CN118308335A - 一种优化的碱基编辑工具及其应用 - Google Patents

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CN118308335A
CN118308335A CN202410551947.5A CN202410551947A CN118308335A CN 118308335 A CN118308335 A CN 118308335A CN 202410551947 A CN202410551947 A CN 202410551947A CN 118308335 A CN118308335 A CN 118308335A
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amino acid
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cas
nucleic acid
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段志强
陈莹
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Shandong Shunfeng Biotechnology Co Ltd
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Abstract

本发明属于核酸编辑领域,特别是规律成簇的间隔短回文重复(CRISPR)技术领域。具体而言,本发明提供了一种突变的腺苷脱氨酶,使其与DNA结合蛋白融合,能够用于靶核酸的单碱基编辑,具有广泛的应用前景。

Description

一种优化的碱基编辑工具及其应用
本申请要求申请日为2023年5月11日的中国专利申请202310539024.3的优先权,本申请引用上述中国专利的全文。
技术领域
本发明涉及基因编辑领域,特别是规律成簇的间隔短回文重复(CRISPR)技术领域。具体而言,本发明涉及一种碱基编辑工具,尤其是基于一种突变的腺苷脱氨酶实现碱基编辑。
背景技术
CRISPR/Cas技术是一种被广泛使用的基因编辑技术,它通过RNA引导对基因组上的靶序列进行特异性结合并切割DNA产生双链断裂,利用生物非同源末端连接或同源重组进行定点基因编辑。
单碱基基因编辑工具的开发,能够在不引起DNA双链断裂的情况下实现对特定基因位点的精确修饰。基于腺苷脱氨酶的腺嘌呤碱基编辑器(ABE),实现A>G(由A到G)的转化。目前,腺嘌呤碱基编辑器的应用受到腺苷脱氨酶结构域以及DNA结合蛋白有限相容性的限制,因此,本发明基于一种突变的腺苷脱氨酶,构建了可以单碱基编辑工具,扩展了单碱基编辑技术的应用范围,同时,提高了单碱基编辑效率。
发明内容
一方面,本发明提供了一种突变的腺苷脱氨酶。
在一个实施方式中,所述腺苷脱氨酶与亲本腺苷脱氨酶的氨基酸序列相比,在对应于SEQ ID No.1所示氨基酸序列的以下任一或任意几个氨基酸位点处存在突变:第36位、第68位、第69位、第75位、第82位、第83位、第96位、第99位、第100位、第114位、第115位、第116位、第118位、第119位、第122位、第123位、第124位、第128位、第130位、第131位、第132位、第134位、第136位、第138位、第139位、第143位、第146位、第164位、第165位、第166位。
在一个实施方式中,第36位氨基酸突变为非L的氨基酸,例如,G,A,V,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第68位氨基酸突变为非L的氨基酸,例如,G,A,V,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第69位氨基酸突变为非V的氨基酸,例如,G,A,L,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第75位氨基酸突变为非L的氨基酸,例如,G,A,V,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第82位氨基酸突变为非V的氨基酸,例如,G,A,L,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第83位氨基酸突变为非T的氨基酸,例如,G,A,V,I,P,F,Y,W,S,L,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第96位氨基酸突变为非H的氨基酸,例如,G,A,V,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,L;优选,R。
在一个实施方式中,第99位氨基酸突变为非I的氨基酸,例如,G,A,V,L,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第100位氨基酸突变为非G的氨基酸,例如,L,A,V,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第114位氨基酸突变为非A的氨基酸,例如,G,L,V,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第115位氨基酸突变为非G的氨基酸,例如,L,A,V,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第116位氨基酸突变为非S的氨基酸,例如,L,A,V,I,P,F,Y,W,G,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第118位氨基酸突变为非M的氨基酸,例如,L,A,V,I,P,F,Y,W,S,T,C,G,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第119位氨基酸突变为非N的氨基酸,例如,L,A,V,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,G,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第122位氨基酸突变为非N的氨基酸,例如,L,A,V,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,G,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第123位氨基酸突变为非Y的氨基酸,例如,L,A,V,I,P,F,N,W,S,T,C,M,G,Q,D,E,K,R,H;优选,R
在一个实施方式中,第124位氨基酸突变为非P的氨基酸,例如,L,A,V,I,N,F,Y,W,S,T,C,M,G,Q,D,E,K,R,H;优选,R
在一个实施方式中,第128位氨基酸突变为非H的氨基酸,例如,L,A,V,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,G,Q,D,E,K,R,N;优选,R
