballasts, fission products, color pigments and the like from muoidermins by thin layer chromatography, simple and efficient extraction into organic solvent (methanol) and rapid spectrophotometric evaluation of the solutions obtained, preferably without using standard mucidermin. Especially preferred is the use of finished films with a fluorescent indicator eilica gel (e.g.: Silufol UV 254 - silica gel with fluorine, UV 254 nm indicator on an aluminum support), as the detected and further processed zones can be simply cut from the chromatogram and Since the silica gel adheres very firmly to the aluminum support, the contamination of the extract obtained from these zones by the released silica gel particles is very low. The determination can be carried out not only for mucidermin I, but also equally accurately for mucidermin II or decomposition products, which can be separated by ohromatography in the final calculation calculated as muoidermin I.

Další podrobnosti vyplývají z příkladu provedení :Further details are given in the example:

Tenká vrstva silikagelu /Silufol UV 254/ se rozdělí rýhami ve směru vyvíjení na pruhy 2,2 cm široké. Sa dva starty takto upravené tenké vrstvy se potom v délce 1,5 cm nanese po 50 >ul roztoku vzorku /množství vzorku odpovídající 40 mg Čisté substance v 10 ml směsi izopropylalkohol - methano1 1 :1/, na další start 50 jul roztoku ověřené substance /40 mg ověřené substance muciderminu v 10 ml směsi izopropylalkohol - methano1 1:1/ a jeden pruh se ponechá volný. Vyvíjí se v nasycené komoře směsí benzen - octan ethylnatý 95 : 5 do vzdálenosti čela alespoň 18 cm. Po skončeném vyvíjení se deska vysuší v proudu studeného vzduchu /asi 5 minut - do odstranění rozpouštědel/. Pod UV 254 nm jsou potom zřetelné zhášející pruhy muciderminu X Shodné polohou a intenzitou s hlavním zhášejícím pruhem ověřené substance o Ry »0,61, popřípadě zhášející pruhy muciderminu II shodné polohou s vedlejším zhášejíoím pruhem ověřené substance o Rj, 0,44. Pruhy muciderminu I a II se tužkou rychle zaznačí a seškrábnou se /v případě Silufolu vystřihnou nůžkami /tak, aby plochy o stejném Rj, včetně plochy z volného pruhu, byly stejně veliké. Seškrábnutý silikagel ae kvantitativně vnese /vystřižené obdélníčky se vloží/ do zábrusových ná3 dobek, přidá ae 50 ml methanolu /pro UV nebo p.a./, uzavře ae zátkou a třepe ae 1/2 hodiny na mechanické třepačce. Potom se roztoky vhodným způsobem zbaví rozptýlených částeček ailikagelu, nejlépe se pipetou mající špičku obalenou přečištěnou skelnou vatou /1 g skelné vaty se povaří se 100 ml methanolu, methanol se slije, vata se umístí v nálevce a oplachuje se dalšími 100 ml methanolu. Vata se. potom zbaví zbytků methanolu vytlačením a vysušením v sušárně/, odebere vhodné množství roztoku do 1 cm křemenné kyvety a na vhodném spektrofotometru se při 293 na í 1 na změří absorbance proti methanolu jako slepé zkoušce. Obsah muciderminu I, rasp. muciderminu IX ve vzorku v procentedh, počítaných jako mucidermin I, se vypočte pomocí extinkčního koeficientu muciderminu I, podle vzorce % /hmot./hmot./ * / - Aal/ * 100 » 100 ,The thin layer of silica gel (Silufol UV 254) is separated by grooves in the direction of development into strips 2.2 cm wide. The two starts of the treated film are then applied in 1.5 cm increments of 50 .mu.l of sample solution (sample amount corresponding to 40 mg of pure substance in 10 ml of 1: 1 isopropanol / methanol) to a further start of 50 .mu.l of the test substance solution. (40 mg of the verified mucidermin substance in 10 ml of 1: 1 isopropyl alcohol - methanol) and leave one strip free. It develops in a saturated chamber with a 95: 5 benzene-ethyl acetate mixture at a front distance of at least 18 cm. After development, the plate is dried in a stream of cold air (about 5 minutes - until solvents are removed). Below the UV 254 nm, the quenching bands of mucidermin X are then identical with the position and intensity with the main quenching band of the verified substance of Ry > 0.61, respectively the quenching bands of mucidermin II coinciding with the secondary quenching band of the verified substance of Rj, 0.44. The bands of mucidermin I and II are quickly marked with a pencil and scraped (in the case of Silufol with scissors) so that the areas of the same Rj, including the area from the free lane, are of equal size. The scraped silica gel was loaded quantitatively (cut out rectangles) into ground-glass flasks, added with 50 ml of methanol (for UV or pa), capped and shaken for 1/2 hour on a mechanical shaker. The solutions are then freed of dispersed particles of ailica gel in a suitable manner, preferably with a pipette having a tip coated with purified glass wool / 1 g of glass wool, boiled with 100 ml of methanol, decanted methanol, placed in a funnel and rinsed with another 100 ml of methanol. Vata se. it is then freed of methanol residues by extrusion and drying in an oven, taking a suitable quantity of the solution into a 1 cm quartz cuvette and measuring the absorbance against methanol as a blank test at 293 to 1 l with a suitable spectrophotometer. Mucidermin I content, rasp. mucidermine IX in the sample in percentedh, calculated as mucidermin I, is calculated using the extinction coefficient of mucidermin I, according to the formula% / mass / mass / * / - A / / 100 100 ,

100 . n kde A je absorbance roztoku vzorku s muciderminem I /resp. s muciderminem II/ - průměr vz w dvou pruhů, ^sl *^e absorbance roztoku slepého pruhu o stejném R? jako mucidermin I /resp. jako mucidermin II/, n je navážka vzorku v gramech a100 ALIGN! n where A is the absorbance of the sample solution with mucidermin I / resp. with mucidermin II / - the average in w of two bands, ^ sl * ^ e the absorbance of a blank solution of the same R? as mucidermin I / resp. as mucidermin II /, n is the sample weight in grams a

100 je extinkční koeficient a muciderminu I v methanolu při 293 nm.100 is the extinction coefficient a of mucidermin I in methanol at 293 nm.

Claims (1)

předmět vyn a'lezusubject of the invention Způsob stanovení muciderminů, vyznačující se tím, že se na tenké vrstvě silikagelu oddělí balastní látky, rozdělí mucidermin I a II, zo*ny muciderminů se zpracují extrakci do methanolu a po filtraci přes přečištěnou skelnou vatu se provede spektrofotometrické vyhodnocení, přičemž obsah muciderminu I, resp. muciderminu II ve vzorku v procentech, počítaných jako mucidermin I, se vypočte pomocí extinkčního koeficientu muciderminu I, podle vzorceMethod for the determination of mucidermins, characterized in that ballast substances are separated on a thin layer of silica gel, mucidermin I and II are separated, mucidermin zones are extracted into methanol and, after filtration through clarified glass wool, spectrophotometric evaluation is carried out. respectively. of the mucidermin II in the sample, calculated as mucidermin I, is calculated using the extinction coefficient of mucidermin I, according to the formula A . ředění . 100 % /hmot./hmot./ · ......... — -.....——— ’And. dilution. 100% /w / w / ......... - -.....——— ’ 1 100 . navážka /v g/ kde A je absorbance roztoku s muciderminem korigovaná o absorbanči roztoku se slepým pokusem o stejném Rp a1 100. weighing (in g) where A is the absorbance of the mucidermin solution corrected for the absorbance of the blank with the same Rp and 1 100 je extinkční koeficient a muciderminu I v methanolu při 293 nm.1100 is the extinction coefficient a of mucidermin I in methanol at 293 nm.
CS291478A 1978-05-06 1978-05-06 Mucidermin determination method CS200720B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS291478A CS200720B1 (en) 1978-05-06 1978-05-06 Mucidermin determination method

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS291478A CS200720B1 (en) 1978-05-06 1978-05-06 Mucidermin determination method

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS200720B1 true CS200720B1 (en) 1980-09-15

Family

ID=5367654

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS291478A CS200720B1 (en) 1978-05-06 1978-05-06 Mucidermin determination method

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS200720B1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Quilliam Chemical methods for domoic acid, the amnesic shellfish poisoning (ASP) toxin
Nagy et al. Quantitative determination of imipramine and desipramine in human blood plasma by direct densitometry of thin-layer chromatograms
Watson et al. Assay of digoxin in plasma by gas chromatography
Lyman et al. Detection of coumestrol in leguminous plants
Lee et al. Simultaneous multi-mycotoxin determination by high performance thin-layer chromatography
Torrado et al. Comparison of assay methods by second-derivative spectroscopy, colorimetry and fluorescence spectroscopy of salicylic acid in aspirin preparations with a high-performance liquid chromatographic method
Sinha et al. Stress studies on acyclovir
CS200720B1 (en) Mucidermin determination method
Hundt et al. Thin-layer chromatographic method for determining carbamazepine and two of its metabolites in serum
Stevanović et al. Colorimetric method for semiquantitative determination of nitroorganics in water
Baeyens et al. Fluorescence properties of metoclopramide and its determination in pharmaceutical dosage forms
Frodyma et al. Detection and determination by ultraviolet reflectance spectrometry of vitamins resolved on thin layer plates
Steyn Spectrofluorimetric determination of dipyridamole in serum—a comparison of two methods
Ragno et al. Gas chromatographic and UV derivative determination of nitrendipine and its photodegradation product
Giri et al. Circular Paper Chromatographic Method for Estimation of Thiamine and Riboflavin in Multivitamin Preparations
Yasuda Identification and determination of impurities in pentaerythritol tetranitrate
SU1109631A1 (en) Vitamin k1 determination method
EP0383922B1 (en) Method for measuring degree of freshness and measuring kit for the method
Wahbi et al. Spectrofluorimetric determination of guanethidine sulphate, guanfacine hydrochloride, guanoclor sulphate and guanoxan sulphate in tablets and biological fluids, using benzoin
RU2111486C1 (en) Method of determining unsymmetrical dimethylhydrazine
EP0385441B1 (en) Marker for petroliferous products
RU2011970C1 (en) Method for determining triethylamine
Kark et al. Thin-layer chromatographic determination of procainamide and N-acetylprocainamide in human serum and urine at single-dose levels
GB1574807A (en) Chemical monitoring devices
Pasini et al. Selective colorimetric determination of ethynodiol diacetate in oral estrogen‐progestin combination