在一个实施方式中,第130位氨基酸突变为非V的氨基酸,例如,G,A,L,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第131位氨基酸突变为非E的氨基酸,例如,G,A,L,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,V,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第132位氨基酸突变为非I的氨基酸,例如,G,A,V,L,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第134位氨基酸突变为非E的氨基酸,例如,G,A,L,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,V,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第136位氨基酸突变为非I的氨基酸,例如,G,A,V,L,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第138位氨基酸突变为非A的氨基酸,例如,G,L,V,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第139位氨基酸突变为非D的氨基酸,例如,G,L,V,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,A,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第143位氨基酸突变为非A的氨基酸,例如,G,L,V,I,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第146位氨基酸突变为非C的氨基酸,例如,G,L,V,I,P,F,Y,W,S,T,A,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第164位氨基酸突变为非S的氨基酸,例如,L,A,V,I,P,F,Y,W,G,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第165位氨基酸突变为非S的氨基酸,例如,L,A,V,I,P,F,Y,W,G,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,第166位氨基酸突变为非I的氨基酸,例如,G,A,V,L,P,F,Y,W,S,T,C,M,N,Q,D,E,K,R,H;优选,R。
在一个实施方式中,所述亲本腺苷脱氨酶的氨基酸序列与SEQ ID No.1相比具有至少70%、至少80%、至少85%、至少90%、至少91%、至少92%、至少93%、至少94%、至少95%、至少96%、至少97%、至少98%、至少99%、至少99.1%、至少99.2%、至少99.3%、至少99.4%、至少99.5%、至少99.6%、至少99.7%、至少99.8%、或至少99.9%的序列同一性。
MSEVEFSHEYWMRHALTLAKRARDEREVPVGAVLVLNNRVIGEGWNRAIGLHDPT AHAEIMALRQGGLVMQNYRLIDATLYVTFEPCVMCAGAMIHSRIGRVVFGVRNSKRGAA GSLMNVLNYPGMNHRVEITEGILADECAALLCDFYRMPRQVFNAQKKAQSSIN(SEQ ID No.1)
在一个实施方式中,所述突变的腺苷脱氨酶选自以下I-III任意一组:
I、由SEQ ID No.1所示氨基酸序列在包含以下任一或任意几个(例如,任意2个、任意3个、任意4个、任意5个、任意6个、任意7个、任意8个或任意9个等)氨基酸位点处产生突变得到的腺苷脱氨酶:第36位、第68位、第69位、第75位、第82位、第83位、第96位、第99位、第100位、第114位、第115位、第116位、第118位、第119位、第122位、第123位、第124位、第128位、第130位、第131位、第132位、第134位、第136位、第138位、第139位、第143位、第146位、第164位、第165位或第166位;
II、与I所述的突变的腺苷脱氨酶相比,具有I中所述的突变位点;并且,与I所述的突变的腺苷脱氨酶相比,具有至少80%、至少85%、至少90%、至少91%、至少92%、至少93%、至少94%、至少95%、至少96%、至少97%、至少98%、至少99%、至少99.1%、至少99.2%、至少99.3%、至少99.4%、至少99.5%、至少99.6%、至少99.7%、至少99.8%、或至少99.9%的序列同一性的腺苷脱氨酶突变体;
III、与I所述的突变的腺苷脱氨酶相比,具有I中所述的突变位点;并且,与I所述的突变的腺苷脱氨酶相比,具有一个或多个氨基酸的置换、缺失或添加的序列;所述一个或多个氨基酸包括1个,2个,3个,4个,5个,6个,7个,8个,9个或10个氨基酸的置换、缺失或添加。
在一个实施方式中,所述亲本腺苷脱氨酶的氨基酸序列如SEQ ID No.1所示。
本发明中,腺苷脱氨酶,又称之为腺嘌呤脱氨酶,其催化腺嘌呤或腺苷的水解脱氨基作用。本文提供的腺苷脱氨酶(例如,工程化的腺苷脱氨酶、演化的腺苷脱氨酶)可以来自任何生物体,例如细菌。
在一些实施方式中,腺苷脱氨酶是天然存在的腺苷脱氨酶,也可以是发生突变但仍具有腺苷脱氨酶活性的变体。
在一些实施方式中,腺苷脱氨酶来自原核生物。在一些实施方案中,腺苷脱氨酶来自细菌。在一些实施方案中,腺苷脱氨酶来自大肠杆菌(Escherichia coli)、金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)、鼠伤寒沙门氏菌(Salmonella typhi)、腐败希瓦氏菌(Shewanella putrefaciens)、流感嗜血杆菌(Haemophilus influenzae)、新月柄杆菌(Caulobacter crescentus)或枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)。
在一些实施方式中,腺苷脱氨酶是TadA脱氨酶。在一些实施方案中,TadA脱氨酶是大肠杆菌TadA脱氨酶,也可以是TadA脱氨酶的变体,例如TadA7-10,例如,TadA8e。
在一些实施方式中,TadA脱氨酶是大肠杆菌TadA脱氨酶(ecTadA)。在一些实施例中,TadA脱氨酶是截短的E.coli TadA脱氨酶。例如,相对于全长的ecTadA,截短的ecTadA可以缺失一个或多个N-末端氨基酸。在一些实施方式中,相对于全长的ecTadA,截短的ecTadA可以缺失1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19或20个N末端氨基酸残基。在一些实施方式中,相对于全长的ecTadA,截短的ecTadA可以缺失1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、6、17、18、19或20个C末端氨基酸残基。在一些实施方式中,ecTadA脱氨酶不包含N末端甲硫氨酸。
在优选的实施方式中,本发明,所述亲本腺苷脱氨酶来源于大肠杆菌。
一方面,本发明提供了一种融合蛋白,所述融合蛋白包含DNA结合蛋白和上述的腺苷脱氨酶。
在一个实施方式中,所述DNA结合蛋白为具有核酸可编程DNA结合蛋白(napDNAbp)结构域,所述“DNA结合蛋白”或“DNA结合蛋白结构域”是指能定位并结合特定靶DNA核苷酸序列(例如基因组的基因座)的任何蛋白质。在一个实施方式中,所述DNA结合蛋白为Cas蛋白,所述Cas蛋白选自Cas9、Cas9n、dCas9、CasX、CasY、C2cl、C2c2、C2c3、GeoCas9、CjCas9、Casl2a、Casl2b、Casl2g、Casl2h、Casl2i、Cas12j、Casl3b、Casl3c、Casl3d、Casl4、Csn2、xCas9、Cas9-NG、LbCasl2a、enAsCasl2a、Cas9-KKH、循环置换Cas9、Argonaute(Ago)结构域、SmacCas9、Spy-macCas9、SpGas9-NRRH、SpaCas9-NRTH、SpaCas9-NRCH、Cas9-NG-CP1041、Cas9-NG-VRQR、dCas12i、nCas12i及其变体。
在一个实施方式中,所述Cas蛋白为Cas12i。
在一个实施方式中,所述Cas蛋白可以天然存在的,也可以是非天然存在经过工程化改造的。
在一个实施方式中,所述Cas蛋白为核酸酶失活的Cas蛋白(dCas)。
在一个实施方式中,所述Cas蛋白的氨基酸序列如SEQ ID No.2所示(dCas12i3)。
在一个实施方式中,所述融合蛋白中的DNA结合蛋白融合在腺苷脱氨酶的N端,在其他的实施方式中,所述融合蛋白中的DNA结合蛋白融合在脱氨酶的C端。
在一个实施方式中,所述融合蛋白中的DNA结合蛋白和腺苷脱氨酶通过接头连接。
在一个实施方式中,接头为XTEN接头,优选的,其氨基酸序列如SEQ ID No.3所示。
SGGSSGGSSGSETPGTSESATPESSGGSSGGS(SEQ ID No.3)。
在一个实施方式中,本发明的融合蛋白还包含核定位序列(NLS)。在一些实施方案中,NLS与融合蛋白的N端融合。在一些实施方案中,NLS与融合蛋白的C端融合。在其他的实施方式中,融合蛋白的N端和C段均连接有NLS。
在一些实施方案中,NLS与Cas蛋白的N端融合。在一些实施方案中,NLS与Cas蛋白的C端融合。在一些实施方案中,NLS与脱氨酶的N端融合。在一些实施方案中,NLS与脱氨酶的C端融合。在一些实施方案中,NLS经由一个或多个接头与融合蛋白融合。在一些实施方案中,NLS与融合蛋白在没有接头的情况下融合。
核定位序列(NLS)是本领域已知的并且对于技术人员是显而易见的,在一些实施方案中,NLS的序列包含氨基酸序列PKKKRKVM(SEQ ID No.4),或者,KRPAATKKAGQAKKKK(SEQID No.5)。
本领域技术人员清楚,可以改变蛋白质的结构而不对其活性和功能性产生不利影响,例如,可以在蛋白质氨基酸序列中引入一个或多个保守性氨基酸取代,而不会对蛋白质分子的活性和/或三维结构产生不利影响。本领域技术人员清楚保守性氨基酸取代的实例以及实施方式。具体的说,可以用与待取代位点属于相同组的另一氨基酸残基取代该氨基酸残基,即用非极性氨基酸残基取代另一非极性氨基酸残基,用极性不带电荷的氨基酸残基取代另一极性不带电荷的氨基酸残基,用碱性氨基酸残基取代另一碱性氨基酸残基,和用酸性氨基酸残基取代另一酸性氨基酸残基。这样的取代的氨基酸残基可以是也可以不是由遗传密码编码的。只要取代不导致蛋白质生物活性的失活,则一种氨基酸被属于同组的其他氨基酸替换的保守取代落在本发明的范围内。因此,本发明的蛋白可以在氨基酸序列中包含一个或多个保守性取代,这些保守性取代最好根据表1进行替换而产生。另外,本发明也涵盖还包含一个或多个其他非保守取代的蛋白,只要该非保守取代不显著影响本发明的蛋白质的所需功能和生物活性即可。
保守氨基酸置换可以在一个或多个预测的非必需氨基酸残基处进行。“非必需”氨基酸残基是可以发生改变(缺失、取代或置换)而不改变生物活性的氨基酸残基,而“必需”氨基酸残基是生物活性所需的。“保守氨基酸置换”是其中氨基酸残基被具有类似侧链的氨基酸残基替代的置换。氨基酸置换可以在上述Cas突变蛋白或融合蛋白的非保守区域中进行。一般而言,此类置换不对保守的氨基酸残基,或者不对位于保守基序内的氨基酸残基进行,其中此类残基是蛋白质活性所需的。然而,本领域技术人员应当理解,功能变体可以具有较少的在保守区域中的保守或非保守改变。
表1
本领域熟知,可以从蛋白质的N和/或C末端改变(置换、删除、截短或插入)一或多个氨基酸残基而仍保留其功能活性。因此,从Cas突变蛋白的N和/或C末端改变了一或多个氨基酸残基、同时保留了其所需功能活性的蛋白,也在本发明的范围内。这些改变可以包括通过现代分子方法例如PCR而引入的改变,所述方法包括借助于在PCR扩增中使用的寡核苷酸之中包含氨基酸编码序列而改变或延长蛋白质编码序列的PCR扩增。
应认识到,蛋白质可以以各种方式进行改变,包括氨基酸置换、删除、截短和插入,用于此类操作的方法是本领域通常已知的。例如,可以通过对DNA的突变来制备上述蛋白的氨基酸序列变体。还可以通过其他诱变形式和/或通过定向进化来完成,例如,使用已知的诱变、重组和/或改组(shuffling)方法,结合相关的筛选方法,来进行单个或多个氨基酸取代、缺失和/或插入。
领域技术人员能够理解,本发明Cas蛋白中的这些微小氨基酸变化可以出现(例如天然存在的突变)或者产生(例如使用r-DNA技术)而不损失蛋白质功能或活性。如果这些突变出现在蛋白的催化结构域、活性位点或其它功能结构域中,则多肽的性质可改变,但多肽可保持其活性。如果存在的突变不接近催化结构域、活性位点或其它功能结构域中,则可预期较小影响。
本领域技术人员可以根据本领域已知的方法,例如定位诱变或蛋白进化或生物信息系的分析,来鉴定本发明Cas突变蛋白的必需氨基酸。蛋白的催化结构域、活性位点或其它功能结构域也能够通过结构的物理分析而确定,如通过以下这些技术:如核磁共振、晶体学、电子衍射或光亲和标记,结合推定的关键位点氨基酸的突变来确定。
本发明中,氨基酸残基可以用单字母表示,也可以用三字母表示,例如:丙氨酸(Ala,A),缬氨酸(Val,V),甘氨酸(Gly,G),亮氨酸(Leu,L),谷酰胺酸(Gln,Q),苯丙氨酸(Phe,F),色氨酸(Trp,W),酪氨酸(Tyr,Y),天冬氨酸(Asp,D),天冬酰胺(Asn,N),谷氨酸(Glu,E),赖氨酸(Lys,K),甲硫氨酸(Met,M),丝氨酸(Ser,S),苏氨酸(Thr,T),半胱氨酸(Cys,C),脯氨酸(Pro,P),异亮氨酸(Ile,I),组氨酸(His,H),精氨酸(Arg,R)。
术语“AxxB”表示第xx位的氨基酸A变为氨基酸B,例如L36A表示第36位的L突变为A。
本发明所述蛋白质内的特定氨基酸位置(编号)是利用标准序列比对工具通过将目标蛋白质的氨基酸序列与目标序列(例如,SEQ ID No.1)进行比对而确定的,譬如用Smith-Waterman运算法则或用CLUSTALW2运算法则比对两个序列,其中当比对得分最高时认为所述序列是对准的。比对得分可依照Wilbur,W.J.and Lipman,D.J.(1983)Rapidsimilarity searches of nucleic acid and protein databanks.Proc.Natl.Acad.Sci.USA,80:726-730中所述的方法进行计算。在ClustalW2(1.82)运算法则中优选使用默认参数:蛋白质缺口开放罚分=10.0;蛋白质缺口延伸罚分=0.2;蛋白质矩阵=Gonnet;蛋白质/DNA端隙=-1;蛋白质/DNAGAPDIST=4。优选采用AlignX程序(vectorNTI组中的一部分),以适于多重比对的默认参数(缺口开放罚分:10og缺口延伸罚分0.05)通过将蛋白质的氨基酸序列与SEQ ID No.1进行比来确定本发明所述蛋白质内特定氨基酸的位置。本领域人员可以用本领域常用的软件,如Clustal Omega,将任一亲本Cas蛋白的氨基酸序列与SEQ ID NO.1进行序列同一性比较和对齐(alignment),进而得到与本申请中所述基于SEQ ID NO.1所定义的氨基酸位点相对应的所述亲本Cas蛋白中的氨基酸位点。
本发明的融合蛋白不受其产生方式的限定,例如,其可以通过基因工程方法(重组技术)产生,也可以通过化学合成方法产生。
本发明还提供了包含上述融合蛋白的碱基编辑工具,例如,单碱基编辑工具。
核酸
另一方面,本发明提供了一种分离的多核苷酸,其包含:
(a)编码本发明突变的腺苷脱氨酶或融合蛋白的多核苷酸序列;
或者,与(a)所述的多核苷酸互补的多核苷酸。
在一个实施方式中,所述的核苷酸序列经密码子优化用于在原核细胞中进行表达。在一个实施方式中,所述的核苷酸序列经密码子优化用于在真核细胞中进行表达。
在一个实施方式中,所述细胞是动物细胞,例如,哺乳动物细胞。
在一个实施方式中,所述细胞是人类细胞。
在一个实施方式中,所述细胞是植物细胞,例如栽培植物(如木薯、玉米、高粱、小麦或水稻)、藻类、树或蔬菜具有的细胞。
在一个实施方式中,所述的多核苷酸优选是单链的或双链的。
指导RNA(gRNA)
另一方面,本发明提供了一种gRNA,所述gRNA包括蛋白质结合序列和靶向靶核酸的靶向序列。
所述gRNA的蛋白质结合序列能够与本发明融合蛋白中的DNA结合蛋白(Cas蛋白)相互作用,从而使DNA结合蛋白(Cas蛋白)和gRNA形成复合物。
设计与本发明的Cas蛋白相互作用的gRNA是本领域的常规技术知识。例如,针对Cas9蛋白、Cas12家族的Cas蛋白(包括但不限于,Cas12a、Cas12b、Cas12i等),设计与其相互作用的gRNA,并不需要付出创造性的劳动。
本发明靶向核酸的靶向序列包含与靶核酸中的序列互补的核苷酸序列。换言之,本发明靶向核酸的靶向序列或靶向核酸的靶向区段经过杂交(即,碱基配对)以序列特异性方式与靶核酸相互作用。因此,靶向核酸的靶向序列或靶向核酸的靶向区段可改变,或可被修饰以杂交靶核酸内的任何希望的序列。所述核酸选自DNA或RNA。
靶向核酸的靶向序列或靶向核酸的靶向区段与靶核酸的靶序列之间的互补百分比可为至少60%(例如,至少65%、至少70%、至少75%、至少80%、至少85%、至少90%、至少95%、至少97%、至少98%、至少99%或100%)。
本发明gRNA的“蛋白质结合序列”可以与CRISPR蛋白(或者,Cas蛋白)相互作用。本发明gRNA经过靶向核酸的靶向序列的作用将其相互作用的DNA结合蛋白引导至靶核酸内的特异性核苷酸序列。
本发明的gRNA能够与所述DNA结合蛋白(Cas蛋白)形成复合物。
载体
本发明还提供了一种载体,其包含如上述的腺苷脱氨酶、融合蛋白、分离的核酸分子或多核苷酸;优选的,其还包括与之可操作连接的调控元件。
在一个实施方式中,所述的调控元件选自下组中的一种或多种:增强子、转座子、启动子、终止子、前导序列、多腺苷酸序列、标记基因。
在一个实施方式中,所述的载体包括克隆载体、表达载体、穿梭载体、整合载体。
在一些实施方案中,所述系统中包括的载体是病毒载体(例如逆转录病毒载体,慢病毒载体,腺病毒载体,腺相关载体和单纯疱疹载体),还可以是质粒、病毒、粘粒、噬菌体等类型,它们是本领域技术人员所熟知的。
CRISPR系统
本发明提供了一种工程化的非天然存在的载体系统,或者是CRISPR-Cas系统,该系统包括上述融合蛋白或编码所述融合蛋白的核酸序列以及编码一种或多种上述指导RNA的核酸,所述融合蛋白中的DNA结合蛋白为Cas蛋白,所述gRNA能够结合所述Cas蛋白。
在一种实施方式中,所述编码所述融合蛋白的核酸序列和编码一种或多种指导RNA的核酸是人工合成的。
在一种实施方式中,所述编码所述融合蛋白的核酸序列和编码一种或多种指导RNA的核酸并不共同天然存在。
该一种或多种指导RNA在细胞中靶向一个或多个靶序列。所述一个或多个靶序列与编码一种或多种基因产物的DNA分子的基因组座位杂交,并且引导该融合蛋白到达所述一种或多种基因产物的DNA分子的基因组座位部位,融合蛋白到达靶序列位置后对靶序列进行修饰、编辑,由此该一种或多种基因产物的表达被改变或修饰。
本发明的细胞包括动物、植物或微生物中的一种或多种。
在一些实施例中,该融合蛋白是密码子优化的,用于在细胞中进行表达。
本发明还提供了一种工程化的非天然存在的载体系统,该载体系统可以包括一种或多种载体,该一种或多种载体包括:
a)第一调控元件,该第一调控元件可操作地与gRNA连接,
b)第二调控元件,该第二调控元件可操作地与所述融合蛋白连接;
其中组分(a)和(b)位于该系统的相同或不同载体上。
所述第一和第二调控元件包括启动子(例如,组成型启动子或诱导型启动子)、增强子(例如35S promoter或35S enhanced promoter)、内部核糖体进入位点(IRES)、和其他表达控制元件(例如转录终止信号,如多聚腺苷酸化信号和多聚U序列)。
在一些实施方案中,所述系统中的载体是病毒载体(例如逆转录病毒载体,慢病毒载体,腺病毒载体,腺相关载体和单纯疱疹载体),还可以是质粒、病毒、粘粒、噬菌体等类型,它们是本领域技术人员所熟知的。
在一些实施例中,本文提供的系统处于递送系统中。在一些实施方案中,递送系统是纳米颗粒,脂质体,外体,微泡和基因枪。
在一个实施方式中,所述靶序列是来自原核细胞或真核细胞的DNA或RNA序列。在一个实施方式中,所述靶序列是非天然存在的DNA或RNA序列。
在一个实施方式中,所述靶序列存在于细胞内。在一个实施方式中,所述靶序列存在于细胞核内或细胞质(例如,细胞器)内。在一个实施方式中,所述细胞是真核细胞。在其他实施方式中,所述细胞是原核细胞。
蛋白-核酸复合物/组合物
另一方面,本发明提供了一种复合物或者组合物,其包含:
(i)蛋白组分,其选自:上述融合蛋白,所述融合蛋白中的DNA结合蛋白为Cas蛋白;
(ii)核酸组分,其包含(a)能够与靶序列杂交的引导序列;以及(b)能够与本发明融合蛋白中的DNA结合蛋白结合的蛋白质结合序列。
所述蛋白组分与核酸组分能够相互结合形成复合物。
在一个实施方式中,所述核酸组分是CRISPR-Cas系统中的指导RNA。
在一个实施方式中,所述复合物或组合物是非天然存在的或经修饰的。在一个实施方式中,所述复合物或组合物中的至少一个组分是非天然存在的或经修饰的。在一个实施方式中,所述第一组分是非天然存在的或经修饰的;和/或,所述第二组分是非天然存在的或经修饰的。
递送及递送组合物
本发明的融合蛋白、gRNA、核酸分子、载体、系统、复合物和组合物,可以通过本领域已知的任何方法进行递送。此类方法包括但不限于,电穿孔、脂转染、核转染、显微注射、声孔效应、基因枪、磷酸钙介导的转染、阳离子转染、脂质体转染、树枝状转染、热激转染、核转染、磁转染、脂转染、穿刺转染、光学转染、试剂增强性核酸摄取、以及经由脂质体、免疫脂质体、病毒颗粒、人工病毒体等的递送。
因此,在另一个方面,本发明提供了一种递送组合物,其包含递送载体,以及选自下列的一种或任意几种:本发明的融合蛋白、gRNA、核酸分子、载体、系统、复合物和组合物。
在一个实施方式中,所述递送载体是粒子。
在一个实施方式中,所述递送载体选自脂质颗粒、糖颗粒、金属颗粒、蛋白颗粒、脂质体、外泌体、微泡、基因枪或病毒载体(例如,复制缺陷型逆转录病毒、慢病毒、腺病毒或腺相关病毒)。
宿主细胞
本发明还涉及一种体外的、离体的或体内的细胞或细胞系或它们的子代,所述细胞或细胞系或它们的子代包含:本发明所述的融合蛋白、核酸分子、蛋白-核酸复合物、载体、本发明递送组合物。
在某些实施方案中,所述细胞是原核细胞。
在某些实施方案中,所述细胞是真核细胞。在某些实施方案中,所述细胞是哺乳动物细胞。在某些实施方案中,所述细胞是人类细胞。某些实施方案中,所述细胞是非人哺乳动物细胞,例如非人灵长类动物、牛、羊、猪、犬、猴、兔、啮齿类(如大鼠或小鼠)的细胞。在某些实施方案中,所述细胞是非哺乳动物真核细胞,例如家禽鸟类(如鸡)、鱼类或甲壳动物(如蛤蜊、虾)的细胞。在某些实施方案中,所述细胞是植物细胞,例如单子叶植物或双子叶植物具有的细胞或栽培植物或粮食作物如木薯、玉米、高粱、大豆、小麦、燕麦或水稻具有的细胞,例如藻类、树或生产植物、果实或蔬菜(例如,树类如柑橘树、坚果树;茄属植物、棉花、烟草、番茄、葡萄、咖啡、可可等)。
在某些实施方案中,所述细胞是干细胞或干细胞系。
在某些情况下,本发明的宿主细胞包含基因或基因组的修饰,该修饰是在其野生型中不存在的修饰。
基因编辑方法和应用
本发明的融合蛋白、核酸、上述组合物、上述CIRSPR/Cas系统、上述载体系统、上述递送组合物或者上述宿主细胞可用于以下任一或任意几个用途:靶向和/或编辑靶核酸;特异性地编辑双链核酸;碱基编辑双链核酸;碱基编辑单链核酸。在其他的实施方式中,还可以用于制备用于上述任一或任意几个用途的试剂或试剂盒。
本发明还提供了一种编辑核酸的方法,该方法包括使核酸(例如双链DNA序列)的靶区域与包含上述融合蛋白和gRNA的复合物接触的步骤;其中,所述靶区域包含靶向的碱基对,将靶区域中所述靶向的碱基对进行碱基替换。在一个实施方式中,所述融合蛋白中的脱氨酶为腺苷脱氨酶,所述靶向的碱基对由A:T替换为G:C。
上述A:T是指组成碱基对所配对的碱基为A和T;类似的,G:C是指组成碱基对所配对的碱基为G和C。
本发明还提供了融合蛋白、核酸、上述组合物、上述CIRSPR/Cas系统、上述载体系统、上述递送组合物或者上述宿主细胞在基因编辑中的应用;或者,在制备用于基因编辑的试剂或试剂盒中的用途。
在一个实施方式中,所述基因编辑为在细胞内和/或细胞外进行基因编辑。
在一个实施方式中,所述基因编辑为对靶基因进行单碱基编辑。
本发明还提供了一种编辑靶核酸的方法,所述方法包括将靶核酸与上述融合蛋白、核酸、上述组合物、上述CIRSPR/Cas系统、上述载体系统或上述递送组合物进行接触。在一个实施方式中,所述方法为在细胞内或细胞外编辑靶核酸。
所述基因编辑或编辑靶核酸包括对靶基因的单碱基进行编辑的步骤。
所述编辑可以在原核细胞和/或真核细胞中进行编辑。
另一方面,本发明还提供了一种用于基因编辑的试剂盒,所述试剂盒包括上述腺苷脱氨酶、融合蛋白、gRNA、核酸、上述组合物、上述CIRSPR/Cas系统、上述载体系统、上述递送组合物或上述宿主细胞。
另一方面,发明提供了上述腺苷脱氨酶、融合蛋白、核酸、上述组合物、上述CIRSPR/Cas系统、上述载体系统、上述递送组合物或上述宿主细胞在制备制剂或试剂盒中的用途,所述制剂或试剂盒用于:
(i)基因或基因组编辑;
(ii)编辑靶基因座中的靶序列来修饰生物;
(iii)单碱基编辑;
(iv)疾病的治疗。
优选的,上述基因或基因组编辑为在细胞内或细胞外进行基因或基因组编辑。
优选的,所述疾病的治疗为治疗由靶基因座中的靶序列的缺陷引起的病症。
特异性修饰靶核酸的方法
另一方面,本发明还提供了一种特异性修饰靶核酸的方法,方法包括:使靶核酸与上述融合蛋白、核酸、上述组合物、上述CIRSPR/Cas系统、上述载体系统或上述递送组合物接触。
该特异性修饰可以发生在体内或者体外。
该特异性修饰可以发生在细胞内或者细胞外。
在一些情况下,细胞选自原核细胞或真核细胞,例如,动物细胞、植物细胞或微生物细胞。
腺苷脱氨酶
如本文所用,术语“腺苷脱氨酶”,其催化核碱基腺嘌呤水解脱氨。本文提供的腺苷脱氨酶(如工程化的腺苷脱氨酶或优化的腺苷脱氨酶)可以将DNA中的腺苷(A)转化为肌苷(I)的酶,这样的腺苷脱氨酶可以引起A:T到G:C碱基对的转化。在一些实施方案中,腺苷脱氨酶是来自生物体的天然存在的腺苷脱氨酶的变体。在一些实施方案中,腺苷脱氨酶不存在于自然界中。例如,在一些实施方案中,腺苷脱氨酶与天然存在的腺苷脱氨酶具有至少50%、至少55%、至少60%、至少65%、至少70%、至少75%、至少80%、至少85%、至少90%、至少95%、至少96%、至少97%、至少98%、至少99%或至少99.5%的同一性。
DNA结合蛋白
如本文所用,术语“DNA结合蛋白”或“DNA结合蛋白结构域”是指定位于并结合特定靶DNA核苷酸序列(例如基因组的基因座)的任何蛋白质。该术语包括RN A-可编程蛋白,其与一个或多个核酸分子(即,其包括例如在Cas系统的情况下的指导RNA)结合(例如,形成复合物),所述一个或多个核酸分子指导或以其他方式编程所述蛋白以定位于与所述蛋白结合的一个或多个核酸分子(或其部分或区域)互补的特定靶核苷酸序列(例如,DNA序列)。示例性RNA可编程蛋白是CR1SPR-Cas9蛋白,以及Cas9等同物、同源物、直向同源物或旁系同源物,无论是天然存在的还是非天然存在的(例如,工程化或修饰的),并且可以包括来自任何类型的CR1SPR系统(例如,II型、V型、VI型)的Cas9等同物,包括Cpfl(V型CRISPR-Cas系统)、C2cl(V型CRISPR-Cas系统)、C2c2(VI型CRISPR-Cas系统)、C2c3(V型CRISPR-Cas系统)、dCas9、GeoCas9、CjCas9、Cas 12a、Cas 12b、Casl2c、Casl2d、Casl2g、Cassi2h、Cas12i、dCas12i等进一步的Cas等同物。
CRISPR系统
如本文中所使用的,术语“规律成簇的间隔短回文重复(CRISPR)-CRISPR-相关(Cas)(CRISPR-Cas)系统”或“CRISPR系统”可互换地使用并且具有本领域技术人员通常理解的含义,其通常包含与CRISPR相关(“Cas”)基因的表达有关的转录产物或其他元件,或者能够指导所述Cas基因活性的转录产物或其他元件。本发明中的Cas蛋白,即为Crisprassociated protein。
CRISPR/Cas复合物
如本文中所使用的,术语“CRISPR/Cas复合物”是指,指导RNA(guide RNA)或成熟crRNA与Cas蛋白结合所形成的复合体,其包含杂交到靶序列的引导序列上并且与Cas蛋白结合的同向重复序列,该复合体能够识别并切割能与该指导RNA或成熟crRNA杂交的多核苷酸。
指导RNA(guideRNA,gRNA)
如本文中所使用的,术语“指导RNA(guide RNA,gRNA)”、“成熟crRNA”、“指导序列”可互换地使用并且具有本领域技术人员通常理解的含义。一般而言,指导RNA可以包含同向重复序列(direct repeat)和引导序列,或者基本上由或由同向重复序列和引导序列组成。
在某些情况下,指导序列是与靶序列具有足够互补性从而与所述靶序列杂交并引导CRISPR/Cas复合物与所述靶序列的特异性结合的任何多核苷酸序列。在一个实施方式中,当最佳比对时,指导序列与其相应靶序列之间的互补程度为至少50%、至少60%、至少70%、至少80%、至少90%、至少95%、或至少99%。确定最佳比对在本领域的普通技术人员的能力范围内。例如,存在公开和可商购的比对算法和程序,诸如但不限于ClustalW、matlab中的史密斯-沃特曼算法(Smith-Waterman)、Bowtie、Geneious、Biopython以及SeqMan。
靶序列
“靶序列”是指被gRNA中的引导序列所靶向的多核苷酸,例如与该引导序列具有互补性的序列,其中靶序列与引导序列之间的杂交将促进CRISPR/Cas复合物(包括Cas蛋白和gRNA)的形成。完全互补性不是必需的,只要存在足够互补性以引起杂交并且促进一种CRISPR/Cas复合物的形成即可。
靶序列可以包含任何多核苷酸,如DNA或RNA。在某些情况下,所述靶序列位于细胞内或细胞外。在某些情况下,所述靶序列位于细胞的细胞核或细胞质中。在某些情况下,该靶序列可位于真核细胞的一个细胞器例如线粒体或叶绿体内。可被用于重组到包含该靶序列的靶基因座中的序列或模板被称为“编辑模板”或“编辑多核苷酸”或“编辑序列”。在一个实施方式中,所述编辑模板为外源核酸。在一个实施方式中,该重组是同源重组。
在本发明中,“靶序列”或“靶多核苷酸”或“靶核酸”可以是对细胞(例如,真核细胞)而言任何内源或外源的多核苷酸。例如,该靶多核苷酸可以是一种存在于真核细胞的细胞核中的多核苷酸。该靶多核苷酸可以是一个编码基因产物(例如,蛋白质)的序列或一个非编码序列(例如,调节多核苷酸或无用DNA)。在某些情况下,该靶序列应该与原间隔序列临近基序(PAM)相关。
碱基编辑
术语“碱基编辑”是指基因组编辑技术,其涉及将特定核酸碱基转化成靶向基因组基因座处的另一个碱基。在某些实施例中,这可以在不需要双链DNA断裂(DSB)或单链断裂(nicking)的情况下实现。迄今为止,包括基于CRISPR的系统的其他基因组编辑技术以在感兴趣的座位处引入DSB开始。随后,细胞DNA修复酶修补断裂,通常导致DSB位点处碱基的随机插入或缺失(indel)。然而,当期望在靶基因座处引入或校正点突变而不是整个基因的随机破坏时,这些基因组编辑技术不适合,因为校正率低(通常0.1%至5%),其中主要的基因组编辑产物是indel。为了在不引入Rando indel的情况下增加基因校正的效率,本发明人使用腺苷脱氨酶与CRISPR系统结合,将一个DNA碱基直接转化为另一个DNA碱基,而不形成DSB。
野生型
如本文中所使用的,术语“野生型”具有本领域技术人员通常理解的含义,其表示生物、菌株、基因的典型形式或者当它在自然界存在时区别于突变体或变体形式的特征,其可从自然中的来源分离并且没有被人为有意地修饰。
非天然存在的
如本文中所使用的,术语“非天然存在的”或“工程化的”可互换地使用并且表示人工的参与。当这些术语用于描述核酸分子或多肽时,其表示该核酸分子或多肽至少基本上从它们在自然界中或如发现于自然界中的与其结合的至少另一种组分游离出来。
同一性
如本文中所使用的,术语“同一性”用于指两个多肽之间或两个核酸之间序列的匹配情况。当两个进行比较的序列中的某个位置都被相同的碱基或氨基酸单体亚单元占据时(例如,两个DNA分子的每一个中的某个位置都被腺嘌呤占据,或两个多肽的每一个中的某个位置都被赖氨酸占据),那么各分子在该位置上是同一的。两个序列之间的“百分数同一性”是由这两个序列共有的匹配位置数目除以进行比较的位置数目×100的函数。例如,如果两个序列的10个位置中有6个匹配,那么这两个序列具有60%的同一性。例如,DNA序列CTGACT和CAGGTT共有50%的同一性(总共6个位置中有3个位置匹配)。通常,在将两个序列比对以产生最大同一性时进行比较。这样的比对可通过使用,例如,可通过计算机程序例如Align程序(DNAstar,Inc.)方便地进行的Needleman等人(1970)J.Mol.Biol.48:443-453的方法来实现。还可使用已整合入ALIGN程序(版本2.0)的E.Meyers和W.Miller(Comput.ApplBiosci.,4:11-17(1988))的算法,使用PAM120权重残基表(weight residue table)、12的缺口长度罚分和4的缺口罚分来测定两个氨基酸序列之间的百分数同一性。此外,可使用已整合入GCG软件包(可在www.gcg.com上获得)的GAP程序中的Needleman和Wunsch(J MoIBiol.48:444-453(1970))算法,使用Blossum 62矩阵或PAM250矩阵以及16、14、12、10、8、6或4的缺口权重(gap weight)和1、2、3、4、5或6的长度权重来测定两个氨基酸序列之间的百分数同一性。
载体
术语“载体”是指一种核酸分子,它能够运送与其连接的另一种核酸分子。载体包括但不限于,单链、双链、或部分双链的核酸分子;包括一个或多个自由端、无自由端(例如环状的)的核酸分子;包括DNA、RNA、或两者的核酸分子;以及本领域已知的其他多种多样的多核苷酸。载体可以通过转化,转导或者转染导入宿主细胞,使其携带的遗传物质元件在宿主细胞中获得表达。一种载体可以被引入到宿主细胞中而由此产生转录物、蛋白质、或肽,包括由如本文所述的蛋白、融合蛋白、分离的核酸分子等(例如,CRISPR转录物,如核酸转录物、蛋白质、或酶)。一种载体可以含有多种控制表达的元件,包括但不限于,启动子序列、转录起始序列、增强子序列、选择元件及报告基因。另外,载体还可含有复制起始位点。
一种类型的载体是“质粒”,其是指其中可以例如通过标准分子克隆技术插入另外的DNA片段的环状双链DNA环。
另一种类型的载体是病毒载体,其中病毒衍生的DNA或RNA序列存在于用于包装病毒(例如,逆转录病毒、复制缺陷型逆转录病毒、腺病毒、复制缺陷型腺病毒、以及腺相关病毒)的载体中。病毒载体还包含由用于转染到一种宿主细胞中的病毒携带的多核苷酸。某些载体(例如,具有细菌复制起点的细菌载体和附加型哺乳动物载体)能够在它们被导入的宿主细胞中自主复制。
其他载体(例如,非附加型哺乳动物载体)在引入宿主细胞后整合到该宿主细胞的基因组中,并且由此与该宿主基因组一起复制。而且,某些载体能够指导它们可操作连接的基因的表达。这样的载体在此被称为“表达载体”。
宿主细胞
如本文中所使用的,术语“宿主细胞”是指,可用于导入载体的细胞,其包括但不限于,如大肠杆菌或枯草菌等的原核细胞,如微生物细胞、真菌细胞、动物细胞和植物细胞的真核细胞。
本领域技术人员将理解,表达载体的设计可取决于诸如待转化的宿主细胞的选择、所希望的表达水平等因素。
调控元件
如本文中所使用的,术语“调控元件”旨在包括启动子、增强子、内部核糖体进入位点(IRES)、和其他表达控制元件(例如转录终止信号,如多聚腺苷酸化信号和多聚U序列),其详细描述可参考戈德尔(Goeddel),《基因表达技术:酶学方法》(GENE EXPRESSIONTECHNOLOGY:METHODS IN ENZYMOLOGY)185,学术出版社(Academic Press),圣地亚哥(SanDiego),加利福尼亚州(1990)。在某些情况下,调控元件包括指导一个核苷酸序列在许多类型的宿主细胞中的组成型表达的那些序列以及指导该核苷酸序列只在某些宿主细胞中表达的那些序列(例如,组织特异型调节序列)。组织特异型启动子可主要指导在感兴趣的期望组织中的表达,所述组织例如肌肉、神经元、骨、皮肤、血液、特定的器官(例如肝脏、胰腺)、或特殊的细胞类型(例如淋巴细胞)。在某些情况下,调控元件还可以时序依赖性方式(如以细胞周期依赖性或发育阶段依赖性方式)指导表达,该方式可以是或者可以不是组织或细胞类型特异性的。在某些情况下,术语“调控元件”涵盖的是增强子元件,如WPRE;CMV增强子;在HTLV-I的LTR中的R-U5’片段((Mol.Cell.Biol.,第8(1)卷,第466-472页,1988);SV40增强子;以及在兔β-珠蛋白的外显子2与3之间的内含子序列(Proc.Natl.Acad.Sci.USA.,第78(3)卷,第1527-31页,1981)。
启动子
如本文中所使用的,术语“启动子”具有本领域技术人员公知的含义,其是指一段位于基因的上游能启动下游基因表达的非编码核苷酸序列。组成型(constitutive)启动子是这样的核苷酸序列:当其与编码或者限定基因产物的多核苷酸可操作地相连时,在细胞的大多数或者所有生理条件下,其导致细胞中基因产物的产生。诱导型启动子是这样的核苷酸序列,当可操作地与编码或者限定基因产物的多核苷酸相连时,基本上只有当对应于所述启动子的诱导物在细胞中存在时,其导致所述基因产物在细胞内产生。组织特异性启动子是这样的核苷酸序列:当可操作地与编码或者限定基因产物的多核苷酸相连时,基本上只有当细胞是该启动子对应的组织类型的细胞时,其才导致在细胞中产生基因产物。
NLS
“核定位信号”或“核定位序列”(NLS)是对蛋白质“加标签”以通过核转运导入细胞核的氨基酸序列,即,具有NLS的蛋白质被转运至细胞核。典型地,NLS包含暴露在蛋白质表面的带正电荷的Lys或Arg残基。示例性核定位序列包括但不限于来自以下的NLS:SV40大T抗原,EGL-13,c-Myc以及TUS蛋白。在一些实施例中,该NLS包含PKKKRKV序列。在一些实施例中,该NLS包含AVKRPAATKKAGQAKKKKLD序列。在一些实施例中,该NLS包含PAAKRVKLD序列。在一些实施例中,该NLS包含MSRRRKANPTKLSENAKKLAKEVEN序列。在一些实施例中,该NLS包含KLKIKRPVK序列。其他核定位序列包括但不限于hnRNP A1的酸性M9结构域、酵母转录抑制子Matα2中的序列KIPIK和PY-NLS。
可操作地连接
如本文中所使用的,术语“可操作地连接”旨在表示感兴趣的核苷酸序列以一种允许该核苷酸序列的表达的方式被连接至该一种或多种调控元件(例如,处于一种体外转录/翻译系统中或当该载体被引入到宿主细胞中时,处于该宿主细胞中)。
互补性
如本文中所使用的,术语“互补性”是指核酸与另一个核酸序列借助于传统的沃森-克里克或其他非传统类型形成一个或多个氢键的能力。互补百分比表示一个核酸分子中可与一个第二核酸序列形成氢键(例如,沃森-克里克碱基配对)的残基的百分比(例如,10个之中有5、6、7、8、9、10个即为50%、60%、70%、80%、90%、和100%互补)。“完全互补”表示一个核酸序列的所有连续残基与一个第二核酸序列中的相同数目的连续残基形成氢键。如本文使用的“基本上互补”是指在一个具有8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、30、35、40、45、50个或更多个核苷酸的区域上至少为60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、97%、98%、99%、或100%的互补程度,或者是指在严格条件下杂交的两个核酸。
严格条件
如本文中所使用的,对于杂交的“严格条件”是指与靶序列具有互补性的一个核酸主要地与该靶序列杂交并且基本上不杂交到非靶序列上的条件。严格条件通常是序列依赖性的,并且取决于许多因素而变化。一般而言,该序列越长,则该序列特异性地杂交到其靶序列上的温度就越高。
杂交
术语“杂交”或“互补的”或“基本上互补的”是指核酸(例如RNA、DNA)包含使其能够非共价结合的核苷酸序列,即以序列特异性,反平行的方式(即核酸特异性结合互补核酸)与另一核酸形成碱基对和/或G/U碱基对,“退火”或“杂交”。
杂交需要两个核酸含有互补序列,尽管碱基之间可能存在错配。两个核酸之间杂交的合适条件取决于核酸的长度和互补程度,这是本领域公知的变量。典型地,可杂交核酸的长度为8个核苷酸或更多(例如,10个核苷酸或更多,12个核苷酸或更多,15个核苷酸或更多,20个核苷酸或更多,22个核苷酸或更多,25个核苷酸或更多,或30个核苷酸或更多)。
应当理解,多核苷酸的序列不需要与其靶核酸的序列100%互补以特异性杂交。多核苷酸可包含60%或更高,65%或更高,70%或更高,75%或更高,80%或更高,85%或更高,90%或更高,95%或更高,98%或更高,99%或更高,99.5%或更高,或与其杂交的靶核酸序列中的靶区域的序列互补性为100%。
靶序列与gRNA的杂交代表靶序列和gRNA的核酸序列至少60%、70%、75%、80%、85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%或100%的可以杂交,形成复合物;或者代表靶序列和gRNA的核酸序列至少有12个、15个、16个、17个、18个、19个、20个、21个、22个或更多个碱基可以互补配对,杂交形成复合物。
表达
如本文中所使用的,术语“表达”是指,藉此从DNA模板转录成多核苷酸(如转录成mRNA或其他RNA转录物)的过程和/或转录的mRNA随后藉此翻译成肽、多肽或蛋白质的过程。转录物和编码的多肽可以总称为“基因产物”。如果多核苷酸来源于基因组DNA,表达可以包括真核细胞中mRNA的剪接。
接头
如本文中所使用的,术语“接头”是指,由多个氨基酸残基通过肽键连接形成的线性多肽。本发明的接头可以为人工合成的氨基酸序列,或天然存在的多肽序列,例如具有铰链区功能的多肽。此类接头多肽是本领域众所周知的(参见例如,Holliger,P.等人(1993)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 90:6444-6448;Poljak,R.J.等人(1994)Structure 2:1121-1123)。
治疗
如本文中所使用的,术语“治疗”是指,治疗或治愈病症,延缓病症的症状的发作,和/或延缓病症的发展。
受试者
如本文中所使用的,术语“受试者”包括但不限于各种动物、植物和微生物。
动物
例如哺乳动物,例如牛科动物、马科动物、羊科动物、猪科动物、犬科动物、猫科动物、兔科动物、啮齿类动物(例如,小鼠或大鼠)、非人灵长类动物(例如,猕猴或食蟹猴)或人。在某些实施方式中,所述受试者(例如人)患有病症(例如,疾病相关基因缺陷所导致的病症)。
植物
术语“植物”应理解为能够进行光合作用的任何分化的多细胞生物,在包括处于任何成熟或发育阶段的作物植物,特别是单子叶或双子叶植物,蔬菜作物,包括洋蓟、球茎甘蓝、芝麻菜、韭葱、芦笋、莴苣(例如,结球莴苣、叶莴苣、长叶莴苣)、小白菜(bok choy)、黄肉芋、瓜类(例如,甜瓜、西瓜、克伦肖瓜(crenshaw)、白兰瓜、罗马甜瓜)、油菜作物(例如,球芽甘蓝、卷心菜、花椰菜、西兰花、羽衣甘蓝、无头甘蓝、大白菜、小白菜)、刺菜蓟、胡萝卜、洋白菜(napa)、秋葵、洋葱、芹菜、欧芹、鹰嘴豆、欧洲防风草、菊苣、胡椒、马铃薯、葫芦(例如,西葫芦、黄瓜、小西葫芦、倭瓜、南瓜)、萝卜、干球洋葱、芜菁甘蓝、紫茄子(也称为茄子)、婆罗门参、苣菜、青葱、苦苣、大蒜、菠菜、绿洋葱、倭瓜、绿叶菜类(greens)、甜菜(糖甜菜和饲料甜菜)、甘薯、唐莴苣、山葵、西红柿、芜菁、以及香辛料;水果和/或蔓生作物,如苹果、杏、樱桃、油桃、桃、梨、李子、西梅、樱桃、榅桲、杏仁、栗子、榛子、山核桃、开心果、胡桃、柑橘、蓝莓、博伊增莓(boysenberry)、小红莓、穗醋栗、罗甘莓、树莓、草莓、黑莓、葡萄、鳄梨、香蕉、猕猴桃、柿子、石榴、菠萝、热带水果、梨果、瓜、芒果、木瓜、以及荔枝;大田作物,如三叶草、苜蓿、月见草、白芒花、玉米/玉蜀黍(饲料玉米、甜玉米、爆米花)、啤酒花、荷荷芭、花生、稻、红花、小粒谷类作物(大麦、燕麦、黑麦、小麦等)、高粱、烟草、木棉、豆科植物(豆类、小扁豆、豌豆、大豆)、含油植物(油菜、芥菜、橄榄、向日葵、椰子、蓖麻油植物、可可豆、落花生)、拟南芥属、纤维植物(棉花、亚麻、黄麻)、樟科(肉桂、莰酮)、或一种植物如咖啡、甘蔗、茶、以及天然橡胶植物;和/或花坛植物,如开花植物、仙人掌、肉质植物和/或观赏植物,以及树如森林(阔叶树和常绿树,如针叶树)、果树、观赏树、以及结坚果的树(nut-bearing tree)、以及灌木和其他苗木。
发明的有益效果
本发明通过对腺苷脱氨酶改进,使其与DNA结合蛋白融合,能够用于靶核酸的单碱基编辑,提高单碱基编辑效率,具有广泛的应用前景。
下面将结合附图和实施例对本发明的实施方案进行详细描述,但是本领域技术人员将理解,下列附图和实施例仅用于说明本发明,而不是对本发明的范围的限定。根据附图和优选实施方案的下列详细描述,本发明的各种目的和有利方面对于本领域技术人员来说将变得显然。
本申请涉及的序列信息如下:
附图说明
图1.ABE荧光报告系统工作示意图。
图2.不同腺苷脱氨酶突变体与dCas12i3组成的ABE载体碱基编辑效率验证结果。
图3.不同腺苷脱氨酶突变体与dCas12i3组成的ABE载体在体内的编辑效率验证结果。
具体实施方式
以下实施例仅用于描述本发明,而非限定本发明。除非特别指明,否则基本上按照本领域内熟知的以及在各种参考文献中描述的常规方法进行实施例中描述的实验和方法。例如,本发明中所使用的免疫学、生物化学、化学、分子生物学、微生物学、细胞生物学、基因组学和重组DNA等常规技术,可参见萨姆布鲁克(Sambrook)、弗里奇(Fritsch)和马尼亚蒂斯(Maniatis),《分子克隆:实验室手册》(MOLECULAR CLONING:A LABORATORY MANUAL),第2次编辑(1989);《当代分子生物学实验手册》(CURRENT PROTOCOLS IN MOLECULAR BIOLOGY)(F.M.奥苏贝尔(F.M.Ausubel)等人编辑,(1987));《酶学方法》(METHODS IN ENZYMOLOGY)系列(学术出版公司):《PCR 2:实用方法》(PCR 2:A PRACTICAL APPROACH)(M.J.麦克弗森(M.J.MacPherson)、B.D.黑姆斯(B.D.Hames)和G.R.泰勒(G.R.Taylor)编辑(1995))、哈洛(Harlow)和拉内(Lane)编辑(1988)《抗体:实验室手册》(ANTIBODIES,ALABORATORYMANUAL),以及《动物细胞培养》(ANIMAL CELL CULTURE)(R.I.弗雷谢尼(R.I.Freshney)编辑(1987))。
另外,实施例中未注明具体条件者,按照常规条件或制造商建议的条件进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者,均为可以通过市购获得的常规产品。本领域技术人员知晓,实施例以举例方式描述本发明,且不意欲限制本发明所要求保护的范围。本文中提及的全部公开案和其他参考资料以其全文通过引用合并入本文。
实施例1、突变的腺苷脱氨酶的筛选
对腺苷脱氨酶TadA8e(氨基酸序列如SEQ ID No.1所示)结构进行预测,申请人通过生物信息学预测可能影响其生物学功能的关键氨基酸位点,选取相关位点建立突变体文库,利用荧光报告系统进行筛选。本实施方式中,将SEQ ID No.1自N端起第36位、第68位、第69位、第75位、第82位、第83位、第96位、第99位、第100位、第114位、第115位、第116位、第118位、第119位、第122位、第123位、第124位、第128位、第130位、第131位、第132位、第134位、第136位、第138位、第139位、第143位、第146位、第164位、第165位、第166位进行单位点氨基酸突变。
通过基于PCR的定点诱变产生TadA8e腺苷脱氨酶的变体。具体的方法是以突变的位点为中心将腺苷脱氨酶的DNA序列设计分成两部分,针对突变位点设计引物,每两对引物对应一种氨基酸突变,设计两对引物分别扩增这两部分DNA序列,同时引物上引入需要突变的序列,最后通过Gibson克隆的方式将两个片段装载到pcDNA3.3-eGFP载体上。突变体的组合则通过将TadA8e蛋白的DNA拆分成多段,使用PCR、Gibson clone实现构建。片段扩增试剂盒:TransStart FastPfu DNA Polymerase(含2.5mM dNTPs),具体实验流程详见说明书。胶回收试剂盒:Gel DNA Extraction Mini Kit,具体实验流程详见说明书。载体构建所用试剂盒:pEASY-Basic Seamless Cloning and Assembly Kit(CU201-03),具体实验流程详见说明书。
基于上述氨基酸突变位点,分别获得了TadA8e的野生型蛋白(WT),以及第36位、第68位、第69位、第75位、第82位、第83位、第96位、第99位、第100位、第114位、第115位、第116位、第118位、第119位、第122位、第123位、第124位、第128位、第130位、第131位、第132位、第134位、第136位、第138位、第139位、第143位、第146位、第164位、第165位或第166位氨基酸单位点突变的腺苷脱氨酶(以突变类型命名):L36R、L68R、V69R、L75R、V82R、T83R、H96R、I99R、G100R、A114R、G115R、S116R、M118R、N119R、N122R、Y123R、P124R、H128R、V130R、E131R、I132R、E134R、I136R、A138R、D139R、A143R、C146R、S165R、S164R、I166R;上述突变的腺苷脱氨酶与SEQ ID No.1相比,第36位、第68位、第69位、第75位、第82位、第83位、第96位、第99位、第100位、第114位、第115位、第116位、第118位、第119位、第122位、第123位、第124位、第128位、第130位、第131位、第132位、第134位、第136位、第138位、第139位、第143位、第146位、第164位、第165位或第166位氨基酸突变为R。
实施例2.突变的腺苷脱氨酶碱基编辑活性的验证
采用实施例1获得的不同的腺苷脱氨酶突变体在动物细胞中验证其基因编辑的活性,本实施方式的荧光报告系统参考本领域技术人员熟知的实验方法,构建了适于验证ABE的荧光报告系统。对野生型Cas12i3(CN111757889B中的Cas12f.4,本实施例中,将其称之为Cas12i3)进行突变获得核酸酶活性失活的dCas12i3(氨基酸序列如SEQ ID No.2所示),形成CMV-腺苷脱氨酶-dCas12i3表达环连入pcDNA3.3表达载体。设计靶点gBFP,与Cas12i3的DR序列一同连接形成U6-DR-gBFP表达环连入pcDNA3.3表达载体,crRNA序列为AGAGAAUGUGUGCAUAGUCACAC GTGTGTTCTGCTAGTAGTGG,下划线区域为靶向区;pcDNA3.3表达载体还含有突变后的BFP荧光蛋白,如图1所示,将BFP中的CTG突变为终止密码子CTA,翻译提前终止,检测不到BFP荧光,若ABE有功能则使A变成G,破坏终止密码子,翻译不再提前终止,可以检测到BFP荧光;所述构建后的表达载体转染293T细胞系,48h后通过流式细胞仪荧光检测并计算BFP比例;单碱基编辑效率计算为BFP阳性细胞数/总的细胞数。
不同的腺苷脱氨酶与dCas12i3组合后的编辑效率如下表和图2所示。
图2示出,根据荧光报告系统筛选的结果,突变后腺苷脱氨酶L36R、L68R、V69R、L75R、V82R、T83R、H96R、I99R、G100R、A114R、G115R、S116R、M118R、N119R、N122R、Y123R、P124R、H128R、V130R、E131R、I132R、E134R、I136R、A138R、D139R、A143R、C146R、S165R、S164R、I166R的碱基编辑活性与野生型(图2中的WT)碱基编辑活性相比活性得到明显提升,突变后的腺苷脱氨酶与dCas12i3组成的ABE碱基编辑系统的碱基编辑活性最高可以达到野生型ABE碱基编辑系统碱基编辑活性的近1.9倍。
实施例3.验证上述ABE碱基编辑系统在体内的编辑效率
选择实施例2中突变的腺苷脱氨酶(L36R、L75R、G115R、N119R、H128R、V130R、I132R),在293T细胞中验证体内编辑效率,设计靶点CHK2-g7序列信息:tgtttcaacattgagagctgggtc,将突变的腺苷脱氨酶,dCas12i3以及crRNA序列依次构入表达载体转入293T细胞中,进行细胞培养,转染,筛选,提取DNA、PCR扩增编辑区附近,送测序:细胞经胰酶消化处理后进行收集,经细胞/组织基因组DNA提取试剂盒进行基因组DNA提取的处理。基因组DNA扩增引物L:ctattcgaatacttacatgatttagctt;扩增引物R:ctattcgaatacttacatgatttagctt,PCR产物进行测序。
各个腺苷脱氨酶与dCas12i3组合后在293T细胞中的编辑效率如下表和图3所示。
测序数据分析,统计靶点序列上下游20bp范围内的序列种类和比例,可以获得突变的ABE系统的碱基编辑编辑效率,如图3所示,突变后腺苷脱氨酶(L36R、L75R、G115R、N119R、H128R、V130R、I132R)与野生型(图3中的WT)碱基编辑活性相比活性得到明显提升,突变后的腺苷脱氨酶与dCas12i3组成的ABE碱基编辑系统的碱基编辑活性最高可以达到野生型ABE碱基编辑系统碱基编辑活性的近2.83倍。
上述结果反映出,TadA8e第36位、第68位、第69位、第75位、第82位、第83位、第96位、第99位、第100位、第114位、第115位、第116位、第118位、第119位、第122位、第123位、第124位、第128位、第130位、第131位、第132位、第134位、第136位、第138位、第139位、第143位、第146位、第164位、第165位、第166位氨基酸位点的突变可以稳定提高其单碱基编辑效率。
尽管本发明的具体实施方式已经得到详细的描述,但本领域技术人员将理解:根据已经公布的所有教导,可以对细节进行各种修改和变动,并且这些改变均在本发明的保护范围之内。本发明的全部分为由所附权利要求及其任何等同物给出。

Claims (11)

1.一种突变的腺苷脱氨酶,所述腺苷脱氨酶与亲本腺苷脱氨酶的氨基酸序列相比,在对应于SEQ ID No.1所示的氨基酸序列的以下任一或任意几个氨基酸位点处存在突变:第36位、第68位、第69位、第75位、第82位、第83位、第96位、第99位、第100位、第114位、第115位、第116位、第118位、第119位、第122位、第123位、第124位、第128位、第130位、第131位、第132位、第134位、第136位、第138位、第139位、第143位、第146位、第164位、第165位、第166位。
2.根据权利要求1所述的突变的腺苷脱氨酶,其特征在于,所述亲本腺苷脱氨酶的氨基酸序列与SEQ ID No.1相比具有至少70%的序列同一性;优选的,所述亲本腺苷脱氨酶来源于大肠杆菌。
3.一种融合蛋白,其特征在于,所述融合蛋白包含DNA结合蛋白和权利要求1-2任一所述的腺苷脱氨酶;优选的,所述DNA结合蛋白为Cas蛋白;优选的,所述Cas蛋白选自Cas9、Cas9n、dCas9、CasX、CasY、C2cl、C2c2、C2c3、GeoCas9、CjCas9、Casl2a、Casl2b、Casl2g、Casl2h、Casl2i、Cas12j、Casl3b、Casl3c、Casl3d、Casl4、Csn2、xCas9、Cas9-NG、LbCasl2a、enAsCasl2a、Cas9-KKH、循环置换Cas9、Argonaute(Ago)结构域、SmacCas9、Spy-macCas9、SpGas9-NRRH、SpaCas9-NRTH、SpaCas9-NRCH、Cas9-NG-CP1041、Cas9-NG-VRQR、dCas12i、nCas12i及其变体,优选的,所述Cas蛋白为Cas12i;更优选的,所述的DNA结合蛋白为核酸酶失活的Cas蛋白。
4.一种分离的多核苷酸,其特征在于,所述多核苷酸编码权利要求1-2任一所述的腺苷脱氨酶,或者,所述多核苷酸编码权利要求3所述的融合蛋白。
5.一种载体,其特征在于,所述载体包括权利要求4所述的多核苷酸以及与之可操作连接的调控元件。
6.一种CRISPR-Cas系统,其特征在于,所述系统包括权利要求3所述的融合蛋白以及至少一种gRNA;所述融合蛋白中的DNA结合蛋白为Cas蛋白,所述gRNA能够结合所述Cas蛋白。
7.一种组合物,其特征在于,所述组合物包含:
(i)蛋白组分,其选自:权利要求3所述的融合蛋白,所述融合蛋白中的DNA结合蛋白为Cas蛋白;
(ii)核酸组分,其为gRNA,所述gRNA能够结合所述Cas蛋白。
8.一种工程化的宿主细胞,其特征在于,所述宿主细胞包含权利要求1-2任一所述的腺苷脱氨酶,或权利要求3所述的融合蛋白,或权利要求4所述的多核苷酸,或权利要求5所述的载体,或权利要求6所述的CRISPR-Cas系统,或权利要求7所述的组合物。
9.权利要求1-2任一所述的腺苷脱氨酶,或权利要求3所述的融合蛋白,或权利要求4所述的多核苷酸,或权利要求5所述的载体,或权利要求6所述的CRISPR-Cas系统,或权利要求7所述的组合物,或权利要求8所述的宿主细胞在基因编辑中的应用;或者,在制备用于基因编辑的试剂或试剂盒中的应用;优选的,所述基因编辑为对靶基因进行单碱基编辑。
10.一种用于基因编辑的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒包括权利要求1-2任一所述的腺苷脱氨酶,或权利要求3所述的融合蛋白,或权利要求4所述的多核苷酸,或权利要求5所述的载体,或权利要求6所述的CRISPR-Cas系统,或权利要求7所述的组合物,或权利要求8所述的宿主细胞。
11.一种编辑核酸的方法,该方法包括使核酸的靶区域与权利要求1-2任一所述的融合蛋白和gRNA接触的步骤,所述gRNA包含能够结合权利要求3所述的融合蛋白中的Cas蛋白的以及能够结合所述核酸的靶区域的区段;其中,所述靶区域包含靶向的碱基对,所述融合蛋白能够将所述靶向的碱基对进行碱基替换;优选的,所述靶向的碱基对由A:T替换为G:C。
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